Name: Asidik pH ve Alpha-Expansin İndüklenmiş Ölçüm Bitki Hücre Duvarı Uzantısı (Creep) (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-03-11T00:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 51 s
Description: Öğrenin, asidik pH ve alpha-expansin ile bitki hücre duvarı uzantısını (creep) ölçme yöntemlerini. Salatalık fide hipokotillerinden hazırlanan örneklerde sabit kuvvetli ekstansometre kullanılarak hücre duvarı genişlemesi incelenir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Burada gösterilen teknikler, Enerji ve Tabii Kaynaklar Bakanlığı (Biyoenerji Bilimleri) ve Ulusal Bilim Vakfı tarafından hibe finansman ile geliştirilmiştir.

Bölüm 1: Büyüyen ve depolama uygun bitki materyali <ol><li> Deneyimlerimize göre, solmuş salatalık fideleri genç hypocotyls hücre duvar malzemesi ile bu deneyler için uygun bir kaynak olarak hizmet vermektedir. Salatalık tohumları, 26 sabit bir sıcaklık odada karanlık bir kabin içinde tutmak bir ışık geçirmez kutu, ° C ıslak kağıt üzerine ekilir C 22 ° ve 30 ° arasında bir şey olarak iyi olmalıdır kesin sıcaklık, kritik değil, ama sıcaklık, fide uygun bir gelişme aşamasına ulaşmak ne kadar hızlı karar verecektir. Sıcak sıcaklık, fide daha hızlı gelişecektir. Genellikle ekim 3-4 gün sonra ulaşılır uzunluğu yaklaşık 5 cm büyüdü fide kullanımı. Işık bile küçük miktarlarda biz bu tekniği ile ölçüm fide gelişimi oranı ve hücre duvarı özelliklerini de etkileyecektir, fide, karanlık yetiştirilen olması çok önemlidir. 3. gün, fide gelişimi kontrol etmek, loş bir yeşil filtrelenmiş ışık kullanarak kutunun içinde gözetleme. </li><li> Fideler hızla kesilir ve küçük bir plastik kutu, kutu başına 100-150 fide dolu ve -80 ° C&#39;de saklanır. Bu sıcaklık hafta için yararlı kalır. </li></ol> Bölüm 2: hücre duvarı örneklerinin hazırlanması <ol><li> Dondurulmuş kesilmiş fideler küçük gruplar (8-10), derin dondurucuda -80 dondurucu bloğu içeren bir izolasyonlu konteyner aktarılır. </li><li> Hipokotil kapsayan manikür carborundum aşınmış. Bu sürekli ıslak carborundum toz kalın bir bulamaç ile kaplı başparmak ve işaret parmağı arasında hipokotil çizerek yapılır. : Çok fazla baskı ve epidermal katman, parçalanmış ve yırtılmış başlar, çok az basınç ve manikür permeabilize olmayacaktır kullanmak doğru basınç miktarını bilmek biraz deneyim alır. Bir de dondurulmuş hipokotil çözülür olarak, onu yönetmek için yumuşak ve sert olur, çünkü hızlı bir şekilde çalışmak zorundadır. </li><li> Kalan hypocotyls benzer bir şekilde hazırlanan aşınmış hipokotil sonra buzlu su bulunan kalarak carborundum ve en kaldırmak için buzlu suya batırılmış. </li><li> Hypocotyls istenilen uzunluğa, 1.2 cm genellikle, yeni bir tek kenarlı jiletle kesilmiş ve ardından bir bardak slayt hizalanır. </li><li> Şimdi hücre özsuyunun kaldırmak ve sıkma kolaylaştırmak için duvarları düzleştirmek için gerekir. Ikinci bir cam slayt, sandviç oluşturan grup 8-10 örneklerinin üstüne yerleştirilir. Ağırlığı (400-500 gr), 5 dakika boyunca cam slayt üst üste yerleştirilir. Ağırlık için rutin olarak uygun bir miktar su içeren bir beher kullanın. </li><li> İsteğe bağlı adım: deney bağlı olarak, hypocotyls Bu noktada kısa bir ısıl işlem ile inaktive olabilir. Bunu yapmak için, cam, lastik bantlar, bir çift ile birlikte slaytlar bağlayan 100 mL deiyonize su ile oda sıcaklığında bir konteyner montaj ve tam güçte bir mikrodalga fırına yerleştirin. Mikrodalga fırın ile yaklaşık 50 s su kaynamaya başlar ve kaynama başladıktan sonra 15 sn mikrodalga durdurmak. Hızlı sıcak su dökülür ve denatürasyon durdurmak için soğuk su ile değiştirilmelidir. Mikrodalga bizimkinden daha farklı olabilir, bu zamanlamaları değişir olabilir. Aşırı ısıtma ile numunelerin zayıflar ve kolayca kırılabilir. Yetersiz ısıtma ile endojen expansin inaktive ve duvar örnekleri asidik pH yanıt korumak değildir. </li></ol> Bölüm 3: Ekstensometre kurulum <ol><li> Duvar örnekleri artık sabit bir kuvvet ekstensometre kenetlenir. Bu duvar örnek ve örnek apikal sonuna kadar bağlı bir hareketli kelepçe bazal ucunu tutmak için bir pleksiglas küvet oluşan bir