Name: Fare Periton Boşluk Hücreleri İzolasyon (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-01-28T16:45:00.000+00:00
Duration: 4 min 32 s
Description: Öğrenin fare periton boşluğu hücre izolasyonu yöntemini immünoloji ve hücre biyolojisi çalışmaları için. Bu teknik 5-10 milyon hücre elde ederek B hücreleri, makrofajlar ve T hücreleri analizini mümkün kılar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Bu çalışma NIH hibe AI069358 ve BloodCenter Araştırma Vakfı tarafından kısmen desteklenmiştir.

<ol><li> Işlemine başlamadan önce, aşağıdaki öğeleri toplanmış ve hazırlanmış olması gerekir: <ul><li> Buz </li><li> 27g iğne ile 5ml şırınga </li><li> 25g iğne ile 5ml şırınga </li><li> Strafor blok ve fare montaj pimleri </li><li> Montaj bloğu yerleştirilmiş olabilir Tepsi </li><li> Makas ve forseps </li><li> Toplama tüpleri </li><li> % 70 etanol </li><li> PBS ile% 3 fetal buzağı serumu (FCS) (Ön buz üzerinde soğutulmuş ve muhafaza) </li></ul></li><li> Fare Euthanize,% 70 etanol ile sprey ve sırtında strafor blok üzerine monte edin. </li><li> Bir makas ve forseps kullanarak periton dış deri kesme ve periton boşluğuna kaplayan iç deri hafifçe ortaya çıkarmak için geri çekin. </li><li> 27g bir iğne kullanılarak peritoneal kavite içine buz PBS (% 3 FCS) 5 ml enjekte edilir. Herhangi bir organ dikkatli olmazsanız ponksiyon için periton iğne yavaşça itin. </li><li> Enjeksiyondan sonra, periton PBS çözümü herhangi bir bağlı hücreleri çıkarmak için hafifçe masaj yapın. </li><li> Periton bir 5 ml şırınga bağlı olarak, 25 g iğne, konik takın ve sıvı yağ dokusu veya diğer organlar tarafından tıkanmasını önlemek için iğne ucu hafifçe hareket ettirerek toplamak. Mümkün olduğunca fazla sıvı olarak toplayın ve şırınga iğnesi çıkardıktan sonra buz üzerinde tutulmalıdır tüplerde toplanan hücre süspansiyonu yatırmak. İsteğe Bağlı: Tekrar adım 4-6 </li><li> Periton iç deride bir kesi yapın ve bir forseps ile cilt tutarken boşluğunda kalan sıvı toplamak için plastik bir Pasteur pipeti kullanın. </li><li> 6 ya da 7 adımda görünür kan kontaminasyonu tespit edilirse kontamine örnek atılmalıdır. </li><li> 1500 RPM, 8 dakika boyunca toplanan hücre süspansiyonu Spin süpernatantı atmak ve istenen ortam veya PBS içinde hücre sayımı için tekrar süspansiyon haline getirin. </li></ol> Tiyoglikolat elde Alternatif protokol makrofajlar ortaya çıkardı: Bu yöntem, makrofajların daha yüksek verim elde etmek için kullanılır. <ol><li> % 3 (w / v) her fare periton boşluğuna Brewer tiyoglikolat orta (7) 5 ml enjekte edilir. </li><li> 3-5 gün bekleyin ve hücrelerin toplanması için yukarıdaki 1. adımı geçin. </li></ol> Nonelicited yaklaşımı ile karşılaştırıldığında, yaklaşık 10 kat daha fazla makrofaj toplanabilir. Tek endişe, bu yordamı ile elde edilen makrofajlar bazı fizyolojik özellikleri farklı olduğunu. Temsilcisi sonuçları: Unmanipulated fare, 5-10 milyon periton boşluğuna hücreleri iyi bir izolasyon protokolü ile elde edilebilir. Tüm canlı hücreler arasında,% 50-60 B hücreleri, ~% 30 makrofajlar ve T hücreleri (Şekil 1)% 5-10. <img src="/files/ftp_upload/1488/1488fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1. Periton boşluğuna izole hücre fenotipi periton boşluğuna hücreleri takiben izolasyonu ile boyandı anti-fare TCRβ FITC, B220-PE-Texas kırmızı, CD11b-Pasifik mavi, CD23-PE-Cy7 ve CD5-APC. Temsilci akış sitometrik araziler, B ve T hücreleri (a), makrofajlar (b), B1 ve B2 hücreleri (c) ve B1a ve B1b hücreleri (d) yüzdeleri göstermektedir.

