WGCNA ile pediatrik pnömoni ile ilişkili anahtar bir gen modülünün belirlenmesi
Pediatrik pnömoni ile ilişkili gen modüllerini belirlemek için, pnömonili hastaların ve sağlıklı kontrollerin tüm kan transkriptomik verileri üzerinde WGCNA gerçekleştirilmiştir. Örnek kümeleme analizi, sonraki analizler için veri kalitesinin iyi olduğunu gösteren belirgin bir aykırı değer ortaya çıkarmamıştır (Şekil 1A). PCA, pnömoni ve sağlıklı gruplar arasında net bir ayrılma eğilimi sergileyerek, durumlar arasında belirgin transkriptomik profiller olduğunu göstermiştir (Şekil 1B). Ölçeksiz bir ağ oluşturmak için genler, medyan mutlak sapmaya göre sıralanmış, ağ kurulumu için ilk 5.000 gen seçilmiş ve nispeten düşük ortalama bağlantı korunurken ölçeksiz topoloji uyum indeksi kriterine (R2 > 0,8) dayanarak yumuşak eşikleme gücü 15 olarak belirlenmiştir (Şekil 1C). Bu eşik kullanılarak yapılan hiyerarşik kümeleme, farklı ekspresyon modellerine sahip birden fazla gen modülü tanımlamıştır (Şekil 1D). Modül-özellik ilişkisi analizi, birkaç modülün klinik fenotiplerle anlamlı düzeyde ilişkili olduğunu ortaya koymuştur. Özellikle mavi modül, hem hastalık durumu (pnömoni ve sağlıklı) hem de etiyolojik sınıflandırma ile güçlü bir korelasyon göstermiş, bu da hastalık seyri ve konak yanıtındaki potansiyel rolüne işaret etmiştir (Şekil 1E).
Ayrıca, mavi modül içindeki modül üyeliği ile gen anlamlılığının saçılım grafiği analizi, güçlü bir pozitif korelasyon (cor = 0.6, p = 2.1e−35) göstermiş olup, modül içinde yüksek düzeyde bağlantılı olan genlerin klinik özellik ile de güçlü bir şekilde ilişkili olduğunu ortaya koymuştur (Şekil 1F).
Mavi modülün bakteriyel pnömoni etiyolojisi ile ilişkisi
Pnömoni etiyolojileri arasındaki gen ekspresyon farklarını daha detaylı incelemek için; kontroller (C), kesin bakteriyel (DB), kesin viral (DV), olası bakteriyel (PB), olası viral (PV) ve bilinmeyen (U) gruplarını içeren çoklu klinik sınıflandırmalar kullanılarak WGCNA gerçekleştirildi. Modül-özellik ilişkisi analizi, birkaç modülün belirli etiyolojik alt tiplerle anlamlı korelasyonlar sergilediğini ortaya koydu. Özellikle mavi modül, DB grubu ile en güçlü pozitif korelasyonu göstererek, bakteriyel enfeksiyona özgü konak yanıtlarında potansiyel bir rolü olduğunu düşündürdü (Şekil 2A).
Gen kümeleme dendrogramı ve buna karşılık gelen modül ataması, modül oluşturmanın sağlamlığını ve gen kümelerinin net ayrımını daha da doğrulamıştır (Şekil 2B). Mavi modül içerisinde, modül üyeliği ile gen anlamlılığı arasındaki analiz, anlamlı bir pozitif korelasyon göstermiş (cor = 0.41, p = 7.8e−14), bu durum bu modül içindeki yüksek bağlantılı genlerin aynı zamanda etiyolojik özellik ile güçlü bir şekilde ilişkili olduğunu göstermiştir (Şekil 2C).
Ayrıca, farklı etiyolojik gruplar arasında modül özgen (eigengene) ekspresyonunun karşılaştırılması, mavi modülde anlamlı farklılıklar olduğunu ortaya koymuştur (Kruskal–Wallis testi, p = 1.5e−13). Özellikle mavi modül, diğer etiyolojik kategorilerle karşılaştırıldığında, bakteriyel pnömoni gruplarında ve özellikle DB alt grubunda yüksek ekspresyon göstermiştir (Şekil 2D).
