Bu içeriği görüntülemek için JoVE aboneliğiniz gereklidir. Giriş yapın veya ücretsiz denemenizi bugün başlatın.

Yöntem makalesi

Farelerde Kılavuz Tel ile İndüklenen Aort Kapak Stenozu Modeli için Optimize Edilmiş Bir Protokol

225 görüntülenme

⸱

DOI:

10.3791/72218

⸱

21 Ağustos 2026

 ,  ,  ,  ,  ,  , 
1Laboratory of Cardiac Structure and Function, Institute of Cardiovascular Diseases, West China Hospital, Sichuan University, 2Department of Cardiology, West China Hospital, Sichuan University, 3Cardiac Structure and Function Research Key Laboratory of Sichuan Province, West China Hospital, Sichuan University

* These authors contributed equally

Bu makalede

Özet

Bu protokol, C57BL/6 farelerde optimize edilmiş bir kılavuz telle indüklenen aort kapak stenozu modelini detaylandırmaktadır. Özel olarak 3D yazıcıyla üretilmiş bir vasküler destek platformu, hassas kanama kontrolü sağlayarak 24 saatlik sağkalım oranını %95 (19/20) ve 4. haftadaki genel model başarısını %90 (18/20) seviyesine çıkarmaktadır.

Özet

Aort kapak stenozu (AKS), yaşlanan popülasyonlarda prevalansı artan önemli bir kardiyovasküler hastalıktır; ancak hastalıklı kapak dokusunun kıtlığı, mekanistik çalışmaları ve terapötik geliştirmeleri ciddi şekilde sınırlandırmaktadır. Bu protokol, kontrollü kanama yönetimi aracılığıyla Honda kılavuz teli ile indüklenen kapak yaralanması yöntemini geliştirerek, AKS'nin tekrarlanabilir bir fare modelini oluşturmakta ve optimize etmektedir. Erkek ve dişi C57BL/6 farelere kılavuz teli ile indüklenen aort kapak yaralanması uygulanır; prosedür, kılavuz telinin yerleştirilmesi ve geri çekilmesi sırasında hassas kanama kontrolü sağlayan özel bir 3B yazıcıyla üretilmiş vasküler destek platformu ile iyileştirilmiştir. Sonuç ölçütleri arasında 24 saatlik sağkalım, 4. haftadaki ekokardiyografik değerlendirme ve histopatolojik doğrulama yer almaktadır. Optimize edilen protokol %95 oranında 24 saatlik sağkalım oranı sağlamıştır (20 hayvanın 19'u); sağ kalanlar arasında %94,7'si (19 hayvanın 18'i) 4. haftada önceden tanımlanmış hemodinamik başarı kriterini karşılamış ve ekokardiyografi ile histolojik analizle onaylanmış toplam %90'lık bir model başarı oranı (20 hayvanın 18'i) elde edilmiştir. Bu standartlaştırılmış model, kapak dejenerasyonu mekanizmalarını araştırmak ve aday terapötik müdahaleleri değerlendirmek için güvenilir ve tekrarlanabilir bir platform sunmaktadır.

Giriş

Kapak hastalıkları, nüfusun yaşlanmasıyla paralel olarak artan yaygınlığıyla birlikte hem gelişmiş hem de gelişmekte olan ülkelerde önemli bir sağlık yükü olmaya devam etmektedir1. Transkateter aort kapak implantasyonu (TAVI), ciddi aort stenozu tedavisini dönüştürmüş olsa da2,3, kapak dejenerasyonunu tetikleyen hücresel ve moleküler mekanizmalar hâlâ tam olarak anlaşılamamıştır ve hastalık ilerlemesini yavaşlatacak veya geri çevirecek onaylanmış bir farmakolojik tedavi bulunmamaktadır4,5. Kapak hastalığı araştırmalarındaki temel bir engel, inceleme yapılabilecek hastalıklı dokunun sınırlı mevcudiyetidir6,7. İnsan aort kapağı örneklerini yeterli miktarda elde etmek zordur ve patolojik kapak değişikliklerini güvenilir şekilde yeniden oluşturan hayvan modelleri de aynı derecede nadirdir8. Bu boşluk, aort kapak stenozunun (AVS) hemodinamik ve histolojik özelliklerini yeniden üreten hayvan modelleri geliştirme yönündeki sürekli çabaları tetiklemiştir.