<ol><li>Zhang, X., Goncalves, R., Mosser, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+isolation+and+characterization+of+murine+macrophages%5BTitle%5D)+AND+%22Current+Protocols+in+Immunology%22%5BJournal%5D)">The isolation and characterization of murine macrophages.</a> Current Protocols in Immunology. , (2008).</li>
<li>Boes, M., Prodeus, A. P., Schmidt, T., Carroll, M. C., Chen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+critical+role+of+natural+immunoglobulin+M+in+immediate+defense+against+systemic+bacterial+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">A critical role of natural immunoglobulin M in immediate defense against systemic bacterial infection.</a> J. Exp. Med. 188, 2381-2386 (1998).</li>
<li>Mc Daniel, L. S., Benjamin, W. H., Forman, C., Briles, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+clearance+by+anti-phosphocholine+antibodies+as+a+mechanism+of+protection+in+experimental+pneumococcal+bacteremia%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Blood clearance by anti-phosphocholine antibodies as a mechanism of protection in experimental pneumococcal bacteremia.</a> J. Immunol. 133, 3308-3312 (1984).</li>
<li>Paciorkowski, N., Porte, P., Shultz, L. D., Rajan, T. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B1+B+lymphocytes+play+a+critical+role+in+host+protection+against+lymphatic+filarial+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">B1 B lymphocytes play a critical role in host protection against lymphatic filarial parasites.</a> J. Exp. Med. 191, 731-736 (2000).</li>
<li>Mercolino, T. J., Arnold, L. W., Hawkins, L. A., Haughton, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+mouse+peritoneum+contains+a+large+population+of+Ly-1%2B+%28CD5%29+B+cells+that+recognize+phosphatidyl+choline%3A+relationship+to+cells+that+secrete+hemolytic+antibody+specific+for+autologous+erythrocytes%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">Normal mouse peritoneum contains a large population of Ly-1+ (CD5) B cells that recognize phosphatidyl choline: relationship to cells that secrete hemolytic antibody specific for autologous erythrocytes.</a> J. Exp. Med. 168, 687-698 (1988).</li>
<li>O'Garra, A., Chang, R., Go, N., Hastings, R., Haughton, G., Howard, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ly-1+B+%28B-1%29+cells+are+the+main+source+of+B+cell+derived+interleukin+10%5BTitle%5D)+AND+%22Eur.+J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Ly-1 B (B-1) cells are the main source of B cell derived interleukin 10.</a> Eur. J. Immunol. 22, 711-717 (1992).</li>
<li>Hoover, D. L., Nacy, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Macrophage+activation+to+kill+Leishmania+tropica%3A+Defective+intracellular+killing+of+amastigotes+by+macrophages+elicited+with+sterile+inflammatory+agents%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Macrophage activation to kill Leishmania tropica: Defective intracellular killing of amastigotes by macrophages elicited with sterile inflammatory agents.</a> J. Immunol. 132, 1487-1491 (1984).</li>
<li>Austin, P. E., McCulloch, E. A., Till, J. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+the+factor+in+L-cell+conditioned+medium+capable+of+stimulating+colony+formation+by+mouse+marrow+cells+in+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Characterization of the factor in L-cell conditioned medium capable of stimulating colony formation by mouse marrow cells in culture.</a> J. Cell Physiol. 77, 121-134 (1971).</li>
<li>Stanley, E. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+macrophage+colony-stimulating+factor%2C+CSF-1%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Enzymol%22%5BJournal%5D)">The macrophage colony-stimulating factor, CSF-1.</a> Methods Enzymol. 116, 564-587 (1985).</li>
<li>Baumgarth, N., Chen, J., Herman, O. C., Jager, G. C., Herzenberg, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+B-1+and+B-2+cells+in+immune+protection+from+influenza+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Top.+Microbiol.+Immunol%22%5BJournal%5D)">The role of B-1 and B-2 cells in immune protection from influenza virus infection.</a> Curr. Top. Microbiol. Immunol. 252, 163-169 (2000).</li>
<li>Baumgarth, N., Herman, O. C., Jager, G. C., Brown, L. E., Herzenberg, L. A., Chen, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((B-1+and+B-2+cell-derived+immunoglobulin+M+antibodies+are+nonredundant+components+of+the+protective+response+to+influenza+virus+infection%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Exp.+Med%22%5BJournal%5D)">B-1 and B-2 cell-derived immunoglobulin M antibodies are nonredundant components of the protective response to influenza virus infection.</a> J. Exp. Med. 192, 271-280 (2000).</li>
<li>Berland, R., Wortis, H. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Origins+and+functions+of+B-1+cells+with+notes+on+the+role+of+CD5%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Origins and functions of B-1 cells with notes on the role of CD5.</a> Annu. Rev. Immunol. 20, 253-300 (2002).</li>
</ol>

