$$\rightleftharpoonup{xx}$$
$$\longleftharp{xx}$$,
$$\longrightharp{xx}$$,
IGT'nin hayvanları ve modelleri
Tüm hayvan prosedürleri Güneydoğu Üniversitesi Suzhou Araştırma Enstitüsü'nün Hayvan Etik Komitesi tarafından onaylandı (onay no. SEU-IACUC-20250318007) ve laboratuvar hayvanlarının bakımı ve kullanımı için kurumsal yönergelere uygun olarak gerçekleştirildi. Fareler alındı ve 25 °C sıcaklıkta, 12 saat ışık/12 saat karanlık döngüyle belirli patojensiz (SPF) koşullarda tutuldu. Anestezi gerektiren işlemlerde, fareler indüksiyon odasından oksijenle iletilen izofluran ile anestezi edildi ve burun konusuyla tutuldu. İndüksiyon için %3, bakım için %1 oranında izofluran kullanıldı; konsantrasyon solunum hızı ve prosedürel yanıta göre ayarlandı.
İğneleme veya enjeksiyondan önce doğru refleksin kaybı ve parmak sıkışmasına yanıt olmaması nedeniyle yeterli anestezik derinliği doğrulandı. Anestezi sırasında solunum düzeni, vücut pozisyonu ve iyileşme izlendi ve hayvanlar vücut sıcaklığını korumak için ısınma pedine yerleştirildi. Hayvanlar, her kafeste 2 kişi barındırıldı ve glukoz testi için oruç gerektirmedikçe yiyecek ve suya ücretsiz erişim sağlandı. Gelişten sonra, sıçanlar model indüksiyonundan önce 1 hafta boyunca alıştırıldı. Hayvan refahı günlük olarak izlendi; genel aktivite, bakım, gıda alımı, vücut ağırlığı, enjeksiyon bölgesi durumu ve anestezi sonrası iyileşme dahil. Çalışmanın sonunda, fareler onaylanmış hayvan protokolüne göre ötenazi edildi. Ötenazi, kademeli doldurma CO₂ solumasıyla gerçekleştirildi ve ardından servikal dislokasyon yöntemiyle ölüm doğrulandı. Şiddetli kilo kaybı, kalıcı hareketsizlik, anormal solunum, yeme veya içme yiyememesi veya şiddetli sıkıntı gibi insancıl son nokta kriterlerini karşılayan hayvanlar, planlanan son noktaya kadar devam etmek yerine hemen ötenazi edildi. Bu çalışmada 200 ± 20 g ağırlığında spesifik patojensiz erkek Sprague–Dawley fareleri kullanıldı. 1 haftalık aklimatizasyonun ardından sıçanlar rastgele iki gruba ayrıldı: normal gruptaki üç fare normal chow ile beslenirken, model grubundaki 20 fare 3 hafta boyunca yüksek yağlı chow (%50 bazal chow + %10 domuz eti + %25 sukroz + %15 sarı tozu) ile beslendi. Model gruptaki hayvanlara, 12 saat boyunca su kısıtlaması olmadan 12 saat boyunca %20 mg/kg STZ solüsyesi (0.1 mol/L, pH 4.4 sitrat tamponunda çözünürülmüş) intraperitoneal enjeksiyon yapıldı. Normal gruptakiler, normal yemek yedikten sonra karşılık gelen sitrat tampon çözeltisi dozunun intraperitoneal enjeksiyonu aldılar. 1 hafta sonra intraperitoneal glukoz tolerans testi (IPGTT) yapıldı. Bu çalışmada kullanılan reaktifler ve ekipmanlar Malzeme Tablosu'nda listelenmiştir.