ApoE⁻/⁻ farelerde uzun süreli yüksek yağlı besleme gibi geleneksel diyet yaklaşımları 20–24 hafta gerektirmekte ve yalnızca az sayıda hayvanın kesin bir stenotik fenotip geliştirmesi nedeniyle düşük başarı oranları sunmaktadır9,10,11,12. Honda ve arkadaşları tarafından tanımlanan kılavuz tel kaynaklı kapak hasarı modeli, karotis arter erişimi yoluyla kapak yaprakçıklarını mekanik olarak yaralayarak bu eksikliklerin çoğunu gidermiştir13. Orijinal teknik; karotis arter dissectionu, aort kapağına doğru retrograd kılavuz tel geçişi, tekrarlanan yaprakçık çizme ve tel rotasyonunu içererek günler içinde hızlı hemodinamik değişiklikler ve 4. haftaya kadar stabil bir stenotik fenotip oluşturur13,14,15,16. Göreceli hızı ve doğrudanlığı nedeniyle Honda yöntemi, güncel kapak araştırmalarında yaygın olarak benimsenmiştir. Ancak, hala birkaç önemli boşluk bulunmaktadır. İşlemle ilgili tüm ayrıntılar literatürde tam olarak belgelenmemiştir, laboratuvarlar arası standardizasyon eksiktir ve bu modelde perioperatif morbiditenin temel belirleyicisi olan kanama kontrolünün rolü hiçbir zaman sistematik olarak ele alınmamıştır. Bu tutarsızlıklar tekrarlanabilirliği azaltmakta ve klinik çevrilebilirliği sınırlamaktadır.

Kanamayı kontrol altına almanın sistematik optimizasyonunun, perioperatif sağkalımı ve model güvenilirliğini anlamlı düzeyde artırabileceği hipotez edilmiştir. Bu protokol, özel olarak tasarlanmış 3D yazıcı ile üretilmiş bir vasküler destek platformu tanıtarak Honda yöntemini geliştiren, rafine edilmiş ve standardize edilmiş bir yaklaşım sunmaktadır. Cihaz, karotis arterine ayarlanabilir boylamsal gerginlik uygulanmasına olanak tanıyarak, damarı ezmeden kılavuz tel yerleştirme ve geri çekme sırasında tam ve geçici hemostaz sağlar. Bu yaklaşımla, optimize edilen protokol ile %95 oranında 24 saatlik sağkalım oranı (20 hayvanın 19'u) elde edilmiştir; sağ kalanlar arasında %94,7'si (19 hayvanın 18'i) 4. haftada önceden tanımlanmış hemodinamik başarı kriterini karşılamakta ve böylece %90'lık (20 hayvanın 18'i) bir genel model başarı oranı sağlanmaktadır. Laboratuvarlar arası tekrarlanabilirliği kolaylaştırmak için adım adım prosedür dokümantasyonu sağlanmıştır.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Protokol

NOT: Bu protokolde açıklanan tüm hayvan prosedürleri, Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzu'na uygun olarak gerçekleştirilmiş ve West China Hastanesi'nin Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi (IACUC) tarafından onaylanmıştır (Protokol No. 20240311055). Çalışma boyunca erkek C57BL/6 fareler (8–10 haftalık; yaklaşık 22–25 g) ve dişi C57BL/6 fareler (8–10 haftalık; yaklaşık 18–20 g) kullanılmıştır. Özel olarak 3D yazıcıyla üretilen vasküler destek platformu da dahil olmak üzere, bu protokolde kullanılan tüm malzemeler, reaktifler, enstrümanlar, yazılımlar ve özel cihazlar Malzemeler Tablosunda listelenmiştir.

1. Ameliyat öncesi hazırlık ve cerrahi insizyon

  1. Fareyi, %100 oksijen içinde buharlaştırılmış izofluran (%3 indüksiyon için, %1,5–2 idame için) kullanarak anesteziye alın. Pedal çekilme reflekslerinin (ayak parmağı sıkıştırma) yokluğunu doğrulayarak anestezi derinliğinin yeterli olduğundan emin olun.
    UYARI: İzofluran uçucu bir anesteziktir. Aktif tahliye sistemi ile veya iyi havalandırılan bir alanda kullanın, uygun kişisel koruyucu donanım giyin ve kurumsal güvenlik prosedürlerini takip edin.
  2. Her iki göze oftalmik pomad uygulayın. Fareyi, 37 °C'de tutulan sıcaklık kontrollü bir cerrahi platforma sırtüstü pozisyonda yerleştirin.
  3. Kimyasal tüy dökücü krem ile anterior servikal bölgedeki tüyleri temizleyerek cerrahi alanı hazırlayın.
  4. Cildi, povidon-iyodür (veya klorheksidin) ve %70 alkol (veya sıcak steril salin) ile sırayla üç kez temizleyin ve işlemi antiseptik ile bitirin.
  5. Preemptif lokal analjezi sağlamak amacıyla, planlanan insizyon hattı boyunca subkütan olarak %0.5 lidokain infiltre edin.
  6. Ardından, mikro makas kullanarak ön boyun bölgesinde, trakeal orta hattın hafifçe sağında konumlandırılmış longitudinal bir orta hat cilt insizyonu (yaklaşık 1,0–1,5 cm) yapın.
    UYARI: Mikro makaslar, iğneler, kılavuz teller ve diğer kesici/delici aletler yaralanmaya neden olabilir. Bunları dikkatli kullanın ve kullanılmış kesici/delici aletleri onaylı tıbbi atık kutularına atın.