özel yapılmış bir cihazdır. Hareketli kelepçe açık bir pozisyon sensörü bobinler üzerinden geçen bir çubuk üzerine monte edilmiş, bir LVDT ya da elektronik bir küçük metal silindirin pozisyonunu algılar &#39;Doğrusal Değişken Diferansiyel Trafo&#39;, veya &#39;çekirdek&#39; olduğunu çubuk bağlı. Ayarlanabilir bir karşı ağırlık ile çubuğun üst ucu bir kolu bağlıdır. Bu kolu duvar örnek üzerinde ayarlanabilir bir miktar yukarı yönlü kuvvet uygular. Kuvvet kolu ucunda kalibre metal ağırlıklar ekleyerek veya kaldırarak ayarlanır. </li><li> Duvar örnek hipokotil örnek bazal ince forseps ve apikal sonu ~ 2-3 mm hareketli kelepçe açık çeneleri arasına yerleştirilir ile alınır. Bu kelepçe, metal çeneleri metal yüzeyi ve tampon çözelti veya duvar numune arasında doğrudan temasını önlemek için plastik ile kaplanmış, bir yaylı timsah kelepçe. Deneyimimiz metal iyonları, genişletmek ve bu yüzden metal kaplı tutmak için duvar yeteneğini inhibe kelepçe ile liç ve. </li><li> Holding, bir yandan hareketli kelepçe montaj duvar örnek bazal sonuna Pleksiglas küvet ve küvet iki menteşeli adet arasında manevra.parçaları bir araya getirdi ve böylece küvet duvar örnek alt ucunda kilitleme, sıkı vidalanmış. </li><li> Hareketli kelepçe montaj hafifçe karşı ağırlık tam güç duvar örneği aktarılacak izin yayınladı. Biz rutin olarak toplam 20 gr salatalık hypocotyls hazırlanan duvar örnekleri için bir karşı ağırlık kullanın. Diğer duvar malzeme veya deneyler farklı ağırlıklar gerektirebilir. </li><li> Küvet tamponu ile dolduruldu (200 uL) ve küvet pozisyonu bir ayar vidası ile hareketli kelepçe LVDT ölçüm aralığı alt ucuna getirilir ki, aşağı yukarı taşınmış veya. Bizim LVDT bir mikrobilgisayar bir veri toplama ünitesine bağlı ve bu yüzden bilgisayar aracılığıyla LVDT pozisyonunu izlemek. Biz, bize aynı anda 8 duvar numunelerinin çalışılabilmesi için sağlayan bir bilgisayar ile paralel bağlı sekiz LVDT meclisleri var. Bilgisayar her 30 saniye sonra LVDT meclislerinin her pozisyonda kayıtları </li></ol> Bölüm 4: pH veya expansin Ölçüm uzantısı yanıt Temsilcisi Sonuçlar <ol><li> [Birinci Deney] asitle indüklenen uzantısı ölçümü için, yerli duvar örnekleri (yani ısı ile inaktive değildir) ve tarafsız bir tampon ile başlar küvet eklenir. Duvar örnekleri eklendi gerilime tepki olarak, birkaç dakika için, genişletmek, ancak uzatma bozunur birkaç dakika sonra düşük bir oran. Bizim bilgisayar bize ya örnek uzunluğu değişimi (Deney başladıktan sonra, hareketli kelepçe pozisyon değişikliği,) monitör ya da başka bir deyişle, uzatma oranı pozisyon türevi izleyebilirsiniz sağlar . Uzantısı oranı düşük bir değere zamanla dengeler. </li><li> ~ 20 dakika sonra, tarafsız bir tampon kaldırılır. Biz büyük bir göstergesi derialtı iğne yapılmış, duvar minimal rahatsızlık veya mekanik montaj, hızlı bir tampon kaldırmak için bir vakum pompası bağlı ince bir metal boru kullanırlar. Asidik tampon sonra asidik tampon tam döviz sigortalamak için 1-2 hızlı değişim, bazen eklenir. Sonra arkanıza yaslanın ve duvar yanıt izlemek. Tipik olarak bir kaç dakika içinde uzantısı daha hızlı tespit edebilir. Ölçümler bazı durumlarda daha uzun süre uzatabilir rağmen biz genellikle 60 dakika sonra, uzatma yanıtı değerlendirmek için yeterli bilgiye sahip. </li><li> [İkinci Experiment] expansin indüklenen hücre duvarının uzantısı ölçümü için, ısı ile inaktive edilmiş duvar örnekleri ve asidik tampon ile başlar, küvet eklenir . İlk Deneyim olduğu gibi, hücre duvarı uzantısı oranı giderek fonksiyonel expansin eksikliği nedeniyle düşük bir değere stabilize. </li><li> ~ 20 dakika sonra, expansin protein, küvet tamponu ile bir expansin çözüm 10-20 uL &#39;spike&#39; küvet eklenir. Expansin hücre duvarı örnek hızla nüfuz eder ve birkaç dakika içinde uzantısı oranının arttığını görüyoruz. Bu uzantı, bir saat veya daha fazla yanıt takip edilebilir. </li></ol><img src="/files/ftp_upload/1263/fig1.png" alt="" width="600" height="469" /> Şekil 1: asit-indüklenen veya expansin indüklenen duvar uzantısı değerlendirmek için hücre duvarlarının hazırlamak için prosedürlerin Anahat.