Açlık kan şekeri (FPG), her gruptaki farelerin kuyruk ucundan su kısıtlaması olmadan 12 saat süren oruçtan sonra alınan kan alımıyla ölçüldü ve 2 saat sonrasında %20 dekstroz 2 g/kg intraperitoneal enjeksiyonun ardından 2 saat sonrasında kan şekeri (2hPG) kaydedildi. Normal grupta FPG aralığı 5.1–6.6 mmol/L, 2hPG glikoz aralığı ise 7.3–9.4 mmol/L idi; model grubunda FPG ≤7.0 mmol/L ve 2hPG aralığı 10–16 mmol/L idi. IGT model indüksiyonuna atanan 20 sıçandan, 18'i IPGTT sonrası önceden tanımlanmış IGT kriterlerini karşıladı ve sonraki müdahale deneyine dahil edildi. İki sıçan, FPG veya 2hPG değerleri önceden tanımlanmış IGT aralığının dışında olduğu için dışlandı. Daha sonra uygun 18 fare rastgele olarak yüksek yağlı ve normal diyetli gruplara ayrıldı; her grupta 9 fare bulunuyordu. Her diyet grubu ayrıca üç alt gruba ayrıldı: akupunktur noktası burulması, akupunktur olmayan bölge bükülmesi ve akupunktur noktası doğrudan yerleştirme; alt grupta üç fare bulunuyor. Bu, akupunktur müdahalesinin SERS tabanlı orantimetrik takip ile birleştirilmesinin uygulanabilirliğini değerlendirmek için tasarlanmış keşif yöntemi geliştirme çalışmasıydı; preklinik bir IGT sıçan modelinde. Resmi istatistiksel güç hesaplaması yapılmadı. Üç sıçanlık alt grup büyüklüğü, fizibilite, ön SERS-mikroiğne çalışmaları ve hayvan indirgemi prensibi temelinde seçildi. Deneyci tarafından fareler rastgele olarak atandı; Resmi tahsis gizleme ve kör etme yapılmadı.
Akupunktur tedavi protokolleri, geleneksel Çin tıbbı için kanıta dayalı klinik uygulama kılavuzları ve hayvan deneylerinin uygulanabilirliği referansındaincelendi 22. Seçilen akupunktur noktaları Zhongwan (RN12/CV12), Shuifen (RN9/CV9), Yinjiao (RN7/CV7), çift taraflı Tianshu (ST25), çift taraflı Shuidao (ST28) ve çift taraflı Zusanli (ST36) idi. RN12, RN9 ve RN7 ön orta hatta yer aldı ve tek orta hat noktaları olarak muamele edildi; ST25, ST28 ve ST36 ise iki taraflı olarak tedavi edildi. Akupunktur nokta eşleşmeleri, IGT23'ün klinik tedavisinde kullanılan eşleşmelere dayanmaktadır. Uyarlama,24,25 literatürüne dayanarak, ikili yöntemle yapılmıştır. Fareler için akupunktur noktaları anatomik işaretlere ve standart insan akupunktur noktalarından orantılı dönüşüme göre lokalize edilmiştir. Karın RN/CV noktaları, anatomik işaretler olarak xiphoid süreci, umbilikus ve pubik simfiz kullanılarak ön orta çizgi boyunca tanımlandı. ST25 göbek seviyesinde iki taraflı olarak işaretlenmiş, ST28 ise alt karın bölgesinde ön orta çizgiden aynı lateral mesafede iki taraflı olarak işaretlenmiştir. ST36, tibial tüberkülün lateral bölgesindeki tibialis anterior bölgedeki anterolateral arka uzuvda tespit edilmiştir. Bitişik akupunktur olmayan karşılaştırma noktaları, ilgili akupunktur noktalarına 5 mm yan tarafta ve tanınan meridyen çizgisinin dışında işaretlenmiş, görünür damarlar, yaralar ve önceki delme noktalarından kaçınılmıştır. İğneleme öncesi, sıçanlar onaylanmış hayvan protokolüne göre izofluran ile anestezi edilip, ısıtıcı pedde sırtüstü pozisyonda konurdu. Her hedef bölgedeki karın ve arka uzuv derisi tıraş edilip %75 etanol ile dezenfekte edildi. SERS-aktif mikro iğneler, cilde yaklaşık dik olarak yaklaşık 10 mm derinliğe yerleştirildi. Akupunktur noktalı burma grupları için, SERS-aktif mikroiğneler seçilen aküpunktur noktalarına yerleştirildi ve 20 dakikalık tutma süresi boyunca nazikçe çift yönlü olarak döndürüldü. Akupunktur bölgesi olmayan gruplar için aynı işlem, 5 mm bitişik akupunktur olmayan karşılaştırma noktalarında da uygulandı. Doğrudan yerleştirme grupları için, SERS-aktif mikro iğneler akümut noktalarına yerleştirildi ve bükülmeden 20 dakika boyunca tutuldu. Tüm iğneleme prosedürleri, operatörler arası değişimi en aza indirmek için aynı eğitimli operatör tarafından gerçekleştirildi.