2. Damar izolasyonu ve sütür yerleştirme

  1. Cerrahi bir stereomikroskop altında, üzerindeki fasya ve kas tabakaları küt diseksiyonla açılarak sağ ortak karotis arteri (RCCA) ortaya çıkarın. Vagus sinirinin mekanik olarak irite edilmemesine dikkat ederek, RCCA'yı bitişikteki vagus sinirinden ve çevredeki bağ dokusundan dikkatle ayırın.
    NOT: Kurumayı önlemek için işlem boyunca tükürük bezlerini ve açığa çıkan dokuları sıcak steril salin ile nemli tutun.
  2. RCCA'nın distal ucunu, güvenli ve kaymayan bir düğümle bağlanan 6-0 ipek sütür ile kalıcı olarak ligasyon yapın.
  3. RCCA'nın proksimal segmentinin etrafına, kılavuz tel yerleştirme sırasında daha sonra kullanılmak üzere sıkılmamış gevşek bir 6-0 ipek sütür kaydırıcı düğüm yerleştirin.

3. Platform uygulaması ve arteriyotomi

NOT: Cerrahi işlemden önce, 3D yazıcıyla üretilen platformu etilen oksit (EtO) gazı kullanarak sterilize edin, ardından yeterince havalandırın ve tüm metal cerrahi aletleri otoklavlayarak sterilize edin.

DİKKAT: Etilen oksit toksik, yanıcı ve kansirojendir. EtO sterilizasyonunu yalnızca onaylanmış tesislerde uygulayın, yeterli havalandırma sağlayın ve kurumsal atık yönetimi prosedürlerini takip edin.

  1. 3B yazıcıyla üretilmiş vasküler destek platformunu, ters V şeklindeki apeksi doğrudan damarın altına gelecek şekilde, izole edilmiş RCCA segmentinin altına dikkatlice yerleştirin.
  2. Önceden yerleştirilmiş süturları kademeli olarak daha yüksek yan çentiklere geçirerek, RCCA üzerindeki boylamsal gerginliği artırmak için platformu yavaşça ayarlayın.
    NOT: Ters V şeklindeki apeks, damar duvarını ezmeden damarın eğimine uyum sağlaması için 120° açıyla tasarlanmıştır. Arteriyel pulsasyonun artık görsel olarak algılanamadığı tam noktada gerginliği artırmayı durdurun. Bu kritik görsel bitiş noktası, aşırı damar hasarı oluşmadan geçici hemostazı sağlar.
  3. Mikro makas kullanarak stabilize edilmiş RCCA segmenti üzerinde küçük bir transvers arteriyotomi (damar çevresinin yaklaşık yarısı kadar) yapın. Gerginlik doğru ayarlanmışsa, minimal düzeyde kanama olmalı veya hiç kanama olmamalıdır.

4. Kılavuz tel yerleştirme ve kapak hasarı

  1. Mikroskobik görüntüleme altında, kılavuz teli (0,014 inç / 0,36 mm çap) transvers arteriotomi üzerinden arter lümenine, aort köküne doğru retrograd yönde yerleştirin.
    NOT: Bu kalibre, yayınlanmış kılavuz tel yaralanma modelleri için standarttır ve fare RCCA lümen çapına (~0,4–0,5 mm) yakındır; bu da yaklaşık 0,7–0,9 oranında bir kılavuz tel-damar oranı sağlar.
    UYARI: Kılavuz tel damarları veya çevre dokuları delinebilir. Görüntüleme altında yavaşça ilerletin ve kullanılmış kılavuz telleri kesici/delici aletler veya kontamine cerrahi atıklar olarak bertaraf edin.
  2. Yerleştirme bölgesinde tam hemostaz sağlamak için önceden yerleştirilmiş proksimal kayıcı düğümü hem damarın hem de kılavuz telin etrafında sıkın. Kayıcı düğüm sabitlendiğinde, 3D yazıcıyla üretilmiş platformu damarın altından dikkatlice kaldırın.
    NOT: Yerleştirme sırasında beklenmedik kanama meydana gelirse veya kılavuz tel çapı aşırı sürtünme yaratırsa, hemostaza yardımcı olmak için platformu geçici olarak yeniden konumlandırın veya yerleştirmeyi tekrar denemeden önce damar lümeninin genişlemesine izin vermek için platform gerginliğini hafifçe azaltın.
  3. Kılavuz teli dikkatlice RCCA üzerinden retrograd yönde, aort arkını geçerek aort kapağına doğru ilerletin. Gerçek zamanlı ekokardiyografik rehberlik altında, kılavuz tel ucunun aort kapağını geçtiğini ve sol ventriküle girdiğini onaylayın.
  4. Hemostazı sürdürmek için proksimal kayıcı düğüm tamamen sıkılıyken, aort kapak boyunca 100 kez itme-çekme (ileri-geri) hareketi ve ardından kılavuz telin kapak yapraklarına karşı 100 kez rotasyonel hareketi uygulanarak mekanik kapak yaralanmasını gerçekleştirin.
    NOT: 100 itme-çekme ve 100 rotasyonel hareket, işlem süresi ile hemodinamik olarak anlamlı stenozun güvenilir şekilde indüklenmesi arasındaki dengeyi en iyi sağlayan sayılar olarak kurum içi kapsamlı optimizasyonlar aracılığıyla belirlenmiştir.

