Bu çalışma, Xuzhou Tıp Üniversitesi Bağlı Hastanesi Etik Kurulu tarafından onaylanmış olup (onay numarası: XYFY2024-KL238-01) hastalardan ek bilgilendirilmiş onam alma gerekliliğinden muaf tutulmuştur. Kullanılan reaktifler ve ekipmanlar Malzeme Tablosunda listelenmiştir.
Hastalar ve örnekler
Bu çalışma retrospektif bir kohort çalışmasıydı. Kasım 2020'den Aralık 2023'e kadar, Xuzhou Tıp Üniversitesi Bağlı Hastanesi'nde ACI uygulanan toplam 270 hasta ardışık olarak dahil edildi. Hasta seçim süreci Ek Şekil 1'de özetlenmiştir. Uygun hastalar, inme ünitesine yapılan tüm yeni yatışların günlük taraması yoluyla belirlendi. Yatış öncesindeki 72 saat içinde semptomların başladığı, acil servis kayıtlarının incelenmesiyle doğrulanmış ve sertifikalı bir nörolog tarafından hasta öyküsü ve aile görüşmesi yoluyla teyit edilmiştir. Örneklem büyüklüğü, gruplar arasındaki miR-486-3p seviyelerindeki anlamlı bir farkı tespit edebilme kapasitesine göre hesaplanmıştır. 0,5'lik bir etki büyüklüğü, 0,05'lik iki yönlü α ve 0,80'lik bir güç (1-β) varsayıldığında, grup başına minimum 64 hasta gereklidir. Nihai grup boyutları, önceden belirlenmiş bir tahsisi değil, gerçek alımı ve inme popülasyonundaki OSAS prevalansının daha yüksek olmasını yansıtmaktadır. ACI ile birlikte OSAS olan hastaların prognozları 1 yıl boyunca takip edilmiştir.
Dahil etme kriterleri şunlardı: (1) Yatıştan önceki 72 saat içinde semptom başlangıcı olan ve manyetik rezonans görüntüleme ile doğrulanmış akut iskemik inme. (2) Çalışma anketlerini ve nörolojik değerlendirmeleri anlama ve tamamlama yeteneği. (3) ACI şiddeti, yatışta Ulusal Sağlık Enstitüleri İnme Ölçeği (NIHSS) ile değerlendirildi. NIHSS skoru <5 olduğunda hafif ACI, NIHSS skoru 5 ile 20 arasında olduğunda ise orta şiddette ACI olarak sınıflandırılmıştır. Temel dışlama kriterleri arasında malign tümör öyküsü, önceden mevcut olan ciddi fiziksel yetersizlik veya psikiyatrik bozukluklar, ciddi kardiyak, pulmoner veya renal yetmezlik, önceki 3 ay içinde geçirilmiş majör cerrahi veya travma, aktif enfeksiyonlar veya otoimmün hastalıklar; 6 ay içinde geçirilmiş inme; immünosüpresif tedavi ve OSAS tanısı veya tedavisi (sürekli pozitif havayolu basıncı terapisi dahil) yer almaktaydı.
MR doğrulaması için tüm hastalara 3.0-T sisteminde; T1-ağırlıklı, T2-ağırlıklı, sıvı attenuasyonlu inversiyon recovery (FLAIR), difüzyon ağırlıklı görüntüleme (DWI) ve görünür difüzyon katsayısı (ADC) haritalamasını içeren standart beyin MRG yapıldı. Akut enfarkt, DWI'da hiperintens sinyal varlığı ile ADC'de buna karşılık gelen hipointens sinyal olarak tanımlandı. Tüm MRG taramaları, klinik verilere kör olan iki deneyimli nöroradyolog tarafından yorumlandı ve uyuşmazlıklar konsensüs yoluyla çözüldü. NIHSS skorlaması, herhangi bir trombolitik veya endovasküler tedavi öncesinde, kabul sırasında sertifikalı nörologlar tarafından gerçekleştirildi.
Açlık venöz kanı, inme başlangıcından sonraki 24 sa ile 48 sa arasında, en az 8 sa'lik gece boyu açlığın ardından toplandı. Sirkadiyen varyasyonu minimize etmek için kan alma işlemleri sabah 6:00 ile 8:00 arasında gerçekleştirildi. Toplam 5 mL periferik venöz kan, EDTA kaplı vakumlu tüplere toplandı. Toplamadan sonraki 2 sa içinde, kan örnekleri soğutmalı bir santrifüj kullanılarak 4 °C'de 15 dk boyunca 1,500 × g hızda santrifüjlendi. Serum süpernatanı dikkatlice 1,5 mL RNaz içermeyen mikrosantrifüj tüplerine paylaştırıldı ve RNA ekstraksiyonuna kadar hemen −80 °C'de saklandı. Tekrarlayan dondurma-çözme döngülerinden kesinlikle kaçınıldı; tüm alikotlar analiz öncesinde maksimum bir dondurma-çözme döngüsüne maruz bırakıldı.
