Tüm prosedürler, Changchun Çin Tıp Üniversitesi Hayvan Etik Komitesi tarafından onaylanmış (Onay No. 20251038) ve Hayvan Araştırmaları: In Vivo Deneylerin Raporlanması (ARRIVE 2.0) yönergeleri ile NIH Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Rehberi'ne uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Bu çalışmada kullanılan tüm malzemeler Malzeme Tablosu'nda gösterilmiştir.
Deneysel prosedürler
Deneysel hayvanlar ve gruplaşma
Hongda Hayvan Yetiştirme Çiftliği'nden (Kuancheng Bölgesi, Changchun, Çin) seksen spesifik patojensiz (SPF) yetişkin Sprague–Dawley faresi (220–250 g) satın alındı. Hayvanlar, Çin Tıp Üniversitesi Changchun Deneysel Hayvan Merkezi'nde 22–25 °C, %50–60 göreceli nem ve 12 saatlik ışık/karanlık döngü koşullarında, ücretsiz yiyecek ve suya erişim sağlandı. 1 haftalık aklimatizasyonun ardından, fareler rastgele bir boş grup (n = 12), bir Sham grubu (n = 12) ve bir model-rezerv grubuna (n = 56) atandı. Boş grup, sağlıklı farelerde davranışsal performans, histopatolojik özellikler ve moleküler belirteç ekspresyonu için temel değerler sağlamak amacıyla normal, tedavi edilmemiş bir kontrol olarak dahil edilmiştir. Sham grubu, MCAO grubuyla aynı anestezi ve cerrahi maruziyete maruz kaldı, ancak arteriyel tıkanma yapılmadı; Bu nedenle, bu grup anestezi ve cerrahi manipülasyonun potansiyel etkileri için bir kontrol görevi gördü. Hem Blank hem de Sham gruplarının dahil edilmesi, iskemik yaralanmanın etkilerini cerrahi işlemle ilgili etkilerden ayırt etmesini sağladı.
Model rezerv grubu MCAO modellemesi geçirdi. Ameliyattan sonraki ilk 3 gün model-indüksiyon dönemi olarak tanımlandı. Bu dönemde, 56 sıçandan 8'i öldü, bu da %14,29 ölüm oranına karşılık geldi ve modellemenin başarısız olması nedeniyle 12 fare hariç tutuldu. Başarılı model kurulumu olan kalan 36 sıçan, rastgele sayı tablosu kullanılarak MCAO, SAE ve Baclofen gruplarına rastgele dağıtıldı; her grupta 12 fare bulundu. Grup müdahaleleri şöyleydi: (I) Boş grup: sadece rutin beslenme, müdahale yok. (II) Sahte grup: ortak karotis arterin, iç ve dış karotis arterlerin ve vagus sinirinin cerrahi maruziyeti, ligasyon veya filament yerleştirilmeden. (III) MCAO grubu: MCAO, intraperitoneal anestezi altında %3 sodyum pentobarbital ile belirlendi ve sonraki tedavi yapılmadı. (IV) SAE grubu: başarılı MCAO modellemesi ve doğrulamasından sonra, farelere saç derisi akupunkturu egzersizle birleştirildi. %1,5–%2,0 oranlarında izofloran inhalasyon anestezisi yalnızca kısa iğne yerleştirme aşamasında kullanıldı. Koşu bandı eğitimi ancak bilinç tam iyileşme ve kendiliğinden yürüme yeteneğinin geri kazanılmasından sonra başlatıldı. Akupunktur GV20 ve bilateral EX-HN1'de yapıldı. İğneler 1 mm derinliğe yerleştirilir ve koşu bandı eğitim döneminde tutulurdu. Standartlaştırılmış 30 dakikalık iğne tutma/eğitim dönemi, koşu bandı antrenmanı dönemi olarak tanımlandı ve 10 dakika boyunca 6 m/dak ve ardından 0° eğimde 20 dakika boyunca 12 m/dakikadan oluşuyordu. Müdahale, 7 gün ardışık olarak günde bir kez uygulandı. (V) Baklofen grubu: başarılı MCAO modellemesi ve doğrulamasından sonra, fareler 7 gün ardışık olarak günde bir kez intragastrik garaj ile 0,4 mg/kg oranında baklofen aldılar.