5. Kılavuz telin geri çekilmesi ve yaranın kapatılması

  1. Kapak yaralaması tamamlandığında, kılavuz teli damardan yavaşça geri çekin.
  2. Proksimal RCCA'yı bağlamak ve işlem sonrası kanamaları önlemek için proksimal kayıcı düğümü derhal kalıcı, kaymayan bir düğüme dönüştürün.
  3. Cilt insizyonunu kesikli 5-0 naylon sütürler veya cerrahi yara klipsleri ile kapatın.
  4. Ameliyat sonrası non-steroid anti-inflamatuar ilaçlar (NSAİİ) uygulamayın. İşlem aseptik koşullar altında gerçekleştirildiğinden, peroperatif antibiyotik uygulamayın.
  5. Hayvanı temiz ve ısıtılmış bir iyileşme kafesine transfer edin ve tam mobilite geri kazanılana kadar sürekli olarak izleyin.

6. Transvalvüler hemodinamiklerin ekokardiyografik değerlendirmesi

  1. Aort kapak stenozunun şiddetini değerlendirmek için cerrahiden 4 hafta sonra hayatta kalan tüm farelerde ekokardiyografik değerlendirmeler gerçekleştirin.
  2. Hayvanı %100 oksijen içinde %3 izofluran içeren bir indüksiyon haznesine yerleştirerek anesteziyi indükleyin. Ped reaksiyonlarının kaybını doğrulayarak anestezik derinliği teyit edin. Anterior göğüs duvarındaki kılları kimyasal tüy dökücü krem kullanarak temizleyin. Kornea kurumasını önlemek için her iki göze oftalmik pomad uygulayın.
  3. Anestezi altındaki fareyi sırtüstü pozisyonda sıcaklık ayarlı bir görüntüleme platformuna transfer edin.
  4. Sürekli kalp hızı izlemesi için patileri yüzey elektrokaridiyogram (EKG) elektrotlarına sabitleyin. 450–550 atım/dakika değerinde stabil bir fizyolojik kalp hızı sağlamak için izofluran konsantrasyonunu (tipik olarak %1,0–1,5) titre edin.
  5. Anterior göğüs duvarını temizleyin ve bol miktarda önceden ısıtılmış akustik kuplaj jeli uygulayın.
  6. B-mod görüntüleme alımı
    1. MX550D transdüserli (40 MHz) bir Vevo 3100 ultrason sistemi kullanarak, canlı iki boyutlu görüntülemeyi başlatmak için B-Mode kontrolüne basın.
    2. Sol ventrikül, aort kapak ve çıkan aortun parasternal uzun eksen görünümünü elde etmek için transdüseri sol parasternal pozisyona yerleştirin. Derinlik, genişlik ve 2D kazancı optimize edin.
  7. M-mod alımı ve sol ventrikül ölçümü
    1. Parasternal uzun eksen görünümünden M-Mode kontrolüne basın. Örnekleme hattını papiller kas seviyesinde sol ventrikül boyunca konumlandırın.
    2. Alımı başlatmak için Start düğmesine basın. En az üç kalp döngüsünü kapsayan stabil bir iz elde edildiğinde Save düğmesine basın.
    3. Vevo LAB'da, end-diyastol ve end-sistoldeki endokardiyumu izlemek için LV Trace aracını kullanın; sol ventrikül internal boyutlarını, anterior ve posterior duvar kalınlıklarını (LVAWd, LVPWd) ve sol ventrikül kütlesini kaydedin.
  8. Özel bir aort arkı görünümü elde etmek için transdüserin konumunu ve açısını yeniden ayarlayın.
    ​NOT: Bu spesifik aort arkı görünümünün elde edilmesi, ultrason ışınının aort kapaktaki kan akış yönüyle optimal şekilde hizalanmasını sağladığından, doğru transvalvüler hız ölçümleri için gereklidir.
  9. Renkli Doppler değerlendirmesi
    1. Aort arkı görünümünden Color kontrolüne basın. Renk kutusunu aort kapak ve proksimal çıkan aort üzerine yerleştirin.
    2. Sistolik jetin aliasing olmadan net bir şekilde görünmesi için renk ölçeğini ve kazancı ayarlayın. Start, ardından Save düğmesine basın.
  10. Atımlı dalga Doppler hız ölçümü
    1. PW Doppler kontrolüne basın. Örnek hacim kapısını jetin en dar noktasına (vena contracta) yerleştirin ve açı düzeltmesi uygulayın (<60°).
    2. Spektral izi başlatmak için Start düğmesine basın; en az üç kalp döngüsü kaydedildiğinde Save düğmesine basın. Vevo LAB'da, en az üç döngünün ortalamasını alarak Peak Velocity aracıyla pik transvalvüler hızı ölçün.

