-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Science Education
Basic Biology
Anestezi İndüksiyonu ve Bakımı
Anestezi İndüksiyonu ve Bakımı
JoVE Science Education
Lab Animal Research
A subscription to JoVE is required to view this content.  Sign in or start your free trial.
JoVE Science Education Lab Animal Research
Anesthesia Induction and Maintenance

5.12: Anestezi İndüksiyonu ve Bakımı

55,240 Views
12:35 min
August 24, 2015
AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

Kaynak: Kay Stewart, RVT, RLATG, CMAR; Valerie A. Schroeder, RVT, RLATG. Notre Dame Üniversitesi, IN

Laboratuvar Hayvanlarının Bakımı ve Kullanımı Kılavuzu ("Kılavuz"), ağrı değerlendirmesi ve hafifletmenin laboratuvar hayvanlarının veteriner bakımının ayrılmaz bir parçası olduğunu belirtir. 1 Anestezinin tanımı, his veya his kaybıdır. Bir hayvanın metabolizmasına, cerrahi stimülasyonuna veya dış ortamdaki değişikliklere göre anestezik derinlikteki değişiklikleri içeren dinamik bir olaydır.

Procedure

Cerrahi ve diğer potansiyel olarak ağrılı prosedürler için uygun anestezik seçimi bir veteriner tarafından belirlenmelidir. Bu, prosedürün kapsamı ve süresi, tür ve suş, yaş ve hayvanın fizyolojik durumu dahil olmak üzere çok sayıda hususa dayanmaktadır.

Anestezikler inhalanlar veya enjektabllar olarak mevcuttur. Cerrahi anestezi, enjekte edilebilir ve inhalan anesteziklerin bir kombinasyonu kullanılarak gerçekleştirilebilir. 2

1. İnhalan anestezi indüksiyonu

Uçucu anestezi, izofluran, sevofluran ve desfluran içerir ve izofluran en yaygın olarak kullanılır. Bu anestezikler daha sık kullanılır, çünkü onlarla anestezi derinliğini kontrol etmek daha kolaydır. İnhalasyon anestezikleri kullanılarak anestezi indüksiyonu, bir çan kavanozu veya hassas bir buharlaştırıcıya takılmış bir indüksiyon odası ile gerçekleştirilebilir.

  1. Çan kavanozu
    1. Ekipman: Seramik veya plastik delikli platformlu bir dolmalık kavanoz veya kurutma kavanozu, bir pamuk topu, bir sıvı anestezik (izofluran, sevofluran veya desfluran) ve dış mekana havalandırılan bir davlumbaz.
    2. Hazırlık
      1. Personelin anestezik gazlara maruz kalmasını önlemek için çan kavanozunu tezgahın üzerinde değil, bir kaputun altında kullanın.
      2. Çan kavanozunu, platform altta olacak şekilde birleştirin ve kavanozun tabanı ile platform arasında bir boşluk yaratın. Bu, hayvanın sıvı anestezik ile temas etmesini önlemek için gereklidir.
      3. Nitril eldiven veya diğer geçirimsiz eldivenler giyerek pamuğu anestezik ile doyurun.
      4. Pamuk topunu platformun altına çan kavanozuna yerleştirin.
      5. Anestezik buharın kaçmasını önlemek için kapağı çan kavanozuna sabitleyin.
    3. Indüksiyon
      1. Kapağı bir tarafa kaydırarak hayvanı çan kavanozuna yerleştirin.
      2. Hayvan kavanoza girdikten sonra, anestezi derinliğini belirlemek için aktivitesini ve solunumunu gözlemlemek gerekecektir.
      3. Hayvan, etki etmek için anesteziye maruz bırakılır.
      4. Hayvan tamamen uyuşturulduktan sonra, kapağı bir tarafa kaydırın ve bir elin girmesine izin verecek kadar boşluk bırakın. Anestezi uygulanmış hayvanın kuyruğunu, tırnağını veya gövdesini kavrayın ve yavaşça çan kavanozundan çıkarın.
  2. Hassas buharlaştırıcılar
    Hassas buharlaştırıcılar, bir indüksiyon odası veya bir yüz maskesi ile kullanılabilir. Anestezi makinesi her işlemden önce kontrol edilmelidir. Seviyeler düşükse uygun anestezik eklenmelidir. Atık gazların tamamen uzaklaştırıldığından emin olmak için süpürme sistemi kontrol edilmelidir. Pasif atık gaz anestezi sistemleri için, hala etkili olup olmadığını belirlemek için süpürme kabı tartılmalıdır. Genel olarak, başlangıç ağırlığının 50 gram üzerinde bir ağırlık artışı, teneke kutunun harcandığı noktadır.
    1. Ekipman
      1. Bir indüksiyon odası, hassas bir buharlaştırıcı, bir atık gaz temizleme ünitesi (pasif veya aktif) ve bir sıvı anestezik (kullanılan buharlaştırıcı tipine göre belirlenen izofluran, sevofluran veya desfluran).
    2. Hazırlık
      1. İndüksiyon odasını, giriş buharlaştırıcıdan ve çıkış atık gaz temizleme sistemine olacak şekilde monte edin.
    3. Indüksiyon
      1. Hayvanı indüksiyon odasına yerleştirin. Bazı odaların sürgülü bir kapağı vardır ve diğerlerinde kilitlenen menteşeli bir kapak bulunur.
      2. Hayvan odaya girdikten sonra, oksijen akışı başlatılır ve hassas buharlaştırıcı, izofluran için 3-4 indüksiyon seviyesinde açılır. Daha düşük anestezik uygulama seviyeleri, daha uzun bir indüksiyon süresi ile sonuçlanacaktır.
      3. Hayvan, etki etmek için anesteziye maruz bırakılır.
      4. Hayvan tamamen anestezi altına alındıktan sonra, personelin anestezik gazlara maruz kalmasını önlemek için hayvanı çıkarmadan önce odayı oksijenle yıkayın. İndüksiyon odası bir çeker ocak içine yerleştirilirse, açılmadan önce anestezikleri odadan çıkarmak için oksijenle yıkama gerekli değildir.
      5. Anestezi uygulanmış hayvanın kuyruğunu, tırnağını veya gövdesini kavrayın ve yavaşça hazneden çıkarın.
  3. Yüz maskesi
    1. Ekipman, bir kemirgen burun konisi veya maskesi, hassas bir buharlaştırıcı, bir atık gaz temizleme ünitesi (pasif veya aktif) ve bir sıvı anestezik (kullanılan buharlaştırıcı tipine göre belirlenen izofluran, sevofluran veya desfluran) içerir.
    2. Hazırlık
      1. Burun konisini veya maskeyi, giriş buharlaştırıcıdan ve çıkış atık gaz temizleme sistemine olacak şekilde monte edin.
      2. Kemirgen anestezik makinelerinde genellikle anestezik buhar dağıtımını indüksiyon odasından kemirgen burun konisine veya maskesine geçirmek için bir geçiş bulunur. Bunun burun konisi anestezik uygulaması için uygun şekilde ayarlandığından emin olun.
    3. Indüksiyon
      1. Anestezik gazlar hoş olmayan bir kokuya sahip olduğundan, birçok hayvan indüksiyon için maskelenmeye itiraz edecektir. Tercih edilen yöntem, indüksiyon kutusunun kullanılması ve ardından burun konisi ile bakım yapılmasıdır. Hayvanın burnu veya yüzü maskeye güvenli bir şekilde yerleştirildikten sonra, oksijen akışı başlatılır ve hassas buharlaştırıcı, izofluran için 5 indüksiyon seviyesinde açılır. Daha düşük anestezik uygulama seviyeleri, daha uzun bir indüksiyon süresine ve hayvanın mücadelesinde bir artışa neden olacaktır.
      2. İndüksiyon sırasında çok sıkı bir kavrama boğulmaya neden olabileceğinden, hayvanın solunum açısından izlenmesi zorunludur.
      3. Hayvan gevşemeye başlar başlamaz, burun veya yüz, burun konisi veya maskesi içinde ayarlanabilir ve anestezik uygulama, tam bir rahatlama sağlandıktan sonra izofluran için 1.5-0.5'lik bir bakım seviyesine düşürülür.

