Fizyolojik veya patolojik koşullar altında iyileşme sürecinin farklı aşamalarında çeşitli terapötik ajanların değerlendirilmesini sağlayan bir fare derisi yara modeli tanımlanır. Ayrıca, doku onarımı sırasında yara kasılma oranını izlemek için manuel planimetri protokolü detaylandırılmıştır.
Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.
Yöntem makalesi
Bir Fare Cerrahi Deri Yara Modeli: Yara İyileşme Çalışmaları ve Biyomateryal Değerlendirmesi için Bir Yaklaşım
Bu makalede
Özet
Özet
Deri yarasının iyileşmesi, iltihaplanma, proliferasyon ve yeniden şekillendirme gibi koordineli aşamaları içeren karmaşık bir biyolojik süreçtir. Yara iyileşmesinin temel mekanizmalarını daha iyi anlama ihtiyacı nedeniyle, bu sürecin bilgisini derinleştirmek ve yeni terapötik yaklaşımların geliştirilmesini kolaylaştırmak için eksizyon hayvan yara modelleri yaygın olarak kullanılmaktadır. Bu tür modellerde, standart lezyonlar verdiği için punch biyopsileriyle cilt yaralarının indüklenmesi sıkça uygulanır. Ancak bu teknik, lezyonu dairesel bir şekilde sınırlar, bu da bazı deneysel amaçlar için uygun olmayabilir. Bu bağlamda, sıçanlarda tam kalınlıkta eksizyon deri yaraları indüksiyonu için yan tarafta standartlaştırılmış kare model kullanılarak basit ve tekrarlanabilir bir cerrahi protokol sunulmaktadır. Bu metodoloji, farklı boyut ve geometrik lezyonların oluşturulmasına olanak tanır; her çalışmanın özel hedeflerine göre daha fazla deneysel esneklik sağlar ve fizyolojik veya patolojik koşullar altında iyileşme sürecinin izlenmesini sağlar. Ayrıca, manuel planimetri ile yara kasılma oranını izlemek için bir yöntem de tanımlanır. Bu protokolün uygulanması detaylara dikkat ve teknik yeterlilik gerektirse de, ileri cerrahi beceriler gerekmez.
Giriş
Deri yarasının iyileşmesi, doku bütünlüğünü yeniden kazandırmayı amaçlayan çoklu koordineli olaylardan oluşan karmaşık ve organize edilmiş bir biyolojik süreçtir. Bu olgu, hemostaz ve iltihaplanma, proliferasyon ve yeniden şekillendirme gibi belirgin ama örtüşen evrelerden geçer. İltihap faz, yara oluşumundan dakikalar sonra başlar, yaralanmadan 24 ila 48 saat arasında zirve yapar ve bağışıklık hücrelerinin toplanmasını ve inflamatuar aracıların salınmasını içerir. Proliferatif faz, yaralanmadan 4 ila 5 gün sonra başlayan ve potansiyel olarak haftalarca süren yeniden epitelizasyon ve granülasyon doku oluşumu ile işaretlenir. Son olarak, yara yaralanmadan sonraki üçüncü haftada başlayan ve aylar veya yıllar sürebilecek yeniden şekillendirme aşamasına girer ve doku yeniden organizasyonuile karakterize edilir 2. İyileşme normal ilerlemediğinde, kronik bir yaraya yol açabilir ve bu da hem hasta hem de sağlık sistemi üzerinde önemli bir yükoluşturur ve yeni terapötik yaklaşımların geliştirilmesinin gerekliliğini vurgular.
Hayvandan tüm deri katmanlarının (epidermis, dermis ve deri altı doku) cerrahi olarak alınması yoluyla eksizyon yara oluşturulması, iltihaplanma, granülasyon dokusu oluşumu, yeniden epitelizasyon, anjiyogenez ve yeniden şekillendirme sürecininaraştırılmasına olanak tanır 4. Son on yıllarda, yara iyileşme modellerinin benimsenmesi, bu süreci kolaylaştıran moleküler ve hücresel olaylar hakkındaki bilgi ve anlayışı genişleten çok sayıda keşfe olanaksağlamıştır 5. In vivo modeller, birden fazla hücre tipi, çevresel ipuçları ve parakrin etkileşimler sayesinde tam iyileşme mikro ortamını daha doğru temsil ettikleri için, insan yara onarımını incelemek için en öngörücü araçlarolarak kalmaktadır 6. Bu bağlamda, sıçanlar ve fareler, kolay kullanımı ve bakımı nedeniyle yaygın olarak kullanılmaktadır4.