Hasta gruplandırması
Katılımcılar, polisomnografiden elde edilen AHI skorlarına göre gruplandırıldı. Tüm kayıtlar, hastanenin uyku laboratuvarında saat 22:00 ile 06:00 arasında, minimum 7 h süresince gerçekleştirildi. İzlenen fizyolojik kanallar şunları içeriyordu: elektroensefalografi (EEG; altı kanal), elektrookülografi (EOG; iki kanal), elektromiyografi (EMG; çene ve bilateral anterior tibialis), elektrokardiyografi (ECG; tek derivasyon), nazal hava akışı (termistör ve basınç transducer'ı), torasik ve abdominal solunum çabası (respiratuar indüktans pletismografisi) ve pulse oksimetri (SpO2). AHI, uyku çalışması teknisyeni tarafından hesaplandı. Uyku evrelerinin ve solunum olaylarının skorlaması, Somnolyzer 24×7 yazılımı kullanılarak, sertifikalı bir uyku teknisyeni tarafından Amerikan Uyku Tıbbı Akademisi (AASM) 2012 skorlama kılavuzuna göre manuel olarak gerçekleştirildi. Amerikan Uyku Tıbbı Akademisi'nin yaygın olarak kabul edilen tanı kriterlerine göre, saatte 5 veya daha fazla olaydan oluşan bir AHI, OSA tanısı için standart eşiktir. Bu nedenle, AHI < 5 olan katılımcılar ACI grubu (n = 100) olarak, AHI ≥ 5 olanlar ise ACI kombine OSAS grubu (n = 170) olarak sınıflandırıldı. AHI ≥ 5 olanlar arasında (ACI kombine OSAS grubu, n = 170), hastalar yerleşmiş kriterlere göre üç şiddet alt grubuna ayrıldı: hafif OSAS (5 ≤ AHI < 15, n = 60), orta OSAS (15 ≤ AHI < 30, n = 75) ve şiddetli OSAS (AHI ≥ 30, n = 35). Bu tabakalama, hipoksik yük, miR‑486‑3p ekspresyonu ve inflamatuar belirteçler arasındaki doz bağımlı ilişkinin değerlendirilmesini sağladı. Bazal AHI ölçümünün karışmasını önlemek amacıyla, daha önce OSAS tedavisi (örneğin, CPAP) görmüş hastalar çalışmaya dahil edilmedi.
Prognoz değerlendirmesi
1 yıllık zaman noktası, akut etkilerin ortadan kalkmasına ve OSAS'ın kümülatif hipoksik yükünün ortaya çıkmasına olanak tanıyarak, prognostik etkisini değerlendirmek için sağlam bir pencere sunar. OSAS ile birlikte ACI olan hastaların klinikle prognozu, hastalığın başlangıcından sonra modifiye Rankin Ölçeği (mRS) ile değerlendirildi. Tüm mRS değerlendirmeleri, çalışma öncesinde standardize eğitim almış sertifikalı nörologlar tarafından, yapılandırılmış mRS görüşme formu kullanılarak gerçekleştirildi. Değerlendiriciler arası güvenilirlik, kappa katsayısı ile değerlendirildi. >0.85. İzlem değerlendirmesi, planlanmış bir poliklinik ziyareti aracılığıyla gerçekleştirilmiştir. Şahsen katılamayan hastalar için, eğitimli bir araştırma hemşiresi tarafından standart bir senaryo kullanılarak yapılandırılmış bir telefon görüşmesi yapılmıştır. Tüm değerlendiriciler, hastaların miR-486-3p seviyelerine ve OSAS durumlarına karşı körlenmiştir. Poliklinik ve telefon değerlendirmeleri arasında tutarlılığı sağlamak için her iki formatta da aynı yapılandırılmış anket kullanılmış ve tüm değerlendiriciler çalışma öncesi bir kalibrasyon egzersizi tamamlamıştır. 0–2 puan alan hastalar iyi prognoz grubuna, 3–6 puan alanlar ise kötü prognoz grubuna dahil edilmiştir. Takip sürecinde hiçbir hasta kaybedilmemiştir. SAQLI, ESS, TNF-αve HIF-1α prognoz gruplarını tanımlamak için kullanılmak yerine prognostik değişkenler olarak değerlendirildi. NIHSS, SAQLI ve ESS, eğitimli araştırma personeli tarafından uygulandı. SAQLI ve ESS, sessiz bir odada görüşmeci eşliğinde uygulanan anketler şeklinde yürütüldü.