Periton boşluğuna hücrelerinin izolasyonu, farklı bağışıklık hücreleri, başta makrofajlar ve spesifik B hücre alt çalışma için önemli bir tekniktir. Bu basit bir süreç olmasına rağmen, bazı kritik adımlar vardır. Saf bir periton boşluğuna hücre popülasyonu elde etmek için toplanan örnek kan kirlenmesine varlığı kaçınılmalıdır. Servikal dislokasyon tarafından Ötenazi periton boşluğunda kan kirlenmesini önlemek için dikkatli bir şekilde yapılmalıdır. Alternatif olarak CO 2 kullanılabilir. Buna ek olarak, prosedüre uygun bakım sırasında peritoneal kavite, mesane ya da herhangi bir diğer organlara delinmesiyle önlemek için alınmalıdır. Enjekte edilen sıvı en kurtarma, hücre verimi önemlidir. Bu prosedürü, yaygın olarak orta numaraları bu yana ikamet eden makrofaj biyoloji okumak için kullanılır, unstimulated makrofajlar kolayca makrofaj koloni stimüle edici faktör (8 kullanılarak, in vitro olgun makrofajlara miyeloid progenitör hücrelerin ayırt zahmetli görev aksine, periton boşluğuna elde edilebilir , 9). Tiyoglikolat kullanımı makrofajlar (7) fizyolojik özelliklerini değiştirebilir olsa da periton boşluğunda makrofaj verim, tiyoglikolat ortaya çıkarma yöntemi kullanarak geliştirilebilir. B hücreleri bağışıklık sisteminin doğal ve adaptif bağışıklık hem de önemli rol oynayan önemli bir parçasıdır. Farklı B hücre alt arasında, B1 hücreleri B hücreleri doğuştan gelen bağışıklık, otoimmünite ve bağışıklık düzenleme yer eşsiz bir alt oluşmaktadır. B1 hücreler öncelikle periton boşluğunda bulunan ve kendini yeniler. Onlar, ilk satırı, bir virüs sayısı ve bakteriler (10-12) karşı koruma sağlar doğal IgM birincil üreticiler biri. B1 hücreler de immün regülasyon yer alan önemli bir sitokin olan IL-10 (6), önemli bir kaynağıdır. B1 hücreleri ile çeşitli çalışmalar takip olmasına rağmen, hala özel, kendi karşıt fonksiyonları daha fazla değerlendirme için düzenleyici rol kapsamı vardır. Periton boşluğuna hücre izolasyon yöntemi B1 hücrelerinin fonksiyonlarını incelemek için eşsiz bir fırsat sunuyor.