2. Enjekte edilebilir anestezikler kullanılarak anestezi indüksiyonu

Enjekte edilebilir anestezikler esas olarak ketamin ve yatıştırıcılar veya kas gevşeticilerin bir karışımıdır.

Yaygın kombinasyonlar şunlardır: 1) Ketamin (100 mg / ml), ksilazin (20 mg / ml), asepromazin (10 mg / ml) ve steril salinden (% 0.9 NaCl) oluşan Kemirgen Kokteyli; 2) ketamin (100 mg / ml), ksilazin (20 mg / ml) ve steril salinden (% 0.9 NaCl) oluşan ketamin / ksilazin 2: 1; ve 3) ketamin (100 mg / ml), ksilazin (20 mg / ml) ve steril salinden (% 0.9 NaCl) oluşan ketamin / ksilazin Fare Karışımı. Ketamin / ksilazin kombinasyonu kullanıldığında, bu ilaçların yarı ömürleri nedeniyle artırma sadece ketamin ile yapılmalı, ksilazin ile değil.

Ketaminin sakinleştiriciler ve / veya kas gevşeticiler ile kombinasyonunun, bireysel dozların alınabileceği bir stok çözeltisi olarak hazırlanması gerekir. Hayvanlara uygun dozların uygulandığından emin olmak için ajanlar hassas bir şekilde ölçülmeli ve steril tuzlu su ile seyreltilmelidir. Ketamin kontrollü bir madde olduğundan, şişelerden kullanılan miktar bir "Kontrollü İlaç Günlüğü" ne not edilmeli ve karışımların ayrı ayrı "Kontrollü Madde Günlükleri" ne sahip olmalıdır. Karışımları hazırlarken, kuvvetle enjekte edilirse köpürme eğiliminde olduğu için ketamini şişeye yavaşça ekleyin. Karışım için steril tıpalı 20 ml'lik bir şişe kullanılır. Şişeler, bileşiklerin adı, karıştırılma tarihi, son kullanma tarihi, ketamin lot numarası (kontrollü bir madde olduğu için) ve önerilen dozaj ile uygun şekilde etiketlenmelidir. Son kullanma tarihi, içeriğin son kullanma tarihine en erken ulaştığı tarihe göre belirlenebilir (tesisin/eyaletin kurallarına/yönergelerine bağlıdır). Ketaminin doğru bir şekilde kayıt altına alınması için hem boş şişenin hem de dolu şişenin tartılması gerekir. Daha sonra, ağırlıklar karışımın etiketine ve her şişe için hazırlanan ayrı Kontrollü Madde Kayıt Defterine kaydedilmelidir. Gücü korumak için ketamin karışımlarını karanlık, sıcaklık kontrollü bir alanda saklayın.