Puanlama indeksi
NIHSS, inme için kullanılan kantitatif bir ölçektir11, daha yüksek puanlar ACI'nin daha şiddetli olduğunu göstermektedir. SAQLI; günlük aktiviteleri, sosyal etkileşimleri, duygusal durumları, semptomları ve tedaviyle ilgili semptomları kapsayan, 1–7 ölçeğinde, daha yüksek puanların daha kötü yaşam kalitesini gösterdiği, OSA'ya yönelik bir yaşam kalitesi anketidir.12ESS, hastaların kendi bildirdikleri gündüz uykululuğunu incelemek için kullanılır; skor aralığı 0 ile 24 arasındadır ve skor > 10, gündüz uykululuğunu belirtir13.
RNA ekstraksiyonu ve ters transkripsiyon
Toplam RNA, TRIzol reaktifi kullanılarak 200 µL serumdan ekstrakt edildi. Kısaca, serum örnekleri 800 µL TRIzol ile karıştırıldı, oda sıcaklığında 5 dk inkübe edildi ve 4 °C'de 12,000 × g santrifüjle 15 dk döndürüldü. Kloroform (200 µL) eklendi ve karışım 15 sn boyunca kuvvetlice çalkalandı, 3 dk inkübe edildi ve 4 °C'de 12,000 × gsantrifüjle 15 dk döndürüldü. Sulu faz yeni bir tüpe aktarıldı ve RNA, 500 µL izopropanol ile çöktürüldü, −20 °C'de 1 saat inkübe edildi ve 4 °C'de 12,000 × gsantrifüjle 10 dk döndürüldü. RNA peleti %75 etanol ile yıkandı, havada kurutuldu ve 20 µL RNaz-free su içerisinde çözüldü. RNA konsantrasyonu ve saflığı, bir mikrohacim spektrofotometresi kullanılarak değerlendirildi ve sonraki analizler için 1.8 ile 2.0 arasındaki A260/A280 oranı kabul edildi. RNA bütünlüğü, agaroz jel elektroforezi ile doğrulandı.
Ters transkripsiyon, üretici protokolüne uygun olarak rastgele hekzamer primerler kullanılarak, 20 µL toplam reaksiyon hacminde, Reverse Transcription Kit ile 500 ng toplam RNA kullanılarak gerçekleştirildi. Ters transkripsiyon reaksiyonu 25 °C'de 10 dk, 42 °C'de 60 dk ve 70 °C'de 5 dk boyunca uygulandı. Elde edilen cDNA, kullanıma kadar −20 °C'de saklandı.
RT-qPCR
miR-486-3p ekspresyonu, bir gerçek zamanlı kantitatif PCR (qPCR) sisteminde, mikroRNA kantifikasyonu için SYBR Green tabanlı bir gerçek zamanlı PCR kiti kullanılarak tespit edilmiştir. Reaksiyon karışımı şunları içermekteydi: 10 µL 2'den× SYBR Green Master Mix, 2 µL cDNA kalıbından (1:5 oranında seyreltilmiş), 1 µL her bir primerin (10 µM), ve son hacmi şu seviyeye getirmek için nükleaz içermeyen su ekleyin: 20 µLPrimer dizileri şöyledir (5'-3'): miR-486-3p-ileri: TCGGCAGCGGGGCAGCUCAGU, geri: CTCAACTGGTGTCGTGGA; ve U6-ileri: CTCGCTTCGGCAGCACA, geri: AACGCTTCACGAATTTGCGT. qPCR döngü koşulları şöyledir: 95 °C 2 dakika boyunca, ardından 40 döngü şeklinde 95 °C 30 saniye boyunca, 60 °C 30 saniye boyunca ve 72 °C 60 saniye boyunca. Her örnek üç tekrarlı olarak çalışıldı ve her çalışmaya kalıp içermeyen bir kontrol eklendi. Amplifikasyonun özgüllüğü, şunlardan elde edilen erime eğrisi analizi ile doğrulandı: 60 °C -e / -a 95 °CDöngü eşiği (Ct), varsayılan eşik ayarı kullanılarak QuantStudio 6 Pro yazılımı (v1.5) tarafından otomatik olarak belirlenmiştir. miR-486-3p seviyesi, 2--ΔΔBT (Bilgisayarlı Tomografi) yöntem ve U6'ya normalize edildi. Gruplar arası tutarlılığı sağlamak amacıyla, serum örneklerimizde U6'nın stabil bir referans gen olduğu NormFinder algoritması kullanılarak doğrulandı. Deneyler arası ve deney içi varyasyon katsayıları <5%.