7. Histolojik işlem ve aort kökü boyama

  1. Ekokardiyografik değerlendirmenin ardından, pedal geri çekilme refleksinin tamamen yok olduğunu doğrulayarak derin anesteziyi onaylayın. AVMA Hayvanların Ötanazisi Kılavuzları (2020 edisyonu) ve kurumsal olarak onaylanmış protokollere uygun olarak, ikincil ötanazi yöntemi olarak servikal dislokasyon gerçekleştirin.
    DİKKAT: Hayvan kadavraları, çıkarılan dokular ve kana kontamine olmuş materyaller biyolojik/hayvansal atıklardır. Bunları kurumsal biyogüvenlik ve hayvan tesisi düzenlemelerine göre bertaraf edin.
  2. Kalbi açığa çıkarmak için cerrahi mikro makas kullanarak torakotomi gerçekleştirin.
  3. Sol ventrikül apeksine bir perfüzyon iğnesi yerleştirin ve sistemik dolaşımı soğuk steril fosfat tamponlu salin (PBS) ile yıkayın. Başarılı perfüzyon, karaciğer ve akciğerlerin beyazlamasıyla anlaşılır.
  4. Sağlam kalbi çıkarın ve tam fiksasyonu sağlamak için oda sıcaklığında en az 24 saat boyunca %4 paraformaldehit (PFA) içinde bekletin.
    DİKKAT: Paraformaldehit toksik ve irite edicidir. %4 PFA'yı uygun KKD ile kimyasal çeker ocak içinde kullanın ve PFA atıklarını tehlikeli kimyasal atık olarak bertaraf edin.
  5. Fikse edilmiş dokuyu, kademeli etanol serisi aracılığıyla ardışık dehydrasyon, ardından ksilenle şeffaflaştırma ve 65 °C'de parafin mumu infiltrasyonu için otomatik bir doku işlemciye aktarın.
    DİKKAT: Ksilen yanıcı ve toksiktir; sıcak parafin yanıklara neden olabilir. Ksileni bir çeker ocakta veya onaylanmış bir işlemcide kullanın ve ksilen içeren atıkları tehlikeli kimyasal atık olarak bertaraf edin.
  6. İşlenmiş kalpleri parafin bloklara gömün.
    NOT: Gömme sırasında kalbin doğru yönlendirilmesi kritiktir. Kalbi, aort kökünden üç valf yaprağı seviyesinde transvers kesit alınmasına izin verecek şekilde konumlandırın.
  7. Rotary mikrotom kullanarak, üç yaprağın da kapsandığından emin olarak, aort kapak düzlemi boyunca 4–5 µm kalınlığında seri çapraz kesitler alın. Kesitleri cam lamlara monte edin ve oda sıcaklığında saklayın.
  8. Doku morfolojisini, yapısal yeniden şekillenmeyi ve kapak yaprağı kalınlığını değerlendirmek için seçili lamlarda Hematoksilin ve Eozin (H&E) boyaması yapın.
  9. Kapak yaprakları içinde koyu kahverengi-siyahtaki mineral çökelmeleri olarak tanımlanabilen distrofik kalsifikasyonu tespit etmek ve miktarlamak için komşu seri kesitlerde Von Kossa boyaması yapın.