<table><tbody><tr><td>Tiyoglikolat Besiyeri, Brewer Modifiyeli</td><td>BD Biosciences</td><td>211716</td><td></td></tr></tbody></table>

fare periton boşluk hücreleri İzolasyon

Isolation of Mouse Peritoneal Cavity Cells

Periton boşluğuna memelilerin karaciğer, dalak, mide-bağırsak ve diğer iç organları içeren bir membran-bağlı ve karın boşluğunda sıvı dolu. Bu bağışıklık hücreleri, makrofajlar, B hücreleri ve T hücreleri de dahil olmak üzere bir dizi barındırıyor. Periton boşluğunda naif makrofajlar yüksek sayıda varlığı naif doku ikamet eden makrofaj (1) toplanması için tercih edilen bir site yapar. Peritoneal kavite varlığı nedeniyle geleneksel B2 hücrelerine ek olarak B1 hücreler olarak bilinen eşsiz bir periton boşluğuna yerleşik B hücre alt B hücreleri çalışma için önemlidir. B1 hücreleri CD11b ve CD5 yüzey ifadesi ile ayırt edilebilir B1a ve B1b hücreleri, bölünmüştür. B1 hücreleri çeşitli patojenler (2-4) bir erken koruma sağlayan doğal IgM önemli bir kaynak. Bu hücreler, Doğa (5) otoreaktif, ama onlar otoimmünite önlemek için nasıl kontrol edilir hala tam olarak anlaşılmış değildir. Aksine, CD5<sup&gt; +</sup&gt; B1a hücreleri IL-10 üretim kapasitesi (6) sayesinde bazı düzenleyici özelliklere sahip. Bu nedenle, periton boşluğuna B1 hücreleri çünkü farklı fonksiyon ve onların gelişmesi ve düzenlenmesi ile ilgili birçok adressiz sorular çalışma ilginç bir hücre popülasyonu. Periton boşluğuna ikamet eden bağışıklık hücrelerinin izolasyon peritoneal kavite içinde tanımlanmış bir yapı eksikliği nedeniyle zordur. Bizim protokolü sonra flow sitometri ve farklı biyokimyasal ve immünolojik testleri için fenotipik analizi için kullanılabilir farelerin periton boşluğu, canlı bağışıklık hücreleri elde etmek için bir prosedür anlatacağız.

Periton boşluğuna memelilerde doğuştan gelen bağışıklık yanıtları için çok önemli olan farklı bağışıklık hücre popülasyonlarının içerir. Verimli bir izolasyon yöntemi, bu hücrelerin biyokimyasal ve fonksiyonel analizler için gereklidir. Burada fare periton boşluğuna hücrelerin izolasyonu için kapsamlı bir yöntem sağlar.

Fare Periton Boşluk Hücreleri İzolasyon

Peritoneal kavite, memelilerin karaciğer, dalak ve gastrointestinal sistemin büyük bir kısmını içeren, membranla çevrili ve sıvı dolu abdominal boşluğudur...