Bu modellerde, punch biyopsileri sıklıkla cerrahi yaraları indüklemek için kullanılır çünkü standart eksizyonlar sağlarlar. Sonuç olarak, literatürde tanımlanan çoğu deneysel model, dairesellezyonlar 7—12'ye dayanır. Bu yaklaşım yaygın olarak kabul görse de, alternatif geometrilerin kullanımı yara iyileşme çalışmaları için mevcut metodolojik yaklaşımları çeşitlendirebilir. Bu bağlamda, skarpelle yara oluşturulması, punch biyopsilerinde kullanılan standart dairesel desenin dışında farklı boyutlarda ve belirli şekillerde lezyonlarınoluşmasını sağlar 13,14,15,16,16,17,18. Ayrıca, hayvan modellerinde yapılan karşılaştırmalı çalışmalar, bistüri kesilerinin diğer tekniklere kıyasla daha az ilk doku hasarına yol açtığınıgöstermiştir 19.
Bu protokol, yan bölgede kare lezyon modeli kullanılarak sıçanlarda tam kalınlıkta eksizyon deri yaraları indükte alternatif bir cerrahi yöntemi tanımlar. Sunulan yaklaşım, lezyon alanının standartlaştırılmasını ve doku onarım sürecinin izlenmesini kolaylaştırır. Ayrıca, fizyolojik veya patolojik koşullar altında deri iyileşmesinin farklı aşamalarında farklı terapötik stratejiler ve biyomalzemelerin etkilerini değerlendirmeyi amaçlayan çalışmalar için de geçerlidir.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Protokol
Tüm deneysel prosedürler, Universidade Estadual de Santa Cruz (UESC) Hayvan Kullanımı Etik Komitesi (CEUA) tarafından onaylandı. Wistar fareleri (Rattus norvegicus), UESC'deki Hayvan Yetiştiriciliği, Bakım ve Deney Laboratuvarı'ndan (LaBIO)/Hayvan Tesisi'nden CEUA/UESC protokolü No. 010/25 kapsamında alınmıştır. Tüm hayvan prosedürleri, NIH Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi'ne uygun olarak yürütüldü ve hayvan refahı ile etik kullanım için kurumsal yönergelere uygun oldu. Deneysel protokolün genel tasarımı Şekil 1'de gösterilmekte olup, bu protokolde kullanılan malzeme ve ekipmanlar, Ek malzeme olarak sunulan Materyaller Tablosu'nda ayrıntılı olarak gösterilmiştir.
Şekil 1: Fare modellerinde deri yara indüksiyon protokolünün deneysel tasarımı. (A) Hayvan sedasyonunun ardından deneysel bölge tıraş edilir; (B) izofluran içeren bir odada anestezi indükte etmek ve refleks kaybı durumunda yüz maskesi aracılığıyla yeterli anestezik düzlemi korumak; (C) tıraş edilen bölgede antisepsis işlemini yapmak, lezyon boyutlarını kaliper ile ayırmak ve cerrahi yarayı steril bir neşter kullanarak oluşturmak; (D) lezyonu şeffaf bir film kaplama ile koruyacak ve yapışkan arka kağıtla manuel planimetry yapacak; (E) 3 gün boyunca her 12 saatte bir tramadol hidroklorür ile ameliyat sonrası analjezi uygulanır; (F) deneysel tedaviyi yara indüksiyonundan 24 saat sonra uygular; (G) önceden belirlenmiş deneysel zaman noktasında ötenazi gerçekleştirir ve sonraki analizler için örnek toplama ve planimetri izlemelerine devam eder. Bu figür, yazarlar tarafından BioRender ile oluşturulmuştur. Galvão, M. (2026) https://BioRender.com/jsiygmf. Yayın lisansı eklenmiştir. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
1. Hayvanlar ve muamele
- 2 ila 3 aylık yetişkin erkek Wistar fareleri kullanın.
- Ameliyattan bir gün önce, hayvan kafeslerinin temiz ve dezenfekte olduğundan emin olun ve deneysel gruplara göre etiketleyin.
- Ameliyat günü, her hayvanı dijital bir tarzi ile tartın ve değerleri kaydedin.