  1. Kemirgen kokteyli hazırlanması
    1. Anestezik çözeltinin hazırlanması için ekipman 3 cc şırınga, 12 cc şırınga, 22 g x 1 "iğne, 1.8 cc ketamin enjekte edilebilir 100 mg / ml, 1.8 cc ksilazin enjekte edilebilir 20 mg / ml, 0.6 cc asepromazin enjekte edilebilir 10 mg / ml, enjeksiyon için 15.8 cc steril salin ve bir anestezik etiket.
    2. 15.8 cc steril salin çekin ve şişeye enjekte edin. 12 cc şırınga ve 3 cc şırınga kullanın ve doğru ölçümler için hava kabarcıklarını ortadan kaldırın.
    3. Şişeye ketamin, ksilazin ve asepromazini ekleyin.
  2. Kemirgen Kokteylinin İndüksiyonu
    1. Genel olarak, fare anestezisi için Kemirgen Kokteyli kullanılır. Yetişkin sıçanlarda kemirgen kokteyline verilen yanıttaki değişiklik nedeniyle, en iyi 5 haftalıktaki sıçanlarda kullanılır. Kemirgen Kokteyli, özellikle sıçanlarda inhalasyon anestezisi ile birlikte kullanılabilir.
    2. Kemirgen Kokteyli genellikle farelere ağırlıklarına göre şu hesaplama kullanılarak verilir: (BW x 10) - 50 = verilecek mikrolitre Kemirgen Kokteyli. Bu, gerginlik, yaş ve sağlık durumuna göre değişecektir.
    3. Bu çözelti sadece intraperitoneal olarak verilir. Kas içine enjekte edilirse, dokuda ciddi bir reaksiyon olabilir.
  3. Ketamin / ksilazin 2: 1 hazırlanması
    1. Anestezik çözeltinin hazırlanması için ekipman 3 cc şırınga, 22 g x 1 "iğne, 10 cc ketamin enjekte edilebilir 100 mg / ml, 5 cc ksilazin enjekte edilebilir 20 mg / ml, steril tıpalı 20 ml şişe ve bir anestezik etiket içerir.
    2. Ketamin ve ksilazini şişeye ekleyin.
  4. Indüksiyon
    1. Ketamin / ksilazin 2: 1, sıçanlar için anestezi için kullanılır ve inhalasyon anestezisi ile birlikte kullanılabilir.
    2. Ketamin / ksilazin 2: 1 genellikle 0.3 cc'lik bir dozdan başlayarak verilir ve sonraki anestezik olaylarla 0.02 cc arttırılır. Bu, gerginlik, yaş ve sağlık durumuna göre değişecektir.
    3. Ketamin / ksilazin 2: 1 sadece kas içine verilir.
  5. Ketamin / ksilazin Fare Karışımının Hazırlanması
    1. Anestezik solüsyonun hazırlanması için gerekli olan Ketamin / ksilazin Fare Karışımı ekipmanı 3 cc şırınga, 22 g x 1" iğne, 3.6 cc ketamin enjekte edilebilir 100 mg / ml, 0.4 cc ksilazin enjekte edilebilir 20 mg / ml, 16 cc steril salin (% 0.9 NaCl), steril tıpalı 20 ml şişe ve bir anestezik etiket.
    2. Ketamin ve ksilazini şişeye ekleyin ve ksilazine 9:1 oranında bir ketamin çözeltisi yapın.
    3. Salini şişeye ekleyin, böylece tuzlu suya 1:4 ketamin / ksilazin 9:1 karışımı elde edin.
  6. Ketamin / ksilazin Fare Karışımının İndüksiyonu
    1. Ketamin / ksilazin Fare Karışımı, inhalasyon anestezisi ile birlikte de kullanılabilir.
    2. Ketamin/ksilazin Fare Karışımı genellikle farelere ağırlığa göre aşağıdaki hesaplama kullanılarak verilir: (BW x 10) - 50 = verilecek mikrolitre ketamin/ksilazin Fare Karışımı. Bu, gerginlik, yaş ve sağlık durumuna göre değişecektir.
    3. Ketamin / ksilazin Fare Karışımı intraperitoneal olarak verilebilir.

3. Anestezi Değerlendirmesi

Anestezik derinlik, çeşitli uyaranlara verilen yanıtın test edilmesiyle değerlendirilebilir. İstemli hareket, vücudun fiziksel uyaranlarından kaynaklanacaktır. Anestezik derinlik değerlendirmesi için kullanılan fiziksel yöntemlerin bir listesi için Tablo 1'e bakınız.

Yöntem Prosedür Yanıt
Ayak parmağı tutam Bacağını uzatın ve ayak parmakları arasındaki dokumayı izole edin. Bu alan, tırnaklar veya atravmatik forsepsler kullanılarak sıkıca sıkıştırılır. Pozitif bir refleks, bacağın geri çekilmesi veya ayağın geri çekilmesi ile gösterilir. Bacak veya vücut hareketi, ses çıkarma veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan cerrahi anestezi düzleminde değildir.
Kuyruk tutam Kuyruk ucu, parmaklar veya atravmatik forseps kullanılarak sıkıştırılır. Olumlu bir reaksiyon, kuyruğun seğirmesi veya hareketi ile gösterilir. Kuyruğun hareketi, ses çıkarma veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan cerrahi anestezi düzleminde değildir.
Kulak tutam Parmaklarınızı veya atravmatik forsepsleri kullanarak, kulak kepçesinin ucunu sıkıştırın. Olumlu bir tepki, başın sallanması veya bıyıkların ileri doğru hareket etmesidir. Başın hareketi, bıyıklar, ses çıkarma veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan cerrahi anestezi düzleminde değildir.
Palpebral refleks Parmak ucunuzu kullanarak gözün medial kantusuna (iç köşe) dokunun. Olumlu bir refleks, göz kapaklarına dokunmaya yanıt olarak göz kırpma ile gösterilir. Göz kapaklarında, bıyıklarda hareket varsa veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan cerrahi anestezi düzleminde değildir.
Kornea refleksi Pamuk uçlu bir aplikatör kullanarak korneaya (göz küresi) hafifçe dokunun. Olumlu bir yanıt, göz kırpma ile gösterilir. Göz kapaklarında, bıyıklarda hareket varsa veya solunumda belirgin bir artış varsa, hayvan yeterince derin bir cerrahi anestezi düzleminde değildir.

Tablo 1. Anestezik derinliği değerlendirmek için fiziksel uyaran yöntemleri. 2

Kalp atış hızı, solunum hızı, kan basıncı, mukoza zarı rengi ve kılcal dolum süresi gibi fizyolojik göstergeler de kullanılmalıdır. Genel gözlemler, hayvanların solunum hızındaki değişiklikleri tespit etmek, kalp atış hızını veya derinlik değerlendirmesi için kan basıncını kullanmak için yararlı olabilirken, özel ekipman gereklidir. Bir elektrokardiyograf mevcutsa, kalp atışlarının hızı ve gücü ölçülebilir. Kan basıncını ölçmek için, kuyruğun üzerine veya hatta tüm vücudun üzerine takılan çeşitli cihazlar vardır. Tablo 1'de tarif edildiği gibi fiziksel uyaranlar, bu parametrelerin üçünde de bir artışa neden olacaktır.

Mukoza zarlarının, gözlerin, kulakların, ağzın, burnun, anüsün ve daha az ölçüde pençelerin ve kuyruğun renginde değişiklikler gözlenir. Alanlar pembe olmalıdır, bu da yeterli solunum ve kalp fonksiyonunu gösterir. Hayvan Evre IV anesteziye geçtiğinde, solunumlar durur ve mukoza zarlarına ve çevresindeki deriye mavi veya gri renkle gösterilen siyanoz ile sonuçlanır.

