Bu protokolde kullanılan tüm hayvanlar, diyetler, reaktifler, kitler, aletler, yazılımlar ve hizmet sağlayıcıların detayları Materyal Tablosu'nda yer almaktadır. Tüm hayvan çalışmaları, Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı için Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH) Kılavuzlarına uygun olarak gerçekleştirildi ve Shandong İl Hastanesi Deneysel Hayvanlar Komitesi'nden onay aldı (etik onay no. 2022–007, 24 Ocak 2022'de onaylandı).
DIKKAT: Hayvan kanı, dışkı örnekleri ve dokular potansiyel biyolojik tehlikeli maddeler olarak ele alınmalıdır. Canlı hayvanlar, biyolojik örnekler, keskin maddeler, organik çözücüler ve kimyasal analiz reaktifleriyle ilgili tüm işlemler, kurumsal biyogüvenlik, hayvan bakımı ve kimyasal güvenlik yönetmeliklerine uygun olarak gerçekleştirilmelidir. Hayvan leşleri, dokular, kanla kirlenmiş maddeler ve dışkı örnekleri belirlenmiş biyolojik tehlike atık konteynerlerinde toplanmalı ve kurumsal hayvan tesisi veya biyogüvenlik ofisi aracılığıyla bertaraf edilmelidir. İğneler, gavaj iğneleri, kapiller tüpler ve diğer keskin eşikler, onaylı keskin kaplarda kullanımdan hemen sonra atılmalıdır. Metanol, asetonitril ve formik asit içeren çözeltiler dahil organik çözücü atıkları, etiketlenmiş kimyasal atık konteynerlerinde toplanmalı ve kurumsal tehlikeli kimyasal atık programı kapsamında bertaraf edilmelidir. Biyokimyasal ve oksidatif stres testlerinden kaynaklanan atıklar, üreticinin güvenlik veri formları ve kurumsal kimyasal güvenlik kurallarına uygun olarak toplanıp bertaraf edilmelidir.
Deneysel hayvanlar
Altı haftalık erkek C57BL/6J fareleri (n = 4 her grupta) belirli patojensiz (SPF) koşullarda, 22 ± 2 °C sıcaklıklarda 12 saatlik ışık/karanlık döngü ve %50–60 göreli nem ile tutuldu. Hayvanların yiyecek ve suya ima kadar erişimi vardı, her kafeste en fazla beş fare barındırılıyordu. Kontrol fareleri, %70 karbonhidrat, %20 protein ve %10 yağ (kcal) içeren standart bir chow diyetiyle beslendi. MASLD fare modelini oluşturmak için, farelere 8 hafta boyunca %20 karbonhidrat, %20 protein ve %60 yağ (kcal) içeren yüksek yağlı bir diyet verildi. Tüm diyetler 4 °C'de saklanıyor ve haftada iki kez yenileniyordu. Fareler, rastgele sayı üreteci kullanılarak deneysel gruplara rastgele atandırıldı ve örneklem büyüklüğü (grup başına n = 4) benzer yüksek yağlı diyet fare modelleri ve ön deneyler kullanılarak yapılan önceki çalışmalara dayanarak belirlendi. Tüm tedaviler, sirkadiyen varyasyonu en aza indirmek için her gün aynı saatte uygulandı.
