$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
1. Hastaları İncelin
Bu çalışma, 24 Aralık 2023'te Anbar Üniversitesi, Irak Yüksek Eğitim ve Bilimsel Araştırma Bakanlığı Etik Onay Komitesi (Onay No. 145), Ramadi Şehri, Anbar Valiliği, Irak, tarafından onaylandı. İnsan katılımcıları içeren tüm işlemler, Anbar Üniversitesi'nin kurumsal etik yönergelerine uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Kayıt öncesinde tüm katılımcılardan yazılı bilgilendirilmiş onay alındı.
Ocak-Aralık 2024 tarihleri arasında Irak'ın Anbar Valiliği'ndeki Ramadi Eğitim Hastaneleri ve bağlı özel kliniklerde kesitsel bir gözlemsel çalışma gerçekleştirildi. Çalışma döneminde toplamda diyabetik ayak enfeksiyonu (DFI) ile ardışık 125 uygun hasta kayıt altına alındı. Örneklem büyüklüğü, çalışma döneminde uygun hasta sayısına göre belirlendi, istatistiksel hesaplamayla değil. Klinik olarak, DFI, tip 1 diyabet hastalarında (T1DM) veya tip 2 diyabet (T2DM) hastalarında herhangi bir derecede ayak ülserinin varlığı olarak tanımlanmıştır. Farklı ülser şiddetlerine sahip erkek ve kadın hastalar dahil edildi.
Hastalar, klinik olarak teşhis edilmiş diyabetik ayak ülseri varsa, katılımcı sağlık kuruluşlarına gitmiş ve bilgilendirilmiş onay vermiş olurlarsa, uygun olurlardı. Dışlama kriterleri arasında diyabet mellitusla ilgisi olmayan ayak ülserleri (örneğin, travmatik ülserler), diğer sağlık kuruluşlarından yönlendirme, kritik hastalık nedeniyle bilgilendirilmiş onay verememe, örnek alınmadan 48 saat önce antibiyotik tedavisi alınması ve polimikrobiyal enfeksiyonlar yer alıyordu. Polimikrobiyal enfeksiyonlu hastalar, Staphylococcus aureus izolatlarının doğru fenotipik, moleküler ve genomik karakterizasyonunu sağlamak için dışlandı. Yaş, cinsiyet, diyabet komplikasyonları, diyabet süresi, antibiyotik öyküsü ve eş zamanlı durumlar dahil olmak üzere demografik ve klinik veriler, yapılandırılmış bir anket kullanılarak toplanmıştır.
Klinik örnekler, toplandıktan sonra 2 saat içinde soğutucu koşullarda (4 °C) Amies ortamı içeren steril taşıma sürüntleriyle mikrobiyoloji laboratuvarına taşındı ve hemen mikrobiyolojik analiz için işlendi. Klinik örnekler, bakteriyel kültürler, antimikrobiyal duyarlılık testi, polimeraz zincir reaksiyonu (PCR) ve ultraviyole (UV) görselleştirme içeren tüm işlemler, kurumsal biyogüvenlik yönergelerine uygun olarak Biyogüvenlik Seviye 2 (BSL-2) laboratuvar koşullarında gerçekleştirilmiştir. Laboratuvar personeli, gerektiğinde laboratuvar önlükleri, tek kullanımlık eldivenler, cerrahi maskeler ve göz koruması gibi uygun kişisel koruyucu ekipmanlar (PPE) kullandı. Tüm mikrobiyolojik ve moleküler prosedürlerde kontaminasyon ve maruziyet risklerini en aza indirmek için sıkı aseptik prosedürler uygulandı. Çapraz kontaminasyonu önlemek için bakteri kültürünün işlenilmesi ve DNA amplifikasyon prosedürleri için özel çalışma alanları kullanıldı. Kültür plakaları, sürüntüler, pipet uçları ve tek kullanımlık maddeler dahil kirlenmiş maddeler, bertaraf edilmeden önce 121 °C ve 15 psi sıcaklıkta 15–20 dakika boyunca otoklavlanmıştır. Keskin silahlar, deliklere dayanıklı biyolojik tehlike kaplarında atıldı. Biyolojik atık, kurumsal biyomedikal atık bertaraf protokollerine göre yönetildi. Bu biyogüvenlik önlemleri, MRSA ve vankomisin dirençli izolasyonlar dahil olmak üzere çok ilaçlı dirençli organizmaların güvenli şekilde ele alınmasını sağlamıştır (Şekil 1).