8. Şam cerrahi prosedürü

NOT: Bu bölüm Sham kontrol prosedürünü tanımlamaktadır. Sham fareler; aynı anestezi, cilt hazırlığı, damar açığa çıkarma, arteriyotomi ve retrograd kılavuz tel yerleştirme işlemlerinden aortik tel yaralanması (AWI) grubuyla aynı şekilde geçerler; kılavuz tel supravalvüler seviyeye kadar ilerletilir ancak aort kapağından geçirilmez ve herhangi bir mekanik kapak yaralanması gerçekleştirilmez.

  1. Fareyi anesteze edin ve 1.1. ile 1.5. arasındaki adımlarda açıklandığı şekilde cerrahi alanı hazırlayın.
  2. Stereomikroskobik görüntüleme altında, 2.1. adımda açıklandığı gibi künt diseksiyonla RCCA'yı açığa çıkarın.
  3. RCCA'nın distal ucunu 6-0 ipek süturla kalıcı olarak bağlayın ve proksimal kısma gevşek bir kayıcı düğüm yerleştirin (2.2–2.3. adımlarda olduğu gibi).
  4. 3.1–4.2. adımlarda açıklandığı şekilde transvers arteriyotomi gerçekleştirin ve kılavuz teli yerleştirin.
  5. Ekokardiyografik rehberlik altında, kılavuz teli retrograd yönde asendan aortun supravalvüler seviyesine kadar ilerletin ve kılavuz tel ucunun aort kapağını GEÇMEDİĞİNİ doğrulayın.
    NOT: 4.4. adımda açıklanan itme-çekme veya rotasyonel kapak yaralama hareketlerini YAPMAYIN. Kılavuz teli geri çekin ve 5.1–5.2. adımlarda açıklandığı gibi proksimal RCCA'yı derhal bağlayın.
  6. Cilt insizyonunu kesikli 5-0 naylon süturlar veya yara klipsleri ile kapatın.
    NOT: AWI grubunda olduğu gibi, intraoperatif analjezi lokal lidokain infiltrasyonu ile sağlanır (adım 1.5). Hayvanı ısıtılmış bir iyileşme kafesine alın ve tamamen hareketli hale gelene kadar izleyin.
  7. Sham fareleri, AWI grubuyla aynı şekilde post-operatif izlemeye, 4. haftada ekokardiyografik değerlendirmeye ve histolojik işlemlere tabi tutun.

9. İstatistiksel analiz ve çalışma tasarımı

  1. Çalışma boyunca, 20 fare (10 erkek, 10 dişi) AWI prosedürüne, 6 C57BL/6 fare (3 erkek, 3 dişi) ise Sham prosedürüne tabi tutulmuştur.
  2. Hayatta kalan tüm hayvanlarda (19 AWI, 6 Sham) pik transvalvüler hızı (model başarısını tanımlayan kriter) ölçün.
  3. Önceden belirlenmiş, cinsiyet dengeli 6 AWI fareden oluşan bir alt grupta (3 erkek, 3 dişi) detaylı ekokardiyografik ve histolojik indeksleri analiz edin.
  4. Tüm ekokardiyografik ve histolojik ölçümlerin, grup atamalarına karşı körlemiş araştırmacılar tarafından gerçekleştirildiğinden emin olun.
  5. Parametrik testlerden önce verilerin normalliğini Shapiro-Wilk testi ile değerlendirin. İki bağımsız grubu (AWI ve Sham) eşleştirilmemiş iki kuyruklu Student's t-testi kullanarak karşılaştırın.
  6. Sağkalım verilerini Kaplan-Meier yöntemiyle analiz edin ve görüntüleyin.
  7. Tüm analizleri GraphPad Prism'de gerçekleştirin. Verileri ortalama ± SEM olarak sunun ve p < 0.05 değerini istatistiksel olarak anlamlı kabul edin.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Sonuçlar

Kanamayı kontrol etmek için 3B yazıcıyla üretilmiş bir platformun geliştirilmesi

Geleneksel kılavuz tel kaynaklı AVS modelinde morbidite ve mortalitenin temel kaynağı olan perioperatif kanamayı önlemek amacıyla, 3D yazıcıyla üretilmiş bir vasküler destek platformu tasarlanmıştır (Şekil 1). Platform, biyouyumlu (USP Sınıf VI / ISO 10993 uyumlu) bir fotopolimer reçineden stereolitografi (SLA) baskı ile 1,07 mm yapısal kalınlıkta üretilmiştir. Baskı ...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Tartışma

Bu protokol, aort darlığının stabil ve güvenli bir hayvan modelinin ayrıntılı bir açıklamasını sunmaktadır. Bu yaklaşımın bir özelliği, kılavuz telin ortak karotis arterine yerleştirilmesini kolaylaştıran yardımcı bir platformdur. Platform, biyouyumlu bir fotopolimer reçineden (yapısal kalınlık 1.07 mm) stereolitografi (SLA) baskı ile üretilmiştir ve 120° apeks açısına sahip ters V şeklinde bir apikal yüzey içerir; eksiksiz tasarım dosyası ek bir .stp dosyası olarak ücretsizce sunulmuştur. Bu cihaz, kılavuz telin sorunsu...