Mikroalg yağı, Shandong Tarım Bilimleri Akademisi tarafından yaklaşık %99 saflıkla çıkarılıp arındırıldı. Mikroalg yağı, ışıktan korunan −30 °C sıcaklıkta depolanıyordu. Uygulamadan önce, yağ bir emülgatörle hazırlanır ve homojenlik sağlamak için iyice karıştırılır. Özellikle, DHA açısından zengin mikroalg yağı, normal tuzlu salinde %0,5 Tween-80 içeren steril %0,5 karboksimetilselüloz sodyumda emülsasyon edilmiştir. Mikroalg yağı ve emülgatör aracı 1:9 (v/v) oranında karıştırıldı ve gavajdan hemen önce 2 dakika girdaba salınarak uniform süspansiyon elde edildi. Mikroalg yağı ile tedavi edilen gruptaki fareler, günde bir kez steril beslenme iğnesi ile 10 μL/g vücut ağırlığında oral garaj ile preparat almıştır. Doz tutarlılığını sağlamak için gavaj hacmi vücut ağırlığına göre günlük olarak ayarlandı. Kontrol grubundaki fareler aynı koşullarda eşdeğer miktarda steril normal salin aldı. Kullanılan tuzlu serişde %0,9 sodyum klorür enjeksiyonuydu.
Probiyotik tedavi, Lactobacillus plantarum (DY-1), Lactobacillus acidophilus (KDB-03), Lactobacillus casei (KDB-LC) ve Bacillus coagulans (GIM 1.645) içeren kompozit bir formülasyondan oluşuyordu. Dört suş, 1:1:1:1 eşit canlı hücre oranında karıştırıldı. Her suş nihai formülasyona 2,5 × 107 CFU/mL katkı sağladı ve toplam bakteri konsantrasyonu 1 × 10,8 CFU/mL oldu. Probiyotik karışımı Shandong Tarım Bilimleri Akademisi tarafından sentezlenmiştir ve ticari olarak mevcut değildir. Probiyotik tedavi, Lactobacillus plantarum DY-1, Lactobacillus acidophilus KDB-03, Lactobacillus casei KDB-LC ve Bacillus coagulans GIM 1.645 içeren kompozit probiyotik fermantasyon çorbasından oluşuyordu. Formülasyonun bakteri konsantrasyonu 1 × 108 CFU/mL idi. Probiyotik fermantasyon suyu kullanımdan önce 4 °C'de saklandı. Probiyotikle tedavi edilen gruptaki fareler, deney dönemi boyunca günde bir kez oral garaj ile 0,01 mL/g vücut ağırlığı dozunda probiyotik formülasyonu aldılar.
Bireysel suşlar uygun koşullarda kültürlendi ve orta log büyüme aşamasında (OD₆₀₀ ≈ 0.6) hasat edildi, ardından belirtilen oranda birleştirildi. Bakteriyel kültürler santrifüjlenerek üst sıvıyı çıkardı ve pelletler steril fosfat-tamponlu tuzlu (PBS) ile yeniden süspansiyona getirildi. Yeni hazırlanmış bakteriyel süspansiyon, uygulanabilirliği korumak için uygulamadan önce buzda tutuldu. Nihai bakteri konsantrasyonu uygulamadan önce 1 × 108 CFU/mL olarak ayarlandı. Probiyotik grubundaki fareler, deney dönemi boyunca günde bir kez vücut ağırlığı 0.01 mL/g dozda oral garaj ile formülasyonu aldı. Probiyotik uygulamasından önce antibiyotik ön tedavisi uygulanmadı. Deneysel yanlılığı azaltmak için, sonuç değerlendirmesi uygun olduğunda kör araştırmacılar tarafından yapıldı. MASLD kan biyokimyasal analiziyle doğrulandı.