Şekil 1: Çalışmada kullanılan klinik, mikrobiyolojik, moleküler, tam genom dizileme ve biyoinformatik iş akışının genel bakışı. Şekil, örnek toplama, mikrobiyolojik kültür, antimikrobiyal duyarlılık testi, PCR tabanlı moleküler tespit, tüm genom dizileme ve sonraki biyoinformatik analizleri özetlemektedir. Bu rakam, yapay zeka tabanlı tasarım platformu Gamma Pro'nun (Gamma Uygulaması) desteğiyle oluşturulmuş ve daha sonra yazarlar tarafından bilimsel doğruluk açısından incelenmiş, revize edilmiş ve doğrulanmıştır. Bu figürün daha büyük bir versiyonunu görmek için lütfen buraya tıklayın.
Veriler SPSS yazılım sürümü 22.0 kullanılarak analiz edildi. Ortalama ve yüzdeler dahil olmak üzere tanımlayıcı istatistikler hesaplandı. Kategorik değişkenler arasındaki ilişkiler ki-kare testi kullanılarak analiz edildi. <0.05 p-değeri istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi.
2. Örneklerin işlenmesi ve toplanması
Diyabetik ayak ülserlerinin derin kısmından derin sürüntü tekniği kullanılarak örnekler toplandı. İki steril pamuk çubuk, steril bir stortu ile debridasyon ve steril tuzlu suyla temizlendikten sonra yara tabanı üzerinde sıkıca döndürüldü; böylece mikroorganizmaların kolonileştirmesiyle kontaminasyonu en aza indirdi. Bir sürüntü gram boyama için, ikinci sürüntü ise mikrobiyolojik kültür için kullanıldı. Doğrudan gram boyalı smearlar mikroskobik olarak incelendi.
Kemik dokusu örnekleri, cerrahi debridman sonrası steril koşullarda klinik olarak şüpheli osteomiyelit hastalarından alındı. Numune toplamadan önce, ülser yüzeyleri yüzeysel kontaminasyonu azaltmak için steril normal salin ile temizlendi. Kemik dokusu örnekleri steril cerrahi aletlerle aseptik olarak toplandı ve mikrobiyolojik işlem için hemen steril kaplara aktarıldı.
Örnekler steril koşullarda homojenize edildi veya ince kıyma yapılarak kan agar, Mannitol Tuz Agar (MSA), MacConkey agar ve besin agara aşılandı. Plakalar 37 °C'de 18–24 saat boyunca aerobik olarak kuluçka edildi. Kan agarı ve besin agar, gram-pozitif ve gram-negatif organizmaların büyümesini desteklerken, MSA, S. aureus dahil olmak üzere Staphylococcus türlerinin seçici izolasyonu ve farklılaşması için kullanılmıştır. MacConkey agari, gram-negatif bakterilerin iyileşmesi için kullanıldı. Kultura plakaları kuluçkadan sonra incelendi ve 48 saat sonra görünür büyüme olmayan örneklerde "büyüme yok" olarak bildirildi.
