What are the four stages of anesthesia in rodents?

Stage one involves an increasing pain threshold with minimal behavioral changes. Stage two is characterized by disorientation and irregular breathing. Stage three, the surgical stage, has four planes where the animal progresses from loss of righting reflex to complete anesthesia suitable for surgery. Stage four represents overdose with complete paralysis, potentially leading to respiratory arrest and death.

How should you prepare equipment before inducing anesthesia with an inhalant anesthetic?

First, fill the precision vaporizer with appropriate liquid anesthetic. Check the waste gas scavenging system canister by weighing it; replace if it has increased fifty grams above starting weight. Assemble the induction chamber ensuring input connects from the vaporizer and output connects to the scavenging system. Verify all connections are secure before placing the animal in the chamber.

What is the preferred method for inducing anesthesia in rodents?

The preferred method is induction in a precision vaporizer-connected chamber at 3-5% isoflurane with 1 liter per minute oxygen flow. After the animal is fully anesthetized, flush the chamber with oxygen by turning off isoflurane before gently removing the animal. This reduces personnel exposure to anesthetic gases compared to using a nose cone or facemask, which animals may resist.

How do you assess anesthetic depth during a surgical procedure?

Assess anesthetic depth every 10-15 minutes using physical methods like toe pinch, tail pinch, or pinna pinch to check for withdrawal reflexes. Also evaluate the palpebral reflex by touching the medial canthus and the corneal reflex by touching the cornea. Monitor physiological indicators including heart rate, respiratory rate, blood pressure, mucous membrane color, and capillary refill time, which should not exceed 1-2 seconds.

What factors determine which anesthetic to use for a rodent procedure?

The choice of anesthetic depends on the extent and duration of the procedure, the species and strain, the animal's age, and its physiological status. Accurate body weight measurement is essential before anesthesia to ensure appropriate dose calculation, minimize overdose risk, and support animal welfare. Injectable anesthetics like ketamine combined with sedatives or muscle relaxers offer alternatives to inhalant compounds like isoflurane.

Why is thermal support necessary during rodent anesthesia?

Rodents are prone to hypothermia during anesthesia lasting longer than five minutes. Controlled thermal support is required to maintain body temperature and prevent overheating. Hypothermia can complicate recovery and compromise animal welfare. Temperature monitoring and appropriate heating devices should be used throughout the anesthetic procedure to maintain normal body temperature.

What should you do after anesthesia to ensure proper animal recovery?

Animals should recover in a controlled environment with thermal support and appropriate analgesia. Monitor animals continuously until they regain sternal recumbency, normal respiratory function, and appropriate responsiveness. Only fully recovered animals should be returned to their housing. Animals showing anesthetic complications like respiratory depression or delayed recovery require immediate humane intervention and veterinary consultation.

Anestezi İndüksiyonu ve Bakımı

0 views14:01 min

Cerrahi ve diğer potansiyel olarak ağrılı prosedürler için uygun anestezik seçimi bir veteriner tarafından belirlenmelidir. Bu, prosedürün kapsamı ve süresi, tür ve suş, yaş ve hayvanın fizyolojik durumu dahil olmak üzere çok sayıda hususa dayanmaktadır.

Anestezikler inhalanlar veya enjektabllar olarak mevcuttur. Cerrahi anestezi, enjekte edilebilir ve inhalan anesteziklerin bir kombinasyonu kullanılarak gerçekleştirilebilir. ²

1. İnhalan anestezi indüksiyonu

Uçucu anestezi, izofluran, sevofluran ve desfluran içerir ve izofluran en yaygın olarak kullanılır. Bu anestezikler daha sık kullanılır, çünkü onlarla anestezi derinliğini kontrol etmek daha kolaydır. İnhalasyon anestezikleri kullanılarak anestezi indüksiyonu, bir çan kavanozu veya hassas bir buharlaştırıcıya takılmış bir indüksiyon odası ile gerçekleştirilebilir.