İntegrasyon analizi ile pediatrik pnömoni ile ilişkili Paeonia kaynaklı bileşiklerle ilgili on sekiz aday gen belirlendi
Pediatrik pnömoni ile ilişkili aday genleri ve potansiyel Paeonia ilişkili hedefleri belirlemek için öncelikle pnömoni hastaları ile sağlıklı kontroller arasında diferansiyel ekspresyon analizi gerçekleştirildi. Bu kriterler kullanılarak, pnömoni ve sağlıklı kontrol örnekleri arasında 524'ü yukarı regüle ve 586'sı aşağı regüle olmak üzere toplam 1.110 diferansiyel eksprese gen (DEG) belirlendi. Yukarı regüle olan 524 DEG, Ek Tablo S1'de sunulmuştur (ayrıca bkz. Şekil 3A). Anahtar genleri daha fazla rafine etmek için, pnömoni ile ilişkili DEG'ler, DB fenotipi ile ilişkili genler ve Paeonia'nın öngörülen hedefleri ile kesiştirildi. Bu integratif analiz, hastalık ilerlemesinde ve Paeonia ilişkili yanıtlarda potansiyel rolleri olduğunu düşündüren 18 örtüşen gen ortaya çıkardı (Şekil 3B).
Paeonia'nın aktif bileşenleri ile tanımlanan aday genler arasındaki ilişkileri görselleştirmek amacıyla bir bileşik-hedef etkileşim ağı oluşturulmuş ve bileşikler ile hedefler arasında kapsamlı bir bağlantısallık olduğu ortaya çıkarılmıştır (Ek Tablo S2 ve Şekil 3C). Bu 18 genin biyolojik fonksiyonlarını araştırmak için fonksiyonel zenginleştirme analizleri gerçekleştirilmiştir. GO biyolojik süreç zenginleştirmesi, aday genleri temel olarak inflamatuvar yanıt regülasyonu, peptid hormon yanıtı, reaktif oksijen türleri metabolizmasının pozitif regülasyonu ve tip II interferon aracılı sinyalleme regülasyonu dahil olmak üzere immün ve inflamatuvar fonksiyonlarla ilişkilendirmiştir (Şekil 3D). KEGG analizi ayrıca genlerin, IL-17 ve NF-κB sinyal yolakları gibi inflamasyon ve immünite ile ilgili yolakların yanı sıra glukagon sinyallemesi ve steroid hormon biyosentezi dahil olmak üzere metabolik ve endokrin ile ilgili yolaklarda zenginleştiğini göstermiştir (Şekil 3D).
Tek hücreli transkriptomik analizde nötrofillerde ve alveolar makrofajlarda aday genlerin zenginleşmesi
Deneysel bir pnömoni bağlamında aday genlerin hücresel dağılımını araştırmak için fare akciğer scRNA-seq veri seti GSE295484 analiz edildi. Veri güvenilirliğini değerlendirmek amacıyla kalite kontrol analizi gerçekleştirildi. Saptanan gen sayılarının, UMI sayımlarının, mitokondriyal ve ribozomal gen yüzdelerinin dağılımları, işlenen matriste genel olarak yüksek kaliteli tek hücreli verilere işaret etti (Şekil 4A). Saçılım grafikleri, kalite kontrol görselleştirmesinde kullanılan gen saptama ve mitokondriyal içerik için referans eşikleri gösterdi (Şekil 4B).
Normalizasyon ve boyut indirgeme işlemlerinin ardından, hücreler kümelendi ve UMAP kullanılarak görselleştirildi. Nötrofiller, alveoler makrofajlar, monositler, epitel hücreler ve diğer immün ve stromal hücre tipleri dahil olmak üzere belirgin hücre popülasyonları tanımlanarak, pnömoni sırasındaki akciğer mikroçevresinin hücresel heterojenliği ortaya kondu (Şekil 4C). 18 aday genin tek hücre düzeyindeki aktivitesini değerlendirmek için AUCell analizi gerçekleştirildi. Sonuçlar, bu hücre popülasyonlarındaki daha yüksek AUC skorlarının gösterdiği üzere, gen imzasının ağırlıklı olarak nötrofillerde ve alveoler makrofajlarda zenginleştiğini gösterdi (Şekil 4D).