<ol><li>Cosgrove, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+long-term+extension+of+isolated+cell+walls+from+growing+cucumber+hypocotyls%5BTitle%5D)+AND+%22Planta%22%5BJournal%5D)">Characterization of long-term extension of isolated cell walls from growing cucumber hypocotyls.</a> Planta. 177, 121-130 (1989).</li>
<li>Rayle, D. L., Cleland, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Acid+Growth+Theory+of+auxin-induced+cell+elongation+is+alive+and+well%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">The Acid Growth Theory of auxin-induced cell elongation is alive and well.</a> Plant Physiol. 99, 1271-1274 (1992).</li>
<li>Cleland, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Auxin-induced+growth+of+Avena+coleoptiles+involves+two+mechanisms+with+different+pH+optima%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiol%22%5BJournal%5D)">Auxin-induced growth of Avena coleoptiles involves two mechanisms with different pH optima.</a> Plant Physiol. 99, 1556-1561 (1992).</li>
<li>Cosgrove, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Loosening+of+plant+cell+walls+by+expansins%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Loosening of plant cell walls by expansins.</a> Nature. 407, 321-326 (2000).</li>
<li>McQueen-Mason, S., Durachko, D. M., Cosgrove, D. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Two+endogenous+proteins+that+induce+cell+wall+expansion+in+plants%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Two endogenous proteins that induce cell wall expansion in plants.</a> Plant Cell. 4, 1425-1433 (1992).</li>
</ol>

Bu gösteri için, ele almak ve iyi bir duyarlılık ile tepki verdiği için kolay duvar örneklerinin güvenilir bir kaynak olduğunu kanıtladı, çünkü biz salatalık hypocotyls hücre duvarlarının kullandı. Ayrıca, genç ıspanak yaprakları ve kereviz sapı gibi süpermarket diğer fide gibi bazı malzemeler, duvarları ile iyi bir başarı oldu. Temel olarak, genç, yumuşak, hızla büyüyen bitki dokularında, bu teknik ile kolayca ölçülebilir olması muhtemeldir, ama sağlam, eski, okside veya nongrowing bitki dokularında hücre duvar çapraz ...