Çan kavanozu
1. Ekipman: Seramik veya plastik delikli platformlu bir dolmalık kavanoz veya kurutma kavanozu, bir pamuk topu, bir sıvı anestezik (izofluran, sevofluran veya desfluran) ve dış mekana havalandırılan bir davlumbaz.
2. Hazırlık
  1. Personelin anestezik gazlara maruz kalmasını önlemek için çan kavanozunu tezgahın üzerinde değil, bir kaputun altında kullanın.
  2. Çan kavanozunu, platform altta olacak şekilde birleştirin ve kavanozun tabanı ile platform arasında bir boşluk yaratın. Bu, hayvanın sıvı anestezik ile temas etmesini önlemek için gereklidir.
  3. Nitril eldiven veya diğer geçirimsiz eldivenler giyerek pamuğu anestezik ile doyurun.
  4. Pamuk topunu platformun altına çan kavanozuna yerleştirin.
  5. Anestezik buharın kaçmasını önlemek için kapağı çan kavanozuna sabitleyin.
3. Indüksiyon
  1. Kapağı bir tarafa kaydırarak hayvanı çan kavanozuna yerleştirin.
  2. Hayvan kavanoza girdikten sonra, anestezi derinliğini belirlemek için aktivitesini ve solunumunu gözlemlemek gerekecektir.
  3. Hayvan, etki etmek için anesteziye maruz bırakılır.
  4. Hayvan tamamen uyuşturulduktan sonra, kapağı bir tarafa kaydırın ve bir elin girmesine izin verecek kadar boşluk bırakın. Anestezi uygulanmış hayvanın kuyruğunu, tırnağını veya gövdesini kavrayın ve yavaşça çan kavanozundan çıkarın.
Hassas buharlaştırıcılar
Hassas buharlaştırıcılar, bir indüksiyon odası veya bir yüz maskesi ile kullanılabilir. Anestezi makinesi her işlemden önce kontrol edilmelidir. Seviyeler düşükse uygun anestezik eklenmelidir. Atık gazların tamamen uzaklaştırıldığından emin olmak için süpürme sistemi kontrol edilmelidir. Pasif atık gaz anestezi sistemleri için, hala etkili olup olmadığını belirlemek için süpürme kabı tartılmalıdır. Genel olarak, başlangıç ağırlığının 50 gram üzerinde bir ağırlık artışı, teneke kutunun harcandığı noktadır.
1. Ekipman
  1. Bir indüksiyon odası, hassas bir buharlaştırıcı, bir atık gaz temizleme ünitesi (pasif veya aktif) ve bir sıvı anestezik (kullanılan buharlaştırıcı tipine göre belirlenen izofluran, sevofluran veya desfluran).
2. Hazırlık
  1. İndüksiyon odasını, giriş buharlaştırıcıdan ve çıkış atık gaz temizleme sistemine olacak şekilde monte edin.
3. Indüksiyon
  1. Hayvanı indüksiyon odasına yerleştirin. Bazı odaların sürgülü bir kapağı vardır ve diğerlerinde kilitlenen menteşeli bir kapak bulunur.
  2. Hayvan odaya girdikten sonra, oksijen akışı başlatılır ve hassas buharlaştırıcı, izofluran için 3-4 indüksiyon seviyesinde açılır. Daha düşük anestezik uygulama seviyeleri, daha uzun bir indüksiyon süresi ile sonuçlanacaktır.
  3. Hayvan, etki etmek için anesteziye maruz bırakılır.
  4. Hayvan tamamen anestezi altına alındıktan sonra, personelin anestezik gazlara maruz kalmasını önlemek için hayvanı çıkarmadan önce odayı oksijenle yıkayın. İndüksiyon odası bir çeker ocak içine yerleştirilirse, açılmadan önce anestezikleri odadan çıkarmak için oksijenle yıkama gerekli değildir.
  5. Anestezi uygulanmış hayvanın kuyruğunu, tırnağını veya gövdesini kavrayın ve yavaşça hazneden çıkarın.
Yüz maskesi
1. Ekipman, bir kemirgen burun konisi veya maskesi, hassas bir buharlaştırıcı, bir atık gaz temizleme ünitesi (pasif veya aktif) ve bir sıvı anestezik (kullanılan buharlaştırıcı tipine göre belirlenen izofluran, sevofluran veya desfluran) içerir.
2. Hazırlık
  1. Burun konisini veya maskeyi, giriş buharlaştırıcıdan ve çıkış atık gaz temizleme sistemine olacak şekilde monte edin.
  2. Kemirgen anestezik makinelerinde genellikle anestezik buhar dağıtımını indüksiyon odasından kemirgen burun konisine veya maskesine geçirmek için bir geçiş bulunur. Bunun burun konisi anestezik uygulaması için uygun şekilde ayarlandığından emin olun.
3. Indüksiyon
  1. Anestezik gazlar hoş olmayan bir kokuya sahip olduğundan, birçok hayvan indüksiyon için maskelenmeye itiraz edecektir. Tercih edilen yöntem, indüksiyon kutusunun kullanılması ve ardından burun konisi ile bakım yapılmasıdır. Hayvanın burnu veya yüzü maskeye güvenli bir şekilde yerleştirildikten sonra, oksijen akışı başlatılır ve hassas buharlaştırıcı, izofluran için 5 indüksiyon seviyesinde açılır. Daha düşük anestezik uygulama seviyeleri, daha uzun bir indüksiyon süresine ve hayvanın mücadelesinde bir artışa neden olacaktır.
  2. İndüksiyon sırasında çok sıkı bir kavrama boğulmaya neden olabileceğinden, hayvanın solunum açısından izlenmesi zorunludur.
  3. Hayvan gevşemeye başlar başlamaz, burun veya yüz, burun konisi veya maskesi içinde ayarlanabilir ve anestezik uygulama, tam bir rahatlama sağlandıktan sonra izofluran için 1.5-0.5'lik bir bakım seviyesine düşürülür.