- Hayvanları, daha önce dezenfekte edilmiş ve etiketlenmiş kafeslere rastgele dağıtın, hayvan refahı koşullarını sağlamak için barınma kapasitesine saygı gösterin.
- İnce uçlu kalıcı bir işaretleyici kullanarak, kuyruğundaki her hayvanı deneysel grubuna ve sayısına göre tanımlayın, böylece tüm deney boyunca izlenebilirlik sağlanır.
NOT: Kurumsal hayvan tesisindeki hayvan bulunabilirliğine ve çalışmanın özel hedeflerine bağlı olarak dişi hayvanlar da bu protokolde kullanılabilir. Hayvanların alfanumerik tanımlanması önerilir; harf deneysel grubu, numara ise hayvanı gösterir. örneğin, A1 grup A, hayvan 1'e atıfta bulunur.
2. Ameliyat öncesi işlem
- Sedasyon
- Önceden hazırlanın: pamuk, %70 etanol, hayvan başına bir iğneli 1 mL hipodermik şırınga, morfin sülfat (10 mg/mL) ve CO₂ odasını hazırlayın.
- Hayvanın karın bölgesine %70 etanol ve pamuk kullanarak antisepsis yapın. Anestezi öncesi ilaç olarak, karın alt sağ kvadrantına intraperitoneal olarak 5 mg/kg (10 mg/mL) dozda morfin sülfat uygulanır.
- Pre-anestezik ilaç verildikten on dakika sonra hayvanı CO₂ odasına yerleştirin.
DIKKAT: Morfin sülfat, iğneler, CO₂ maruziyet sistemleri ve %70 etanol, eldiven, laboratuvar önlüğü ve koruyucu gözlük dahil olmak üzere uygun kişisel koruyucu ekipman (PPE) kullanan eğitimli personel tarafından yalnızca ele alınmalıdır. İğneler ve şırıngalar onaylı keskin kaplara atılmalı, kimyasal ve biyolojik atıklar ise kurumsal biyogüvenlik ve tehlikeli atık düzenlemelerine uygun olarak bertaraf edilmelidir.
NOT: 10 dakikalık bekleme süresinde, CO₂ odasında anestezi işlemi yapın ve yara bölgesini hazırlayın.
- Anestezi prosedürü
- Önceden hazırlanın: izofluran solunma anestezisi %4 (hacim yüzdesi), CO₂ odası ve 1 termal battaniye.
- CO₂ odasında %4 V konsantrasyonda izofluran ile anestezi indük edin.
- Hayvanın reflekslerini kaybettikten sonra, hayvanı CO₂ odasından yüz maskesine aktarın.
- Hayvan anestezisini, izofluran ile %2 veya yeterli cerrahi anestezik düzleminde tutmak için gereken konsantrasyonda ve 50 mL/dakika taze gaz akışıyla devam edin.
- İşlem boyunca, hayvanın vücut sıcaklığını termal battaniye kullanarak koruyun.
NOT: Hayvanda refleks yanıtların, dijital arası mekanik uyarıma karşı çekilme reaksiyonu olmaması, düzenli solunum hareketleri ve işlem boyunca gönüllü vücut hareketlerinin olmaması gibi durumlarda yeterli bir cerrahi anestezi düzlemi elde edilmiş sayılır.
DIKKAT: İzofluran, soluma maruziyeti riski taşıyan uçucu bir anestezidir. Bu nedenle, yeterli egzoz havalandırması olan anestezi sistemiyle uygulanması şiddetle tavsiye edilir. Ayrıca, operatörler önlük, eldiven, maske ve şapka dahil olmak üzere PPE giymek zorundadır. İşlem boyunca anestezik düzlemi ve vücut sıcaklığının sürekli izlenmesi gereklidir. Kalıntı anestezik malzemeler ve kirlenmiş tek kullanımlık maddeler, kurumsal kimyasal ve biyolojik atık düzenlemelerine uygun olarak atılmalıdır.
- Yara bölgesi hazırlığı
- Önceden hazırlık yapın: gazlı bez süngerleri, paslanmaz çelik bıçak, %70 etanol ve %10 povidon-iyot veya %0,2 sulu klorheksidin.
- Hayvanın sol yan bölgesine gazlı bez süngeri ve sabun uygulayın.
- Ameliyat masasında, hayvanı sağ lateral dekubitusa yerleştirin.
- Sol yanını paslanmaz çelik bıçak veya elektrikli tıraş makinesi ile tıraş edin.
