Omurgalı hayvanları içeren tüm yöntemler, AHUCM-rats-2024145 onay numarası ile Anhui Çin Tıbbı Üniversitesi Hayvan Bakım ve Kullanım Komitesi ile uyumlu olarak gerçekleştirilmiştir. Kullanılan reaktifler ve ekipmanlar Malzemeler Tablosu'nda listelenmiştir.
Hayvan hazırlığı ve gruplandırma
Tüm deneylerde, 8 haftalık ve 200 ila 250 g ağırlığında, temiz sınıfa ait erkek Sprague-Dawley sıçanlar kullanılmıştır. Hayvanlar, 24 ± 2 °C sıcaklık ve %50–60 bağıl nemde tutulan kontrollü bir ortamda, standart 12 saatlik ışık-karanlık döngüsünde barındırılmıştır. Tüm sıçanların yeme ve suya serbest erişimi sağlanmış ve herhangi bir deneysel işlemden önce 1 haftalık alışma sürecine tabi tutulmuşlardır.
Fonksiyonel ve merkezi sinirsel aktivitenin değerlendirildiği Deney I için, 24 sıçan rastgele altışarlı dört gruba ayrılmıştır: Sham, CHF, EA ve Sham EA grupları (Şekil 1A). Moleküler hedeflerin ve yüksek kapasiteli proteomiğin değerlendirildiği Deney II için ise, 36 sıçan rastgele on ikişarlı üç gruba atanmıştır: Sham, CHF ve EA. Örneklem büyüklükleri, istatistiksel geçerliliği sağlarken hayvan refahı etiğine ve azaltma ilkesine bağlı kalmak amacıyla Kaynak Denklemi Yöntemi baz alınarak belirlenmiştir (Deney I için E değeri = 20; Deney II için E değeri = 33)11. Bu örneklem büyüklüğü stratejisi, kardiyovasküler hastalıklar için EA üzerine yapılan önceki çalışmalarda kullanılan protokollerle tutarlıdır8,12. Post hoc güç analizleri, 0,90'ı aşan istatistiksel gücün bu dağılımın yeterliliğini desteklediğini göstermiştir. Ön fonksiyonel değerlendirmelerin terapötik etkinlik eksikliğine işaret etmesi nedeniyle Sham EA grubu Deney II'den hariç tutulmuştur.
Kronik kalp yetmezliği modelinin oluşturulması
Sıçanlar cerrahi işlemden önce 12 sa boyunca aç bırakılmış ve suya serbest erişimleri sağlanmıştır. Anestezi %3 isoflurane ile indüklemiş ve işlem boyunca %1,5%–2% isoflurane ile sürdürülmüştür. İsoflurane uçucu bir anestezik olduğu için uygun bir gaz tahliye sistemi kullanılmış ve mesleki maruziyeti önlemek amacıyla işlem iyi havalandırılan bir alanda gerçekleştirilmiştir.
Standart ekstremite elektrokardiyogramları (EKG) sürekli olarak kaydedildi. Kalbi açığa çıkarmak için sol torakotomi gerçekleştirildi ve sol anterior descended koroner (LAD) arter, sol atriyal apandisin 2 ila 3 mm altına 7-0 emilmeyen bir sütür kullanılarak kalıcı olarak bağlandı13. Başarılı iskemi, EKG üzerinde en az 0,2 mV'luk bir ST segment yükselmesi saptanarak doğrulandı (Şekil 1B). Enfeksiyonu önlemek ve ağrıyı hafifletmek amacıyla ameliyat sonrası üç ardışık gün boyunca günlük olarak intraperitonal penisilin (200.000 U/mL) ve subkutan karprofen (5 mg/kg) enjeksiyonları uygulandı.
Sham kontrol kohortu için, LAD koroner arter ligasyonu yapılmaksızın, eşleşen anatomik konuma yüzeysel iğne yerleşimini takiben özdeş bir torakotomi prosedürü uygulanmıştır. Özdeş postoperatif bakım ve izleme sağlanmıştır. Ekokardiyografik değerlendirme, cerrahi sonrası 4. haftada gerçekleştirilmiştir. Sol ventrikül ejeksiyon fraksiyonu (LVEF) ≤45%8 olduğunda (Şekil 1C), modelin başarıyla kurulduğu kabul edilmiştir. Bu kriterleri karşılamayan, preoperatif bazal EKG anomalileri gösteren veya erken ölüm yaşayan hayvanlar sistematik olarak dışlanmıştır. Dışlanan hayvanların yerini hemen doldurmak ve tekdüze bir örneklem büyüklüğünü korumak amacıyla, ek sıçanlara özdeş cerrahi protokoller uygulanmıştır.