asidik ph ve alpha-expansin İndüklenmiş Ölçüm bitki hücre duvarı uzantısı (creep)

Measuring Plant Cell Wall Extension (Creep) Induced by Acidic pH and by Alpha-Expansin

Büyüyen bitki hücre duvarları, karakteristik bir özellik daha düşük pH (&lt;5) 1 genişletilebilir demek olan &#39;asit büyüme&#39; olarak bilinen sergilerler . Bitki hormonu oksin hızla bir asit-büyüme mekanizması 2, 3, en azından kısmen genç sapları ve benzeri dokuların hücre uzama uyarır . Oksin H aktive + plazma membran pompası, hücre duvarı çözümü asitlenme neden. Duvar asitlenme hücre duvarı hücre turgor basıncı ile oluşturulan duvar gerilimlere verim neden endojen hücre duvarı gevşemeye proteinler 4 expansins etkinleştirir. Sonuç olarak, hücre hızla büyütmek için başlar. Bu &#39;asit büyüme&#39; fenomen kolaylıkla izole (cansız) hücre duvarı örneklerinin ölçülür. Hücre duvarlarının asitle indüklenen uzantısı geçmesi yeteneği sadece hücre duvarı polisakkaritler (örneğin pektinler) yapısal düzenlemenin sonucu değildir, ancak 5 expansins aktivitesine bağlıdır. Expansins bilinen herhangi bir enzimatik aktivitesi yoktur ve expansin aktivite için tahlil etmenin tek yolu, hücre duvarının uzantısı indüksiyon ölçmek için. Bu video raporunun ayrıntıları expansin deneyleri için uygun duvar malzemeleri elde etmek için kaynakları ve hazırlama teknikleri ve asit-indüklenen uzatma ve artan salatalık hypocotyls hazırlanan duvar örneklerinin expansin indüklenen uzantısı göstermeye devam ediyor. Uygun hücre duvarı örnekleri elde etmek için, salatalık fideleri karanlıkta yetiştirilen, hypocotyls -80 kesilmiş ve donmuş ° C Dondurulmuş hypocotyls, aşınmış, basık, ve sonra sürekli bir gerginlik ekstensometre ölçümleri için özel bir küvete kenetli. Asit kaynaklı uzantısı ölçmek için, duvarlar, başlangıçta yerel hücre duvarlarının bileşenleri expansins düşük aktivite, nötr pH arabelleğe alınır. Asidik pH tampon değişimi üzerine, expansins aktif ve hücre duvarlarının hızla uzanır. Biz aynı zamanda bir sulandırıldıktan tahlil expansin faaliyet göstermektedir. Bu bölümde, biz hücre duvarı örnekleri yerli expansins doğasını kısa bir ısıl işlem kullanın. Bu inaktive edilmiş hücre duvarlarını bile asidik tampon uzatmak yok, ama expansins hücre duvarlarının yanı sıra yeteneklerini genişletmek için hızla geri.

Biz asidik tamponlar ve expansin protein ile indüklenen bitki hücre duvarı örneklerinin uzun vadeli uzantısı (creep) ölçmek için, sabit bir kuvvet ekstensometresinin kullanımını göstermektedir.

Asidik pH ve Alpha-Expansin İndüklenmiş Ölçüm Bitki Hücre Duvarı Uzantısı (Creep)

Büyümekte olan bitki hücre duvarları, karakteristik olarak 'asit büyümesi' olarak bilinen ve düşük pH değerlerinde (< 5) daha fazla uzayabildikleri anlamına gelen bir özellik sergilerler 1. ...