- Tıraş edilen bölgeye ameliyat öncesi antisepsis uygulanır; gazlı bez süngeri ve %70 etanol (üç kez), ardından gazlı bez süngeri ve %10 povidon-iyot veya %0,2 sulu klorheksidin (üç kez) uygulanır.
DIKKAT: Keskin silahlar dikkatle ele alınmalı ve kullanımdan sonra uygun sert kaplara atılmalıdır. Ayrıca, tanımlanan kimyasallar önerilen kişisel koruyucu ekipmanla ele alınmalı ve gözler ile mukoza zarlarıyla temas kurmaktan kaçınmalıdır. Kullanılan bıçaklar onaylı keskin kaplara atılmalı, kontamine gazlı bez, antiseptik kalıntılar ve biyolojik malzemeler ise kurumsal biyogüvenlik ve tehlikeli atık düzenlemelerine uygun olarak bertaraf edilmelidir.
3. Deri yarası indüksiyonu
- Önceden hazırlanın: 1 kaliper, 1 ince uçlu kalıcı marker, gazlı bez ve steril cerrahi aletler (No. 23 bistür, Mayo makas ve anatomik penset)
- Kaliper ve kalıcı işaretleyici kullanılarak, deri üzerinde eşit mesafedeki dört noktayı ayırın, 1 x 1 cm boyutunda bir kare çizin.
- Cerrahi yarayı, steril No. 23 bistik bıçak, mayononis makas ve steril anatomik forseps kullanarak deri tamamen çıkararak deri altı dokuyu ve alttaki kasları açığa çıkararak oluşturulur.
- Steril gazlı bez kullanarak bölgede hemostazı sağlayın; kanamayı durdurana kadar yaraya nazik bir baskı uygulayın.
DIKKAT: Kan ve dokular potansiyel olarak bulaşıcı biyolojik atık olarak kabul edilmelidir. Prosedürü takip ederek, kurumsal biyogüvenlik standartlarına uygun şekilde doğru bertaraf edilmesini sağlayın.
NOT: Yara indüksiyon işlemi boyunca uygun aseptik tekniklerin uygulandığından emin olun. Personel için zorunlu olanlar arasında saç toru, eldiven, maske ve laboratuvar önlüğü gibi kişisel koruyucu ekipmanlar (PPE) ve steril cerrahi aletler de bulunmaktadır.
4. Yara bölgesinin manuel planimetrisi
- Önceden hazırlanın: şeffaf film kaplama, beyaz kağıt (8,5 × 11 inç), ince uçlu kalıcı marker ve şeffaf yapışkan bant.
- Şeffaf film pansmanının dikdörtgenlerini 5 x 3,5 cm boyutlarında kesin ve tüm yarayı kaplayın.
- Beyaz kağıt üzerinde grubu (örneğin, Grup A), hayvanı (ör. A1, A2, A3, A4) ve yara planimetrisi toplanma gününü belirtin. Yara indüksiyon gününde elde edilen planimetrilere D0, ilgili ötenazi gününde toplanan planimetrilere ise DX (örneğin, D3, D7, D14, D21) atanıyor.
- Yara bölgesini kaydetmek için şeffaf film sarmanı kullanın ve bunu mektup kağıdına aktarın. Bunu yapmak için, filmi yaranın üzerine yerleştirin ve ince uçlu kalıcı bir işaretleyici kullanarak tüm yara hatlarını çizerek manuel planimetri yapın.
- Şeffaf yapışkan bant kullanarak, elde edilen planimetry'yi ilgili kimliğine (grup/hayvan/gün) göre bir mektup kağıdına yapıştırın. Planimetry'ler yara bölgesini izlemek ve deney boyunca kasılma oranını belirlemek için kullanılacaktır.
NOT: Hayvanlar arasında kavga olmaları, yaralı bölgenin aşırı yalanması ve yamyamlığı önlemek için sarğı kullanımı önerilir; bu da yaraları kötüleştirebilir veya iyileşmeyi engelleyebilir. D0, yara indüksiyonu gününe (başlangıç çizgisi) karşılık gelir. D3, D7, D14 ve D21 zaman noktaları, hayvan ötenazi ve planimetri toplama işlemlerinin gerçekleştirildiği indüksiyon sonrası günleri (3., 7., 14. ve 21.) gösterir; bu da iltihap, proliferatif ve yeniden şekillendirme dönemlerinde iyileşme aşamalarının izlenmesini sağlar.
