Tüm deneyler, Nanjing Çin Tıp Üniversitesi Kurumsal İnceleme Kurulu (Protokol Kodu: 202501A018) tarafından onaylanmış ve Ulusal Sağlık Enstitüleri (NIH) Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi'ne uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Tüm deneysel prosedürler ARRIVE yönergelerine uydu.
Deneysel ilaçlar
YQHXD örnek çözeltisi 20 g Astragalus membranaceus kökü, 20 g Angelica sinensis kökü, 15 g Ligusticum chuanxiong köksüzü, 6 g Stephania tetrandra kökü, 15 g Chaenomeles speciosa meyvesi ve 10 g Sinapis alba olgun tohumu içeriyordu ve reçete başına toplam ham ilaç ağırlığı 86 g olarak belirleniyordu. Tüm bitkisel materyaller, Guangxi Çin Tıp Üniversitesi'ne bağlı Ruikang Hastanesi Eczacılık Departmanı tarafından Çin Farmakopeesi'ne (2020 baskısı) doğrulmuştur. YQHXD numune çözeltisi su kaynatma yöntemiyle hazırlanmıştır. Toplam ham ilaç hacminin 8 katı olan steril damıtılmış su eklendi ve otlar 30 dakika boyunca tamamen suya batırıldı. Karışım daha sonra kaynatıldı ve filtrelenmeden önce 30 dakika boyunca düşük ateşte dekokote edildi. Kalıntılar aynı işlem sonucunda aynı hacimde steril damıtılmış su ile tekrar çıkarıldı. İki ekstraksiyondan elde edilen filtratlar, yuvarlanmış buharlaştırma kullanılarak azaltılmış basınçta 55,5 mL'ye konsantre edilip YQHXD stok çözeltisi elde edildi. Toplam ham ilaç ağırlığına göre, nihai ham ilaç konsantrasyonu 1,55 g/mL olup, ekstraksiyon verimi yaklaşık %64,5'ti. Deneysel sıçanlara uygulanan doz, vücut yüzeyi normalizasyon yöntemiyle klinik yetişkin dozundan dönüştürüldü. İnsanlar ile sıçanlar arasındaki dönüşüm katsayısı yaklaşık 6,3'tü; Bu nedenle, fare dozu (mg/kg) insan dozu (mg/kg) olarak hesaplandı × 6.3. Yüksek dozlu grup referans doz olarak 15,48 g/kg/gün alırken, orta ve düşük doz grupları sırasıyla 7,74 g/kg ve 3,87 g/kg aldı. 10 mL/kg gavaj hacmi için, yüksek dozlu, orta ve düşük dozlu gruplar için karşılık gelen çalışma konsantrasyonları sırasıyla 1.548, 0.774 ve 0.387 g/mL idi. Stok çözeltisi, uygulanmadan önce her deneysel grup için hedef dozu elde etmek üzere buna göre seyreltilmiştir. Hazırlandıktan sonra, demlemeler soğutuldu, steril koşullarda alikotasyon yapıldı ve −40 °C'de saklanarak kullanılana kadar saklandı.