MCAO modelinin kurulması
Fare MCAO modeli, modifiye bir intraluminal filamentyöntemi kullanılarak oluşturuldu 19. 12 saat oruç ve su yoksunluğundan sonra, fareler intraperitoneal %3 sodyum pentobarbital enjeksiyonuyla anestezi edilip sırtüstü pozisyona getirildi. Deri dezenfeksiyonundan sonra, sağ ortak karotis arteri (CCA) ve bitişik sinir ile kasları ortaya çıkarmak için orta çizgi servikal kesi yapıldı. Dış karotis arter (ECA) tanımlandı ve bağlandı, iç karotis arter (ICA) izole edildi. Ligatürler proksimal ICA ve CCA'ya yerleştirildi ve distal CCA geçici olarak kelepçelendi. Daha sonra kelepçeye yakın CCA'da küçük bir arteriotomi yapıldı. 0,26 mm bir naylon filament yerleştirildi ve ICA boyunca 18–20 mm ileriye taşınarak orta beyin arterinin başlangıcını kapattı. ICA ve CCA daha sonra bağlandı ve kesi dikildi. Ameliyattan sonra, iyileşme sırasında fareler sıcak tutuldu ve enfeksiyonu önlemek için intraperitoneal penisilin (40.000 U) enjeksiyonu yapıldı. Sham grubunda, filament yerleştirilmeden sadece damar maruziyeti yapıldı; yara kapanması ve ameliyat sonrası bakım, MCAO grubundakilerle aynıydı. Başarılı model oluşturma, ameliyattan 3 gün sonraZea Longa skoru 19 ≥ 2 ve Grade 1 20 ≥ modifiye edilmiş Ashworth Scale (MAS) kas tonusu puanıolarak tanımlandı.
Müdahale yöntemleri
Saç derisi akupunkturu egzersiz müdahalesiyle birleşir
Önceki çalışmalar, MCAO sıçanlarında nörolojik bozuklukların 3. günde zirveye ulaştığını ve ameliyattan sonraki 10 gün içinde yüksek kaldığını, periferik kas direncinin ise 6. günden921. güne kadar kademeli olarak arttığını göstermiştir. Bu nedenle, tedavi ameliyat sonrası 3. günde başlatıldı ve spontan iyileşmenin etkisini en aza indirmek için 7 gün ardışık günde bir kez devam etti. Modellemeden önce, SAE grubuna atanan fareler 3 gün boyunca 5 m/dakika hızla, günde 10 dakika22 dakika uyarlanabilir koşu bandı eğitimi aldılar. Bu uyarlanabilir eğitim, sıçanları koşu bandında koşmaya alıştırmak ve resmi müdahale döneminde mücadele, düşme, koşmayı reddetme veya durma olasılıklarını azaltmak için kullanıldı. Uyarlanabilir eğitim ve resmi müdahale sırasında, anormal koşu bandı ile ilgili durumlar sürekli mücadele, koşu yolundan düşme, 1 dakikadan fazla koşmayı reddetme veya koşu bandı antrenmanı sırasında 1 dakikadan fazla durma olarak tanımlandı. Bu olaylar gözlemlendiğinde deneysel kayıtlara kaydedilmiştir. Kısa bir tereddüt veya geçici durma, hafif bir uyarı sonrası koşu bandında koşmaya devam edilebiliyorsa dışlanmaya yol açmazdı. Veriler, yalnızca bir hayvanın tekrar tekrar düşme, sürekli koşmayı reddetme veya şiddetli sıkıntı nedeniyle atanan günlük koşu bandı seansını tamamlayamaması durumunda hariç tutuldu. 3. günde başarılı model doğrulamasının ardından, SAE müdahalesi 7 gün ardışık olarak günde bir kez uygulandı.