Kılcal damar doldurma süresi, alan üzerine basınç uygulanarak beyazlatıldıktan sonra rengin harici bir kılcal yatağa geri dönmesi için geçen süre olarak tanımlanır. Anestezi uygulanan hayvanların diş etlerine, kulak kepçesine veya tırnak yataklarına bir aplikatör çubuğu veya parmak bastırılır. Beyazlamış bölgenin pembe renge dönmesi için geçen saniye sayısı 1-2 saniyeden fazla olmamalıdır. Uzatılmış bir yeniden doldurma süresi, kalp atış hızında veya kardiyak kasılmaların gücünde bir azalma olduğunu gösterir, bu da hayvanın çok derin anestezi altında ve ölüme yakın olabileceğini gösterir.

Anestezik derinliği değerlendirmek için birkaç farklı parametre kullanmak önemlidir. Tekrarlanan çimdikler için aynı ayak parmağını veya kulağı kullanmak bölgeyi duyarsızlaştıracak ve yanıt bastırılacak ve anestezik derinliğin doğru bir değerlendirmesini vermeyecektir. Ayak parmağı ve kulak sıkışması değerlendirmeleri için alternatif bölgeler kullanın. Anestezi derinliği ameliyat boyunca her 10-30 dakikada bir yeniden değerlendirilmelidir. 2

Çalışmalar, anestezi uygulanmış bir hayvanda kardiyorespiratuar değişiklikler olduğunu göstermiştir. Enjekte edilebilir ilaçlarla uyuşturulurken, hayvanlar stabil bir solunum hızı yaşarlar; bununla birlikte, kardiyak debide değişkenlik gösterirler. Enjekte edilebilir anesteziklere verilen yanıtın farklı suşlar arasında büyük farklılıklar gösterdiği bildirilmiştir, bu nedenle dozajı standardize etmek zordur. 7 Uçucu ajanlar solunum hızını düşürme eğilimindedir, ancak kardiyovasküler sistem üzerinde daha az etkiye sahiptir. İnhalan anestezinin dozu, işlem süresi boyunca kolayca ayarlandığından, sıklıkla tercih edilen yöntemdir.

Anestezi, indüksiyon ve idame, herhangi bir cerrahi prosedür geçiren laboratuvar hayvanlarının veteriner bakımının ayrılmaz bir bileşenini oluşturur. Anestezinin amacı, hayvanı yeterince hareketsiz hale getirmek ve tüm ağrı hissini hafifletmektir. İndüksiyona ek olarak, prosedür boyunca doğru anestezik derinliğini güvenli bir şekilde korumak için hassas ve sürekli izleme gereklidir.

Bu videoda öncelikle kemirgen anestezisinin seviyelerini ve hangi aşamaya ulaşılması gerektiğini kısaca tartışacağız. Daha sonra, farklı indüksiyon ve bakım yöntemlerini, hayvanın her zaman istenen anestezik aşamada olmasını sağlamanın çeşitli yollarını ve son olarak çeşitli amaçlar için farklı anesteziklerin kullanımını içeren birkaç gerçek dünya deneyini gözden geçireceğiz.

Seviyeleri tartışarak başlayalım. Anestezinin dört aşaması ve üçüncü aşama veya cerrahi aşama içinde dört düzlem vardır.

Birinci aşamada, hayvanın yönünü şaşırır. İkinci aşama, düzensiz solunum hızı ve doğrultma refleksinin kaybı ile işaretlenir. Üçüncü aşamanın birinci düzleminde, palpebral ve yutma refleksleri yoktur. İkinci düzlem sırasında, gırtlak ve kornea refleksleri kaybolur. Bu noktaya kadar, anestezik amnezi veya analjeziye neden olmamıştır.

Üçüncü düzlemde amnezi ve analjezi parsiyelden kompleye doğru ilerler ve hayvan cerrahi bir prosedür için tamamen uyuşturulur. Üçüncü düzlem ayrıca interkostal kasların felci ile de gösterilir, bu da sığ solunum olan diyafram solunumu ile sonuçlanır. Dördüncü düzlemde, hayvan aşırı dozda alınmıştır ve hem interkostal kasların hem de diyaframın tamamen felç olduğu, solunum durmasına neden olabilen ve sonuçta ölüme yol açabilen dördüncü aşamaya hızla ilerleyebilir.

Anestezikler inhalan veya enjekte edilebilir olarak mevcuttur ve bir veteriner yapılacak prosedür için ne kullanılacağına karar vermelidir. Bu seçim, prosedürün kapsamı ve süresi, tür ve suş, yaş ve hayvanın fizyolojik durumu dahil olmak üzere çok sayıda hususa dayanmaktadır.

Yaygın olarak kullanılan inhalan anestezikler sınıfı, İzofluran, Sevofluran ve Desfluran gibi bileşikleri içerir. Bu bileşikler anestezi derinliğinin kolay kontrol edilmesini sağlar. Ekipmanda inhalan anestezikleri uygulamak için seçilebilecek birkaç seçenek vardır.

Seçeneklerden biri, personelin anestezik gazlara maruz kalmasını önlemek için kaputun altında - tezgahta değil - kullanılması gereken bir çan kavanozudur. Kavanozu, kavanozun tabanı ile platform arasında bir boşluk yaratacak şekilde seramik veya plastik delikli bir platformla birleştirin. Daha sonra, geçirimsiz eldivenler giyerken, bir pamuğu anestezikle doyurun ve kavanozun dibinde duracak şekilde platformun altına yerleştirin. Ardından, anestezik buharın kaçmasını önlemek için kapağı hemen sabitleyin. Hayvanı yerleştirmek için kapağı bir tarafa kaydırın, hayvanı tanıtın ve hemen sabitleyin. Bunu takiben, anestezi derinliğini belirlemek için aktiviteyi ve solunumu gözlemleyin ve hayvanı inhalana maruz bırakın etkisi. Platformun bir bariyer görevi gördüğünü ve hayvanın sıvı anestezik ile doğrudan temas etmesini önlediğini unutmayın.

Çan kavanozuna bir alternatif, bir oksijen tankına bağlı hassas bir buharlaştırıcı makine ile birlikte kullanılan bir indüksiyon odasıdır. İlk adım, buharlaştırıcının uygun miktarda sıvı anestezik ile doldurulmasını sağlamaktır. Ardından, atık gaz temizleme sistemini kontrol edin. Yaygın olarak kullanılan pasif sistemse, hala etkili olup olmadığını belirlemek için kutuyu tartın. Genel olarak, başlangıç ağırlığının elli gramlık bir artışı, teneke kutunun harcandığı noktadır. Bir sonraki adım, indüksiyon odasını monte etmektir. Girişin buharlaştırıcıdan ve çıkışın atık gaz temizleme sistemine olduğundan emin olun.