5. Acil ameliyat sonrası bakım
- Tramadol hidroklorüri önceden hazırlayın ve her hayvan için bir iğne ile steril 1 mL hipodermik şırıngayı bir kenara ayırın, böylece sıkı aseptik koşullar sağlanır. Ayrıca, yara koruması için krep bandajları ve tıbbi bant hazırlayın.
- Analjezi başlatmak için 5 mg/kg tramadol hidroklorür (50 mg/mL) ile her 12 saatte bir deri altına alın ve 3 gün boyunca devam edin.
- Cerrahi yara bölgesini krep bandajla sarıp yara bölgesini korumak için tıbbi bantla sabitleyin.
- Fareyi bireysel bir kafese yerleştirin ve anestezi ile ameliyattan iyileşmeyi sağlamak için izleyin.
- İyileşmeden sonra hayvanı ilgili kafesine geri gönderin.
6. Tedavi
- 24 saat yara indüksiyonundan sonra, istenen deneysel tedavilere başlayın, pansumanlar günlük olarak değiştirilir.
NOT: Tedavi süresi, her deneysel protokole bağlı olacaktır.
7. Ötenazi
- Her gruptan belirlenen örnekte hayvan etik komitesi tarafından onaylanan protokole göre ötenazi yapılmalıdır.
- Ölüm onaylandıktan sonra, 4. adımda açıklandığı şekilde yaranın manuel planimetrisi yapılacaktır.
NOT: Bu çalışmada, ötenazi, eğitimli personel tarafından kurumsal etik ve hayvan refahı kurallarına sıkı sıkıya uygun olarak kemirgenlere uygun giyotin cihazı kullanılarak baş kesimiyle indüklenmiştir. Ölüm, işlem sonrası solunum hareketlerinin, kalp atışının ve refleks tepkilerinin olmaması nedeniyle doğrulandı.
8. Lezyon alanının ölçümü
- Lezyon bölgesini değerlendirmek için görüntü analiz yazılımı gereklidir. Ayrıca, yara ölçümü ve izleme için manuel yara planimetrisi ve milimetre cetvel de gereklidir.
- Seçilen görüntü analiz yazılımını indirin ve gerekirse platforma erişmek için bir hesap oluşturun.
- Analize başlamadan önce, planimetry görüntüsünde iki sabit nokta (örneğin, A ve B) seçin ve milimetre cetvel kullanarak bu noktalar arasındaki mesafeyi ölçüp elde edilen değeri ayrı ayrı kaydedin (Şekil 2, adım A).
- Daha önce belirlenmiş planimetrileri yukarıda belirtilen noktalarla fotoğraflayın. Dosyaları ilgili deneysel grup tanımlamalarıyla birlikte kaydedin (Şekil 2, adım B).
- Görüntü analiz platformunu açın ve yara bölgesi değerlendirmesini başlatın.
- Yazılımda görüntü açıkken, yeni noktaları işaretlemek için imleç veya akıllı telefon dokunmatik ekranını kullanarak yeni noktaları işaretleyin, bunları önceden oluşturulanların üzerine bindirerek A ve B bölgeleri olarak tanımlayın (Şekil 2, adım B).
- Program, A ve B noktaları arasında otomatik olarak bir çizgi kurar ve cetvelle elde edilen ölçümü milimetre veya santimetre cinsinden talep eder. Bu ölçümü yazılıma girin ve ardından "ölçüt" seçeneğine tıklayın.
- Program, yara alanını otomatik olarak tespit eder ve yara uzunluğu, genişliği, çevresi, alan ve derinliği hakkında veri sağlar. Planimetride ise "derinlik" bilgisi mevcut olmayacaktır (Şekil 2, adım C).
- Oluşturulan analizlerle birlikte görüntüleri kaydedin ve istediğiniz yere dışa aktarın.
NOT: Bu protokolde tanımlanan yara alanı değerlendirmesi, Materyaller Tablosu'nda listelenen ticari olarak mevcut görüntü analiz yazılımı kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Ancak, yara ölçümü ve dijital planimetri yapabilen eşdeğer görüntü analiz platformları da kullanıcı tercihine ve kurumsal erişilebilirliğe göre kullanılabilir. Yazılım planimetry görselini otomatik olarak algılamıyorsa veya taslak planimetry'de görsel olarak gözlemlenenden farklıysa, programın alanı tanımasını kolaylaştırmak için taslağın güçlendirilmesi önerilir. Bu, kontrast bir renk (örneğin kırmızı) kullanılarak ve dış bölgeye yaklaşık 4 cm2 alan üzerinde doku uygulanarak sağlanabilir. Planimetry izlemelerinin fotoğrafları doğrudan cihazın galerisinden yüklenebilir veya sonraki yazılım analizi için kamera ile çekilebilir.