Ağ farmakolojisi analizi
Aktif bileşen hedef proteinlerinin tahmini
24 Kasım 2025'te, aktif bileşikler TCMSP veritabanından "Huangqi, Angelica, Chuanxiong, Stephania, Mugua ve Jiezi" arama terimleriyle alındı. Bileşikler, oral biyoyararlanılım (OB ≥% %30) ve ilaç benzerliği (DL ≥ 0.18) temelinde tarandı.9. Bu eşiklerin gerekçesi şöyledir: TCMSP veritabanı, PubChem, ChEMBL ve ChemSpider gibi yetkili kaynaklardan gelen bileşik verileri entegre eder ve ağızdan biyoyararlanım dahil olmak üzere ADME ile ilgili parametreler sağlar. Ağızdan verilen biyoyararlanıllık, ağızdan verilen dozun sistemik dolaşıma değişmeden ulaşan oranını ifade eder ve yüksek OB biyoaktif moleküllerin tanımlanması için gereklidir. İlaç benzerliği, bileşiklerin ilaçlanabilirliğini değerlendirmek ve çözünürlüğünü ile stabilitelerini tahmin etmek için kullanılan bir göstergedir. Bu çalışmada, ağızdan soğurma ve farmakokinetik profillere sahip aday bileşiklerin belirlenmesi için veritabanında önerilen değeri (%≥%20) aşan daha katı bir kadın doğum eşiği (%≥%30) uygulanmıştır. Bu arada, bileşiklerin ilaç benzeri potansiyelini tahmin etmek için DL kullanıldı ve geleneksel Çin tıp bileşiklerinde gözlemlenen ortalama DL değerine göre DL ≥ 0.18 kesintisi benimsendi. Seçilen aktif bileşikler PubChem veritabanından SMILES formatında alındı ve hedef tahmini için SwissTargetPrediction veritabanına aktarıldı; tür Homo sapiens olarak ayarlandı. Hedef proteinler resmi gen sembolleri kullanılarak standartlaştırıldı ve tahmin güvenilirliğini artırmak için yalnızca olasılık değerleri 0'dan büyük olan hedefler tutuldu. Tahmin edilen hedefi olmayan bileşikler sonraki ağ analizinden hariç tutuldu. Tüm hedefler birleştirildikten sonra, her hedefin nihai veri setinde yalnızca bir kez temsil edilmesi için tekrarlanan girişler elektronik tablo yazılımı kullanılarak kaldırıldı.
Ana hedeflerin toplanması
Hastalıkla ilgili genler, GeneCard10, OMIM11 ve TTD12 veritabanlarından "lumber disk dejenerasyonu" anahtar kelimesiyle alındı. Toplanan gen hedefleri birleştirildi ve hastalıkla ilişkili hedeflerin nihai seti elde edilmek için tekrarlanan girişler çıkarıldı.
LDD tedavisinde YQHXD'nin potansiyel hedefleri
Venny 2.1.0 platformu, LDD'deki YQHXD'nin potansiyel hedeflerini belirlemek için kullanıldı. Daha sonra aktif bileşenler ile tahmin edilen hedefler arasındaki ilişkileri göstermek için bir ağ oluşturuldu. Temel aktif bileşenler, ağdaki derece değerlerine göre seçildi.
İlaç bileşenleri ve hastalık kesişim hedeflerinin ağ inşası
TCM formülü YQHXD'den aktif bileşenler, hedef proteinler ve LDD ile ilgili genler, Cytoscapeyazılımı 13'e ithal edilerek ilaç bileşeni-hedef-hastalık ağ diyagramı oluşturuldu.
PPI ağının inşası ve ana temel hedeflerin belirlenmesi
Kesişen hedefler analiz için STRINGplatformu 14'e gönderildi ve organizma Homo sapiens olarak ayarlandı. Protein-protein etkileşim (PPI) ağını oluşturmak için, etkileşim puan eşiği >0.4 olarak belirlendi, bağlantısı kopuk düğümler saklandı ve diğer tüm ayarlar varsayılan olarak bırakıldı. Ortaya çıkan veriler yazılıma aktarıldı ve burada NetworkAnalyzer aracı kullanılarak topolojik özellikleri değerlendirildi ve düğüm dereceleri hesaplandı. Dereceye göre sıralanan ilk beş düğüm, ana merkez hedefleri olarak belirlendi.
Çekirdek hedeflerin zenginleştirme analizi
Kesişen hedefler, Gen Ontolojisi (GO) fonksiyonel açıklaması ve Kyoto Genler ve Genomlar Ansiklopedisi (KEGG) yol zenginleştirme analizi için DAVIDveritabanı 15'e yüklendi. Organizma arka planı Homo sapiens olarak belirlenmiş, zenginleştirme kesme sınırı varsayılan DAVID parametrelerine göre tanımlanmıştır; bunlar arasında EASE eşiği 0.1 < ve Sayı eşiği 2 ≥ dahildir. Gen evreni, DAVID tarafından sağlanan varsayılan tüm genom arka planına dayanıyordu. Çoklu testler, yanlış keşif oranını (FDR) kontrol etmek için Benjamini-Hochberg yöntemiyle düzeltildi ve DAVID sonuçları bu temelde ayarlandı. Zenginleştirilmiş yollar, Sayı değerine göre azalan sırayla sıralanmıştır. GO ve KEGG zenginleştirme çubukları çevrimiçi bir biyoinformatik platformu kullanılarak üretilmiştir.