Elektroakupunktur müdahalesi
Kabul görmüş karşılaştırmalı anatomik protokollere14 uygun olarak, El-Shaoyin Kalp Meridyenindeki bilateral HT7 akupunkturları, transverse wrist crease'in palmar yüzünde, ulnar kenara yakın, flexor carpi ulnaris tendonunun radial çöküntüsünün doğrudan içinde belirlendi. Yerel bölge rutin olarak dezenfekte edildi. İki adet steril tek kullanımlık akupunktur iğnesi (0.25 x 25 mm), her bir HT7 akupunktur bölgesine 2 ila 3 mm hedef derinliğe kadar dik olarak ilerletildi ve tamamen aynı akupunktur bölgesi içinde kalacak şekilde yaklaşık 1 mm aralıkla konumlandırıldı. Video dokümantasyonu için, yerleştirme derinliği, iğne şaftının yerleştirme öncesinde 3 mm pozisyonundan önceden işaretlenmesiyle görsel olarak doğrulandı.
Yerelleştirilmiş bir elektrik devresi oluşturmak için bir iğne EA cihazının katot terminaline, bitişiğindeki iğne ise anot terminaline bağlandı (Şekil 1D). İzofluran anestezisi altında, birbirini takip eden yedi gün boyunca günlük 30 dakika boyunca, ilgili uzuvlarda gözlemlenebilir ancak hafif kas seğirmeleri oluşturacak şekilde kalibre edilmiş 1 mA şiddetinde ve 2 Hz sabit frekansta sürekli bir elektrik dalga formu uygulandı.
Spesifik olmayan somatosensör yanıtları hesaba katmak için sham müdahale kohortuna minimal bir iğneleme protokolü uygulanmıştır15,16. Steril iğneler, elektrik kabloları bağlanmadan veya akım verilmeden, 30 dakikalık anestezik süresine uygun olarak, aynı HT7 bölgelerine 0.5–1 mm derinliğinde yüzeysel olarak yerleştirilmiştir. Bazal Sham ve CHF kontrol grupları, iğneleme veya elektriksel stimülasyon yapılmadan, yedi ardışık gün boyunca günlük aynı izofluran maruziyetine (günlük 30 dakika boyunca %1.5–%2 izofluran) tabi tutulmuştur. Bu prosedür, tüm deneysel kohortlarda anestezik baz hattını standartlaştırmış ve tekrarlayan volatil anestezinin tetikleyebileceği potansiyel nörosupresif veya kardiyoprotektif artefaktlar kontrol altına alınmıştır.
Ekokardiyografi değerlendirmesi ve hayvan ötanazisi
Müdahalenin ardından, sıçanlar indüksiyon için %3 ve idame için %1 isoflurane ile anestezi altına alınmış ve hayvan platformuna sırt üstü pozisyonda sabitlenmiştir. Göğüs kılları bir epilasyon maddesi kullanılarak dikkatlice temizlenmiş ve açığa çıkan cilde homojen bir şekilde akustik kuplaj maddesi uygulanmıştır. Kardiyak fonksiyon, 18 MHz eko transdüser ile donatılmış bir dijital ultrason sistemi kullanılarak değerlendirilmiştir. LVEF ve sol ventrikül fraksiyonel kısalmasını (LVFS) ölçmek için M-mod ekokardiyografi kaydedilmiş ve nihai analiz için 3 teknik tekrardan elde edilen ortalama değer hesaplanmıştır.
Sonraki kan kaybını ve pıhtılaşmayı önlemek ve enzim bağlı immünosorbent analiz (ELISA) için örnek kalitesini sağlamak amacıyla, hayvanlar anestezi altındayken abdominal aortadan kan alındı. Sıçanlar, kalp atışı ve solunum durana kadar %5 izofluran ile sürekli indüksiyon uygulanarak hemen ötanize edildi.