Başlamak için, hayvanı indüksiyon odasına yerleştirin ve kapağı sabitleyin. Hayvan odaya girdikten sonra, önce oksijen akışını dakikada 1 litre hızında başlatın ve ardından hassas buharlaştırıcı ayarını izofluran için %3-4'lük bir indüksiyon seviyesine ayarlayın. Dolmalık kavanoz gibi, hayvanı anestezik etkisine maruz bırakın. Hayvan tamamen anestezi uygulandıktan sonra, hayvanı nazikçe çıkarmadan önce izofluranı kapatarak odayı oksijenle yıkayın. Bu, personelin anestezik gazlara maruz kalmasını önlemek içindir.

Anestezi indüksiyonu için başka bir yöntem, yine hassas buharlaştırıcıya bağlı burun konisi veya yüz maskesidir. Bununla birlikte, anestezik gazların hoş olmayan bir kokusu olduğundan, hayvanlar indüksiyon için maskelenmeye itiraz edebilirler. Ek olarak, çok sıkı kavrama nedeniyle boğulmaya neden olma riski de vardır. Bu nedenle, tercih edilen yöntem, anesteziyi indüklemek için indüksiyon kutusunu veya çan kavanozunu kullanmak ve ardından burun konisi ile bakım yapmaktır. Çoğu zaman, montaj, koni ve indüksiyon odasının her ikisi de aynı buharlaştırıcıya, anestezik buhar dağıtımını indüksiyon odasından burun konisine ve bunun tersi yönde değiştirmek için aralarında bir geçiş ile bağlanacak şekildedir. Hayvanı haznede uyuşturduktan sonra, yüzünü koniye sabitleyin ve gaz akışını burun konisine yönlendirmek için borudaki geçişi değiştirin. Solunumu izleyin ve hayvanın rahatladığını onayladıktan sonra anestezik% 0,5 - 1,5'lik bir bakım seviyesine düşürün. Ayrıca, kornea kurumasını önlemek için gözlere oftalmik merhem sürün.

Enjekte edilebilir anestezikler için, Ketamin ve diğer yatıştırıcıların bir karışımı veya Xylazine ve / veya Asepromazin dahil kas gevşeticiler. Bu bileşikler kullanılarak farklı kombinasyonlar hazırlanabilir. Yaygın olarak kullanılan oranlar için aşağıdaki metne bakın. Ketaminin kontrollü bir madde olduğunu ve bu nedenle kullanılan miktarın Kontrollü İlaç Günlüğüne not edilmesi gerektiğini ve karışımların kendi Kontrollü Madde Günlüklerine sahip olması gerektiğini unutmayın. Hayvanın türüne, yaşına ve sağlık durumuna bağlı olarak, anestezik karışım ve dozu seçilir ve çözelti intraperitoneal veya intramüsküler olarak enjekte edilebilir. Genellikle, cerrahi anestezi elde etmek için enjeksiyon ve inhalasyon anestezikleri kombinasyon halinde kullanılır.

Artık anesteziyi nasıl indükleyeceğinizi bildiğinize göre, işlem sırasında hayvanın zarar görmemesini sağlamak için her 10-30 dakikada bir izlenmesi önemli olan anestezik derinlik değerlendirmesi hakkında bilgi edinelim. Kemirgenlerde bunu yapmanın birkaç yöntemi vardır.

Yaygın olarak kullanılan bir yöntem ayak parmağını sıkıştırmadır. Hayvanın bacağını uzatın ve ayak parmakları arasındaki dokumayı izole edin. Ardından tırnaklarınızı veya atravmatik forsepsleri kullanarak bölgeyi sıkıca sıkıştırın. Pozitif bir refleks, bacağın geri çekilmesi veya ayağın geri çekilmesi ile gösterilir. Bir diğer yöntem ise kuyruğun uç kısmında yapılan kuyruk kıstırma işlemidir. Olumlu bir reaksiyon, seğirme veya kuyruk hareketi ile gösterilir. Ayrıca kulak kepçesinin ucunu da sıkıştırabilirsiniz ve başın sallanması veya bıyıkların öne doğru hareket etmesi durumunda, hayvan anestezi cerrahi düzleminde değildir.

Anestezi derinliğini kontrol etmek için, göz kapaklarına dokunmaya yanıt olarak göz kırpma ile gösterilen palpebral refleksi ortaya çıkarmak için medial kantusa veya gözün iç köşesine de dokunulabilir. Göz kapaklarında, bıyıklarda hareket olsa veya solunumda belirgin bir artış olsa bile, hayvan anestezinin cerrahi düzleminde değildir.

Son olarak, korneaya eldivenli parmakla veya pamuk uçlu bir aplikatörle dokunarak kornea refleksi kontrol edilebilir. Olumlu bir yanıt, göz kırpma ile gösterilir.

Anestezik derinliği değerlendirmek için bölgeler arasında geçiş yapmak önemlidir. Tekrarlanan çimdikler için aynı ayak parmağını veya kulağı kullanmak bölgeyi duyarsızlaştıracak ve yanıt bastırılacak ve anestezik derinliğin doğru bir değerlendirmesini vermeyecektir.

Bu fiziksel uyaran değerlendirme yöntemlerine ek olarak, kalp atış hızı, solunum hızı, kan basıncı, mukoza zarı rengi ve kılcal dolum süresi gibi fizyolojik göstergeler de izlenmelidir. Genel gözlemler, solunum hızındaki değişiklikleri tespit etmek için yararlı olabilirken, derinlik değerlendirmesi için kalp atış hızını kullanmak için elektrokardiyograf gibi özel ekipmanlar kullanılabilir. Kan basıncını ölçmek için, kuyruğun üzerine veya hatta tüm vücudun üzerine takılabilen çeşitli cihazlar vardır. Mukoza zarlarının, gözlerin, kulakların, ağzın, burnun, anüsün, pençelerin ve kuyruğun rengi de anestezik derinliği gösterebilir. Bu alanlar pembe olmalıdır, bu da yeterli solunum ve kalp atış hızını düşündürür.