Moleküler kenetleme
YQHXD'nin temel aktif bileşenleri ile LDD'nin temel hedefleri arasındaki etkileşimleri tahmin etmek için bu çalışmada moleküler kenetlenme analizi yapıldı. Ağ topolojik derece değerleri ve hedef ilgisine göre sıralanan en önemli beş aktif bileşik ligand olarak seçilirken, ilgili çekirdek hedef proteinler reseptör olarak kullanıldı. Ligand SDF dosyaları PubChem'den alındı ve hedef proteinlerin üç boyutlu yapıları Protein Veri Bankası'ndan (PDB) indirildi. CB-Dock2 platformunda kenetlenme analizi, tam otomatik kör kenetlenme protokolü kullanılarak gerçekleştirildi. Protein yapıları yüklendikten sonra, platform küçük moleküller, iyonlar ve su molekülleri dahil olmak üzere heteroatomları otomatik olarak çıkardı ve eksik atomları ve hidrojen atomlarını onardı. Otomatik Kör Kenetlenme modu kullanıldı. Bu modda, CB-Dock2, eğrilik tabanlı bir boşluk tespit algoritmasıyla potansiyel protein yüzeyi bağlanma ceplerini belirler ve ardından entegre AutoDock Vinamotoru 16 kullanarak kenetlenme hesaplamaları yapar. Kenetlenme işlemi sırasında proteinler sert yapılar olarak ele alınırken, ligandlar esnek kabul edildi ve tüm kenetlenme parametreleri platformun varsayılan değerlerine ayarlandı. Kenetlenme sonuçları, CB-Dock217'nin yerleşik araçları kullanılarak üç boyutlu görselleştirme ve etkileşim analizine tabi tutuldu ve bağlanma enerjileri, aktif bileşikler ile hedef proteinler arasındaki öngörülen bağlanma eğilimlerini tahmin etmek için hesaplandı.
Moleküler dinamik simülasyonu
Hedef protein-ligand kompleksi için moleküler dinamik simülasyonları GROMACS 2022.2 kullanılarak gerçekleştirildi. Protein, Amber14SB kuvvet alanı ile modellendi ve çözücü sistemi TIP3P su modeliyle temsil edildi. Ligand atom yükleri, Antechamber'de uygulanan AM1-BCC yöntemiyle hesaplandı, ardından GAFF2 atom tipleri atandı. Ortaya çıkan topoloji dosyaları, ACPYPE kullanılarak GROMACS uyumlu bir formata dönüştürüldü. TIP3P su modeliyle uyumlu iyon parametreleri, Joung-Cheatham parametre setine göre atanmıştır. Başlangıç kompleksi, protein yüzeyi ile kutu kenarı arasında en az 1,2 nm mesafe olan kesiklenmiş bir dodekaedral simülasyon kutusuna yerleştirildi. Sistemi solitlemek için TIP3P su molekülleri eklendi ve sistem yükünü nötralize etmek ve iyon gücünü 0,15 M'ye ayarlamak için Na+ ve Cl− iyonları eklendi. Enerji en dik iniş algoritmasıyla maksimum kuvvet 1.000 kJ·mol−1·nm−1'in altına düşene kadar en yüksek iniş algoritması ile gerçekleştirildi. Sistem daha sonra NVT topluluğu altında 298 K ve 1 bar ile 100 ps olarak dengelendi. Dengeleme sonrası NPT topluluğu altında 2 fs zaman adımıyla 100 ns üretim simülasyonu yapıldı. Bağsız etkileşimler Verlet kesme sistemi ile yönetildi. Elektrostatik etkileşimler, parçacık ağı Ewald (PME) yöntemiyle hesaplandı ve hem van der Waals hem de Coulomb etkileşimleri için 1.2 nm kesim kullanıldı. Hidrojen içeren bağlar LINCS algoritması ile sınırlandırılmıştır. Sıcaklık Nosé-Hoover termostatı ile kontrol edilirken, basınç Parrinello-Rahman barostatı ile kontrol edilir ve sistem 298 K ve 1 bar olarak kalınırdı. Her 10 ps'te bir yörüngeler kaydedildi. Yapısal dinamikler ve moleküller arası etkileşimler, yerleşik GROMACS araçları, VMD ve PyMOL kullanılarak analiz edildi. Bağlanma serbest enerjisi, uygun olduğunda gmx_MMPBSA ile tahmin edildi.