Burada, hücre duvarı uzama geometrisi ile genişleme ve aktivitenin ölçülmesi yöntemlerini gösteriyoruz. Yerli hücre duvarlarına bağlı endojen ekspansinler tarafından katalize edilen asitle indüklenen uzamanın ölçülmesi için E TAT'li salatalık tohumu hipokotillerinden uygun duvar örnekleri hazırlanabilir. Duvarları nötr bir tamponda ve bir ekstensometre ile sabitliyoruz; asidik pH'a geçildiğinde ekspansinler aktive olur ve hücre duvarları hızla uzar.Ayrıca bir ekspansin rekonstitüsyon analizi gösteriyoruz. Bu bölüm için, endojen ekspansinleri denatüre etmek amacıyla kısa süreli bir ısı işlemi uyguluyoruz. Isı ile inaktive edilmiş hücre duvarları, asidik bir tampon çözeltide bile uzamazken, ekspansin eklenmesi duvar uzayabilirliğini hızla geri kazandırır.Merhaba, ben Penn State Üniversitesi biyoloji bölümündeki Dr. Daniel Cosgrove laboratuvarından Dan De Roko. Bugün size, izole edilmiş bitki hücre duvarlarının geri dönüşümsüz uzamasının veya sürünmesinin (creep) ölçümü için kullanılan bir prosedürü göstereceğiz. Hadi başlayalım.Deneyimlerimize göre, et elated salatalık fidelerinden elde edilen genç hipo avokadolar, hücre duvarı materyali için uygun bir kaynak teşkil etmektedir. Bu deneyler için salatalık tohumları, ışık geçirmez bir kutu içerisinde ıslak kağıtlara ekilir; bu kutu karanlık bir kabinde ve 26 °C'ye ayarlanmış sabit sıcaklıktaki bir odada tutulur. 22 ile 30 °C arasındaki sıcaklıklar da işe yarayacaktır, ancak sıcaklığın büyüme hızını belirleyeceğini belirtmek önemlidir.Sıcaklık ne kadar yüksek olursa, fideler o kadar hızlı gelişir. Karanlık bir büyüme ortamının sağlanması kritiktir çünkü çok az miktardaki ışık bile hem fidelerin gelişim hızını hem de bu teknikle ölçtüğümüz hücre duvarı özelliklerini etkiler. Üçüncü günde, fidelerin gelişimini kontrol etmek için hafif, yeşil filtreli bir ışık kullanarak kutunun içine bakabilirsiniz.Genellikle üçüncü veya dördüncü günde kutuya bakıldığında, deneylerimizde tipik olarak kullandığımız yaklaşık beş santimetre uzunluğa ulaşmış fideler görülür. Bu fideler, kullanım öncesinde -80 °C'de dondurulabilir. Hücre duvarı örneklerini hazırlamaya başlamak için, dondurulmuş ve kesilmiş fidelerden sekizerli veya onarlı küçük gruplar, dondurucudan -80 °C dondurucu blok içeren yalıtımlı bir kaba aktarılır. Başparmak ve işaret parmağını kaplamak için yoğun bir carbo run tozu bulamacı kullanılarak, hipokotil başparmak ve işaret parmağı arasında defalarca ovalanarak hipokotili örten kütikül tabakası uzaklaştırılır.Bu teknik uygulanırken, epidermal tabakaya zarar vermeden kütikülün geçirgenliğini sağlayacak doğru basınç miktarının kullanılması kritik önem taşır. Ayrıca hızlı çalışılmalıdır; çünkü dondurulmuş hypo coddle çözüldükçe yassılaşır ve yapışık olan karumun çoğunu temizlemek zorlaşır. Aşındırılmış hypo coddle daldırılır ve geri kalan hypo coddle'lar hazırlanırken buzlu suda saklanır.Tüm fidelerin kütikül temizleme işlemi yapıldıktan sonra, fideler genellikle yeni ve tek kenarlı bir jilet kullanılarak istenen uzunlukta, genellikle 1,2 santimetre olacak şekilde kesilir ve ardından bir lam üzerine hizalanır. Sekiz ila 10 örnekten oluşan grubun üzerine ikinci bir lam yerleştirilir ve bu cam lamın üzerine beş dakika boyunca 400 ila 500 gramlık bir ağırlık konur. Ağırlık olarak genellikle uygun miktarda suyla doldurulmuş bir beher kullanılır.Beherin ağırlığı, hücre özsuyunu uzaklaştırmak ve sabitlemeyi kolaylaştırmak için hücre duvarlarını düzleştirecektir. Deneye bağlı olarak, hipo kodlar bu noktada kısa bir ısı işlemiyle inaktive edilebilir. Bunu yapmak için, lamları bir çift paket lastiği ile birbirine bağlarız, düzeneği oda sıcaklığında 100 mL deiyonize su içeren bir kaba koyar ve mikrodalga fırınımızla tam güçte bir mikrodalga fırına yerleştiririz.Su yaklaşık 50. saniyede kaynamaya başlar ve kaynama başladıktan 15 saniye sonra mikrodalgayı durdururuz; denatürasyonu durdurmak için sıcak su hızlıca dökülür ve yerine soğuk su eklenir. Optimal ısıtma, örneklerin düşük pH'a karşı herhangi bir tepki vermemesi, aynı zamanda zayıflayıp kolayca kırılmaması anlamına gelecektir. Gövde duvarı örnekleri şimdi sabit kuvvetli bir X ekstansometre ile sabitlenir.Bu, duvar örneğinin bazal ucunu tutmak için pleksiglas bir küpten ve örneğin apikal ucuna tutturulmuş hareketli bir klempten oluşan özel yapım bir cihazdır. Hareketli klemp, bir konum sensörü olan LVDT'nin (lineer değişken diferansiyel transformatör) açık bobinlerinden geçen bir çubuğun ucuna monte edilmiştir. Bu sensör, çubuğa bağlı küçük bir metal silindirin veya çekirdeğin konumunu elektronik olarak tespit eder.