Kılcal dolum süresini kontrol etmek için, anestezi uygulanmış hayvanların kulak kepçesine bastırın ve beyazlatılmış alanın pembe renge dönmesi için geçen saniye sayısını sayın. Bu 1 ila 2 saniyeden fazla olmamalıdır. Uzatılmış bir yeniden doldurma süresi, kalp atış hızında veya kardiyak kasılma gücünde bir azalma olduğunu gösterir, bu da hayvanın çok derin anestezi altında ve ölüme yakın olabileceğini gösterir. Hayvan anesteziden çıkarıldıktan sonra, barınak alanında sürekli olarak izlenmedikçe anesteziden kurtulana kadar barınma tesisine geri gönderilmemelidir.

Artık kemirgen anestezi indüksiyonu ve bakımının ilkelerini ve prosedürlerini öğrendiğimize göre, günümüzde biyomedikal araştırmalarda anesteziklerin sık görülen uygulamalarından bazılarına bakalım.

Muhtemelen kemirgen anestezisi için en yaygın kullanım ameliyattan önce ve ameliyat sırasındadır. Örneğin, burada araştırmacılar beyinde pıhtı oluşumunun neden olduğu bir felç modeli geliştirmek istediler. Bunu başarmak için, farelerde anesteziye neden oldular ve daha sonra ince bir pencere oluşturmak için kafatasını deldiler. Ve hayvan hala sakinleştirilirken, bu bilim adamları dolaşıma ışığa duyarlı bir boya enjekte ettiler. Daha sonra, kraniyal vaskülatürde bir pıhtı oluşumuna neden olmak için delinmiş kafatasından bir lazer yardımıyla fotoaktivasyonu indüklediler.

Kemirgen anestezisinin gerekli olduğu bir başka durum da fizyolojik analiz yapmaktır. Örneğin, bilim adamları genellikle kalp aktivitesini izlemek için anestezi uygulanmış hayvanlar üzerinde EKG elektrotları kullanırlar. Veya solunum hızını daha doğru bir şekilde ölçmek için diyafram hareket hızını belirlemek için ultrason probları kullanırlar.

Son olarak, rahim deneylerinde sağkalım yapılırken anestezi kullanımı zorunludur. Örneğin, in utero elektroporasyon -- hamile bir kadının uyuşturulduğu, gelişmekte olan embriyoları ortaya çıkarmak için bir kesi yapıldığı ve enjekte edilen genetik materyalin embriyonik hücresel alımını indüklemek için elektrotların kullanıldığı bir yöntem.

Az önce JoVE'nin anestezi uygulaması ve bakımı ile ilgili videosunu izlediniz. Kemirgen anestezisi bu kadar geniş bir yelpazede biyolojik deneylerin yürütülmesini kolaylaştırdığından, her bilim adamının bir deney boyunca doğru anestezik derinliği indükleme ve sürdürme becerisine sahip olması zorunludur. Her zaman olduğu gibi, izlediğiniz için teşekkürler!

Transcript

Anestezi, indüksiyon ve idame, herhangi bir cerrahi prosedür geçiren laboratuvar hayvanlarının veteriner bakımının ayrılmaz bir bileşenini oluşturur. Anestezinin amacı, hayvanı yeterince hareketsiz hale getirmek ve tüm ağrı hissini hafifletmektir. İndüksiyona ek olarak, prosedür boyunca doğru anestezik derinliğini güvenli bir şekilde korumak için hassas ve sürekli izleme gereklidir.

Bu videoda öncelikle kemirgen anestezisinin seviyelerini ve hangi aşamaya ulaşılması gerektiğini kısaca tartışacağız. Daha sonra, farklı indüksiyon ve bakım yöntemlerini, hayvanın her zaman istenen anestezik aşamada olmasını sağlamanın çeşitli yollarını ve son olarak çeşitli amaçlar için farklı anesteziklerin kullanımını içeren birkaç gerçek dünya deneyini gözden geçireceğiz.

Seviyeleri tartışarak başlayalım. Anestezinin dört aşaması ve üçüncü aşama veya cerrahi aşama içinde dört düzlem vardır.

Birinci aşamada, hayvanın yönünü şaşırır. İkinci aşama, düzensiz solunum hızı ve doğrultma refleksinin kaybı ile işaretlenir. Üçüncü aşamanın birinci düzleminde, palpebral ve yutma refleksleri yoktur. İkinci düzlem sırasında, gırtlak ve kornea refleksleri kaybolur. Bu noktaya kadar, anestezik amnezi veya analjeziye neden olmamıştır.

Üçüncü düzlemde amnezi ve analjezi parsiyelden kompleye doğru ilerler ve hayvan cerrahi bir prosedür için tamamen uyuşturulur. Üçüncü düzlem ayrıca interkostal kasların felci ile de gösterilir, bu da sığ solunum olan diyafram solunumu ile sonuçlanır. Dördüncü düzlemde, hayvan aşırı dozda alınmıştır ve hem interkostal kasların hem de diyaframın tamamen felç olduğu, solunum durmasına neden olabilen ve sonuçta ölüme yol açabilen dördüncü aşamaya hızla ilerleyebilir.

Anestezikler inhalan veya enjekte edilebilir olarak mevcuttur ve bir veteriner yapılacak prosedür için ne kullanılacağına karar vermelidir. Bu seçim, prosedürün kapsamı ve süresi, tür ve suş, yaş ve hayvanın fizyolojik durumu dahil olmak üzere çok sayıda hususa dayanmaktadır.

Yaygın olarak kullanılan inhalan anestezikler sınıfı, İzofluran, Sevofluran ve Desfluran gibi bileşikleri içerir. Bu bileşikler anestezi derinliğinin kolay kontrol edilmesini sağlar. Ekipmanda inhalan anestezikleri uygulamak için seçilebilecek birkaç seçenek vardır.

Seçeneklerden biri, personelin anestezik gazlara maruz kalmasını önlemek için kaputun altında - tezgahta değil - kullanılması gereken bir çan kavanozudur. Kavanozu, kavanozun tabanı ile platform arasında bir boşluk yaratacak şekilde seramik veya plastik delikli bir platformla birleştirin. Daha sonra, geçirimsiz eldivenler giyerken, bir pamuğu anestezikle doyurun ve kavanozun dibinde duracak şekilde platformun altına yerleştirin. Ardından, anestezik buharın kaçmasını önlemek için kapağı hemen sabitleyin. Hayvanı yerleştirmek için kapağı bir tarafa kaydırın, hayvanı tanıtın ve hemen sabitleyin. Bunu takiben, anestezi derinliğini belirlemek için aktiviteyi ve solunumu gözlemleyin ve hayvanı inhalanın etkisine maruz bırakın. Platformun bir bariyer görevi gördüğünü ve hayvanın sıvı anestezik ile doğrudan temas etmesini önlediğini unutmayın.