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Açıklamalar

Yazarlar, herhangi bir rakip finansal çıkar veya çıkar çatışması olmadığını beyan ederler.

Teşekkürler

Bu çalışma, Bulaşıcı Olmayan Kronik Hastalıklar-Ulusal Bilim ve Teknoloji Ana Projesi (2026ZD0554300); Çin Ulusal Doğa Bilimleri Vakfı (U23A20395, 82170375, 82500455); Sichuan Eyalet Doğa Bilimleri Vakfı (2026NSFSC0552); Merkezi Üniversiteler için Temel Araştırma Fonları; Çin, Xizang Özerk Bölgesi Bilim ve Teknoloji Projeleri (XZ202501ZY0120) ve Sichuan Üniversitesi, West China Hastanesi ‘1.3·5’ Projesi (ZYGD23021, 23HXFH009) tarafından desteklenmiştir. Yazarlar, küçük hayvan ultrasonografisi konusundaki yardımları için Qipu Feng'e (Sichuan Üniversitesi, West China Hastanesi, Hayvan Deney Merkezi) teşekkür ederler.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Malzemeler

Bu makalede kullanılan malzemelerin listesi
AdŞirketKatalog numarasıYorumlar
3B yazdırılmış vasküler destek platformuÖzel yapımN/AÖzel 3B yazdırılmış vasküler destek platformu; .stp formatında tamamlayıcı CAD dosyası sağlanmıştır.
%4 ParaformaldehitServicebioG1101-3MLDoku fiksasyonu
5-0 naylon sütürJinhuan MedicalF503Kesintili sütürlerle cilt kapatma
6-0 ipek sütürJinhuan MedicalRC411Distal RCCA'nın kalıcı ligasyonu ve proksimal kayıcı düğüm
Akustik kuplaj jeli (önceden ısıtılmış)KepplerKL-250Ekokardiyografi
Biyouyumlu fotopolimer reçineFormlabsRS-F2-BMCL-01Özel 3B yazdırılmış vasküler destek platformunu üretmek için kullanılan SLA baskı malzemesi.
C57BL/6 fareler (8–10 haftalık; erkekler 22–25 g, dişiler 18–20 g)GemPharmatechC57BL/6Süreç boyunca her iki cinsiyet kullanılmıştır; standart koşullar altında barındırılmıştır
Etilen oksit gazıKurumsal sterilizasyon tesisiN/AÖzel 3B yazdırılmış vasküler destek platformunun sterilizasyonu.
FreeCADFreeCAD Project Association1.1.1CAD görselleştirme ve .stp dosyasından 3B yapısal çizimin oluşturulması.
GraphPad PrismGraphPad Software9.0İstatistiksel analiz ve grafik çizimi
Kılavuz tel, 0,014 inç çapındaBoston ScientificH749393071900Mekanik aort kapak hasarı
Hematoksilen ve Eozin (H&E) boyama kitiBeyotimeC0105SYaprakçık morfolojisi ve kalınlığı
İzofluranRWD Life ScienceR510-22-2%3 indüksiyon; %100 O2 içinde %1,5–2 idame
LidokainShijiazhuang Pharmaceutical GroupH14024045İnsizyon bölgesine önleyici lokal infiltrasyon (%0,5, adım 1,5)
Mikrocerrahi makaslarRWD Life ScienceF11022-11Cilt insizyonu, arteriyotomi, torakotomi
MX550D transdüser (40 MHz)FUJIFILM VisualSonicsMX550DEkokardiyografi
Nair tüy dökücü kremNair255 gAnterior servikal ve göğüs duvarı depilasyonu için
Fosfat tamponlu salin (PBS)ServicebioG4202-100MLPerfüzyon
Rotary mikrotomLeica BiosystemsRM2125 RTS4–5 µm'de seri kesit alma
Stereomikroskop (cerrahi)OlympusSZX7Damar izolasyonu ve mikrocerrahi
Vevo 3100 yüksek çözünürlüklü ultrason sistemiFUJIFILM VisualSonicsVevo 3100Ekokardiyografi
Von Kossa boyama kitiServicebioG1043-20MLDistrofik kalsifikasyon tespiti
KsilenNanjing Chemical Reagent Co., Ltd.C0430530209Parafin işlemi sırasında doku şeffaflaştırma.