Çubuğun üst ucu, ayarlanabilir bir karşı ağırlığa sahip bir kola bağlanmıştır. Bu kol, duvar örneği üzerine ayarlanabilir miktarda yukarı yönlü bir kuvvet uygular. Hücre duvarı genişlemesinin ölçümü için örnekleri hazırlamak amacıyla, kolun uzak ucuna kalibre edilmiş metal ağırlıklar eklenerek veya çıkarılarak kuvvet ayarlanır.Hipokotil örneğinin bazal ucu, yaklaşık iki ila üç milimetre boyunca ince bir pens ile tutulur ve APIC ucu hareketli klembin açık çeneleri arasına yerleştirilir. Bu klembin yaylı bir timsah klemptir. Metal yüzey ile tampon çözelti veya duvar örneği arasındaki doğrudan teması önlemek için metal çeneler plastik ile kaplanmıştır.Deneyimlerimize göre, metal iyonları klempten sızarak duvarın genişleme yeteneğini inhibe edebilir, bu nedenle metali kapalı tutuyoruz; hareketli klempli düzenek bir elle tutulurken, duvar örneğinin bazal ucu pleksiglas vete'nin iki menteşe parçası arasına yerleştirilir ve vete parçaları bir araya getirilip sıkıca vidalanır, böylece duvar örneğinin alt ucu vete'ye sabitlenmiş olur. Hareketli klempli düzenek şimdi nazikçe serbest bırakılarak karşı ağırlıkların tüm kuvvetinin duvar örneğine aktarılması sağlanır. Salatalık ve hypo coddles'dan hazırlanan duvar örnekleri için rutin olarak toplam 20 gram karşı ağırlık kullanıyoruz.Diğer duvar malzemeleri veya deneyler farklı ağırlıklar gerektirebilir. QVE tampon ile doldurulur ve hareketli klempsin LVDT ölçüm aralığının alt ucuna getirilmesi için QVE'nin konumu bir ayar vidasıyla yukarı veya aşağı hareket ettirilir. LVDT'miz bilgisayarın bir veri toplama ünitesine bağlıdır.Sekiz adet LVDT düzeneğini tek bir bilgisayara paralel olarak bağladık; bu sayede sekiz duvar örneğini eş zamanlı olarak çalıştırabiliyoruz. Bilgisayar, asit kaynaklı uzamanın ölçümü için her bir LVDT düzeneğinin konumunu her 30 saniyede bir kaydeder. Isı ile inaktive edilmemiş doğal duvar örnekleriyle başlarız ve kaba nötr tampon eklenir.Duvar örnekleri, uygulanan gerilime yanıt olarak birkaç dakika boyunca uzanır, ancak uzama hızı düşük bir seviyeye iner. Birkaç dakika sonra, bilgisayarımızla ya deneyin başlangıcından sonraki hareketli klembin konumundaki değişimi, yani örneğin uzunluğundaki değişimi ya da konumun zamana göre türevini izleyebiliriz. Başka bir deyişle, uzama hızını takip edebiliriz.Uzatma hızı, zamanla düşük bir değerde sabitlenir. Yaklaşık 20 dakika sonra, vakum pompasına bağlı, geniş çaplı bir hipodermik iğneden yapılmış ince metal bir boru kullanılarak nötral tampon uzaklaştırılır. Tamponu hızlıca uzaklaştırmak için.Kurulum, duvarın veya mekanik düzeneğin minimum düzeyde rahatsız edilmesiyle tamponun uzaklaştırılmasına olanak tanır. Ardından, asidik tampona tam geçişi sağlamak için bazen bir veya iki hızlı değişim yapılarak asidik tampon eklenir. Daha sonra ise bekleyip duvarın yanıtını gözlemleriz.Genellikle, daha hızlı uzama oranını birkaç dakika içinde tespit edebiliriz. Bazı durumlarda ölçümler daha uzun sürelere yayılabilse de, 60 dakika sonra uzama yanıtını değerlendirmek için genellikle yeterli bilgiye sahip oluruz. Ekspansin kaynaklı hücre duvarı uzamasının ölçümü için, ısı ile inaktive edilmiş duvar örnekleri ile başlarız ve qve'ye asidik tampon eklenir.İlk deneyde olduğu gibi, fonksiyonel genişleme eksikliği nedeniyle hücre duvarı uzama hızı kademeli olarak düşük bir değerde sabitlenir. Yaklaşık 20 dakikalık genişlemeden sonra, Q vet içindeki tampona 10 ila 20 µL genişleme çözeltisi eklenerek proteini Q vet'e ilave edilir. Kütikül kaldırıldığı için genişleme çözeltisi hücre duvarı örneğine hızla nüfuz eder ve birkaç dakika içinde uzama hızının arttığı görülür.Bu uzama yanıtı bir saat veya daha uzun süre takip edilebilir. Hücre duvarı uzamasının endojen ekspansinler nedeniyle ve ekspansin eklenmesi nedeniyle nasıl ölçüleceğini göstermiş olduk. Bu prosedür uygulanırken, uzama eğrilerinde gürültüye neden olacakları için mekanik titreşimlerin ve sıcaklık dalgalanmalarının minimumda tutulması gerektiğini hatırlamak önemlidir.İşte böyle. İzlediğiniz için teşekkürler, uzatma deneylerinizde başarılar dileriz.