Her tedavi seansında, fareler %1,5–%2,0 isofluran ile anestezi edildi. Anestezi, iğne yerleştirildikten hemen sonra sona erdirildi. Deneysel uygulamada, sıçanlar genellikle izofluran çekilmesinden yaklaşık 1–2 dakika içinde tam bilinç kazanırlar. Koşu bandı eğitimi, fareler anestezi altındayken başlamadı. Akupunktur noktaları, Çin Akupunktur-Moksibustion Derneği tarafından 2020 yılında yayımlanan Deneysel Hayvanlarda Yaygın Akupunktur Noktalarının Isimlendirmesi ve Lokalizasyonu'na göre deneyimli hayvan akupunktur uzmanları tarafından tespit edilmiştir. GV20, kranial orta çizgideki ön ve arka fontanelleri birbirine bağlayan çizginin orta noktası olarak tanımlanmıştır. İki taraflı EX-HN1 noktaları GV20'ye 2 mm yan çapta konumlandırıldı. 0,25 mm × 13 mm ölçüsünde tek kullanımlık iğneler dikey olarak 1 mm derinliğe yerleştirildi ve standart 30 dakikalık koşu bandı eğitim süresi boyunca korundu. İğneler, yer değiştirmeyi önlemek için nefes alabilir tıbbi bantla sabitlendi ve prosedür tutarlılığını sağlamak için palpasyon ile kafatası penetrasyonu dışlandı. İğne pozisyonu ve bant sabitleme, koşu bandı eğitiminden önce, anormal koşu davranışı varsa kısa duraklamalarda ve antrenmanın hemen ardından kontrol edildi. Ayrıca, koşu bandı eğitimi sırasında hayvan davranışına bakılmaksızın her 5 dakikada bir iğne pozisyonu görsel olarak kontrol edildi. İğne yer değiştirme, koşu bandı koşusu sırasında görünür gevşeme, iğne açısının değişmesi, kısmi çekilme veya tamamen yerinden çıkma olarak tanımlanmıştır. İğne pozisyonu kaybedilmeden hafif gevşeme gerçekleşirse, bant nazikçe güçlendirilir ve koşu bandı kısa bir süre duraklatılırdı. Bir iğne kısmen çekilmiş veya tamamen yerinden çıkarılmışsa, o seans sırasında iğne tekrar yerleştirilmezdi; Fare, kalan koşu bandı eğitimini ek iğne manipülasyonu olmadan tamamladı ve olay deneysel günlükte belgelendi. Hayvanlar, yalnızca tek bir iğne yer değiştirme olayı nedeniyle dışlanmazdı; ancak bu olay koşu bandı eğitimini tamamlayamaması veya şiddetli sıkıntı belirtileriyle eşlik edilirse.
Standartlaştırılmış 30 dakikalık iğne tutma/eğitim dönemi, sıçanların izofluran anestezisinden tam iyileşmeden sonra koşu bandı koşmaya başlamasıyla başlar ve koşu bandı eğitimi tamamlandıktan hemen sonra, iğneler çıkarıldığında sona ererdi. İzofloran üretiminin kesilmesinden sonraki kısa iyileşme intervalı, standartlaştırılmış 30 dakikalık eğitim süresine dahil edilmemiştir. İğneler iyileşmeden önce yerleştirildiği için, fiziksel yaşam süresi 30 dakikalık koşu bandı antrenman süresinden yaklaşık 1–2 dakika daha uzundu. Bu tanım, SAE grubundaki tüm farelerde tutarlı şekilde uygulanmıştır. Bir fare, şu kriterler karşılandığında koşu bandı eğitimine başlayacak kadar iyileşmiş sayıldı: bilincin tam iyileşmesi, bağımsız durabilme yeteneği, düz bir yüzeyde istikrarlı yürüme yeteneği ve hafif dış uyarıma normal yanıt. Bu kriterler koşu bandına yerleştirilmeden önce kontrol edildi.
