Bu çalışmada yürütülen tüm hayvan deneyleri, Anhui Bilim ve Teknoloji Üniversitesi Bilim ve Teknoloji Etik Kurulu tarafından onaylanmış (Onay No. GZ2025-048) ve Çin'in laboratuvar hayvan refahına ilişkin ulusal standartlarına (GB/T 35892-2018) kesin olarak uyulmuştur. Şekil 1 çalışma tasarımını göstermektedir.
Çözeltilerin hazırlanması
Silika süspansiyonunun hazırlanması:
Kristal silika (SiO₂, %80, partikül boyutu 1–5 µm) otoklavlanarak sterilize edildi. Steril silika tozu, daha sonra 10 mg/mL nihai konsantrasyon elde etmek için steril salin içerisinde dağıtıldı ve homojen bir partikül süspansiyonu sağlamak amacıyla uygulamadan hemen önce bir ultrasonik homogenizatör kullanılarak iyice homogenize edildi.
DMSO çözeltisinin hazırlanması:
Aseptik koşullar altında, yaklaşık %10 (v/v) DMSO çözeltisi hazırlamak için DMSO (≥99.9%) steril fizyolojik salin ile seyreltilmiş ve ultrasonik ajitasyon ile homojenize edilmiştir. Daha önce açıklandığı üzere14,15, her bir fareye 0.9 g/kg dozunda DMSO çözeltisi enjekte edilmiştir.
Deney hayvanları
Bu çalışmada, 8–12 haftalık 32 sağlıklı erkek C57BL/6J fare kullanılmış ve deneylerden önce 1 hafta boyunca aklimatize edilmiştir. Fareler, bilgisayar destekli bir randomizasyon yöntemi kullanılarak dört deney grubuna (grup başına n = 8) rastgele atanmıştır: kontrol, DMSO, silika ve silika+DMSO grupları. Örneklem büyüklüğü, aynı fare silikozis modelini kullanan önceki çalışmalara ve gruplar arasındaki histopatolojik ve moleküler farklılıkları tespit etmek için grup başına 8 hayvanın yeterli olduğunu gösteren ön deneysel deneyimlerimize dayanarak belirlenmiştir. Hayvanlar; kontrollü sıcaklık, 12 saatlik ışık/karanlık döngüsü, yem ve suya serbest erişimin olduğu standart laboratuvar koşullarında barındırılmıştır. Çalışma öncesinde insani sonlanma noktaları belirlenmiş olup, hiçbir hayvan erken ötanazi için önceden tanımlanmış kriterleri karşılamamıştır.
Silikozis modelinin oluşturulması ve ilaç müdahalesi
Silikozis, 60 µL steril kristal silika süspansiyonunun (10 mg/mL) tek doz intranazal instilasyonu ile indüklenmiştir. Anestezi indüksiyonunun ardından fareler sırtüstü pozisyona getirilmiştir. Derin ve yavaş solunum gözlemlendiğinde, silika süspansiyonunun 60 µL'si burun deliklerine dikkatlice damla damla instile edilmiş ve süspansiyonun akciğerlere spontan olarak solunması sağlanmıştır16. DMSO uygulama grubundaki farelere, ardışık bir ay boyunca, enjeksiyonlar arasında 3–4 günlük aralıklarla haftada iki kez sabit dozda DMSO çözeltisi intraperitoneal olarak enjekte edilmiştir. Kalan gruplardaki farelere bunun yerine eşit hacimde steril salin ile aynı şekilde işlem uygulanmıştır. Deney boyunca günlük vücut ağırlığı takibi yapılmıştır. Modellemeden 30 gün sonra tüm fareler ötanize edilmiş ve akciğer dokuları steril koşullar altında toplanmıştır. Ötanazi, anesteziyi indüklemek için intraperitoneal tribromoetanol (0,2 mL/10 g) uygulamasının ardından servikal dislokasyon ile gerçekleştirilmiştir. Akciğer dokularının bir kısmı transkriptom sekanslaması için sıvı azot içerisinde korunmuştur. Dokuların bir kısmı patolojik boyama öncesinde 48 saat boyunca %4 paraformaldehitte fikse edilmiş, kalan dokular ise sonraki moleküler deneyler için -80 °C'de saklanmıştır. Tüm hayvan işlemleri, kurumsal hayvan etiği kılavuzlarına uygun olarak yürütülmüştür.
Ashcroft fibrozis skoru da dahil olmak üzere histopatolojik değerlendirme, deneysel grup tahsisinden habersiz iki araştırmacı tarafından bağımsız olarak gerçekleştirilmiştir.
Pulmoner patolojik inceleme
Fikse edilmiş akciğer dokuları dehidre edildi, şeffaflaştırıldı ve parafin bloklara gömüldü, ardından 5 µm kalınlığında kesitler halinde dilimlendi.
hematoksilin ve eozin (HE) boyama: Kesitler 3–5 dk boyunca hematoksilin ile boyanmış, asidik çözeltide farklılaştırılmış, akan su altında mavileştirilmiş ve 5 dk boyunca eozin ile karşı boyanmıştır. Kademeli etanol ile dehidrasyonun ardından, kesitler ksilen ile şeffaflaştırılmış ve nötr reçine ile kapatılmıştır17.
