What is footpad injection and when is it used in animal research?

Footpad injection is a specialized subcutaneous administration technique where compounds are injected into an animal's hind foot. Researchers use this method for studies involving inflammation and tumor growth. However, it should only be performed when scientifically justified and alternative approaches are unsuitable, as it causes increased discomfort and may impact normal ambulation.

Why is hock injection preferred over footpad injection in some studies?

Hock injections, administered in the tarsal region, target the popliteal lymph nodes while minimizing pain and preserving mobility compared with footpad injections. Since footpad injection involves a weight-bearing surface and increases discomfort, hock injection is often the preferred alternative when experimental objectives allow for this route of administration.

What needle size and injection volume are recommended for footpad injections?

A 27-gauge or small-gauge needle is recommended for footpad injections. The maximum volume recommended is 50 microliters or as specified in IACUC-approved institutional guidelines. These specifications help minimize tissue damage and ensure consistent, controlled delivery of the compound into the subcutaneous space.

How should the footpad injection site be located and prepared?

The injection landmark is at the center of the foot but just off the midline, closer to the toes, to avoid the blood vessel running the length of the foot. Before injection, wipe the foot with water or alcohol to remove debris. Place the needle bevel up at the injection site, directing it toward the heel, then inject the compound slowly and steadily to avoid rapid tissue distention.

What post-injection monitoring and measurements are required after footpad administration?

Animals must be closely monitored daily for signs of pain, food consumption, and normal ambulation. Once obvious swelling occurs, footpad measurements should be taken daily using a caliper to measure foot thickness in millimeters. This quantifies swelling and helps assess the inflammatory or tumor response. Humane endpoints must be established to ensure animals are euthanized before mobility is significantly impaired.

How do researchers use footpad injection to study inflammatory responses?

Investigators isolate peripheral blood mononuclear cells from human blood samples, mix them with different test antigens, and inject the solutions into an animal's footpad. They then measure foot thickness to quantify the swelling response due to different antigens. This approach allows researchers to assess how various compounds trigger inflammatory reactions in living animals.

What alternative methods should be considered before using footpad injection?

Whenever scientifically appropriate, non-animal methods including cell-based models, organoids, organ-on-chip platforms, and other in vitro assays should be used to reduce or replace animal use in studies involving compound administration. Footpad injection should only be performed when these alternatives cannot meet experimental objectives and scientific justification is documented for IACUC approval.

Bileşik Yönetim IV

0 views05:27 min

1. İntrakardiyak enjeksiyon

Yer işaretleri ve konumlandırma: Fareyi veya sıçanı sağ yanal yatış (sol taraf yukarı bakacak şekilde) veya sırt yaslanma pozisyonunda konumlandırın ve yer işaretlerini tanımlayın.
1. Kalbi yaklaşık olarak dirseğin noktasıyla aynı hizada ve sternumun hemen soluna yerleştirin.
2. İğneyi dirsek noktasındaki kaburgaların arasına sokun.
3. Sırt yaslanmış bir hayvanda, iğneyi masaya paralel olarak göğsüne yerleştirin.
4. Yanal yaslanmış bir hayvanda, iğneyi masaya dik olarak göğsüne sokun.
Makalenin enjeksiyonu
1. Kasın yırtılmasını ve perikardiyal kese içinde kanamaya neden olmasını önlemek için kalbe yerleştirildikten sonra iğnenin minimum hareket ettiğinden emin olun, çünkü bu kalp fonksiyonunu tehlikeye atar.
2. Uygun yerleşimi belirlemek için şırıngayı aspire edin. Şırınganın göbeğine genellikle bir kan parlaması olur.
3. Şırıngayı, iğne kalbe yerleştirildikten sonra elinizin enjeksiyon için şırınga üzerine yeniden konumlandırılmaması için tutun.
4. Makaleyi yavaş ve istikrarlı bir şekilde enjekte edin.
5. Kanamayı en aza indirmek için iğneyi yavaşça geri çekin.
6. Solunum sıkıntısı, nöbet, siyanoz, uzun süreli ataksi veya enjeksiyon travmasına bağlı diğer sekeller yaşayan fareler, veteriner hekim personeli tarafından değerlendirilmeli ve tavsiyelerine göre ötenazi yapılmalıdır.

Şekil 1. Farelerde intrakardiyak enjeksiyon.

2. Retro-orbital pleksus

kullanılarak intravenöz enjeksiyon

Enjeksiyon yer işaretleri ve konumlandırma
1. Hayvanı yanal yaslanma ile düz bir yüzeye yerleştirin.
2. İğneyi burnun medial kantusuna 45°'lik bir açıyla sokun.
3. İğne derinliği, konjonktival dokulara nüfuz etmek ve oküler orbitanın arkasına ve oküler pleksusa ilerlemek için yeterli olmalıdır. İğneyi yerleştirirken orbitanın arka kısmındaki kemikle karşılaşmamalıdır.
4. İşaret parmağını, başparmağınız çenenin üzerinde olacak şekilde başın üstüne yerleştirin.
5. Cildi sıkılaştırmak ve göz küresini dışarı çıkarmak için yavaşça geriye ve aşağı doğru çekin.
6. Soluk borusuna baskı uygulamamaya ve hava akımını kısıtlamamaya özen gösterin.
Enjeksiyon
1. İğneyi göz içine değil, gözün arkasına yerleştirin.
2. İğnenin retroorbital pleksusa yerleştirildikten sonra minimum harekete sahip olduğundan emin olun, aksi takdirde damarlar yırtılır ve ajanın gözün arkasındaki dokulara kanamaya ve kaybına neden olur. Şırıngayı, iğne retro-orbital pleksusa yerleştirildikten sonra elin enjeksiyon için şırınga üzerine yeniden konumlandırılmaması için tutun.
3. Damarları çökerteceğiniz için şırınga ile aspire etmeyin.
4. Makaleyi yavaş ve istikrarlı bir şekilde enjekte edin.
5. Kanamayı kontrol altına almak ve hemostaz sağlamak için iğneyi çekin ve göze hafif basınç uygulayın.
6. Enjeksiyon travmasına bağlı şişme, konjonktivit veya diğer sekeller yaşayan fareler, veteriner personeli tarafından değerlendirilmeli ve tavsiyelerine göre tedavi edilmeli veya ötenazi yapılmalıdır

Şekil 2. Farelerde retro orbital enjeksiyon.

3. Ayak Tabanı Enjeksiyonu

Kısıtlama için, hayvanı bir arka ayağı izole edilmiş şekilde bir emniyet borusuna yerleştirin ve derisini dikmenin üzerinden kavrayarak uzatın.
Enjeksiyondan önce kalıntıları temizlemek için ayağı su veya alkolle silin.
Enjeksiyon bölgesinde küçük bir kabarcık oluşturarak arka ayağın ortasına deri altından enjekte edin. Ayağın uzunluğu boyunca uzanan kan damarından kaçınmak için, damara paralel olarak orta hattın hemen dışına enjekte edin.

Şekil 3. Farelerde ve sıçanlarda ayak pedi enjeksiyonu.