Şekil 2: ImitoWound kullanılarak lezyon alanının ölçümü. (A) Manuel planimetride iki noktayı (A ve B) işaretleyin ve aralarındaki mesafeyi (x) milimetre cetvel ile ölçün; (B) lezyon görüntüsünü yazılıma yükleyip önceden tanımlanmış aynı noktaları (A ve B) ayırarak orijinallerin üzerine bindirir; daha önce toplanan ölçümü (X) ölçek kalibrasyonu için girin; (C) yazılımı lezyon alanı ölçümüne devam etmesini istemeli; Alan değeri otomatik olarak hesaplanıp sistem tarafından sağlandığı için bekleyin. Bu figür, yazarlar tarafından BioRender ile oluşturulmuştur. Lessa da Silva, M. (2026) https://BioRender.com/dzko62t. Yayın lisansı eklenmiştir. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
9. Yara kasılma oranının belirlenmesi
- Değerlendirilen zaman noktalarında yara alanı belirlendikten sonra, veriler kullanılarak yara kasılmaoranı 20 aşağıdaki denklemi kullanarak hesaplanacaktır:
FF (%) = [(A0 - Ax) ÷ A0 ] × 100 (1)
Burada A₀ = 0. gündeki yara alanı; Ax = ötenazi gününde yara alanı; FF = sarma kapanma fraksiyonu
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Sonuçlar
Bu deneyde, referans tedavi olarak gümüş sülfadiazin kullanılmıştır. Ürün, lezyon indüksiyonundan 24 saat sonra yara yatağına topikal olarak uygulandı. Gümüş sülfadiazinin seçimi, antimikrobiyal bir ajan olarak ve deri yaralarının yönetiminde köklü klinik kullanımına dayanıyordu. Veriler, deneysel zaman noktasında n = 5 hayvan olmak üzere medyan ve çeyreklerarası aralık olarak sunulur. Şekil 3A, indüksiyon günü (D0) ve 3, 7, 14 ve 21. günlerdeki deri yarasın...
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Tartışma
İnsan yara iyileşmesiyle ilgili bilgi önemli ölçüde ilerlemiş olsa da, doğasında bulunan zorluklar ve sınırlamalar deneysel modellerin kullanımını bu alandaki araştırmalar için vazgeçilmezkılar 4. Bu bağlamda, mevcut protokol, geleneksel tekniklere alternatif bir yöntem olarak sıçanların yanındaki skarpelle indüklenen tam kalınlıkta bir eksizyon yara modelini tanımlamayı amaçladı. Dairesel punch biyopsilerinin kullanımıyla ilişkili dorsal bölge, deri iyileşme çalı...
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Açıklamalar
Yazarlar rekabet eden çıkarlar belirtmemektedir.