2. Enjekte edilebilir anestezikler kullanılarak anestezi indüksiyonu

Enjekte edilebilir anestezikler esas olarak ketamin ve yatıştırıcılar veya kas gevşeticilerin bir karışımıdır.

Yaygın kombinasyonlar şunlardır: 1) Ketamin (100 mg / ml), ksilazin (20 mg / ml), asepromazin (10 mg / ml) ve steril salinden (% 0.9 NaCl) oluşan Kemirgen Kokteyli; 2) ketamin (100 mg / ml), ksilazin (20 mg / ml) ve steril salinden (% 0.9 NaCl) oluşan ketamin / ksilazin 2: 1; ve 3) ketamin (100 mg / ml), ksilazin (20 mg / ml) ve steril salinden (% 0.9 NaCl) oluşan ketamin / ksilazin Fare Karışımı. Ketamin / ksilazin kombinasyonu kullanıldığında, bu ilaçların yarı ömürleri nedeniyle artırma sadece ketamin ile yapılmalı, ksilazin ile değil.

Ketaminin sakinleştiriciler ve / veya kas gevşeticiler ile kombinasyonunun, bireysel dozların alınabileceği bir stok çözeltisi olarak hazırlanması gerekir. Hayvanlara uygun dozların uygulandığından emin olmak için ajanlar hassas bir şekilde ölçülmeli ve steril tuzlu su ile seyreltilmelidir. Ketamin kontrollü bir madde olduğundan, şişelerden kullanılan miktar bir "Kontrollü İlaç Günlüğü" ne not edilmeli ve karışımların ayrı ayrı "Kontrollü Madde Günlükleri" ne sahip olmalıdır. Karışımları hazırlarken, kuvvetle enjekte edilirse köpürme eğiliminde olduğu için ketamini şişeye yavaşça ekleyin. Karışım için steril tıpalı 20 ml'lik bir şişe kullanılır. Şişeler, bileşiklerin adı, karıştırılma tarihi, son kullanma tarihi, ketamin lot numarası (kontrollü bir madde olduğu için) ve önerilen dozaj ile uygun şekilde etiketlenmelidir. Son kullanma tarihi, içeriğin son kullanma tarihine en erken ulaştığı tarihe göre belirlenebilir (tesisin/eyaletin kurallarına/yönergelerine bağlıdır). Ketaminin doğru bir şekilde kayıt altına alınması için hem boş şişenin hem de dolu şişenin tartılması gerekir. Daha sonra, ağırlıklar karışımın etiketine ve her şişe için hazırlanan ayrı Kontrollü Madde Kayıt Defterine kaydedilmelidir. Gücü korumak için ketamin karışımlarını karanlık, sıcaklık kontrollü bir alanda saklayın.