Çan kavanozuna bir alternatif, bir oksijen tankına bağlı hassas bir buharlaştırıcı makine ile birlikte kullanılan bir indüksiyon odasıdır. İlk adım, buharlaştırıcının uygun miktarda sıvı anestezik ile doldurulmasını sağlamaktır. Ardından, atık gaz temizleme sistemini kontrol edin. Yaygın olarak kullanılan pasif sistemse, hala etkili olup olmadığını belirlemek için kutuyu tartın. Genel olarak, başlangıç ağırlığının elli gramlık bir artışı, teneke kutunun harcandığı noktadır. Bir sonraki adım, indüksiyon odasını monte etmektir. Girişin buharlaştırıcıdan ve çıkışın atık gaz temizleme sistemine olduğundan emin olun.

Başlamak için, hayvanı indüksiyon odasına yerleştirin ve kapağı sabitleyin. Hayvan odaya girdikten sonra, önce oksijen akışını dakikada 1 litre hızında başlatın ve ardından hassas buharlaştırıcı ayarını izofluran için %3-4'lük bir indüksiyon seviyesine ayarlayın. Çan kavanozu gibi, hayvanı anesteziye maruz bırakın. Hayvan tamamen anestezi uygulandıktan sonra, hayvanı nazikçe çıkarmadan önce izofluranı kapatarak odayı oksijenle yıkayın. Bu, personelin anestezik gazlara maruz kalmasını önlemek içindir.

Anestezi indüksiyonu için başka bir yöntem, yine hassas buharlaştırıcıya bağlı burun konisi veya yüz maskesidir. Bununla birlikte, anestezik gazların hoş olmayan bir kokusu olduğundan, hayvanlar indüksiyon için maskelenmeye itiraz edebilirler. Ek olarak, çok sıkı kavrama nedeniyle boğulmaya neden olma riski de vardır. Bu nedenle, tercih edilen yöntem, anesteziyi indüklemek için indüksiyon kutusunu veya çan kavanozunu kullanmak ve ardından burun konisi ile bakım yapmaktır. Çoğu zaman, montaj, koni ve indüksiyon odasının her ikisi de aynı buharlaştırıcıya, anestezik buhar dağıtımını indüksiyon odasından burun konisine ve bunun tersi yönde değiştirmek için aralarında bir geçiş ile bağlanacak şekildedir. Hayvanı haznede uyuşturduktan sonra, yüzünü koniye sabitleyin ve gaz akışını burun konisine yönlendirmek için borudaki geçişi değiştirin. Solunumu izleyin ve hayvanın rahatladığını onayladıktan sonra anestezik% 0,5 - 1,5'lik bir bakım seviyesine düşürün. Ayrıca, kornea kurumasını önlemek için gözlere oftalmik merhem sürün.

Enjekte edilebilir anestezikler için, Ketamin ve diğer yatıştırıcıların bir karışımı veya Xylazine ve / veya Asepromazin dahil kas gevşeticiler. Bu bileşikler kullanılarak farklı kombinasyonlar hazırlanabilir. Yaygın olarak kullanılan oranlar için aşağıdaki metne bakın. Ketaminin kontrollü bir madde olduğunu ve bu nedenle kullanılan miktarın Kontrollü İlaç Günlüğüne not edilmesi gerektiğini ve karışımların kendi Kontrollü Madde Günlüklerine sahip olması gerektiğini unutmayın. Hayvanın türüne, yaşına ve sağlık durumuna bağlı olarak, anestezik karışım ve dozu seçilir ve çözelti intraperitoneal veya intramüsküler olarak enjekte edilebilir. Genellikle, cerrahi anestezi elde etmek için enjeksiyon ve inhalasyon anestezikleri kombinasyon halinde kullanılır.

Artık anesteziyi nasıl indükleyeceğinizi bildiğinize göre, işlem sırasında hayvanın zarar görmemesini sağlamak için her 10-30 dakikada bir izlenmesi önemli olan anestezik derinlik değerlendirmesi hakkında bilgi edinelim. Kemirgenlerde bunu yapmanın birkaç yöntemi vardır.

Yaygın olarak kullanılan bir yöntem ayak parmağını sıkıştırmadır. Hayvanın bacağını uzatın ve ayak parmakları arasındaki dokumayı izole edin. Ardından tırnaklarınızı veya atravmatik forsepsleri kullanarak bölgeyi sıkıca sıkıştırın. Pozitif bir refleks, bacağın geri çekilmesi veya ayağın geri çekilmesi ile gösterilir. Bir diğer yöntem ise kuyruğun uç kısmında yapılan kuyruk kıstırma işlemidir. Olumlu bir reaksiyon, seğirme veya kuyruk hareketi ile gösterilir. Ayrıca kulak kepçesinin ucunu da sıkıştırabilirsiniz ve başın sallanması veya bıyıkların öne doğru hareket etmesi durumunda, hayvan anestezi cerrahi düzleminde değildir.

Anestezi derinliğini kontrol etmek için, göz kapaklarına dokunmaya yanıt olarak göz kırpma ile gösterilen palpebral refleksi ortaya çıkarmak için medial kantusa veya gözün iç köşesine de dokunulabilir. Göz kapaklarında, bıyıklarda hareket olsa veya solunumda belirgin bir artış olsa bile, hayvan anestezinin cerrahi düzleminde değildir.

Son olarak, korneaya eldivenli parmakla veya pamuk uçlu bir aplikatörle dokunarak kornea refleksi kontrol edilebilir. Olumlu bir yanıt, göz kırpma ile gösterilir.

Anestezik derinliği değerlendirmek için bölgeler arasında geçiş yapmak önemlidir. Tekrarlanan çimdikler için aynı ayak parmağını veya kulağı kullanmak bölgeyi duyarsızlaştıracak ve yanıt bastırılacak ve anestezik derinliğin doğru bir değerlendirmesini vermeyecektir.