Hayvan çalışmaları
Hayvan yetiştiriciliği
3–8 haftalık yetmiş erkek Sprague-Dawley (SD) faresi, bilgisayar tarafından oluşturulan rastgele sayılarla yedi deneysel gruba (n = 10) bilgisayar oluşturulmuş rastgele sayılar kullanılarak yerleştirildi; böylece gruplar arasında temel vücut ağırlığında istatistiksel olarak anlamlı farklar olmamasını sağladı. Tüm hayvanlar kontrollü koşullarda (22 ± 1 °C, %10 bilgili nem, 12 ±saat ışık/karanlık döngü) ve ücretsiz yiyecek ve suya erişim sağlandı. Her kafes değişikliğinde çevresel önyargıyı en aza indirmek için kafes pozisyonları rastgele yapıldı. 1 haftalık aklimatizasyonun ardından, model gruplardaki fareler dejenerasyonu indüklemek için kaudal IVD ponksiyonu geçirdiler. Ağrıyı azaltmak için ameliyat öncesinde bupivakain ile lokal infiltrasyon anestezisi uygulandı. Hayvanlar ameliyat sırasında ve ameliyat sonrası iyileşme sürecinde yakından izlendi. Ameliyat sonrası gözlemler arasında iyileşme süresi, spontan aktivitenin geri kazanılması, yiyecek ve su alımı ile vücut ağırlığı değişiklikleri yer aldı. Model kurulduktan bir hafta sonra, her gruptan iki fare ameliyat sonrası dijital radyografi (DR) görüntüleme ve hematoksilin ile eozin (HE) boyama için rastgele seçildi. Radyografik analizler, kaudal IVD yüksekliğinin azaldığını gösterirken, HE boyama nucleus pulposus (NP) notokordal hücrelerinde belirgin bir azalma ve annulus fibrosus lamellaryapısının 18 düzensizliğini göstererek başarılı model kurulduğunu doğruladı. Ameliyattan sekiz hafta sonra, fareler izofluran aşırı dozunun solumasıyla ötenazi edildi ve kuyruk dokusu ile kan örnekleri alındı. Ön doğrulamadan sonra, nihai histoloji, ELISA, PCR ve western blot analizleri için önceden belirlenmiş kalite kriterlerini karşılayan her grup başına üç bağımsız örnek kullanıldı. Histolojik kesitler tek kör koşullarda değerlendirildi ve slaytlar yalnızca hayvan kimlik numaralarıyla etiketlendi. ELISA, PCR ve western blot testleri için, örnek aliquote ve etiketleme sırasında kör kodlama uygulandı ve tüm örneklerin test sırası deneylerden önce rastgele yapıldı. Ham veriler, soğurma değerleri, Ct değerleri ve bant yoğunlukları dahil olmak üzere, deneysel gruplama veya örneklem işleme ile ilgilenmeyen bir istatistikçi tarafından grup kimliklerine çözüldü ve ardından istatistiksel personel tarafından analiz edildi. Tüm istatistiksel analizler, deneysel gruplama veya örneklem işleme dahil olmayan istatistikçiler tarafından yapılmıştır. Yara enfeksiyonu, açılma, kanama veya şiddetli halsizlik gibi herhangi bir yan etki hemen kaydedilip değerlendirildi. Hafif durumlar yakından izlenerek geliştirilmiş destekleyici bakım sağlandı. Sıçanlarda vücut kilosu kaybı başlangıçtan %20'nin üzerinde kayb, şiddetli ağrı ağrı ile giderilmemiş, hareket kabiliyeti kaybı, yiyecek veya suya erişememe, enfeksiyon, nekroz, diğer ciddi ameliyat sonrası komplikasyonlar, solunum sıkıntısı veya hayatı tehdit eden herhangi bir durum varsa insancıl son noktalar uygulanmıştır. Bu tür durumlarda, hayvanlar aşırı doz izofluran solunmasıyla insancıl bir şekilde ötenazi edilirdi.