Kaynaklar

  1. Otto CM, Newby DE, Hillis GS. Calcific aortic stenosis: a review. JAMA. 2024;332(23):2014–2026.
  2. Vincent F, et al. Transcatheter aortic valve replacement in bicuspid aortic valve stenosis. Circulation. 2021;143(10):1043–1061.
  3. Kraler S, et al. Calcific aortic valve disease: from molecular and cellular mechanisms to medical therapy. Eur Heart J. 2021;43(7):683–697.
  4. Blaser MC, Bäck M, Lüscher TF, Aikawa E. Calcific aortic stenosis: omics-based target discovery and therapy development. Eur Heart J. 2025;46(7):620–634.
  5. Lindman BR, et al. Calcific aortic stenosis. Nat Rev Dis Primers. 2016;2(1):16006.
  6. Yu Chen H, et al. Dyslipidemia, inflammation, calcification, and adiposity in aortic stenosis: a genome-wide study. Eur Heart J. 2023;44(21):1927–1939.
  7. Peeters FECM, et al. Calcific aortic valve stenosis: hard disease in the heart: a biomolecular approach towards diagnosis and treatment. Eur Heart J. 2018;39(28):2618–2624.
  8. Cai D, Saint L, Markley J, Chen SY. Novel humanized aortic valve calcification model. Circ Res. 2025;136(12):1632–1635.
  9. Rattazzi M, et al. Calcification of advanced atherosclerotic lesions in the innominate arteries of ApoE-deficient mice: potential role of chondrocyte-like cells. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2005;25(7):1420–1425.
  10. Aikawa E, et al. Arterial and aortic valve calcification is abolished by elastolytic cathepsin S deficiency in chronic renal disease. Circulation. 2009;119(13):1785–1794.
  11. Hjortnaes J, et al. Arterial and aortic valve calcification inversely correlates with osteoporotic bone remodeling: a role for inflammation. Eur Heart J. 2010;31(16):1975–1984.
  12. Aikawa E, et al. Osteogenesis associates with inflammation in early-stage atherosclerosis evaluated by molecular imaging in vivo. Circulation. 2007;116(24):2841–2850.
  13. Honda S, et al. A novel mouse model of aortic valve stenosis induced by direct wire injury. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2014;34(2):270-278. doi:10.1161/ATVBAHA.113.302610.
  14. Zhu Z, et al. Models for calcific aortic valve disease in vivo and in vitro. Cell Regen. 2024;13:6.
  15. Zhong G, et al. Activation of Piezo1 promotes osteogenic differentiation of aortic valve interstitial cells through YAP-dependent glutaminolysis. Sci Adv. 2023;9(22):eadg0478.
  16. Li S, et al. Targeted inhibition of PTPN22 is a novel approach to alleviate osteogenic responses in aortic valve interstitial cells and aortic valve lesions in mice. BMC Med. 2023;21(1):252.
  17. Niepmann ST, et al. The graded murine wire-induced aortic valve stenosis model mimics the human functional and morphological disease phenotype. Clin Res Cardiol. 2019;108(8):847–856.
  18. Qian N, et al. A novel mouse model of calcific aortic valve stenosis. Anim Models Exp Med. 2024;7(4):523–532.
  19. Iqbal F, et al. Sortilin enhances fibrosis and calcification in aortic valve disease by inducing interstitial cell heterogeneity. Eur Heart J. 2023;44(10):885–898.
  20. Billig H, et al. Aortic valve stenosis and osteoporosis: insights from a mouse model. BMC Cardiovasc Disord. 2025;25(1):562.
  21. Artiach G, et al. Omega-3 polyunsaturated fatty acids reduce aortic valve disease via the resolvin E1-ChemR23 axis. Circulation. 2020;142(8):776–789.
  22. Clayton JA, Collins FS. NIH to balance sex in cell and animal studies. Nature. 2014;509(7500):282–283.
  23. Li B, et al. IGF1-mediated mesenchymal-endothelial transition as a potential regulatory target in calcific aortic valve disease. BMC Med. 2025;23(1):600.

Erişim kısıtlı. Bu içeriği görüntülemek için lütfen giriş yapın veya deneme sürümünü başlatın.

Yeniden basım ve izinler

Etiketler

Kılavuz Tel Yaralanma ModeliFare AVS ModeliHemoraji KontrolüVasküler Destek PlatformuEkokardiyografik DeğerlendirmeHistopatolojik DoğrulamaKapak DejenerasyonuTerapötik MüdahalelerModel Optimizasyonu
Bize Ulaşın
Kütüphaneye Öner

Gizlilik

Kullanım Koşulları

Politikalar

Telif Hakkı © 2026 MyJoVE Corporation. Tüm hakları saklıdır.