Doku örnekleri daha sonra deneysel tasarıma göre paylaştırıldı. Deney I için, hematoksilin ve eozin (HE)/Masson boyaması için kalp ve c-Fos immunofloresansı için beyin dokusu toplamak amacıyla grup başına 3 sıçan kullanıldı. Geri kalan üç sıçan in vivo elektrofizyoloji için ayrıldı. Deney II için, proteomik analizler amacıyla grup başına altı sıçanın bilateral NTS dokuları çıkarıldı. Geri kalan altı sıçanın dokuları moleküler doğrulama için toplandı: üçü Western blotting ve qPCR için, üçü ise yalnızca qPCR için kullanıldı.
Enzim bağlı immünosorbent assay
Toplanan kan örneklerinin 4 °C'de 10–20 dk boyunca doğal olarak pıhtılaşması sağlandı. Serumun ayrılması için örnekler 4 °C'de 1.000 x g hızda 15 dk boyunca santrifüj edildi ve süpernatanlar toplandı. Analiz hemen gerçekleştirilmediğinde, serum örnekleri ihtiyaç duyulana kadar −80 °C'de saklandı. N-terminal pro-beyin natriüretik peptid (NT-proBNP) ve kardiyak troponin T (cTnT) serum konsantrasyonları, standart talimatlara uygun olarak spesifik ELISA kitleri kullanılarak belirlendi. Absorbans değerleri ölçüldü ve biyobelirteç seviyeleri standart eğrilere göre hesaplandı.
Histolojik ve immünofloresan boyama
Toplanan kalp dokuları, önceden soğutulmuş %0,9 sodyum klorür çözeltisi ile durulandı, apeksin 5 mm üzerinden kesildi ve parafine gömüldü. Doku kesitleri deparafinize edildi ve yeniden hidrate edildi. HE boyaması, 10 dakika hematoksilin uygulamasının ardından 2,5 dakika eozin karşı boyama yapılarak gerçekleştirildi. Masson boyaması, 60 saniye hematoksilin ve 30–60 saniye Masson trikrom uygulanarak gerçekleştirildi. Kesitler %6–8'lik fosforik asitte farklılaştırıldı ve 5 dakika boyunca açık yeşil ile karşı boyandı. Miyokardiyal fibrozisi değerlendirmek için kollajen hacim fraksiyonu (CVF) nicelendirildi.
Toplanan beyin dokuları %4'lük paraformaldehit ile fikse edildi, dereceli sükroz çözeltilerindeydehidre edildi ve 30 µm kalınlığında kesitler alındı. Paraformaldehit toksik ve şüpheli bir karsinojen olduğu için, uygun kişisel koruyucu ekipman giyilmiş halde kimyasal çeker ocak içerisinde çalışıldı. Kesitler, %0,5 Triton X-100 ve %3 sığır serum albümini içeren bir tamponla bloke edildi, ardından c-Fos'a karşı bir primer antikor ile 4 °C'de gece boyunca inkübe edildi. Kesitler daha sonra fosfat tamponlu salin ile yıkandı ve karşılık gelen sekonder antikorlar ile oda sıcaklığında karanlıkta 2 saat boyunca inkübe edildi. Kesitler, 4',6-diamidino-2-phenylindole (DAPI) içeren bir floresans söndürme çözeltisi ile lam üzerine monte edildi ve c-Fos-pozitif nöronların görüntülemesi yapıldı.
In vivo elektrofizyoloji
Sıçanlar, indüksiyon için %3 ve idame için %1 izofluran ile anestezi altına alınmış ve beyin stereotaksik aparatına sabitlenmiştir. Kafa derisi tıraş edilmiş ve dezenfekte edilmiştir. Bregma'yı açığa çıkarmak için orta hat boyunca bir insizyon yapılmış ve dura mater uzaklaştırılmıştır. Bregma'ya göre şu stereotaksik koordinatlar baz alınarak NTS bölgesi üzerine hassas bir kraniyal delik açılmıştır: anteroposterior (AP) ±12.6 mm, mediolateral (ML) ±0.9–2.1 mm ve dorsoventral (DV) ±7.6–8.1 mm.