Deneysel modelleme
Fareler solulan izofluran ile anestezi edilip yatağa yatırıldı. Co6/7, Co7/8 ve Co8/9 kuyruk IVD'leri X-ışını floroskopik rehberliğinde konumlandırıldı. 21 G'lik bir iğne, derinin karşı tarafına ulaşana kadar IVD'ye dikey olarak iğne iğnesi iğnesinin ucu çekilerek kuyruğun merkezine doğru çekilirdi. İkinci bir iğne pozisyon referansı olarak kullanıldı. Sürekli IVD dejenerasyonu için iğne 360° döndürüldü, 30 saniye yerinde tutuldu ve ardından çıkarıldı. Sham grubunda, deri ve kas üzerinden geçen delme derinliği yaklaşık 2 mm idi ve IVD'ye zarar vermedi. Diğer gruplarda ise iğne, kan damarlarından kaçınarak IVD'nin merkezine doğru 5 mm ilerledi. Yerleştirdikten sonra iğne 360° döndürüldü ve 30 saniye yerinde bırakıldı. Delik bölgesi dezenfekte edildi, işaretlendi ve steril gazlı bezle korundu. Modellemeden bir hafta sonra, kaudal omurganın röntgen görüntülemesinde IVD yüksekliğinde azalma gösterdi. HE boyama, NP notokordal hücrelerinde önemli bir azalma ve halka şekilli lamel yapısının düzensizliğini ortaya koyarak başarılı model oluşmasını doğruladı. Başarılı modellemeden sonra, TCM tedavisi alan gruplar ve pozitif kontrol (PC) grubu, insan ve sıçanlar arasındaki vücut yüzey alanı oranına göre hesaplanan uygun dozlar verildi.
Gruplama ve müdahale
Bu deneyde 3–8 haftalık toplam 70 erkek SD sıçan kullanıldı ve yedi gruba ayrıldı:
(1) Kontrol grubu (Ctrl): Bu gruptaki fareler, deneysel gruplarla aynı zamanda ve aynı koşullarda rastgele olarak atanmıştır. Bireysel kafeslerde, standart yemek ve içme suyuna ücretsiz erişimi olan SPF seviyesinde bir hayvan tesisinde barındırıldılar.
(2) Sahte grup: Fareler izofluran solumasıyla anestezi edildi. Anestezi sağlandıktan sonra, kuyruk derisi povidon-iyot ile dezenfekte edildi ve fareler yatağa yerleştirildi. Co6/7 ve Co7/8 IVD'ler X-ışını floroskopik rehberliğinde bulundu. İğne, IVD'ye zarar vermeden deri ve kas boyunca yaklaşık 2 mm ilerletildi. 8 hafta boyunca günde bir kez damıtılmış su (10 mL/kg) garajla verildi.
(3) Model grubu: Fareler solulan izofluran ile anestezi edildi. Anestezi sağlandıktan sonra, kuyruk derisi povidon-iyot ile dezenfekte edildi ve fareler yatağa yerleştirildi. X-ışını floroskopik rehberliğinde Co6/7, Co7/8 ve Co8/9 IVD'ler bulundu. 21 G'lik bir iğne, derinin karşı tarafına ulaşana kadar IVD'ye dikey olarak iğne iğnesi çıkarıldı ve ardından kuyruğun ortasına doğru çekildi.
İkinci bir iğne pozisyonsal referans olarak kullanıldı. İğne 360° döndürüldü ve IVD'nin sürekli dejenerasyonuna neden olmak için 30 saniye yerinde tutuldu. 8 hafta boyunca her gün damıtılmış su (10 mL/kg) garajla verildi ve ameliyattan sonra farelerin iyileşmesi yakından izlendi.