İğneleme işlemi günde iki kez, saat 10:00 ve 15:00'te, 7 gün ardışık olarak gerçekleştirildi. Her günün prosedüründen önce, 8 saat oruç tutunmanın ardından su kısıtlaması olmadan FPG ölçüldü. Her günün iğneleme işleminden sonra, OC ve RP yanıtları kaydedildi. 7. gün, akupunktur tedavisinden sonra IPGTT yapıldı ve 2hPG değerleri kaydedildi.
Uyarılar
Streptozotosin tehlikelidir ve toksik bir kimyasal olarak ele alınmalıdır. Streptozotosin çözeltisini kimyasal bir buhar davlumbazında veya sertifikalı bir biyogüvenlik dolabında hazırlayın; bir laboratuvar önlüğü, nitril eldivenler, koruyucu gözlük ve maske takın. Streptozotosin ile kontamine olan şırıngalar, iğneler, mendiller, yatak takımları, kafesler ve hayvansal atıklar, kurumsal tehlikeli biyolojik ve kimyasal atık prosedürlerine uygun şekilde ele alınmalıdır. Kullanılmış iğne ve şırıngalar, kapağı yenilemeden hemen delinmeye dayanıklı keskin kaplara atılmalıdır.
OC ve RP tespiti için SERS-aktif mikroiğnelerin üretimi
Akupunktur iğneleri daha önce bildirildiği gibihazırlandı 26. SERS-aktif mikroiğneler, çalışma boyunca aynı tür ticari paslanmaz çelik akupunktur iğneleri (0,25 mm × 26 mm) kullanılarak üretildi. İğneler deriye yaklaşık dik olarak 10 mm derinliğe yerleştirildi. Dönme grupları için, aynı eğitimli operatör tarafından tutma süresi boyunca 20 dakika boyunca nazikçe ve tutarlı şekilde manuel çift yönlü dönüş uygulandı. Manipülasyon enstrüman kontrolü altında değildi; bu nedenle, tam dönme frekansı ve genlik nicelendirilmedi. Bu sınırlama Tartışmada kabul edilmiştir.
Başlangıçta, iğneler MMA'da %20 (w/v) PMMA çözeltisinde bekletildi, ardından oda sıcaklığında (25 °C) 1 gün boyunca kurutuldu. Sonra, PMMA koruyucu katmanında (5 mm aralıkta) eşit boyutta ve benzer şekil ve derinlikte iki paralel girinti etanolle temizlenmiş küçük bir bıçağı kullanılarak yapıldı; ardından iğneler 0,5 M sülfürik asitin içine batırıldı ve 10 saniye elektrokimyasal aşındırma işlemi için 12 V voltajda elektrokimyasal aşındırma yapıldı, böylece skor noktalarında neredeyse dairesel iki oluk oluştu. Üçüncü olarak, üç kez durulama yapıldıktan sonra, iğneler oda sıcaklığında 24 saat boyunca 0,1 mol L−1 MPTES ve 0,3 mol L−1 APTES içeren etanol çözeltisine daldırıldı; böylece oluklu yüzeylere sülfüdril işlevselliği kazandırdı. Dördüncüsü, iğne MMA'ya batırarak kaplama soyuldu. Redoks-potansiyele duyarlı SERS-aktif mikroiğneler, daha önce bildirilen bir yöntem27 temelinde hazırlanmıştır. SERS substratı, her akupunktur iğnesinin kazıma oluklarından birine adsorbe edildi; ardından ortaya çıkan SERS-aktif mikroiğneler, 37 °C'de 60 dakika boyunca 1 × 10-4 mol/L konsantrasyonda sulu p-PDA çözeltisine batırıldı ve oksidasyona duyarlı SERS-aktif mikroiğneler elde edildi. Altın nanokabuklara dayalı SERS substratları daha önce tarif edildiğigibi sentezlenmiştir 28. Mevcut çalışmada, bu mikro iğneler her akupunktur iğnesinin diğer yivine damlatılmış ve doğal olarak kurumasına izin verilmiştir. Bu, OC ve RP yanıtına sahip SERS-aktif mikroiğneler ortaya çıkardı.