Elektrofizyolojik kayıtlar tamamlandıktan sonra, elektrot ucunun kesin stereotaksik konumu doğrulandı. Küçük bir elektrolitik lezyon oluşturmak için kayıt elektroduna 10 s boyunca kısa süreli 1 mA doğrudan akım uygulandı. Deney sonrası beyin sapı kesitlere ayrıldı ve lezyon hattının anatomik olarak NTS içinde yer aldığı histolojik olarak onaylandı.
Sekiz kanallı (2 x 4) bir mikroelektrot dizisi implante edildi ve motorlu bir mikromanipülatör kullanılarak 5 µm/s hızla hedef beyin bölgesine yavaşça ilerletildi. Stabil nöral aktivite sağlandığında, 400 s boyunca sürekli kayıtlar alındı. Nöronal spike boşalımlarını (150–8,000 Hz'de filtrelenmiş, örnekleme hızı 40 kHz) ve lokal alan potansiyellerini (LFP; 0.7–400 Hz'de filtrelenmiş, örnekleme hızı 1 kHz) yakalamak için çok kanallı bir veri toplama sistemi kullanıldı.
Tipik yüksek genlikli girişim sinyallerini ve artifaktları dalga formu çapraz korelasyonu aracılığıyla elemek için spike-sorting yazılımı kullanılmıştır. Sonraki nöronal sinyal analizi, nöral analiz yazılımı kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Nöronlar, yalnızca spontan ortalama ateşleme hızları >2 Hz olduğunda ve >3:1 oranında stabil bir sinyal-gürültü oranını koruduklarında aktif olarak sınıflandırılmıştır. 2 Hz eşiği, otonomla ilişkili NTS nöronlarının belirlenmiş fizyolojik özelliklerine dayanarak seçilmiştir; bu eşik, ağırlıklı olarak sessiz hücreleri ve düşük frekanslı solunum-ritmik patlamaları etkili bir şekilde dışlayarak, analizin bazal kardiyovasküler düzenlemeyi yöneten tonik olarak aktif nöronlara odaklanmasını sağlamıştır17,18,19,20. Ortalama nöronal ateşleme frekansı ve spike boşalım raster grafikleri bu kriterlere göre oluşturulmuştur. Nöral osilatuvar enerji karakteristiklerini değerlendirmek için 2D LFP enerji spektrogramları ve 3D güç spektral yoğunluğu (PSD) topografyaları oluşturulmuştur.
Kayıt işleminin ardından insizyon sütüre edildi ve sıçanlar anesteziden tamamen uyanana kadar izlendi. İntraperitonal enjeksiyon yoluyla penisilin uygulanırken, üç ardışık gün boyunca günlük olarak karprofen (5 mg/kg, s.c.) verildi.
Veriden bağımsız kazanım kantitatif proteomik analizi
Toplam protein, bir lizis tamponu ile ekstrakte edildi ve bisinkoninik asit yöntemiyle miktar tayini yapıldı. Proteinler denatüre edildi, redüktif alkilasyona tabi tutuldu ve 37 °C'de 2 saat boyunca tripsin ile sindirildi. Elde edilen peptitler C18 kolon kullanılarak tuzdan arındırıldı, 45 °C'de konsantre edildi ve sonraki kütle spektrometrisi analizi için yeniden süspanse edildi.
Peptidler, %96 tampon A (su içinde %0,1 formik asit) ile dengelenmiş bir tuzak kolona (5 µm C18, 300 µm x 5 mm) yüklendi. Peptidler, tampon A ve tampon B'nin (%80 asetonitril içinde %0,1 formik asit) titizlikle optimize edilmiş bir gradyanı kullanılarak, yüksek verimli bir ultra yüksek performanslı sıvı kromatografi analitik kolonunda ayrıştırıldı.
Kütle spektrometrisi, 1,9 kV'luk bir elektrospray voltajı ile pozitif iyon veri-bağımsız kazanım (DIA) modunda gerçekleştirilmiştir. Tam kütle spektrometre taramaları, 240.000 çözünürlükte, 500% otomatik kazanç kontrolü (AGC) hedefi ve 3 ms maksimum enjeksiyon süresi ile 380 ila 980 m/z kütle aralığında elde edilmiştir. MS/MS spektrumları 80.000 çözünürlükte (AGC hedefi: 500%; maksimum enjeksiyon süresi: 3 ms; RF lens genliği: 40%) elde edilmiştir. Prekürsör iyonlar, 0,6 s'lik tanımlanmış bir döngü süresi altında, 2 Th'lık bir izolasyon penceresi ve 25% normalize edilmiş çarpışma enerjisi ile yüksek enerjili çarpışmalı ayrışma kullanılarak fragmente edilmiştir.