Bir fare bakteriyel pnömoni modelinde Paeonia türevli bileşik hedefleriyle ilişkili enflamatuar genler
Fare deneysel pnömoni modelindeki immün hücre dinamiklerini daha ayrıntılı incelemek için; oda havası, PBS ve E. coli gruplarında aspirasyondan sonraki 48. ve 96. saatlerde alveoler makrofajların ve nötrofillerin oranları analiz edildi. 48. saatte, alveoler makrofajlar hava ve PBS koşullarına kıyasla E. coli enfeksiyonu altında belirgin bir azalma gösterirken, nötrofiller hücre oranında önemli bir artış sergiledi (Şekil 5A). Benzer bir eğilim 96. saatte de gözlemlendi; nötrofil oranları E. coli stimülasyonuna yanıt olarak yüksek kalmaya devam ederken, alveoler makrofajlar nispeten daha düşük seviyeler gösterdi. Bu sonuçlar, bakteriyel enfeksiyon sırasında nötrofillerin belirgin bir ekspansiyon gösterdiğini işaret etmektedir. Nötrofillerin fonksiyonel özelliklerini araştırmak için nötrofil marker genleri belirlendi ve fonksiyonel zenginleştirme analizi gerçekleştirildi. KEGG zenginleştirmesi, nötrofil marker genlerini TNF, MAPK ve C-tipi lektin reseptör yolakları dahil olmak üzere enflamatuar sinyalizasyonla ilişkilendirdi (Şekil 5B). GO biyolojik süreç terimleri de lökosit migrasyonu, lökosit hücre-hücre adezyonu, savunma yanıtının pozitif regülasyonu ve bakteriyel kökenli moleküllere yanıt gibi immün yanıt fonksiyonlarında yoğunlaşmıştı (Şekil 5B). Nötrofil aktivitesini, pnömoniyi ve Paeonia hedeflerini birbirine bağlayan kilit genleri belirlemek için nötrofil marker genleri, önceden tanımlanmış 18 aday genle kesiştirildi. Bu analiz sonucunda üç örtüşen gen elde edildi: MMP9, PYGL ve GADD45A (Ek Tablo S3 ve Şekil 5C). Son olarak, tek hücreli gen ekspresyon görselleştirmesi, bu üç genin ağırlıklı olarak nötrofil popülasyonlarında eksprese edildiğini göstererek (Şekil 5D), nötrofil aracılı enflamatuar yanıtlardaki potansiyel rollerini daha da desteklemiştir.
Moleküler kenetlemede kateşinin seçilen proteinlere öngörülen bağlanma afinitesi
Potansiyel kateşin-protein etkileşimlerini daha ayrıntılı değerlendirmek için, seçilen proteinler (MMP9, PYGL ve GADD45A) ile Paeonia kaynaklı aktif bir bileşik olan kateşin arasında moleküler kenetleme analizi gerçekleştirilmiştir. GADD45A, MMP9 ve PYGL'nin kristal yapıları Protein Veri Bankası'ndan (Protein Data Bank) elde edilmiş, kateşinin 3D yapısı ise PubChem veri tabanından alınmıştır. Kenetleme sonuçları, kateşinin seçilen üç proteinin tamamının bağlanma bölgelerine bağlanabildiğini göstermiş; bağlanma enerjileri GADD45A için −6.3 kcal/mol, MMP9 için −7.6 kcal/mol ve PYGL için −8.0 kcal/mol olarak belirlenmiştir (Şekil 6). Seçilen bu proteinler arasında kateşin, en güçlü öngörülen bağlanma afinitesini PYGL ile sergilemiş, bunu sırasıyla MMP9 ve GADD45A izlemiştir; bu durum, metabolizma ile ilişkili bir proteinle potansiyel bir tercihi etkileşime işaret etmektedir.
Moleküler düzeyde kateşin, her bir proteindeki temel amino asit kalıntılarıyla birden fazla hidrojen bağı ve hidrofobik etkileşim oluşturmuştur. GADD45A'da kateşin, GLN33 ve TRP135 gibi kalıntılarla etkileşime girmiştir. MMP9'da GLN227, TYR248 ve HIS236 dahil olmak üzere kalıntılarla kararlı hidrojen bağları gözlemlenmiştir. Benzer şekilde, PYGL'de kateşin, LYS554 ve ASN631 gibi kalıntılarla çoklu hidrojen bağları oluşturarak bağlanma stabilitesine katkıda bulunmuştur. Hidrojen bağlarının yanı sıra, etkileşim analizi van der Waals kuvvetlerini ve π-ilişkili etkileşimleri ortaya koymuş olup, bu durum öngörülen ligand-protein komplekslerinin stabilitesini artıran çok modlu bir bağlanma paternine işaret etmektedir. Toplu olarak bu sonuçlar, kateşinin MMP9, PYGL ve GADD45A ile kararlı öngörülen kompleksler oluşturabileceğini göstermektedir. Bununla birlikte, bu etkileşimlerin terapötik ilgisi daha fazla deneysel doğrulama gerektirmektedir.