Kemirgen kokteyli hazırlanması
1. Anestezik çözeltinin hazırlanması için ekipman 3 cc şırınga, 12 cc şırınga, 22 g x 1 "iğne, 1.8 cc ketamin enjekte edilebilir 100 mg / ml, 1.8 cc ksilazin enjekte edilebilir 20 mg / ml, 0.6 cc asepromazin enjekte edilebilir 10 mg / ml, enjeksiyon için 15.8 cc steril salin ve bir anestezik etiket.
2. 15.8 cc steril salin çekin ve şişeye enjekte edin. 12 cc şırınga ve 3 cc şırınga kullanın ve doğru ölçümler için hava kabarcıklarını ortadan kaldırın.
3. Şişeye ketamin, ksilazin ve asepromazini ekleyin.
Kemirgen Kokteylinin İndüksiyonu
1. Genel olarak, fare anestezisi için Kemirgen Kokteyli kullanılır. Yetişkin sıçanlarda kemirgen kokteyline verilen yanıttaki değişiklik nedeniyle, en iyi 5 haftalıktaki sıçanlarda kullanılır. Kemirgen Kokteyli, özellikle sıçanlarda inhalasyon anestezisi ile birlikte kullanılabilir.
2. Kemirgen Kokteyli genellikle farelere ağırlıklarına göre şu hesaplama kullanılarak verilir: (BW x 10) - 50 = verilecek mikrolitre Kemirgen Kokteyli. Bu, gerginlik, yaş ve sağlık durumuna göre değişecektir.
3. Bu çözelti sadece intraperitoneal olarak verilir. Kas içine enjekte edilirse, dokuda ciddi bir reaksiyon olabilir.
Ketamin / ksilazin 2: 1 hazırlanması
1. Anestezik çözeltinin hazırlanması için ekipman 3 cc şırınga, 22 g x 1 "iğne, 10 cc ketamin enjekte edilebilir 100 mg / ml, 5 cc ksilazin enjekte edilebilir 20 mg / ml, steril tıpalı 20 ml şişe ve bir anestezik etiket içerir.
2. Ketamin ve ksilazini şişeye ekleyin.
Indüksiyon
1. Ketamin / ksilazin 2: 1, sıçanlar için anestezi için kullanılır ve inhalasyon anestezisi ile birlikte kullanılabilir.
2. Ketamin / ksilazin 2: 1 genellikle 0.3 cc'lik bir dozdan başlayarak verilir ve sonraki anestezik olaylarla 0.02 cc arttırılır. Bu, gerginlik, yaş ve sağlık durumuna göre değişecektir.
3. Ketamin / ksilazin 2: 1 sadece kas içine verilir.
Ketamin / ksilazin Fare Karışımının Hazırlanması
1. Anestezik solüsyonun hazırlanması için gerekli olan Ketamin / ksilazin Fare Karışımı ekipmanı 3 cc şırınga, 22 g x 1" iğne, 3.6 cc ketamin enjekte edilebilir 100 mg / ml, 0.4 cc ksilazin enjekte edilebilir 20 mg / ml, 16 cc steril salin (% 0.9 NaCl), steril tıpalı 20 ml şişe ve bir anestezik etiket.
2. Ketamin ve ksilazini şişeye ekleyin ve ksilazine 9:1 oranında bir ketamin çözeltisi yapın.
3. Salini şişeye ekleyin, böylece tuzlu suya 1:4 ketamin / ksilazin 9:1 karışımı elde edin.
Ketamin / ksilazin Fare Karışımının İndüksiyonu
1. Ketamin / ksilazin Fare Karışımı, inhalasyon anestezisi ile birlikte de kullanılabilir.
2. Ketamin/ksilazin Fare Karışımı genellikle farelere ağırlığa göre aşağıdaki hesaplama kullanılarak verilir: (BW x 10) - 50 = verilecek mikrolitre ketamin/ksilazin Fare Karışımı. Bu, gerginlik, yaş ve sağlık durumuna göre değişecektir.
3. Ketamin / ksilazin Fare Karışımı intraperitoneal olarak verilebilir.

3. Anestezi Değerlendirmesi

Anestezik derinlik, çeşitli uyaranlara verilen yanıtın test edilmesiyle değerlendirilebilir. İstemli hareket, vücudun fiziksel uyaranlarından kaynaklanacaktır. Anestezik derinlik değerlendirmesi için kullanılan fiziksel yöntemlerin bir listesi için Tablo 1'e bakınız.