Bu fiziksel uyaran değerlendirme yöntemlerine ek olarak, kalp atış hızı, solunum hızı, kan basıncı, mukoza zarı rengi ve kılcal dolum süresi gibi fizyolojik göstergeler de izlenmelidir. Genel gözlemler, solunum hızındaki değişiklikleri tespit etmek için yararlı olabilirken, derinlik değerlendirmesi için kalp atış hızını kullanmak için elektrokardiyograf gibi özel ekipmanlar kullanılabilir. Kan basıncını ölçmek için, kuyruğun üzerine veya hatta tüm vücudun üzerine takılabilen çeşitli cihazlar vardır. Mukoza zarlarının, gözlerin, kulakların, ağzın, burnun, anüsün, pençelerin ve kuyruğun rengi de anestezik derinliği gösterebilir. Bu alanlar pembe olmalıdır, bu da yeterli solunum ve kalp atış hızını düşündürür.

Kılcal dolum süresini kontrol etmek için, anestezi uygulanmış hayvanların kulak kepçesine bastırın ve beyazlatılmış alanın pembe renge dönmesi için geçen saniye sayısını sayın. Bu 1 ila 2 saniyeden fazla olmamalıdır. Uzatılmış bir yeniden doldurma süresi, kalp atış hızında veya kardiyak kasılma gücünde bir azalma olduğunu gösterir, bu da hayvanın çok derin anestezi altında ve ölüme yakın olabileceğini gösterir. Hayvan anesteziden çıkarıldıktan sonra, barınak alanında sürekli olarak izlenmedikçe anesteziden kurtulana kadar barınma tesisine geri gönderilmemelidir.

Artık kemirgen anestezi indüksiyonu ve bakımının ilkelerini ve prosedürlerini öğrendiğimize göre, günümüzde biyomedikal araştırmalarda anesteziklerin sık görülen uygulamalarından bazılarına bakalım.

Muhtemelen kemirgen anestezisi için en yaygın kullanım ameliyattan önce ve ameliyat sırasındadır. Örneğin, burada araştırmacılar beyinde pıhtı oluşumunun neden olduğu bir felç modeli geliştirmek istediler. Bunu başarmak için, farelerde anesteziye neden oldular ve daha sonra ince bir pencere oluşturmak için kafatasını deldiler. Ve hayvan hala sakinleştirilirken, bu bilim adamları dolaşıma ışığa duyarlı bir boya enjekte ettiler. Daha sonra, kraniyal vaskülatürde bir pıhtı oluşumuna neden olmak için delinmiş kafatasından bir lazer yardımıyla fotoaktivasyonu indüklediler.

Kemirgen anestezisinin gerekli olduğu bir başka durum da fizyolojik analiz yapmaktır. Örneğin, bilim adamları genellikle kalp aktivitesini izlemek için anestezi uygulanmış hayvanlar üzerinde EKG elektrotları kullanırlar. Veya solunum hızını daha doğru bir şekilde ölçmek için diyafram hareket hızını belirlemek için ultrason probları kullanırlar.

Son olarak, utero deneylerinde sağkalım hazırlanırken anestezi kullanımı zorunludur. Örneğin, utero elektroporasyon - hamile bir kadının uyuşturulduğu bir yöntem, gelişmekte olan embriyoları ortaya çıkarmak için bir kesi yapılır ve enjekte edilen genetik materyalin embriyonik hücresel alımını indüklemek için elektrotlar kullanılır.

Az önce JoVE'nin anestezi uygulaması ve bakımı ile ilgili videosunu izlediniz. Kemirgen anestezisi bu kadar geniş bir yelpazede biyolojik deneylerin yürütülmesini kolaylaştırdığından, her bilim adamının bir deney boyunca doğru anestezik derinliği indükleme ve sürdürme becerisine sahip olması zorunludur. Her zaman olduğu gibi, izlediğiniz için teşekkürler!

Explore More Videos

Anestezi İndüksiyonu Anestezi Bakımı Veteriner Bakımı Laboratuvar Hayvanları Cerrahi İşlem Ağrı Hafifletme İmmobilizasyon İzleme Anestezik Derinliği Kemirgen Anestezi Seviyeleri İndüksiyon Yöntemleri Bakım Yöntemleri Anestezik Aşamalar Gerçek Dünya Deneyleri Anestezikler Anestezi Aşamaları Anestezi Düzlemleri Solunum Hızı Düzeltme Refleksi Palpebral Refleks Yutma Refleksi Laringeal Refleks Kornea Refleksi Amnezi İndüksiyonu Analjezi İndüksiyonu

Related Videos

Kemirgen Taşıma ve Kısıtlama Teknikleri

Kemirgen Taşıma ve Kısıtlama Teknikleri

Lab Animal Research

192.6K Görüntüleme

Temel Bakım İşlemleri

Temel Bakım İşlemleri

Lab Animal Research

30.5K Görüntüleme

Islah ve sütten kesmenin temelleri

Islah ve sütten kesmenin temelleri

Lab Animal Research

38.4K Görüntüleme

Kemirgen Tanımlama I

Kemirgen Tanımlama I

Lab Animal Research

60.0K Görüntüleme

Kemirgen Tanımlama II

Kemirgen Tanımlama II

Lab Animal Research

28.2K Görüntüleme

Bileşik Yönetim I

Bileşik Yönetim I

Lab Animal Research

110.6K Görüntüleme

Bileşik Uygulama II

Bileşik Uygulama II

Lab Animal Research

40.9K Görüntüleme

Bileşik Yönetim III

Bileşik Yönetim III

Lab Animal Research

34.8K Görüntüleme

Bileşik Yönetim IV

Bileşik Yönetim IV

Lab Animal Research

57.5K Görüntüleme

Kan Alma I

Kan Alma I

Lab Animal Research

189.0K Görüntüleme

Kan Alma II

Kan Alma II

Lab Animal Research

81.8K Görüntüleme

Kemirgen Cerrahisinde Dikkat Edilmesi Gerekenler

Kemirgen Cerrahisinde Dikkat Edilmesi Gerekenler

Lab Animal Research

24.2K Görüntüleme

Tanısal Nekropsi ve Doku Hasadı

Tanısal Nekropsi ve Doku Hasadı

Lab Animal Research

63.3K Görüntüleme

Steril Doku Hasadı

Steril Doku Hasadı

Lab Animal Research

36.6K Görüntüleme

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code