ELISA
C-reaktif protein (CRP), TNF-α ve HIF-1α serum konsantrasyonları ELISA kiti kullanılarak tespit edildi. Deneysel prosedürler üreticinin talimatlarına uygun olarak gerçekleştirildi. Kısaca, serum örnekleri buz üzerinde çözüldü ve sağlanan dilüsyon tamponu ile 1:2 oranında seyreltildi. Örnekler ve standartlar önceden kaplanmış 96 kuyucuklu plakalara (100 µL/kuyucuk) eklendi ve 37°C'de 2 saat inkübe edildi. 300 µL yıkama tamponu ile dört kez yıkandıktan sonra, 100 µL biotin-konjuge tespit antikoru eklendi ve 37°C'de 1 saat inkübe edildi. Bir başka yıkama adımının ardından, 100 µL horseradish peroxidase-konjuge streptavidin eklendi ve karanlıkta 37°C'de 30 dakika inkübe edildi. Kromojenik substrat (tetrametilbenzidin, 100 µL) eklendi ve ışıktan korunarak 37°C'de 15 dakika inkübe edildi. Reaksiyon 50 µL durdurma çözeltisi ile sonlandırıldı ve absorbans, bir mikroplaka okuyucu kullanılarak 450 nm'de ölçüldü. Konsantrasyonlar, bilinen konsantrasyonlardaki rekombinant proteinlerle oluşturulan standart eğrilerden hesaplandı. Her örnek duplicate olarak ölçüldü ve analizler için ortalama değer kullanıldı. Üretici tarafından sağlanan kalite kontrol örnekleri her plakaya dahil edildi; sonuçlar yalnızca QC değerleri üreticinin belirttiği aralıkta olduğunda kabul edildi.
Kalite kontrol ve tekrarlanabilirlik
Tüm laboratuvar analizleri, RT-qPCR için MIQE (Minimum Information for Publication of Quantitative Real-Time PCR Experiments) kılavuzlarına ve ELISA için uygun raporlama standartlarına uygun olarak gerçekleştirilmiştir. Temel cihazlar, üretici programlarına göre kalibre edilmiştir. Plakalar arası değişkenliği izlemek için her RT-qPCR ve ELISA grubu çalışmasına negatif ve pozitif kontrol örnekleri dahil edilmiştir. Tüm veriler Microsoft Excel kullanılarak kaydedilmiş ve yönetilmiştir; ilgili yazar, makul talep üzerine ayrıntılı deneysel protokolleri ve ham verileri sağlayacaktır.
İstatistiksel analiz
Veriler, SPSS 23.0 ve bir istatistiksel analiz ve grafik yazılımı kullanılarak analiz edildi. Normal dağılım, Shapiro–Wilk testi ile değerlendirildi. Sürekli değişkenler ortalama ± SD veya medyan (IQR) olarak sunuldu ve uygun şekilde t‑testi veya Mann–Whitney U testi ile karşılaştırıldı. Kategorik değişkenler χ2 testi ile karşılaştırıldı. Korelasyonlar, veri dağılımına bağlı olarak Pearson veya Spearman analizleri kullanılarak incelendi. Prediktif değer, ROC eğrisi kullanılarak belirlendi ve 5 katlı çapraz doğrulama ile doğrulandı. miR-486-3p için optimal kesme değeri, Youden indeksi maksimize edilerek belirlendi. Korelasyonları değerlendirmek için Pearson ve Spearman korelasyon analizleri kullanıldı. Prognostik analiz için hastalar, medyan miR‑486‑3p ekspresyonuna göre tabakalandırıldı; gruplar arasındaki sağkalım sonuçlarını karşılaştırmak için log‑rank testi ile Kaplan–Meier eğrileri kullanıldı. Tek değişkenli Cox regresyonunda P < 0.1 olan değişkenler, çok değişkenli Cox modeline dahil edildi. P < 0.05 istatistiksel olarak anlamlı kabul edildi.