(4) PC grubu: Pozitif kontrol grubu, Model grubuyla aynı modelleme prosedürüne tabi tutuldu ve ardından 8 hafta boyunca %0,5 sodyum karboksimetilselüloz (CMC-Na) içinde süspansiyon olarak hazırlanmış oral celecoxib (20 mg/kg/gün) gaajı aldı ve 10 mL/kg vücut ağırlığı gawage hacmi oldu.
(5) YQHXD düşük doz grubu [YQHXD(L)]: Modelleme Model grubundaki gibi gerçekleştirildi. Fareler, 8 hafta boyunca garaj yoluyla günde 3,87 g/kg ile YQHXD aldılar; garaj hacmi 10 mL/kg ve çalışma konsantrasyonu 0,387 g/mL idi.
(6) YQHXD orta doz grubu [YQHXD(M)]: Modelleme Model grubundaki gibi yapılmıştır. Fareler, 8 hafta boyunca garaj ile 7,74 g/kg/gün YQHXD aldı, garaj hacmi 10 mL/kg ve çalışma konsantrasyonu 0,774 g/mL oldu.
(7) YQHXD yüksek dozlu grup [YQHXD(H)]: Modelleme Model grubundaki gibi gerçekleştirildi. Fareler, 8 hafta boyunca garaj yoluyla 15,48 g/kg/gün olarak YQHXD aldı; garaj hacmi 10 mL/kg ve çalışma konsantrasyonu 1,548 g/mL oldu.
Patolojik değişiklikler
Fare kaudal IVD dokusu cerrahi olarak izole edildi ve IVD ile çevresindeki kas dokularında değişiklikler gözlemlendi. Toplanan doku daha sonra patolojik kesitlere işlenmiş, örnekler morfolojik gözlem için boyuna kesitlerde hazırlanmıştır. 96 saat formaldehitte sabitlenen kaudal omurga IVD, dekalsifikaedici bir çözelti kullanılarak hızla kalsifikasyon sağlandı, derecelendirilmiş bir alkol serisi ile kurutuldu ve ksilen ile temizlendi. Parafine gömüldükten sonra 5 μm parafin kesitleri hazırlandı. Ksilen ile deparafinizasyon ve bir dizi alkol gradyanıyla dehidrasyon yapıldıktan sonra, bölümler hematoksilin ve eosin ile boyandı. Daha sonra susuz bırakıldılar, temizlendiler ve binildiler. Örnekler, gruplar arasında kaudal IVD yapısındaki morfolojik değişiklikleri incelemek için optik mikroskop altında gözlemlendi. Daha sonra, Masson'ın trikrom boyaması yapıldı. Kesitler 3 dakika boyunca potasyum dikromat çözeltisi ve hematoksilin ile sıralı boyandı, ardından asidik etanol ile farklılaştırıldı ve ardından 10 dakika boyunca Picrosirius Red ile boyandı. 10 dakika fosfortungstik asit ile işlem yaptıktan sonra, bölümler 5 dakika boyunca toluidin mavisiyle boyandı. Susuz kaldıktan sonra, bölümler ksilen ile temizlendi, monte edildi ve kaudal IVD'deki değişiklikleri incelemek için mikroskop altında gözlemlendi.
Serum hedef proteinlerinin ELISA tespiti
Ameliyattan sekiz hafta sonra, fareler inhalasyon izofluranla anestezi edildi ve karın aort kanı toplandı. Çevresel kan örnekleri oda sıcaklığında 1 saat tutuldu ve 1.400 × g sıcaklığında 10 dakika santrifüjlendi. Serum ayrılarak −80 °C'de saklandı ve kullanılana kadar saklandı. Serum AKT1, STAT3 ve Bcl-2 seviyeleri enzim bağlantılı immünosorbent testi (ELISA) ile nicelendirildi. Testler üreticilerin protokollerine göre yapıldı. Soğurma 450 nm'de okundu ve konsantrasyonlar standart eğrilerden belirlendi. AKT1, STAT3 ve BCL-2 için tespit aralıkları sırasıyla 0.625–40 ng/mL, 31.25–1000 pg/mL ve 0.16–10 ng/mL idi; hassasiyetler 0.1 ng/mL, 10 pg/mL ve 0.1 ng/mL idi. Tüm serum örnekleri seyreltilmeden analiz edildi ve tüm sonuçlar ilgili standart eğri aralıkları içinde yer aldı. Tüm örnekler ve standartlar çift olarak analiz edildi ve normalizasyon eşit serum hacimlerine göre gerçekleştirildi.