Teşekkürler
Burs desteği için Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado da Bahia (FAPESB) ve Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior (CAPES) Koordinat'ını minnettarlıkla teşekkür ediyoruz; Mali destek için Pró-Reitoria de Pesquisa e Pós-Graduação (PROPP/UESC), Mikroorganizmaların Biyoloji ve Biyoteknolojisi alanında lisansüstü programı (PPGBBM/UESC) tarafından desteklenmiştir. Ayrıca, ameliyathane ve ekipmanları sağladığı için Veteriner Tıp Hastanesi'ne (HVET/UESC) teşekkür ederiz.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Malzemeler
| Ad | Şirket | Katalog numarası | Yorumlar |
|---|---|---|---|
| Alkol (etanol %70) | Dinâmica | P.01.0024.006.06.81 | Antisepsi |
| Anatomi forseps | Sigma-Aldrich | F3892 | Paslanmaz çelik |
| Bandaj | Herhangi | Uygulanabilir değil | Yara koruması |
| Dışbükey ölçü aleti | Mitutoyo | 530-104 | Yara sınırlandırma |
| Klorheksidin %0,2 sulu antiseptik solüsyon | Riohex | Uygulanabilir değil | Antisepsi |
| CO2 odası | Bonther | D149F1LYSZ | Anestetik indüksiyon |
| Krep bandaj | Cremer | 818765 | 15 cm x 1,25 m |
| Tek kullanımlık lateks eldiven | Descarpak | e0530101 | Non-steril |
| Gazlı bez ped | Cremer | 819342 | 7,5 x 7,5 cm |
| Hipodermik şırınga | Dercarpack | e0324201 | 1 mL iğneli |
| ImageJ | Image J | https://imagej.net/ij/ | Planimetrik ölçüm |
| ImitoWound | ImitoWound | https://imito.io/pt/imitowound | Planimetrik ölçüm |
| Kat kat katlanmış kağıt havlu | Scott Smart | 48260 | Genel temizlik |
| Izofluran | Cristália | 7.89668E+12 | İnhalasyon anestezisi |
| Prosedür için lateks eldiven | Prosedür için lateks eldiven Prosedür için lateks eldiven | Kişisel koruyucu ekipman | |
| Sıvı sabun | Herhangi | Uygulanabilir değil | Yara alanı temizliği |
| Düz Mayo makası, keskin/keskin | Fine Science Tools | 14001-12 | Paslanmaz çelik |
| Milimmetre cetvel | Herhangi | Uygulanabilir değil | |
| Morfin sülfat | Sigma-Aldrich | M8777 | Enjekte edilebilir solüsyon 1 mg/mL |
| Kağıt sayfası | Herhangi | Uygulanabilir değil | |
| Kalıcı kalem | Herhangi | Uygulanabilir değil | Deri işaretleme |
| Povidon-iyot | Rioquimica | ZK48BN72E | Antiseptik |
| No. 23 skalpel bıçağı | Descarpak | 740801 | Paslanmaz çelik |
| No. 4 skalpel sapı | Sigma-Aldrich | Uygulanabilir değil | Paslanmaz çelik |
| Paslanmaz çelik tıraş bıçağı | Wilkinson | Y/A | Kıl kaldırma |
| Steril cerrahi eldiven | Descarpak | e0212101 | Steril |
| Cerrahi maske | Herhangi | Uygulanabilir değil | Non-steril |
| Tramadol hidroklorür | UniãoQuímica | 7.89601E+12 | Solução injetável 50 mg/mL |
| Şeffaf film pansuman | Vital derme | 1503 | 15 cm x 10 m |
| Şeffaf polipropilen yapışkan bant | Şeffaf polipropilen yapışkan bant Şeffaf polipropilen yapışkan bant | Yara koruması | |
| PVC kaplamalı veteriner termal battaniye | Prevtech | MSO2VT001 | Vücut ısısının korunması |
| Su geçirmez yapışkan bant | Cremer | 819113 | 10 cm x 4,5 m |
Kaynaklar
- Lin X, Lai Y. Skin scarring: mechanisms and therapies. Int J Mol Sci. 2024;25(3):1458.
- Desjardins-Park HE, Mascharak S, Longaker MT, Wan DC. Endogenous mechanisms of craniomaxillofacial repair: toward novel regenerative therapies. Front Oral Health. 2021;2:676258.
- Han G, Ceilley R. Chronic wound healing: a review of current management and treatments. Adv Ther. 2017;34(3):599-610.
- Benito-Martínez S, Pérez-Köhler B, Rodríguez M, Izco JM, Recalde JI, Pascual G. Wound healing modulation through the local application of powder collagen-derived treatments in an excisional cutaneous murine model. Biomedicines. 2022;10(5):960.
- Elliott S, Wikramanayake TC, Jozic I, Tomic-Canic M. A modeling conundrum: murine models for cutaneous wound healing. J Invest Dermatol. 2018;138(4):736-740.
- Chen JS, Longaker MT, Gurtner GC. Murine models of human wound healing. Methods Mol Biol. 2013;1037:265-274.
- Rowland MB, Moore PE, Bui C, Correll RN. Assessing wound closure in mice using skin punch biopsy. STAR Protoc. 2023;4(1):101989.
- De Moura Estevão LR, et al. Morphological evaluation of wound healing events in the excisional wound healing model in rats. Bio-protocol. 2019;9(13):e3285.
- Ansell DM, Campbell L, Thomason HA, Brass A, Hardman MJ. A statistical analysis of murine incisional and excisional acute wound models. Wound Repair Regen. 2014;22(2):281-287.