Kateşin ve seçilen proteinler arasındaki öngörülen stabil etkileşimler
Moleküler kenetleme ile elde edilen kenetleme pozlarına dayanarak, kateşin-protein komplekslerinin stabilitesini daha ayrıntılı değerlendirmek amacıyla 100 ns'lik moleküler dinamik simülasyonları gerçekleştirilmiştir. RMSD analizi, üç protein-ligand kompleksinin de simülasyon süresince dengeye ulaştığını göstermiştir. Bunlar arasında PYGL-kateşin ve MMP9-kateşin kompleksleri nispeten stabil RMSD dalgalanmaları sergilerken, GADD45A-kateşin kompleksi biraz daha yüksek dalgalanmalar göstermiş ancak kabul edilebilir bir aralıkta kalmıştır (Şekil 7A). Rg analizi, tüm komplekslerin simülasyon boyunca zamanla minimal varyasyonlar göstererek stabil yapısal kompaktlığı koruduğuna işaret etmiştir (Şekil 7B). Benzer şekilde, SASA analizi tüm kompleksler için stabil maruziyet seviyelerini ortaya koyarak yapısal stabilitelerini daha da desteklemiştir (Şekil 7C). Hidrojen bağı analizi, kateşin ile seçilen proteinler arasında kalıcı etkileşimler olduğunu ortaya çıkarmıştır. PYGL-kateşin kompleksi, MMP9 ve GADD45A'ya kıyasla zaman içinde daha yüksek sayıda hidrojen bağı korumuş; bu durum daha güçlü ve daha stabil bağlanma etkileşimlerine işaret etmiştir (Şekil 7D).
Kalıntı düzeyindeki esneklik RMSF kullanılarak değerlendirilmiştir. Sonuçlar, çoğu kalıntının düşük dalgalanma sergilediğini, yalnızca birkaç bölgenin daha yüksek esneklik gösterdiğini ortaya koymuş ve bu durum ligand bağlanmasının proteinlerde büyük bir yapısal instabiliteye yol açmadığını göstermiştir (Şekil 7E). Toplu olarak bu bulgular, kateşinin MMP9, PYGL ve GADD45A ile öngörülen kararlı kompleksler oluşturduğunu ve en güçlü stabilitenin PYGL–kateşin etkileşiminde gözlemlendiğini göstermektedir. Bu sonuçlar, kateşin ile seçilen proteinler arasındaki öngörülen kararlı etkileşimleri desteklemekte ve daha ileri deneysel doğrulama için hesaplamalı kanıtlar sunmaktadır.
Veri Kullanılabilirliği:
Bu çalışmada halka açık veri setleri analiz edilmiştir. bulk RNA-seq veri seti, GSE261482 erişim numarası altında Gene Expression Omnibus (GEO) üzerinden (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE261482) ve fare akciğer scRNA-seq veri seti, GSE295484 erişim numarası altında (https://www.ncbi.nlm.nih.gov/geo/query/acc.cgi?acc=GSE295484) erişilebilirdir. Makalede kullanılan işlenmiş çıktılar, Ek Tablo S1, Ek Tablo S2 ve Ek Tablo S3 olarak sunulmuştur.

Şekil 1. WGCNA kurulumu ve hastalıkla ilişkili modüllerin tanımlanması (A) Gen ekspresyon profillerinden örnek kümelemesi yapılmış olup, ilgili özellik açıklamaları dendrogramun altında gösterilmiştir. (B) Temel bileşenler analizi, örneklerin ilk iki temel bileşen boyunca dağılımını göstermektedir. (C) Yumuşak eşikleme kuvveti, ölçeksiz topoloji uyum indeksi ve ortalama bağlantı kullanılarak değerlendirilmiştir. (D) Genler topolojik örtüşmeye göre kümelenmiş ve modül atamaları renklerle belirtilmiştir. (E) Modül özgen (eigengene) korelasyonlarının klinik özelliklerle ilişkisi bir ısı haritası olarak gösterilmiştir. (F) Mavi modüldeki genler için modül üyeliği ile gen anlamlılığı arasındaki ilişki gösterilmiştir. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 2. Zatürre etiyolojisine dayalı WGCNA analizi. (A) Kontrol, kesin bakteriyel, kesin viral, olası bakteriyel, olası viral ve bilinmeyen grupları içeren etiyoloji grupları için modül eigengene korelasyonları gösterilmiştir. (B) Gen modülleri, topolojik örtüşme tabanlı kümeleme dendrogramından atanmıştır. (C) Mavi modül için modül üyeliği ve gen anlamlılığı grafiğe aktarılmıştır. (D) Mavi modül eigengene ekspresyonu etiyoloji grupları arasında karşılaştırılmıştır. Kısaltmalar: WGCNA = ağırlıklı gen ko-ekspresyon ağ analizi; C = kontrol; DB = kesin bakteriyel; DV = kesin viral; PB = olası bakteriyel; PV = olası viral; U = bilinmeyen. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 3. Aday genlerin tanımlanması ve fonksiyonel analizi. (A) Zatürre ve kontrol örnekleri arasında farklı şekilde ifade edilen genleri gösteren yanardağ grafiği. (B) Zatürre DEG'leri, kesin bakteri ilişkili genler ve Paeonia hedef genleri arasındaki örtüşmeyi gösteren Venn diyagramı. (C) Paeonia'nın aktif bileşenleri ile aday genler arasındaki bileşik-hedef etkileşim ağı. (D) Örtüşen genler için Gen Ontolojisi biyolojik süreç zenginleştirmesini (sol) ve KEGG yolak zenginleştirmesini (sağ) gösteren sütun grafikleri. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 4. Zatürrenin tek hücreli transkriptomik analizi. (A) Keman grafikleri; nCount_RNA, nFeature_RNA, mitokondriyal gen yüzdesi ve ribozomal gen yüzdesi dahil olmak üzere kalite kontrol metriklerini özetlemektedir. (B) UMI sayıları, hücre başına tespit edilen genler ve mitokondriyal gen yüzdesi arasındaki ilişkileri gösteren dağılım grafikleri. (C) Hücre tiplerine göre açıklanmış hücre kümelerinin UMAP görselleştirmesi. (D) Tek hücrelerde aday gen imzasının AUCell skorlarını gösteren UMAP grafiği. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 5. Nötrofil dinamikleri ve temel genlerin belirlenmesi. (A) Farklı koşullarda (hava, PBS ve E. coli) 48 sa. ve 96 sa. sonunda alveolar makrofajların ve nötrofillerin hücre oranlarını gösteren kutu grafikleri. (B) Nötrofil belirteç genleri için KEGG yolak zenginleştirmesini (solda) ve GO biyolojik süreç zenginleştirmesini (sağda) gösteren sütun grafikleri. (C) Nötrofil belirteç genleri ile bakteriyel pnömoni ve Paeonia'nın ortak hedefleri arasındaki örtüşmeyi gösteren Venn diyagramı. (D) Hücre popülasyonları genelinde MMP9, PYGL ve GADD45A ekspresyon modellerini gösteren UMAP grafikleri. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 6. Kateşinin seçilen proteinlerle moleküler kenetlenmesi. Kateşinin GADD45A (üst), MMP9 (orta) ve PYGL (alt) proteinlerine bağlanmasını gösteren protein-ligand komplekslerinin üç boyutlu yapıları. Büyütülmüş paneller bağlanma bölgelerini ve ana amino asit kalıntıları ile olan temasları göstermektedir. İki boyutlu diyagramlar, kateşin ile seçilen proteinler arasındaki hidrojen bağlarını ve diğer etkileşimleri sunmaktadır. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.

Şekil 7. Protein–ligand komplekslerinin moleküler dinamik simülasyonları. (A) Simülasyon sırasında komplekslerin kare ortalama sapması. (B) Zamanla değişen jirasyon yarıçapı. (C) Simülasyon sırasında çözücüye açık yüzey alanı. (D) Kateşin ile hedef proteinler arasındaki hidrojen bağı sayılarının zamanla değişimi. (E) Her bir kompleksteki protein kalıntılarının kare ortalama dalgalanması. Kısaltmalar: RMSD = kare ortalama sapma; Rg = jirasyon yarıçapı; SASA = çözücüye açık yüzey alanı; RMSF = kare ortalama dalgalanma. Bu şeklin daha büyük bir versiyonunu görüntülemek için lütfen buraya tıklayın.
Ek Tablo S1. Pediyatrik pnömoni ile sağlıklı kontrol örnekleri arasında yukarı regüle olmuş farklı eksprese edilen genler; gen sembolleri, log2 kat değişimleri, P-değerleri, düzeltilmiş P-değerleri ve ilgili limma istatistikleri dahil. Bu dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.
Ek Tablo S2. Ağ analizi için kullanılan, bileşik tanımlayıcılarını, bileşik isimlerini ve ilişkili hedef genleri içeren Paeonia bileşik-hedef etkileşim tablosu. Lütfen bu dosyayı indirmek için buraya tıklayın.
Ek Tablo S3. GSE295484'ten alınan; P-değerlerini, ortalama log2 kat değişimlerini, ekspresyon yüzdelerini, düzeltilmiş P-değerlerini, hücre kümesi anotasyonlarını ve gen sembollerini içeren tek hücreli marker gen tablosu. Bu dosyayı indirmek için lütfen buraya tıklayın.