Ön bakteri tanımlaması koloni morfolojisi, gram boyama ve biyokimyasal özelliklere dayandı, ardından S. aureus'un PCR geninin amplifikasyonu kullanılarak moleküler doğrulanması yapıldı. Biyokimyasal tanımlama, katalaz testi, kaydırak ve tüp koagülaz testleri, mannitol fermantasyonu ve DNaz testini içeriyordu. Doğrulanmış izolasyonlar, VITEK 2 Compact sistemi ve VITEK 2 GP kimlik kartı kullanılarak ayrıca tanımlandı. Tanımlama sonuçları ancak güven seviyesi %≥95 olduğunda kabul edilmiştir. Uyumsuz veya düşük güvenli sonuçlar, tekrar edilen biyokimyasal analiz ve tekrarlayan VITEK testi kullanılarak yeniden test edildi. Saf izolatlar, sonraki moleküler ve genomik analizler için beyin kalp infüzyonu (BHI) çorbasında hazırlanan %20 gliserolde korundu (Şekil 1).
3. Antimikrobiyal duyarlılık testi
Antimikrobiyal duyarlılık testi, Klinik ve Laboratuvar Standartları Enstitüsü (CLSI) 2022 yönergelerine uygun olarak Kirby–Bauer disk difüzyon yöntemi kullanılarak gerçekleştirildi. Testler, 4 mm standart agar derinliğinde Mueller–Hinton agarında gerçekleştirilmiştir. Taze bakteriyel kültürler, aşılamadan önce densitometre kullanılarak 0,5 McFarland standardına ayarlandı. Agar yüzeylerinin eşit şekilde aşılanması için steril sürüntüler kullanıldı.
Aşağıdaki antimikrobiyal diskler kullanıldı: ampisilin (10 μg), gentamisin (10 μg), amikasin (30 μg), sefoxitin (30 μg), sefuroksim (30 μg), piperasilin/tazobaktam (100/10 μg), meropenem (10 μg), amoksisilin–klavulanik asit (30 μg), oksasilin (1 μg), levofloksasin (5 μg), klindamisin (2 μg), tigesiklin (15 μg), siprofloksasin (5 μg), eritromisin (15 μg), trimethoprim–sülfametoksazol (25 μg), linezolid (30 μg), ve vankomisin (30 μg). Plakalar 37 °C'de 16–18 saat boyunca aerobik olarak inkubasyon edildi. Bölge çapları CLSI kırılma noktalarına göre yorumlanmıştır.
CLSI önerilerine göre metisilin-dirençli Staphylococcus aureus (MRSA), sefoxitin (30 μg) taraması kullanılarak tespit edilmiştir. Kalite kontrol testi S. aureus ATCC 25923 kullanılarak gerçekleştirildi. Tüm deneyler tekrarlanabilirliği sağlamak için ikili kez gerçekleştirildi. Çok ilaçlı dirençli (MDR), yaygın şekilde ilaç dirençli (XDR) ve pandrug-resistant (PDR) izoleler, antimikrobiyal direnç profillerine dayalı uluslararası standart tanımlara göre sınıflandırılmıştır (Şekil 1).
4. Metisiline dirençli S. aureus (MRSA) Tespiti
MRSA tespiti için fenotipik yöntem olarak bir sefoxitin (30 μg) disk difüzyon testi kullanıldı. ≥22 mm inhibisyon bölgesine sahip izolatlar metisiline duyarlı S. aureus (MSSA) olarak sınıflandırılırken, inhibisyon bölgesi ≤21 mm olan izolatlar CLSI kriterlerine göre MRSA olarak sınıflandırılmıştır (Şekil 1).
5 Minimum Inhibitör Konsantrasyon (MIC) Testi ile Vancomycin Direncinin Belirlenmesi
Vancomycin minimum inhibitör konsantrasyonları (MIC), CLSIyönergelerine 11 göre et suyu mikro seyreltme yöntemiyle belirlendi. Mueller–Hinton çorbasında vankomisinin seri iki katlı seyreltmeleri (4–512 μg/mL) hazırlandı. Bakteriyel süspansiyonlar 0.5 McFarland standardına ayarlandı ve yaklaşık 1 × 105 CFU/mL'ye seyreltildi.