İğne tutma sırasında, fareler 0° eğimli koşu bandı egzersizi yaptılar: 10 dakika boyunca 6 m/dakika, ardından 20 dakika boyunca 12 m/dakika hızla. Çalışma sırasında hiçbir zaman elektrik şoku kullanılmadı. Bir fare resmi eğitim sırasında koşmayı bıraktıysa veya 1 dakikadan fazla koşmayı reddederse, hareketi teşvik etmek için koşu bandı duvarına hafifçe vurmak gibi nazik, olumsuz olmayan işitsel uyarım kullanıldı. Böyle bir yönlendirmenin kullanımı, mücadele, düşme, durma, koşmayı reddetme veya iğne yerinden kayma gözlemlendiğinde deneysel günlükte belgelenmiştir. Bu olaylar betimleyici olarak izlendi ve gözlemlendiğinde deneysel günlükte belgelendi. Egzersiz yoğunluğu, daha önce bildirilen protokollere dayanarak deri akupunkturu ile koşu bandağı antrenmanının birleştirildiği kapsamlı şekildeayarlandı 16,23. SAE müdahalesi 7 gün ardışık olarak günde bir kez uygulandı (Şekil 1A).
Baklofen müdahalesi
Başarılı model doğrulamasının ardından, Baclofen grubundaki farelere intragastrik gavaj ile 0,4 mg/kg dozda baklofen çözeltisi verildi. İlaç, 7 gün ardışık olarak günde bir kez saat 9:00'da uygulandı.
Sonuç kesin
Genel gözlem
Genel durum tüm gruplarda günlük olarak izlendi; vücut ağırlığı, ruh durumu, yiyecek ve su alımı, spontan aktivite dahil.
Nörolojik fonksiyon ve kas tonusu değerlendirmesi
Model doğrulama sonrası 1., 3., 5. ve 7. günlerde nörolojik eksiklikler ve uzuv spastisitesi, model doğrulamasından sonra Zea Longa skoru, değiştirilmiş nörolojik şiddet puanı (mNSS) ve modifiye edilmiş Ashworth Ölçeği kullanılarak değerlendirildi. Tüm zaman noktalarındaki tüm davranışsal değerlendirmeler, gözlem süresi boyunca grup dağılımı kör edilmiş iki araştırmacı tarafından bağımsız olarak gerçekleştirildi. Ayrıntılı puanlama kriterleri gösterilmiştir (Tablolar 1–3).
Beyin infarkt hacminin belirlenmesi
Beyin enfarkt hacmi 2,3,5-triphenyltetrazolium klorür (TTC) boyama ile değerlendirildi. 7 günlük müdahalenin ardından, her gruptan üç fare rastgele seçildi ve intraperitoneal sodyum pentobarbital aşırı dozuyla ötanazi, ardından hızlı kafa kesilerek tüm beyin toplanması yapıldı. Beyinler önce −20 °C'de donduruldu ve ardından 2 mm kalınlığında koronal kesitlere bölündü. Bölümler, karanlıkta 37 °C'de %2 TTC çözeltisinde 30 dakika kuluçka edildi, ardından gece boyunca %4 paraformaldehit ile 4 °C'de sabitlendi. Ertesi gün, tüm bölümler dijital kamerayla fotoğraflandı. Normal beyin dokusu koyu kırmızıya boyanmışken, enfarkt dokusu soluk beyaz görünüyordu. İnfarkt alanları ImageJ ile nicelendirildi ve infarkt hacmi şu formülle yüzde olarak ifade edildi:
İnfarkt hacmi (%) = enfarkt alanı / toplam beyin kesiti alanı X %100. (1)
Beyin dokusunun histopatolojik muayenesi
Hematoksilin–eozin (HE) boyama
Peri-enfarkt korteksindeki histopatolojik değişiklikleri değerlendirmek için hematoksilin ve eozin boyama kullanıldı. 7 günlük müdahaleden sonra, fareler intraperitoneal sodyum pentobarbital aşırı dozuyla ötenazi edildi. Daha sonra kanı almak için 0,01 M fosfat-tamponlu tuzlu (PBS) ile hızlı transkardiyal perfüzyon uygulandı, ardından fiksasyon için 250 mL soğuk 4% paraformaldehit (4 °C) uygulandı. Tüm beyin toplandı ve peri-enfarkt kortikal doku izole edilip %4 paraformaldehit ile 4 °C'de 24 saat boyunca sabitlendi. Dokular parafinle gömülüp 5 μm koronal olarak kesitlenmiştir. Bölümler kaydıraklara monte edildi, 60 °C'de 30 dakika pişirildi ve ksilen I–III ile (her biri 10 dakika) deparafinize edildi. Daha sonra HE boyama işlemi yapıldı, ardından dehidrasyon ve temizlik yapıldı. Son olarak, bölümler nötr balsamla örtüldü ve görüntüler Nikon ışık mikroskobu kullanılarak alındı.