Ham kütle spektrometri verileri DIA-NN yazılımı kullanılarak işlenmiştir. Dahili derin öğrenme algoritması kullanılarak bir spektral kütüphane oluşturulmuş ve trypsin sindirimi ile en fazla 2 kaçırılmış kesim (missed cleavage) parametreleri ile Rattus norvegicus referans proteom veri tabanına karşı kantifikasyon için "match-between-runs" fonksiyonu uygulanmıştır. Nihai kantitatif protein matrisi, hem öncül-iyon hem de protein düzeylerinde %1'lik katı bir yanlış keşif oranı (false discovery rate) eşiği kullanılarak filtrelenmiştir.
Biyoinformatik analizi ve hub gen madenciliği
Biyoenformatik analizler ve veri görselleştirmeleri, öncelikle özelleşmiş ağ görselleştirme yazılımlarıyla birlikte R programlama ortamı kullanılarak gerçekleştirilmiştir. Metodolojik şeffaflığı ve tekrarlanabilirliği sağlamak amacıyla, bu analitik süreçler boyunca kullanılan tüm özel R betikleri Ek Dosya 1'de sunulmuştur. İlk veri kalite kontrolü ve genel dağılım değerlendirmeleri ropls paketi kullanılarak yapılmıştır. Protein tanımlama/nicelik belirleme genel istatistikleri derlenmiş; üç grup arasında kısmi en küçük kareler ayrım analizi (PLS-DA) uygulanmış; ikili karşılaştırmalar için ortogonal kısmi en küçük kareler ayrım analizi (OPLS-DA) gerçekleştirilmiş ve pheatmap paketi kullanılarak örnek korelasyon ısı haritaları oluşturulmuştur.
Temel diferansiyel olarak eksprese edilen proteinler; p-değeri <0,05, kat değişimi (fold change) >1,2 ve projeksiyonda değişken önemi (VIP) skoru >1,0 eşik değerleri kullanılarak taranmıştır. Çift yanardağ grafikleri (double volcano plots) ggplot2 paketi kullanılarak oluşturulmuş, kesişimler ggVennDiagram paketi kullanılarak belirlenmiş ve kesişen proteinleri görselleştirmek için pheatmap paketi kullanılarak hiyerarşik kümeleme ısı haritaları çizilmiştir. Gen Ontolojisi (GO) ve Kyoto Gen ve Genom Ansiklopedisi (KEGG) zenginleştirme analizleri, Enrichr veri tabanına dayalı olarak enrichR paketi kullanılarak, yukarı regüle olan ve aşağı regüle olan proteinler için ayrı ayrı gerçekleştirilmiştir.
Protein-protein etkileşim ağını oluşturmak için tüm diferansiyel eksprese proteinler, 0.4 güven eşiği ile STRING veri tabanına eşlendi. Etkileşim verileri ağ görselleştirme yazılımına aktarıldı. Topolojik skorları hesaplamak için cytoHubba eklentisi uygulandı ve düğüm renk derinliğine göre en yüksek skorlu ilk 18 gen çıkarıldı. 18 hub adayı yol zenginleştirme analizine tabi tutuldu ve Genotype-Tissue Expression (GTEx) veri tabanı kullanılarak insan dokularındaki ekspresyon seviyelerini değerlendirmek üzere en belirgin ilk 10 protein seçildi. İnsan beyin ekspresyon seviyeleri ve ağ topolojik skorlarına göre en kritik hub gen belirlendi. Spesifik hub gen ile ilişkili alt akış transkripsiyon faktörlerini ve histon modifikasyonlarını tahmin etmek için Cistrome Data Browser kullanıldı.
Western blot ve kantitatif polimeraz zincir reaksiyonu
Toplam protein, fenilmetansülfonil florür lizis tamponu, PMSF ve fosfataz inhibitörleri içeren bir lizat karışımı kullanılarak NTS dokularından ekstrakte edildi. Örnekler, ultrasonik bir hücre parçalayıcı ile homojenize edildi ve süpernatantları toplamak için 4 °C'de 20 dk boyunca 13,800 x g hızında santrifüjle döndürüldü. Protein konsantrasyonları, bisinkoninik asit protein analiz kiti kullanılarak belirlendi. Her örnekten toplam 20 µg protein, %10 sodyum dodekil sülfat-poliakrilamid jel elektroforezi ile ayrıldı ve ardından poliviniliden florür membranlara aktarıldı.