measuring-plant-cell-wall-extension-creep-induced-acidic-ph-alpha

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Atomik kuvvet mikroskobu (AFM) kullanarak bitki dokularının mekanik özelliklerini haritalamak için bir yöntem açıklıyoruz. Bitki gelişimi sırasında hücre duvarlarında meydana gelen mekanik değişikliklerin geniş alan orta ölçeğinde nasıl kaydedileceğine odaklanıyoruz ve bu değişikliklerin büyüme ve morfogenez ile ilişkilendirilmesini sağlıyoruz.

Hücre Duvarları Elastik Özelliklerinin AFM-tabanlı Haritalama: doku, hücresel ve Subselüler Çözünürlüklerde

Ca 2 + sinyalizasyon tesislerinde çeşitli biyolojik süreçleri düzenler. Burada mekansal ve zamansal Ca kaynaklı abiyotik stres izlemek için yaklaşımlar sunmak Arabidopsis hücre ve genetik olarak kodlanmış Ca 2 + göstergeleri Aequorin veya Case12 kullanarak dokularda 2+ sinyaller.

Ölçme Mekansal ve zamansal Ca 2+ Sinyalleri

Canlı hücrelerdeki mekanik zorlanmaya gerçek zamanlı tepkilerin ölçülmesine izin vermek için özel bir motor tahrikli mekanik aktüatör kullanılarak yeni bir görüntüleme protokolü geliştirilmiştir. Mekanobiyoloji ile ilgili olarak, sistem konfokal veya atomik kuvvet mikroskobu ile neredeyse gerçek zamanlı görüntülemeye izin verirken %20'ye kadar suşlar uygulayabilir.

Mekanik Stretch sırasında Canlı Hücre Görüntüleme

Kristalin selüloz, bitki hücre duvarının önemli bir bileşenidir. Bununla birlikte, hücresel bir çözünürlükte nicelleştirilmesi teknik olarak zordur.  Burada, uzay-zamansal bir çözünürlükte hücre duvarı bileşimi hakkında bilgi elde etmek için polarize ışık teknolojisinin ve kök kesitlerinin kullanımını rapor ediyoruz.