Nissl boyama
Nissl boyama, peri-enfarkt bölgesinde nöron sağlıklarını ve Nissl vücut yoğunluğunu değerlendirmek için kullanıldı. 7 günlük müdahaleden sonra, fareler ötenaziye edilip 0,01 M PBS (37 °C) ile transkardiyal perfüze edildi, ardından %4 paraformaldehit (4 °C) 250 mL alındı. Tüm beyin çıkarıldı, peri-enfarkt ve kontralateral kortikal dokular gece boyunca %4 paraformaldehit ile 4 °C sıcaklıkta diseksiye edilip sabitlendi. Parafin gömülmesinden sonra 5 μm kesitler hazırlandı. Kesitler 10 dakika boyunca ksilenle deparaffinleştirildi, bir dizi derecelendirilmiş etanol çözeltisi (%95, 90%, %80, %70 ve %50; her konsantrasyon için 5 dakika) ile yeniden nemlendirildi ve oda sıcaklığında 30 dakika boyunca Nissl çalışma çözeltisi ile boyandı. Kısa bir damıtılmış su ile durulama yaptıktan sonra, bölümler derecelendirilmiş etanolden kurtuldu, 2 dakika ksilen içinde temizlendi ve sonunda örtü kapaklarıyla monte edildi. Görüntüler ışık mikroskobu altında çekilip analiz edildi.
Protein yayılımının Western blot analizi
Western blotting, PI3K/Akt sinyalizasyonu ve sinaptik plastisitede yer alan proteinleri değerlendirmek için gerçekleştirildi. 7 günlük müdahalenin ardından, fareler sodyum pentobarbital aşırı dozuyla ötanazi edildi ve peri-enfarkt motor korteks dokusu toplandı. Dokular buz üzerinde Radyoimmünopresipitasyon testi (RIPA) liz tamponunda tamamen homojenize edildi ve toplam protein çıkarılması için 4 °C'de 1610 × g. sıcaklıkta 30 dakika boyunca santrifüj edildi. Protein konsantrasyonu, ticari bir bicinchoninic acid (BCA) protein test kiti kullanılarak nicel olarak belirlendi. Eşit miktarda protein (her şerit başına 50 μg) sodyum dodesil sülfat-poliakrilamid jel elektroforezi (SDS-PAGE) ile ayrıldı ve elektriksel olarak poliviniliden florür (PVDF) membranlarına aktarıldı. Membranlar, spesifik olmayan bağlanmayı ortadan kaldırmak için oda sıcaklığında %5 sığır serum albümini (BSA) çözeltisi ile 1 saat boyunca bloklandı, ardından 4 °C'de gece boyunca primer antikorlarla inkübe edildi. Üç tur yıkamadan sonra, Tween-20 (TBST) tamponu ile Tris tamponlu tuzlu suyla üç tur yıkamadan sonra, zarlar oda sıcaklığında 1 saat boyunca ikincil antikorla (seyreltme oranı 1:1000) inkübe edildi. Protein bantları geliştirilmiş kemilyüminesans (ECL) kullanılarak görselleştirildi ve bant yoğunluğu ImageJ ile nicelendirildi. Göreceli protein ekspresyonu hedef proteinin iç kontrol oranı olarak hesaplandı. Birincil antikorlar şunlardı: GAPDH (1:1000), PI3K (1:1000), fosfo-PI3K (1:1000), Akt (1:1000), fosfo-Akt (1:1000), GAP-43 (1:1000), SYN (1:1000), PSD-95 (1:1000) ve GDNF (1:1000).