Kan analizi
Deneysel dönemin sonunda, fareler gece boyunca (12 saat) açlık tutulur, glukoz ölçümü ve terminal kan alımı öncesinde suya serbest erişim sağlanır. Fareler, pedal refleksinin kaybı doğrulana kadar anestezi buharlaştırıcısı kullanılarak izofluran ile derin anestezi altına alındı. Terminal kan örnekleri retro-orbital kanama ile alındı. Kan alındıktan sonra, fareler derin anestezi altında servikal dislokasyon ile ötanazi edildi ve solunum ve kalp atışının kesilmesiyle ölüm doğrulandı. Kan oda sıcaklığında pıhtı oluşmasına izin verildi ve ardından serum elde etmek için 3.000 × g sıcaklıkta 10 dakika santrifüj edildi. Serum örnekleri aliquote edilip analiz yapılana kadar −80 °C'de saklandı. Serum glikozu, toplam kolesterol (TC), trigliseritler (TG), düşük yoğunluklu lipoprotein kolesterol (LDL-c), yüksek yoğunluklu lipoprotein kolesterol (HDL-c), aspartat aminotransferaz (AST) ve alanin aminotransferaz (ALT), üreticinin talimatlarına uygun olarak otomatik biyokimyasal analizör kullanılarak ölçüldü. Bu parametreler, analizör sistemine entegre edilmiş standart reaktif kitleriyle enzimatik kolorimetrik testler kullanılarak nicelendirildi. Tüm biyokimyasal parametreler serum hacmine normalleştirilmiş ve üretici tarafından belirtilen birimlerle ifade edilmiştir.
Oksidatif stres testleri
Oksidatif stres biyobelirteçleri, malondialdehit, süperoksit dismutaz ve katalaz için olanlar da dahil olmak üzere kitlerle ölçüldü. Testler üreticinin talimatlarına uygun olarak yapıldı. Kısa bir süreliğine, karaciğer dokuları buz gibi tampon içinde homojenleştirildi ve analiz için süpernatanlar elde etmek üzere santrifüjlendi. Malondialdehit (MDA) seviyeleri, tiyobarbiturik asit reaktif maddeler (TBARS) testi kullanılarak belirlendi; süperoksit dismutaz (SOD) aktivitesi, süperoksit aracılı reaksiyonları engelleyebilme yeteneğiyle ölçüldü; ve katalaz (CAT) aktivitesi, hidrojen peroksitin ayrışma oranı izlenerek nicelendirildi. Ölçümler bir mikroplaka okuyucu kullanılarak yapıldı ve değerler standart eğriler veya kitlerde sunulan formüller kullanılarak hesaplandı. Oksidatif stres belirteçleri karaciğer dokusu ağırlığına normalize edilip, üreticinin spesifikasyonlarına göre ifade edildi.
16S rRNA dizilemesi ve mikrobiyom analizi
Deney döneminin sonunda bireysel farelerden steril koşullarda doğrudan dışkı örnekleri toplandı, hemen sıvı azotta donduruldu ve DNA çıkarımı yapılana kadar −80 °C'de saklandı. Mikrobiyal DNA, üreticinin protokolüne göre ticari bir kit kullanılarak çıkarıldı. Bakteriyel 16S rRNA geninin V3–V4 bölgesi, 341F/806R primerleri kullanılarak amplifikasyon yapıldı. PCR amplifikasyonu, şablon DNA, 2x PCR master karışımı ve her primerden 0,2 μM içeren 25 μL reaksiyon sisteminde gerçekleştirildi. Amplifikasyon programı, ilk denatürasyondan oluşuyordu ve 95 °C'de 3 dakika sürdü, ardından 30 saniye için 95 °C, 30 saniye için 55 °C ve 45 saniye 72 °C ile 25 döngü, son uzatma ise 72 °C'de 10 dakika yapıldı. Amplicon kütüphaneleri, ticari bir dizileme hizmet sağlayıcısı tarafından çiftli uçlu 2 × 250 bp stratejisiyle bir Illumina MiSeq platformunda oluşturulmuş ve sıralanmıştır. Kütüphane kalitesi dizelemeden önce değerlendirildi ve havuza alınan kütüphaneler üreticinin önerdiği küme yoğunluğunda yüklendi. Düşük kaliteli okumalar, belirsiz temeller, yetersiz uzunluk veya Q20'nin altında ortalama kalite puanı olan okumalar, sonraki analizden önce kaldırıldı.