Membranlar, oda sıcaklığında 1 saat boyunca %5 yağsız süt içeren Tris-tamponlu salin Tween (TBST) ile bloke edilmiş ve housekeeping protein olarak β-actin ile Yin Yang 1 (YY1) proteinini hedefleyen spesifik primer antikorlarla 4 °C'de gece boyunca inkübe edilmiştir. Membranlar TBST ile üç kez 5 dakika boyunca yıkanmış ve oda sıcaklığında 1,5 saat boyunca horseradish peroksidaz-konjuge sekonder antikor ile inkübe edilmiştir. Hedef bantlar, geliştirilmiş kemilüminesans kiti kullanılarak görselleştirilmiş, bir görüntüleme sistemi ile yakalanmış ve β-actin'e göre nicelendirilmiştir.
Toplam RNA, bir RNA ekstraksiyon reaktifi kullanılarak NTS dokularından ekstrakte edildi. RNA konsantrasyonu ve saflığı bir spektrofotometre kullanılarak ölçüldü ve bir ters transkripsiyon kiti kullanılarak birinci zincir cDNA sentezlendi. Kantitatif gerçek zamanlı polimeraz zincir reaksiyonu (PCR), bir gerçek zamanlı PCR sisteminde SYBR Green PCR kiti kullanılarak gerçekleştirildi. Amplifikasyon için kullanılan spesifik primer dizileri ve ilgili NCBI Referans Sekans erişim numaraları şunlardı: YY1 (NM_001002271.1), ileri 5'-AGCGTTCGTTGAGAGCTCAA-3' ve geri 5'-AGCCTTCGAATGTGCACTGA-3'; DPF2 (NM_001014264.1), ileri 5'-TGTGATGACTGTGACCGTGG-3' ve geri 5'-TCCAAACACAGGTGGCAACT-3'; DMAP1 (NM_001007705.1), ileri 5'-GGTGTGACATTACGGAGCCA-3' ve geri 5'-TCCAGCAGCATCTGTTCCAG-3'; ve gliseraldehit-3-fosfat dehidrogenaz (GAPDH) (NM_017008.4), ileri 5'-GGCACAGTCAAGGCTGAGAATG-3' ve geri 5'-ATGGTGGTGAAGACGCCAGTA-3'. Göreceli mRNA ekspresyon seviyeleri 2-ΔΔCt yöntemi kullanılarak hesaplandı ve internal referans gen GAPDH'ye göre normalize edildi.
İstatistiksel analiz
Tüm deneysel veriler istatistiksel yazılımlar kullanılarak analiz edildi ve ortalama ± standart sapma (SD) olarak sunuldu. Normallik Shapiro-Wilk testi ile değerlendirildi ve varyans homojenliği Brown-Forsythe testi kullanılarak analiz edildi.
İki bağımsız grup arasındaki karşılaştırmalar için, normallik kriterlerini karşılayan verilerde Student's t-testi veya eşli t-testi kullanılmıştır. Normallik varsayımlarını karşılamayan veriler, Mann-Whitney U testi veya Wilcoxon işaretli sıralama testi kullanılarak analiz edilmiştir. Birden fazla grup arasındaki karşılaştırmalar için, normallik ve homojenlik varsayımları karşılandığında, tek yönlü varyans analizi ve ardından Holm-Sidak post hoc testi uygulanmıştır. Bu varsayımların karşılanmadığı durumlarda ise Kruskal-Wallis H testi ve ardından Dunn post hoc testi kullanılmıştır.
Korelasyonlar, R'daki Hmisc paketi kullanılarak hesaplanan Pearson korelasyon katsayısı ile değerlendirildi. Çoklu testlere bağlı olarak artan tip I hata oranını kontrol etmek amacıyla, ilgili p-değerleri stats paketi aracılığıyla Benjamini-Hochberg yanlış keşif oranı yöntemi kullanılarak düzeltildi. Genel istatistiksel anlamlılık düzeyi p <0.05 olarak belirlendi.