37 °C'de 24 saat kuluçka sonrası, MIC, görünür bakteri büyümesinin gözlemlenmediği en düşük konsantrasyon olarak tanımlandı. Vancomycin hassasiyeti CLSI kriterlerine göre şu şekilde yorumlandı: hassas (≤2 μg/mL), ara (4–8 μg/mL) ve dirençli (≥16 μg/mL)11,12 (Şekil 1).
6. Moleküler algılama
6.1 DNA çıkarımı
Staphylococcus aureus izoleleri, 37 °C'de 24 saat boyunca beyin kalp infüzyonu (BHI) çorbasında kültürlendi. Bakteriyel genomik DNA, ticari bir kit ve otomatik bir nüklein asit çıkarma sistemi kullanılarak çıkarıldı. Çıkarılan DNA, kullanılana kadar −20 °C'de saklanırdı. DNA konsantrasyonu PCR amplifikasyonu için uygunluk değerlendirilmek amacıyla florometre kullanılarak ölçüldü. Ortalama DNA konsantrasyonu 85 ± 8.2 ng/μL idi.
Can, hlg ve sınıf D β-laktamaz (blaOXA-grup I) genlerini hedefleyen primerler ticari olarak elde edilmiş ve Tablo 113,14,15,16'da listelendiği gibi PCR amplifikasyonu için kullanılmıştır.
Tablo 1: Bu çalışmada incelenen hedef genlerin PCR amplifikasyonu için kullanılan primer dizileri. Tablo, diyabetik ayak enfeksiyonlarından kurtarılan Staphylococcus aureus izolatlarında hedeflenen genleri, primer dizileri, beklenen amplikon boyutları, tavlama sıcaklıkları ve PCR amplifikasyonu için kullanılan referansları özetlemektedir. Bu tabloyu indirmek için lütfen buraya tıklayın.
6.2 PCR ile virülans ve sınıf D β-Laktamaz (blaOXA-grup I) genlerinin moleküler tespiti
Bu çalışmada kullanılan primer dizileri Tablo 1'de listelenmiştir. MecA, nuc, virülansla ilişkili genler ve sınıf D β-laktamaz (blaOXA-grup I) genlerinin PCR amplifikasyonu, 12,5 μL GoTaq Green Master Mix (2×), 0,5 μL MgCl2, 3 μL genomik DNA şablonu, 1 μL ileri ve geri primerler (10 pmol/μL) ve 7 μL nukleazsız su içeren 25 μL reaksiyon karışımında gerçekleştirildi.
Termal döngü koşulları, başlangıçta 95 °C'de 5 dakika denatürasyon adımı ve ardından 30–35 amplifikasyon döngüsünden oluşuyordu; bunlar arasında 95 °C'de 30 s–1 dakika denatürasyon, primer setine göre 50–62 °C'de 30 s–1 dakika boyunca tavlama ve 72 °C'de 30 s–1 dakika uzatma dahildir. Son uzatma işlemi 72 °C'de 7–19 dakika boyunca gerçekleştirildi.
Amplifikasyonlu PCR ürünleri, %1,5–%2 agaroz jellerinde Safe Red ile boyanmış ve ultraviyole aydınlatma altında jel dokümantasyon sistemi kullanılarak görselleştirilmiştir. Her PCR denemesinde amplifikasyonun geçerliliğini doğrulamak için negatif kontroller dahil edildi.
7. Tam genom dizileme (WGS)
Diyabetik ayak enfeksiyonu hastalarından alınan kemik dokusu örneklerinden elde edilen iki temsilci klinik Staphylococcus aureus izolesi üzerinde tam genom dizileme (WGS) gerçekleştirildi. Seçilen izolasyonlar arasında, fenotipik antimikrobiyal duyarlılık testi ve MIC onaylı direnç profilleriyle tanımlanan bir çok ilaçlı dirençli (MDR) ve kapsamlı şekilde ilaç dirençli (XDR) izolat bulunuyordu. Bu strateji, klinik olarak önemli dirençli izolasyonların temsil eden genomik karakterizasyonunu mümkün kıldı (Şekil 1).