Gen ifade seviyelerinin PCR tespiti
Fare kuyruk omurlarından omurlararası disk dokuları ayrıldı ve her örnekten yaklaşık 20 mg alındı. Dokular sıvı azotta ezildi ve 15 dakika boyunca 500 μL enzimatik olmayan liz tamponunda lizedildi. Toplam RNA daha sonra çıkarıldı ve konsantrasyonu ile saflığı bir spektrofotometre ile ölçüldü. A260/A 280 değerleri 1.8–2.0 olan örnekler analiz için kabul edildi ve RNA konsantrasyonları 500 ng/μL olarak ayarlandı. Ters transkripsiyon üretici protokolüne göre gerçekleştirildi. Akt1, Bcl-2 ve Stat3 mRNA ekspresyonunu ölçmek için gerçek zamanlı PCR sisteminde nicel PCR (qPCR) gerçekleştirildi. Giriş dizileri Tablo 1'de verilmiştir. PCR programı, ilk denaturasyondan oluşuyordu ve 95 °C'de 30 saniye (yaklaşık 30 saniye) sıcaklıkta 40 döngü boyunca 95 °C ve 30 saniye boyunca 60 °C sıcaklıklarla gerçekleştirildi. Ürün özgüllüğünü doğrulamak için amplifikasyondan sonra erime eğrisi analizi yapıldı. Gapdh referans gen olarak kullanıldı ve tüm örnekler üçlü olarak analiz edildi. Primer amplifikasyon verimliliği %90–%110 arasındadır. Göreli gen ifadesi 2−ΔΔCt yöntemiyle hesaplandı.
Protein ifade seviyeleri için Western blotting
Her gruptan fare kaudal omurgalar arası disk dokularından toplam protein izole edildi. Dokular, proteaz inhibitörleriyle desteklenen RIPA tamponunda lizedilmişti. Protein konsantrasyonu BCA protein test kiti kullanılarak ölçüldü ve 2 μg/μL olarak ayarlandı. Eşit protein miktarları (örnek başına 15 μg) %10 SDS-PAGE ile ayrıldı ve 90 dakika boyunca 300 mA sabit akımda ıslak transfer sistemi kullanılarak poliviniliden diflorid (PVDF) zarlarına aktarıldı. Zarlar daha sonra oda sıcaklığında %5 yağsız sütle 1 saat boyunca bloklandı ve AKT1 (1:5.000), STAT3 (1:6.000), Bcl-2 (1:1.500) ve β-aktine (1:4.000) karşı primer antikorlarla 4 °C'de gece boyunca kuluçka altına alındı. TBST yıkamasından sonra, zarlar oda sıcaklığında 1:5.000 derecesinde 1:5.000 seyreltme ile yadağ peroksidaz (HRP) ile konjuge ikincil antikorlarla kuluçka edildi. Protein bantları, geliştirilmiş kemimilüminesans (ECL) reaktifi kullanılarak tespit edildi ve aynı maruz kalma koşullarında jel görüntüleme sistemi ile görüntüler alındı. Bant yoğunlukları ImageJ kullanılarak ölçüldü ve β-aktine normalize edilip göreceli protein ekspresyonunu belirlendi. Her deney bağımsız olarak üçlü olarak gerçekleştirildi ve her örnek farklı bir hayvandan alındı.
İstatistikler
Sonuçlar ortalama ± standart sapma (SD) olarak ifade edilir. Gruplar arasındaki farklar, tek yönlü varyans analizi (ANOVA) ile değerlendirildi, ardından en az anlamlı fark (LSD) sonrası test yapıldı. İstatistiksel anlamlılık P < 0.05 olarak tanımlandı.