Sinaptik ultrayapı gözlemi
Geçirimli elektron mikroskopisi (TEM) sinaps sayısı ve yapısal bütünlüğü değerlendirmek için kullanılmıştır. 7 günlük müdahalenin ardından sıçanlar anestezi edilip %4 paraformaldehit ve %2,5 glutaraldehit içeren karışık fiksasyon ile transkardiyal perfuze edildi. Peri-enfarkt kortikal doku blokları (1 mm × 1 mm × 1 mm) toplanıp %2,5 glutaraldehit ile 2 saat boyunca sabitlendi, ardından %1 osmiyum tetroksit ile 1 saat sonradan fiksasyon yapıldı. Örnekler daha sonra derecelendirilmiş etanol dehidrasyonu, epoksi reçine gömülmesi, ultra ince kesitleme (50 nm kalınlığında) ve uranil asetat ile kurşun sitrat ile çift boyama ile işlendi. Sinaptik ultrayapı, bir geçirim elektron mikroskobu kullanılarak incelendi. Yapısal değerlendirme için görüntüler 8.000× olarak alındı ve sinapslar 5.000× olarak sayıldı. Her grup için üç rastgele nöropil alanı analiz edilip ortalama sinaps sayısı hesaplandı ve veriler tek yönlü ANOVA kullanılarak karşılaştırıldı.
İmmünoflüoresans çift etiketleme testi
İmmünofluoresans çift etiketleme boyama, peri-enfarkt kortekste SYN ve p-Akt'in ekspresyonunu ve dağılımını değerlendirmek için gerçekleştirildi. 7 günlük müdahalenin ardından, sıçanlar intraperitoneal sodyum pentobarbital aşırı dozuyla ötenazi edildi ve peri-infarkt kortikal dokusu hızla disseksiye edildi. Örnekler %4 paraformaldehit ile 24 saat sabitlendi, optimal kesme sıcaklığı bileşiğine (OCT) gömüldü ve 10 μm kalınlığında kesimlere kesildi. Bölümler oda sıcaklığında 1 saat hava kurutuldu ve kalan OCT bileşiği gidermek için TBST tamponu ile üç kez yıkandı. Bölümler, oda sıcaklığında %0,3 Triton X-100 ile 20 dakika geçirimli hale getirildi, PBS ile durulandı ve oda sıcaklığında %5 BSA çözeltisi ile 1 saat boyunca bloklandı. Karanlık koşullarda, bölümler gece boyunca 4 °C'de tavşan anti-SYN (seyrelme 1:200) ve tavşan anti-p-Akt (seyrelme 1:200) birincil antikorlarıyla kuluçka edildi. Ertesi gün, bölümler PBS ile üç kez yıkanmış ve oda sıcaklığında ikincil antikorla (1:400 seyreltme 1:400) karanlıkta kuluçka altına alınmıştır. TBST tamponu ile altı yıkamadan sonra, hücre çekirdekleri oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 4′,6-diamidino-2-fenilindol (DAPI) çalışma çözeltisi ile karşı boyandı. Görüntüler, floresans mikroskobu kullanılarak aynı pozlama ve arka plan ayarlarında alındı. Motor kortekste SYN ve p-Akt ekspresyon desenlerini gruplar arasında değerlendirmek için temsilci görüntüler kullanıldı.
İstatistiksel analiz
İstatistiksel analizler GraphPad Prism 10.1.2 ve IBM SPSS Statistics 25 kullanılarak gerçekleştirildi. Veriler ortalama ± standart sapma (SD) olarak sunulur. Zea Longa puanı, değiştirilmiş Nörolojik Şiddet Skoru ve değiştirilmiş Ashworth Ölçeği dahil olmak üzere birden fazla zaman noktasında toplanan davranışsal veriler, iki yönlü tekrarlanan ölçümlü ANOVA kullanılarak analiz edildi; grup denek arasında faktör olarak ve zaman dahili faktör olarak kullanıldı. Önemli ana etkiler veya etkileşimler tespit edildiğinde, Sidak'ın çoklu karşılaştırma testi sonradan analiz için kullanıldı. Diğer veriler tek yönlü ANOVA kullanılarak analiz edildi ve ardından Sidak'ın çoklu karşılaştırma testi sonradan karşılaştırmalar yapıldı. İki kuyruklu p. < 0.05 istatistiksel olarak anlamlı olarak kabul edildi. Bar grafiklerde, istatistiksel anlamlılık, ilgili şekil yazılarında tanımlanan yıldızlarla belirtilir.