Kristalin Selüloz Birikimin Yüksek Çözünürlüklü Niceleme<em&gt; Arabidopsis</em&gt; Kökler Doku spesifik Hücre Duvarı Değişiklikler Monitör

Burada özetlenen protokoller, 2-kloroetilfosfonik asit (CEPA) kullanarak bakteriyel etilen yanıtlarının uygun şekilde araştırılmasını kolaylaştırır.  Etilen, CEPA'nın sulu bir bakteri üreme ortamında ayrışması yoluyla yerinde üretilir ve saf etilen gazı gereksinimini ortadan kaldırır.

Aracı Olarak Etilen serbest Bileşik, 2-chloroethylphosphonic acid, kullanan Bakterilerin Etilen Yanıtı Eğitim için

Burada, hücre ve dokularda nano ve mikro girinti aracı olarak işletilen atomik kuvvet mikroskobu (AFM) sunuyoruz. Cihaz, numunenin 3D yüzey topografisini ve hücre duvarı Young 'ın modüllerinin yanı sıra Turgor basıncını da içeren mekanik özelliklerini eşzamanlı olarak satın almayı sağlar.

Santral hücreleri ve bitki dokularının mekanik özelliklerini ve Turgor basıncını ölçmek için Atomic Force Microkopi kullanımı

Burada, ateş apikal meristem'deki kortikal mikrotübül sitoiskeletinin canlı hücre görüntülemesi ve fiziksel kuvvetlerdeki değişikliklere tepkisini izleme protokolünü anlatıyoruz.

Mikrotübül Sitoiskeletinin Canlı Hücre Görüntülemesi ve Arabidopsis Shoot Apikal Meristem'in Mikromekanik Manipülasyonu

Atomik kuvvet mikroskobu girinti protokolü, normal veya kısıtlı büyüme sırasında (yani su açığı altında) bir doku veya organın belirli bir hücresinin hücre duvarının fiziksel özelliklerinin rolünü inceleme imkanı sunar.

Canlı Arabidopsis Köklerinin Epidermal Hücrelerinin Fiziksel Özelliklerini İncelemek için Atomik Kuvvet Mikroskobu

Hücre duvarı biyomekaniği çalışmaları, bitki büyümesini ve morfogenezini anlamak için gereklidir. Aşağıdaki protokol, atomik kuvvet mikroskobu kullanılarak genç bitki organlarının iç dokularındaki ince primer hücre duvarlarının araştırılması için önerilmiştir.

Canlı Bitki Organlarında Primer Hücre Duvarının Mekanik Özelliklerinin Atomik Kuvvet Mikroskobu Kullanılarak Karakterize Edilmesi

Bu makale, canlı yosun dokusunun 3 boyutlu hücre duvarı dinamiklerini görüntülemek için ayrıntılı bir protokol sunarak, ggb mutantlarında hücre duvarlarının ayrılmasının görselleştirilmesine ve uzun bir süre boyunca gelişim sırasında vahşi tipte hücre duvarı desenlerinin kalınlaştırılmasına izin vermektedir.

Moss Physcomitrium patens'te Calcofluor Kullanarak Hücre Duvarı Dinamiğinin 3-D Hızlandırılmış Görüntülenmesi

Bu rapor, tek hücreli streptofit algi Penium margaritaceum'u kültürlemek ve deneysel olarak manipüle etmek için kullanılan temel yöntemleri açıklamaktadır. Ayrıca, monoklonal antikorlar ve diğer floresan problar ve taramalı elektron mikroskobu ile canlı hücre etiketleme dahil olmak üzere mikroskopi tabanlı görüntülemenin temel protokollerini sağlar.

Penium margaritaceum için Deneysel Tarama Protokolleri, İmmünositokimya ve Mikroskopi Tabanlı Görüntüleme Teknikleri

Öğrenin, asidik pH ve alpha-expansin ile bitki hücre duvarı uzantısını (creep) ölçme yöntemlerini. Salatalık fide hipokotillerinden hazırlanan örneklerde sabit kuvvetli ekstansometre kullanılarak hücre duvarı genişlemesi incelenir.

Asidik pH ve Alpha-Expansin İndüklenmiş Ölçüm Bitki Hücre Duvarı Uzantısı (Creep)

Daha fazla video keşfet