Genomik DNA kalitesi, konsantrasyonu ve bütünlüğü, kütüphane hazırlığı ve sonraki biyoinformatik analiz için uygunluk sağlamak amacıyla dizileme öncesi değerlendirildi. DNA, florometre kullanılarak nicelendirildi ve bütünlük, 150 V'da %1 agaroz jel elektroforezi ile 40 dakika boyunca doğrulandı. Yaklaşık 200–400 bp uzunluğundaki DNA parçaları manyetik boncuk arıtımı ile boyut seçildi, ardından son onarım, 3′ adenilasyon ve adaptör ligasyonu yapıldı.
Tek zincirli dairesel DNA molekülleri, splint oligonukleotitleri kullanılarak adaptör ligasyonlu fragmentlerin amplifikasyonu, saflaştırılması ve daireselleştirilmesi yoluyla üretilmiştir. DNA nanotopları (DNB'ler) daha sonra yuvarlanan daire amplifikasyonu yoluyla üretildi. DNBSEQ platformunda dizileme işlemi kombinatoryal Prob-Çapa Sentezi (cPAS) kimyası kullanılarak gerçekleştirildi.
Ham dizileme okumaları, düşük kaliteli okumaları, adaptör kirlemesini, belirsiz okumaları ve tekrarlanan dizileri kaldırmak için kalite kontrol prosedürlerinden geçti. Temiz okumalar sonraki analizler için kullanıldı. Genom montajı, genom boyutu, GC içeriği ve dizileme kapsama derinliğini tahmin etmek için gerçekleştirildi. Nihai taslak genom montajları FASTA, GenBank ve NCBI gönderim formatlarında oluşturuldu.
Genom açıklaması, kodlayan dizileri (CDS), transfer RNA'sını (tRNA), ribozomal RNA (rRNA) ve küçük RNA (sRNA) genlerini tanımladı. Tahmin edilen genlerin fonksiyonel açıklaması, Swiss-Prot, COG, KEGG, CAZy, VFDB, ARDB ve CARD dahil olmak üzere birden fazla veri tabanı kullanılarak virülans ve antimikrobiyal dirençle ilişkili genler için gerçekleştirildi.
8. Biyoinformatik analiz
Genom montajı ve notasyonu Bakteriyel ve Viral Biyoinformatik Kaynak Merkezi (BV-BRC) kullanılarak gerçekleştirildi. Filogenetik analizler PATRIC araçları kullanılarak gerçekleştirildi. Kodlama dizilerini, GC içeriğini, GC yağışını, antimikrobiyal direnç belirleyicileri, virulansla ilişkili genleri ve mobil genetik unsurları göstermek için dairesel genom görselleştirme haritaları oluşturuldu.
Filogenetik ilişkiler, Mash/MinHash analiziyle en yakın referans genomlardan tanımlanan PATRIC küresel protein aileleri (PGFams) kullanılarak belirlendi. Protein hizaları MUSCLE kullanılarak oluşturuldu ve ilgili nukleotid hizalamaları protein ailelerine eşlendi. Filogenetik ağaçlar, hızlı önyükleme analiziyle RAxML kullanılarak oluşturulmuştur (Şekil 1).
Genom bileşenleri, antimikrobiyal direnç genlerinin türlerinin doğrulanması ve tespiti için Pathogenwatch kullanılarak ayrıca analiz edildi. Virulansla ilişkili genler ABRicate kullanılarak analiz edildi. PATRIC Genom Annotasyon Servisi, antimikrobiyal direnç genlerini tanımlamak ve fonksiyonel açıklamalar, antimikrobiyal sınıflar ile direnç mekanizmalarını atamak için k-mer tabanlı bir yaklaşım kullandı. Temsil MDR ve metisiline dirençli S. aureus izolatlarının dairesel genom görselleştirmeleri, daha önce tanımlandığı gibioluşturuldu 17. Ek Tablo 1 , genomik analizlerde kullanılan tüm biyoinformatik araçları, yazılım sürümlerini, veritabanlarını ve analitik parametreleri özetler.