- Masson-Meyers DS, Andrade TAM, Caetano GF, Guimaraes FR, Leite MN, Leite SN, et al. Experimental models and methods for cutaneous wound healing assessment. Int J Exp Pathol. 2020;101(1-2):21-37.
- Chen Y, Chen X, Zhou Q. Different effects of a perioperative single dose of dexamethasone on wound healing in mice with or without sepsis. Front Surg. 2023;10:927168.
- Zhao J, Zhang S, Gong Z, Mao W, Bao W, Li Q, et al. NLRP3: a key regulator of skin wound healing and macrophage-fibroblast interactions in mice. Cell Commun Signal. 2025;23:55.
- Liu T, Qiu C, Ben C, Li H, Zhu S. One-step approach for full-thickness skin defect reconstruction in rats using minced split-thickness skin grafts with Pelnac overlay. Burns Trauma. 2019;7:19.
- Nayak BS, Maiya A, Kumar P. Influence of Helium-Neon laser photostimulation on excision wound healing in Wistar rats. Online J Biol Sci. 2007;7:89-92.
- Adhirajan N, Shanmugasundaram N, Shanmuganathan S, Babu M. Collagen-based wound dressing for doxycycline delivery: in vivo. evaluation in an infected excisional wound model in rats. J Pharm Pharmacol. 2009;61(12):1617-1623.
- Goorani S, Zangeneh MM, Koohi MK, Seydi N, Zangeneh A, Souri N, Hosseini MS. Assessment of antioxidant and cutaneous wound healing effects of Falcaria vulgaris aqueous extract in Wistar male rats. Comp Clin Pathol. 2019;28(2):435-445.
- Yassine KA et al. A topical ointment formulation containing powder of Lawsonia inermis leaves accelerates excision wound healing in Wistar rats. Vet World. 2020;13(7):1280-1287.
- Kuma DN, et al. Wound healing properties and antimicrobial effects of parkia clappertoniana keay fruit husk extract in a rat excisional wound Model. Biomed Res Int. 2022;2022:9709365.
- Wu AY, et al. Comparison of skin incision healing in swine made with a cold steel scalpel, a standard electrosurgical blade, and a novel tissue dissector. Med Res Innov. 2017;1(5):1000124.
- Ahmadi H, et al. Photobiomodulation-preconditioned diabetic stem cell transplantation accelerates ischemic wound healing in diabetic rats. Stem Cell Res Ther. 2020;11(1):494.
- Zhou Q, et al. Porous sodium carboxymethylamide microspheres for hemostasis and skin wound healing. ACS Appl Bio Mater. 2025;8(4):3076-3085.
- Corrêa JMX, et al. Treatment of surgical wounds in rats with copaiba oil-resin (Copaifera reticulata). Rev Bras Ciênc Vet. 2021;28(4):184-189.
- Huang L, et al. Topical administration of acyl homoserine lactone improves epithelialization of cutaneous wounds in hyperglycemic rats. PLoS One. 2016;11(7):e0158647.
- Dunn L, Prosser HC, Tan JT, Vanags LZ, Ng MK, Bursill CA. Murine model of wound healing. J Vis Exp. 2013;(75):e50265.
- Davidson JM, Yu F, Opalenik SR. Immobilization strategies to overcome wound contraction in experimental animal models. Adv Wound Care. 2013;2(4):142-148.
- Zhang Y, et al. Establishment and translational evaluation of animal models for skin wound healing: a systematic review. Front Physiol. 2026;17:1800001.
- Rizzo AE, Beckett LA, Baier BS, Isseroff RR. The linear excisional wound: an improved model for human ex vivo wound epithelialization studies. Skin Res Technol. 2012;18(1):125-132.
- Can H, et al. Clinical, histopathological, and immunohistochemical investigations of the effects of Aloe vera (Aloe barbadensis Miller) on open wound healing in rats. Pak Vet J. 2025;45(3):1135-1145.
- Shehasina KA, et al. Comparison of manual and digital planimetry techniques in full-thickness cutaneous wounds in dogs. Int J Vet Sci Anim Husb. 2024;9(2):603-607.
- Gill R, Poojar B, Bairy LK, Praveen KSE. Comparative evaluation of wound healing potential of Manuka and Acacia honey in diabetic and non-diabetic rats. J Pharm Bioallied Sci. 2019;11(2):116-126.
Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.
Yeniden basım ve izinler