Ham dizileme okumaları QIIME 2 sürüm 2019.420 kullanılarak işlendi. Kısaca, eşleştirilmiş uç okumaları, varsayılan parametrelerle DADA2 kullanılarak demultiplex, kalite filtreli, gürültü giderilmeli, birleştirilmiş ve kimera filtresi ile filtrelenmiştir, aksi belirtilmedikçe. Tekil olmayan amplikon dizisi varyantları (ASV'ler) aşağı akış analizi için tutuldu. Taksonomik atama, QIIME221'de uygulanan Greengenes veritabanı 13_8 sürümü kullanılarak gerçekleştirilmiştir. 16S rRNA gen dizilemesinin doğal çözünürlük sınırlamaları göz önüne alındığında, özellikle Greengenes veritabanı kullanılırken, taksonomik açıklamalar yalnızca cins düzeyinde yorumlanmıştır. Tür düzeyinde sınıflandırma güvenilir görülmediği için herhangi bir sonraki analizde, istatistiksel karşılaştırmada veya biyolojik yorumlarda kullanılmadı. Tüm mikrobiyal özellikler görselleştirme ve analiz öncesinde cins seviyesine indirildi.
Alfa-çeşitlilik metrikleri (Chao1, Gözlemlenen tür, Shannon, Simpson, Faith'in PD'si ve Pielou'nun eşitliği) kullanıldı. Gruplar arasındaki alfa çeşitliliğinin istatistiksel karşılaştırmaları, uygun parametrik olmayan testler (örneğin Kruskal–Wallis testi) kullanılarak gerçekleştirildi. Jaccard mesafesi ve Bray-Curtis farklılığı beta çeşitliliği ölçütleri olarak kullanıldı. Mikrobiyom topluluklarındaki değişiklikleri göstermek için Ana Koordinat Analizi (PCoA) grafikleri, metrik olmayan çok boyutlu ölçeklendirme (NMDS) ve doğrusal ayrımcı analiz etkisi boyutu (LEfSe) kullanılarak LDA puan eşiği 2.0 oldu. Beta çeşitliliğinde istatistiksel anlamlılığı değerlendirmek için permütasyonel çok değişkenli varyans analizi (PERMANOVA) kullanıldı. Veri görselleştirme ve istatistiksel analizler GenesCloud platformu (https://www.genescloud.cn) kullanılarak gerçekleştirildi.
Mikrobiyal fonksiyonel profiller, doğrudan pompalı metagenomik veya transkriptomik dizileme ile ölçülmek yerine 16S rRNA dizileme verilerinden çıkarılmıştır. Normalize edilmiş yol veya fonksiyonel grup bolluk tablosuna dayanarak, öngörülen fonksiyonel birimler KEGG, MetaCyc ve COG gibi yaygın kullanılan veritabanlarına eşlendi. KEGG yol bolluğu, hiyerarşik fonksiyonel kategorilerine göre özetlenmiş, aşağı akış karşılaştırması için seviye 2 yol sınıflandırmaları kullanılmıştır. Her yol kategorisinin ortalama bolluğu R yazılımı kullanılarak hesaplandı.
Karaciğer örneklerinin hedefsiz metabolomik analizi
Karaciğer dokuları, ölüm doğrulandıktan hemen sonra hızla çıkarıldı, hemen sıvı azotta donduruldu ve analiz öncesi −80 °C sıcaklıkta saklandı. Yaklaşık 50 mg donmuş karaciğer dokusu, buz gibi metanol:suda (4:1, v/v) ve iç standartlarla desteklenerek homojenize edildi. Doku-ekstraksiyon çözücü oranı 1:10 (w/v) idi. Örnekler 1 dakika girdabla geçirildi, 10 dakika buzda soniklendi ve ardından protein çökelmesini artırmak için −20 °C'de 30 dakika kuluçka altına alındı. Homojenatlar iyice karıştırıldı, buz üzerinde sonikasyona maruz kaldı ve 12.000 × g sıcaklıkta 4 °C'de 15 dakika boyunca santrifüjlendi. Süpernatanlar dikkatlice toplanmış, hafif bir azot akışı altında buharlaştırılmış ve sonraki analiz için %50 metanol içinde yeniden oluşturulmuştur.