Masson trikrom boyama: Kesitler sırasıyla hematoksilen, Lichun Red–asit fuksin, fosfomolibdik asit ve Parlak Yeşil ile boyandı. Asidik diferansiyasyondan sonra kesitlerye su uzaklaştırıldı, ksilen ile saydamlaştırıldı ve nötr reçine ile kapatıldı18,19.
Transkriptom dizileme
Dört deneysel gruptaki fare akciğer dokuları, sakrifis sonrası hemen toplandı ve sıvı azot içerisinde şok donduruldu. Toplam RNA, üretici talimatlarına uygun olarak TRIzol reaktifi kullanılarak ekstre edildi. RNA konsantrasyonu ve saflığı değerlendirildi ve RNA bütünlüğü, yerleşik yazılıma sahip bir Bioanalyzer kullanılarak analiz edildi. RIN değerleri 8.0'dan büyük olan örnekler kabul edilebilir olarak değerlendirildi. Kütüphane hazırlama süreci; Oligo(dT) boncuklar kullanılarak poly(A) mRNA zenginleştirme, RNA fragmantasyonu, cDNA sentezi, adaptör ligasyonu ve PCR amplifikasyonunu içeriyordu. Sekanslama, Illumina platformunda gerçekleştirildi ve örnek başına yaklaşık 6.2–6.4 Gb temiz veri üretildi. Bu çalışmada üretilen tüm ham sekanslama verileri, GSE311671 erişim numarası ile Gene Expression Omnibus (GEO) veri tabanına kaydedilmiştir.
Temiz okumalar, STAR hizalayıcı kullanılarak Mus musculus referans genomuna (mm8) hizalandı. Gen ekspresyon seviyeleri, ham okuma sayıları olarak nicelleştirildi. Diferansiyel ekspresyon analizi, R'daki limma paketi kullanılarak gerçekleştirildi. Lineer modellemeden önce, ortalama-varyans ilişkisini tahmin etmek ve kesinlik ağırlıkları oluşturmak için ham sayı verileri voom fonksiyonu ile dönüştürüldü. Ham P değerleri, Benjamini-Hochberg (BH) yöntemi kullanılarak çoklu testler için düzeltildi ve |log₂FoldChange| > 1,5 ve yanlış keşif oranı (FDR) < 0,05 olan genler diferansiyel olarak eksprese olmuş kabul edildi. Fonksiyonel zenginleştirme analizleri, R'daki clusterProfiler paketi kullanılarak gerçekleştirildi. Anlamlı derecede zenginleşmiş biyolojik süreç (BP), hücresel bileşen (CC) ve moleküler fonksiyon (MF) kategorilerini belirlemek için gen ontolojisi (GO) zenginleştirme analizi yürütülürken, anlamlı derecede zenginleşmiş sinyal yolaklarını belirlemek için Kyoto gen ve genom ansiklopedisi (KEGG) yolak zenginleştirme analizi gerçekleştirildi. Zenginleştirme anlamlılığı hipergeometrik test kullanılarak değerlendirildi ve P değerleri Benjamini-Hochberg yöntemi kullanılarak çoklu karşılaştırmalar için düzeltildi. Düzeltilmiş P değeri (padj) < 0,05 olan GO terimleri ve KEGG yolakları anlamlı derecede zenginleşmiş olarak kabul edildi20,21,22,23.
Western blot tespiti
Taze fare akciğer dokusu toplandı ve uygun hacimdeki radyoimmünopresipitasyon analizi (RIPA) liz tamponu ile homojenize edildi. Santrifüj sonrası süpernatan toplandı ve protein konsantrasyonu BCA protein analiz kiti kullanılarak belirlendi. Numuneler daha sonra yükleme tamponu ile karıştırıldı ve 100 °C'de 10 dk ısıtıldı. Protein ayrımı, %10 sodyum dodesil sülfat poliakrilamid jel elektroforezi (SDS-PAGE) jellerinde 200 V akımda 30 dk boyunca gerçekleştirildi. Ardından proteinler, 300 mA sabit akımla 30 dk boyunca poliviniliden florür (PVDF) membranlara elektrotransfer edildi. Membran %5 yağsız süt ile bloklandı, ardından β-Actin (1:1500), IL-6 (1:1000), STAT3 (1:800), p-STAT3 (1:1500) ve MMP12 (1:800) karşıtı primer antikorlarla 4 °C'de gece boyunca inkübe edildi. Ertesi gün membran TBST ile yıkandı ve oda sıcaklığında 1 saat boyunca sekonder antikor ile inkübe edildi, ardından TBST ile ek yıkamalar yapıldı. Protein bantları kemilüminesans substrat kullanılarak görselleştirildi ve protein kantifikasyonu ImageJ yazılımı ile gerçekleştirildi.
Western blot analizi, her bir deney grubundan alınan üç bağımsız biyolojik replika kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Protein örnekleri bireysel fare akciğer dokularından hazırlanmış olup, her bir biyolojik replika bağımsız bir hayvanı temsil etmiştir.
İstatistiksel analiz
Tüm deneysel veriler GraphPad Prism 9.5 kullanılarak analiz edildi. Önceden normallik ve varyans homojenliği testleri gerçekleştirildi. İki grup karşılaştırması için Student’s t-testi, çoklu grup karşılaştırmaları için ise Tukey sonrası testi ile kombine edilmiş tek yönlü ANOVA kullanıldı. P ≤ 0.05 değeri istatistiksel olarak anlamlı kabul edildi.