SERS-aktif mikroiğnelere karşı OC ve RP yanıtının ex vivo değerlendirmesi
OC ve RP problarının yanıtları, SERS-aktif mikroiğnelerin ex vivo dokuya yerleştirilmesiyle değerlendirildi. OC probun oksidatif değişikliklere tepkisini doğrulamak için, oksidasyondan önce ve sonra p-PDA'nın SERS spektrumları kaydedildi. Redoks SERS problarının spektrumları ayrıca güçlü indirgeme NaBH4 çözeltisi ve güçlü oksitleyici HAuCl4 çözeltisi içinde de alındı. OC probunun seçiciliği, 1 × 10-4 M FeSO4, 1 × 10-4 M Na2SO 4 ve 1 × 10-4 M askorbik asit ve oksitleyici ajanlar kullanılarak değerlendirildi; bunlar arasında 1 × 10-4 M CuSO4, 1 × 10-4 M H2O2, 1 × 10-4 M FeCl3 yer alıyor, ve 1 × 10-4 M HAuCl4. Tüm çözeltiler 20 mM PBS (pH 7.4) içinde hazırlandı ve problar her çözeltiyle 37 °C'de 20 dakika kuluçka edildi. SERS-aktif mikroiğnelerin sağlamlığı, oda sıcaklığında 1 × 10-4 mol/L FeCl3 ile reaksiyon öncesi ve sonrası OC yanıtları kaydedilerek değerlendirildi. Bu ex vivo ve çözelti tabanlı testler, kontrollü koşullarda prob yanıt vermesini doğrulamak için kullanıldı. Ancak, lokal pH varyasyonu, protein adsorpsiyonu, hücre dışı matriks bileşenleri ve diğer biyolojik maddelerin SERS sinyallerini etkileyebildiği in vivo doku mikro ortamının karmaşıklığını tam olarak yeniden üretemezler. Bu nedenle, in vivo OC ve RP okumaları, matrissiz biyokimyasal ölçümler olarak değil, redoksla ilişkili SERS indeksleri olarak yorumlandı.
Akupunktur ve akupunktur dışı bölgelerde OC ve RP tespiti
OC ve RP problarının akupunktur noktalarında ve akupunktur dışı noktalarda performansını değerlendirmek için, SERS-aktif mikroiğneler sağlıklı sıçanlara ST36 ve RN12 akupunktur noktalarında ve bu noktaların her birine 5 mm bitişik, yaklaşık 10 mm derinlikte aynı süre boyunca yerleştirildi.
İğne burulmasının OC ve RP algılama üzerindeki etkileri
OC ve RP problarının farklı iğneleme teknikleri altında yanıt vermesini değerlendirmek için, SERS-aktif mikroiğneler ST36 ve RN12 akupunktur noktalarına ve bu noktalara 5 mm bitişikte sağlıklı sıçanlarda yaklaşık 10 mm derinliğe yerleştirildi. Her akupunktur noktasında bir iğne bükülür, iken noktaya bitişik iğne bükülür ve tam tersi (akupunktur noktasına bitişik iğne bükülür, akupunktur noktasındaki iğne ise bükülür). Problardan gelen SERS sinyalleri her iğne için aynı yerleştirme zamanında toplandı.
IGT'li sıçanlarda akupunktur noktaları, iğne burulması ve beslenme koşulları açısından OC ve RP değişiklikleri
Akupunktur noktaları, iğne burulması ve diyet koşullarının IGT'li sıçanların OC ve RP üzerindeki etkilerini değerlendirmek için, yüksek yağlı diyet grubundaki fareler rastgele üç gruba (A1, A2 ve A3; her grupta üç fare) ayrıldı; normal diyet grubundakiler ise (B1, B2 ve B3 grupları; her grupta üç fare). A1 ve B1 gruplarındaki fareler için, sedasyon sonrası akupunktur noktalarına SERS-aktif mikroiğneler yerleştirildi ve 20 dakika boyunca büküldü; aynı prosedür A2 ve B2 gruplarındaki fareler için de uygulandı, ancak mikroiğneler akupunktur noktalarının yanına 5 mm yerleştirildi. A3 ve B3 içindeki sıçanlarda SERS-aktif mikroiğneler burulmadan sıçan akupunktur noktalarına yerleştirildi; İğneler 20 dakika yerinde bırakıldı. İğneleme işlemi günde iki kez, saat 10:00 ve 15:00'te, 7 gün boyunca gerçekleştirildi. Her günün prosedürlerinden önce, her fare grubunun FPG değerlerini (oruçtan sonra 8 saat su kısıtlaması olmadan) bir glukoz ölçer olarak kaydedildi. Her günün iğnelemesinden sonra, OC ve RP yanıtları ölçülüp kaydedildi. 7. gün, akupunkturdan sonra, her fare grubuna IPGTT uygulandı ve 2hPG değerleri kaydedildi.