Kalite kontrol (QC) örnekleri, her örnekten eşit hacimlerin toplanmasıyla oluşturuldu ve analiz boyunca aralıklı olarak analiz edilip, analitik kararlılık ve tekrarlanabilirlik değerlendirildi. Hedefsiz metabolomik analizi, ticari bir hizmet sağlayıcısı tarafından işletilen, yüksek çözünürlüklü kütle spektrometrisi ile eşleştirilmiş ultra yüksek performanslı sıvı kromatografi sistemi kullanılarak gerçekleştirildi. Metabolitler, %0,1 formik asit içeren su ve %0,1 formik asit içeren asetonitril içeren ikili çözücü sistemiyle ters faz C18 kolonunda ayrılmıştır. Enjeksiyon hacmi 2 μL, kolon sıcaklığı 40 °C'de tutuldu ve akış hızı 0,30 mL/dakika olarak ayarlandı. Geniş metabolit ayrımı sağlamak için gradyan elüsyon programı kullanıldı. Kütle spektrometrik tespiti, geniş metabolit kapsamı sağlamak için 70–1.000 m/z aralığında hem pozitif hem de negatif elektrosprey iyonizasyon modlarında gerçekleştirildi. İyon püskürtme voltajı pozitif modda 3,5 kV, negatif modda −2,5 kV olarak ayarlandı. Kapiller sıcaklık 320 °C'de tutuldu ve veriler, metabolit açıklaması için veriye bağlı MS/MS toplama ile tam tarama MS modunda alındı. Ham veriler, özellik tespiti, hizalama ve normalizasyon için özel metabolomik yazılımı (MassLynx v4.1) kullanılarak işlendi. Metabolit tanımlaması, doğru kütle, tutma süresi ve MS/MS parçalanma desenleri doğrultusunda, İnsan Metabolom Veritabanı (HMDB) ve Kyoto Genler ve Genomlar Ansiklopedisi (KEGG) (v2023) dahil olmak üzere kamu veri tabanlarıyla karşılaştırıldığında gerçekleştirilmiştir.
Çok değişkenli ve yol analizi
İşlenen metabolomik veriler, deneysel gruplar arasındaki metabolik farkları görselleştirmek için ana bileşen analizi (PCA) ve kısmi en küçük kare diskriminant analizi (PLS-DA) dahil olmak üzere çok değişkenli istatistiksel analizlere tabi tutuldu. Diferansiyel metabolitler, projeksiyon (VIP) puanlarında değişken önemi (>1.0) ve istatistiksel anlamlılık (p < 0.05) kombinasyonuna dayanarak tanımlandı. Tanımlanan metabolitler, DHA açısından zengin mikroalg yağı takviyesiyle ilişkili biyolojik süreçleri aydınlatmak için KEGG yol zenginleştirme analizi kullanılarak metabolik yollara daha da haritalandı.
İstatistiksel analiz
Veriler, ortalama ± SEM olarak sunuldu ve tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ile analiz edildi, ardından Tukey'nin çoklu karşılaştırma testi yapıldı. İstatistiksel anlamlılık p < 0.05 olarak tanımlandı. Karaciğer metabolitlerinin zenginleştirme analizi R (versiyon 4.4.1) kullanılarak gerçekleştirildi. Mikrobiyal cinsler ile karaciğer metabolitleri arasındaki çiftli ilişkiler, Spearman sıralama korelasyonları kullanılarak analiz edilmiştir. Yalnızca |ρ| ile anlamlı korelasyonlar (yanlış keşif oranı, FDR < 0.05) ≥ 0.6 entegre ağ analizlerine dahil edildi. Mikrobiyom ve metabolomik veri işleme yukarıdaki gibi gerçekleştirildi; GenesCloud platformunun kullanımı ve kalite kontrol prosedürleri dahil olmak üzere.