Yöntem	Prosedür	Yanıt
Ayak parmağı tutam	Bacağını uzatın ve ayak parmakları arasındaki dokumayı izole edin. Bu alan, tırnaklar veya atravmatik forsepsler kullanılarak sıkıca sıkıştırılır.	Pozitif bir refleks, bacağın geri çekilmesi veya ayağın geri çekilmesi ile gösterilir. Bacak veya vücut hareketi, ses çıkarma veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan cerrahi anestezi düzleminde değildir.
Kuyruk tutam	Kuyruk ucu, parmaklar veya atravmatik forseps kullanılarak sıkıştırılır.	Olumlu bir reaksiyon, kuyruğun seğirmesi veya hareketi ile gösterilir. Kuyruğun hareketi, ses çıkarma veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan cerrahi anestezi düzleminde değildir.
Kulak tutam	Parmaklarınızı veya atravmatik forsepsleri kullanarak, kulak kepçesinin ucunu sıkıştırın.	Olumlu bir tepki, başın sallanması veya bıyıkların ileri doğru hareket etmesidir. Başın hareketi, bıyıklar, ses çıkarma veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan cerrahi anestezi düzleminde değildir.
Palpebral refleks	Parmak ucunuzu kullanarak gözün medial kantusuna (iç köşe) dokunun.	Olumlu bir refleks, göz kapaklarına dokunmaya yanıt olarak göz kırpma ile gösterilir. Göz kapaklarında, bıyıklarda hareket varsa veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan cerrahi anestezi düzleminde değildir.
Kornea refleksi	Pamuk uçlu bir aplikatör kullanarak korneaya (göz küresi) hafifçe dokunun.	Olumlu bir yanıt, göz kırpma ile gösterilir. Göz kapaklarında, bıyıklarda hareket varsa veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan yeterince derin bir cerrahi anestezi düzleminde değildir.

Tablo 1. Anestezik derinliği değerlendirmek için fiziksel uyaran yöntemleri. ²

Kalp atış hızı, solunum hızı, kan basıncı, mukoza zarı rengi ve kılcal dolum süresi gibi fizyolojik göstergeler de kullanılmalıdır. Genel gözlemler, hayvanların solunum hızındaki değişiklikleri tespit etmek, kalp atış hızını veya derinlik değerlendirmesi için kan basıncını kullanmak için yararlı olabilirken, özel ekipman gereklidir. Bir elektrokardiyograf mevcutsa, kalp atışlarının hızı ve gücü ölçülebilir. Kan basıncını ölçmek için, kuyruğun üzerine veya hatta tüm vücudun üzerine takılan çeşitli cihazlar vardır. Tablo 1'de tarif edildiği gibi fiziksel uyaranlar, bu parametrelerin üçünde de bir artışa neden olacaktır.

Mukoza zarlarının, gözlerin, kulakların, ağzın, burnun, anüsün ve daha az ölçüde pençelerin ve kuyruğun renginde değişiklikler gözlenir. Alanlar pembe olmalıdır, bu da yeterli solunum ve kalp fonksiyonunu gösterir. Hayvan Evre IV anesteziye geçtiğinde, solunumlar durur ve mukoza zarlarına ve çevresindeki deriye mavi veya gri renkle gösterilen siyanoz ile sonuçlanır.

Kılcal damar doldurma süresi, alan üzerine basınç uygulanarak beyazlatıldıktan sonra rengin harici bir kılcal yatağa geri dönmesi için geçen süre olarak tanımlanır. Anestezi uygulanan hayvanların diş etlerine, kulak kepçesine veya tırnak yataklarına bir aplikatör çubuğu veya parmak bastırılır. Beyazlamış bölgenin pembe renge dönmesi için geçen saniye sayısı 1-2 saniyeden fazla olmamalıdır. Uzatılmış bir yeniden doldurma süresi, kalp atış hızında veya kardiyak kasılmaların gücünde bir azalma olduğunu gösterir, bu da hayvanın çok derin anestezi altında ve ölüme yakın olabileceğini gösterir.

Anestezik derinliği değerlendirmek için birkaç farklı parametre kullanmak önemlidir. Tekrarlanan çimdikler için aynı ayak parmağını veya kulağı kullanmak bölgeyi duyarsızlaştıracak ve yanıt bastırılacak ve anestezik derinliğin doğru bir değerlendirmesini vermeyecektir. Ayak parmağı ve kulak sıkışması değerlendirmeleri için alternatif bölgeler kullanın. Anestezi derinliği ameliyat boyunca her 10-30 dakikada bir yeniden değerlendirilmelidir. ²

Çalışmalar, anestezi uygulanmış bir hayvanda kardiyorespiratuar değişiklikler olduğunu göstermiştir. Enjekte edilebilir ilaçlarla uyuşturulurken, hayvanlar stabil bir solunum hızı yaşarlar; bununla birlikte, kardiyak debide değişkenlik gösterirler. Enjekte edilebilir anesteziklere verilen yanıtın farklı suşlar arasında büyük farklılıklar gösterdiği bildirilmiştir, bu nedenle dozajı standardize etmek zordur. ⁷ Uçucu ajanlar solunum hızını düşürme eğilimindedir, ancak kardiyovasküler sistem üzerinde daha az etkiye sahiptir. İnhalan anestezinin dozu, işlem süresi boyunca kolayca ayarlandığından, sıklıkla tercih edilen yöntemdir.