Karakterizasyon ve ölçüm
SERS-aktif mikroiğnelerin morfolojisi, taramalı elektron mikroskopisi (SEM) ile incelendi. SERS spektrumları, 50× uzun çalışma mesafesi hedefi (NA: 0.5) ve 785 nm lazer ile yapılandırılmış bir Raman spektrometresi kullanılarak 25 °C'de alındı. Tüm ölçümlerde alım süresi 10 saniyeydi ve Raman sistemi aynı optik konfigürasyonda nominal lazer gücü 600 μW olarak çalıştırıldı. Bu çalışmada doku yüzeyine verilen gerçek lazer gücü doğrudan ölçülmemiştir. Bu nedenle, aynı alım ortamlarında gruplar arasında göreceli karşılaştırmalar için SERS spektrumları kullanıldı ve mutlak doku fototermal güvenliği konusunda hiçbir sonuç çıkarılmadı. İki SERS probun yoğunluk oranları aşağıdaki yaklaşımla hesaplandı: 1450 cm−1'deki yoğunluk değerlerinin 1500 cm−1'deki oranı, 1700 cm−1'deki yoğunluk her iki zirveden çıkarıldıktan sonra (I1450 cm−1/I 1500 cm−1) OC göstergesi olarak belirlenmiştir. önceki raporlarda olduğu gibi sırasıyla 17; ve I1606 cm−1/I1666 cm−1 RP göstergesi olarak kullanılarak, 1700 cm−1'deki yoğunluk (arka plan olarak) sırasıyla iki zirveden her birinden çıkarıldı. Hesaplanan I1450 cm−1/I 1500 cm−1 ve I1606 cm−1/I1666 cm−1 değerleri, sırasıyla OC- ve RP ile ilişkili yanıtların göreceli SERS teşrekili indeksleri olarak analiz edilmiştir. Bu oranlar, aynı satın alma ayarlarında gruplar ve zaman noktaları arasındaki değişiklikleri karşılaştırmak için kullanıldı.
Bu çalışmada bu oranları mutlak oksidatif türlerin konsantrasyonlarına veya mutlak elektrokimyasal redoks-potansiyel değerlerine dönüştürmek için harici bir kalibrasyon eğrisi oluşturulmamıştır. Her spektrum, SERS probunda beş farklı noktada üç kopya örnekte iki kez kaydedildi. Origin verileri işlemek ve grafikler oluşturmak için kullanıldı. Satın alma ile ilgili değişkenliği en aza indirmek için tüm gruplara aynı lazer dalga boyu, hedef, alım süresi, lazer gücü ayarı ve spektral işleme iş akışı uygulandı. Lazer ışınının neden olduğu potansiyel fototermal veya fotokimyasal etkiler bağımsız olarak nicelendirilmemiş ve bir sınırlama olarak kabul edilmiştir. İstatistiksel veriler, ortalama ± ortalama standart hata (SEM) olarak sunulur. Her deney veya şekil paneli için kullanılan örneklem boyutu ve istatistiksel test, ilgili şekil efsanelerinde belirtilmiştir. Ex vivo prob doğrulama deneylerinde, analiz birimi olarak SERS probu veya bağımsız hazırlanmış mikroiğne kullanılmıştır. In vivo kan glikozu ve SERS-indeks analizleri için sıçan biyolojik analiz birimi olarak kullanıldı. Aynı probda birden fazla noktadan toplanan spektrumlar teknik ölçüm olarak ele alındı ve grup düzeyinde analizden önce ortalamaları alındı. İstatistiksel analizler SPSS yazılımı kullanılarak gerçekleştirildi. Gruplar arasındaki karşılaştırmalar, ilgili şekil efsanelerinde belirtilen istatistiksel testler kullanılarak yapıldı. 7 günlük müdahale döneminde seri açlık kan şekeri ve SERS-indeks ölçümleri, küçük alt grup büyüklüğü nedeniyle keşif amaçlı boylamasına eğilimler olarak yorumlandı ve resmi tekrarlanan ölçüm veya karışık etki modeli uygulanmadı. İstatistiksel anlamlılık p < 0.05 olarak tanımlandı. *p < 0.05, **p < 0.01, ***p < 0.001, ****p < 0.0001.