Periton boşluğu hücrelerinin izolasyonu, ötanize edilmiş bir farenin sırt üstü sabitlenmesiyle başlar. Peritonun dış derisi kesilir ve iç deriye ulaşmak için nazikçe geri çekilir; periton boşluğuna %3 FBS içeren PBS enjekte edilir ve periton nazikçe masaj yapılarak uyarılır. Periton hücrelerini içeren sıvı toplanır ve buz üzerinde 15 mililitrelik bir tüpe aktarılır.Hücreler bir kez yıkanır ve bir hemositometre ile sayılır. Merhaba, ben Wisconsin Kan Merkezi Kan Araştırma Enstitüsü'ndeki Dr. Bon'un laboratuvarından Oji. Bugün size bir farenin periton boşluğundan hücrelerin izole edilmesi prosedürünü göstereceğiz.Laboratuvarımızda çeşitli fenotipik, biyokimyasal ve immünolojik analizler için hücre elde etmek amacıyla bu prosedürü kullanıyoruz. Öncelikli olarak periton B hücresi popülasyonları ile ilgileniyoruz. Öyleyse başlayalım.Periton boşluğundan immün hücreleri izole etmeye başlamadan önce, gerekli tüm malzemeleri hazırlayın. Bir buz kovası, 27 gauge iğneye sahip beş mililitrelik bir şırınga, 25 gauge iğneye sahip beş mililitrelik bir şırınga, strafor blok ve fareyi sabitlemek için raptiyeler toplayarak başlayın. Diseksiyon öncesinde, sabitleme bloğunu tutacak bir tepsi, makas ve pens ile toplama tüplerini hazırlayın.%3 fetal dana serumu içeren PBS'yi önceden soğutun. Bunları ve toplama tüplerini deney boyunca buz üzerinde tutun; anestezik uygulama ve uygun ötanazi işlemlerinin ardından, fareye %70 etanol püskürtün ve fareyi sırtüstü olarak strafor blok veya diseksiyon pedinin üzerine yerleştirin. Pens ve makas kullanarak peritonun dış derisini kesin.Periton boşluğunu döşeyen iç deriyi açığa çıkarmak için deriyi nazikçe geriye doğru çekin. Herhangi bir organı delmemeye dikkat ederek, 27 gauge bir iğneyi yavaşça peritona itin. Periton boşluğuna beş mililitre buz gibi soğuk PBS enjekte edin.Şimdi, hücrelerin periton duvarından ayrılıp PBS çözeltisine düşmesini sağlamak için peritonu nazikçe masajlayın. Ardından, beş mililitrelik bir şırıngaya 25 gauge iğneyi eğik tarafı yukarı gelecek şekilde takın ve iğneyi peritona yerleştirin. Hücre veriminizi artırmak için mümkün olduğunca fazla sıvı toplayın.Bu işlemi gerçekleştirirken, yağ dokusunun veya diğer organların iğneyi tıkamasını önlemek için ucu nazikçe hareket ettirin. İğneyi çıkarın ve hücre süspansiyonunu polipropilen toplama tüplerine boşaltın. Peritonun iç derisinde bir insizyon yaparak boşlukta kalan sıvıyı toplayın.Plastik bir posterior pipetle kalan sıvıyı toplarken, cildi açık tutmak için pens kullanın. Son olarak, hücre süspansiyonunu 1500 RPM'de sekiz dakika boyunca santrifüjleyin, süpernatantı atın ve hücreleri beş mililitre PBS içinde yeniden süspande edin. Hücrelerin hemositometre ile sayılması.Tripan mavisi dışlama yöntemi kullanılarak hücre sayısının belirlenmesi sağlanacaktır. Genellikle, herhangi bir işlem uygulanmamış bir fareden 5 ila 10 milyon periton boşluğu hücresi izole edilebilir. Toplam hücre popülasyonunun %50 ila %60'ı B hücrelerinden oluşacaktır.Yaklaşık %40'ı makrofajlar ve granülositler, %5 ila %10'u ise T hücreleri olacaktır. Size bir fareden periton boşluğu hücrelerinin nasıl izole edileceğini göstermiş olduk. Bu prosedürü uygularken, fareleri dikkatli bir şekilde ötanize ederek ve periton boşluğundaki herhangi bir organı delmeyerek, periton boşluğu hücre popülasyonundaki kan miktarını sınırlamak önemlidir.Kanla kontamine olan tüm örneklerin atıldığından emin olun. Hepsi bu kadar. İzlediğiniz için teşekkürler, deneylerinizde başarılar dileriz.

isolation-of-mouse-peritoneal-cavity-cells

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Fare akciğer dendritik hücreler yüksek oranda saflaştırılmış açıklanmıştır. Özgül ağırlık, geleneksel dendritik hücre alt izolasyon verilir.

Fare Akciğer Dendritik Hücrelerinin İzolasyonu

Bu videoda, hasat edilmiş bir fare Peyer'in yamasından lenfositlerin izolasyonunu gösteriyoruz. İzole edilen lenfositler daha fazla analiz için kullanılabilir.

Bir Fare Peyer Yamasından Lenfositlerin İzolasyonu

Bu video, yetişkin farelerin periton boşluğundan olgun bağ dokusu tipi mast hücrelerini izole etmek için bir periton lavaj yöntemini göstermektedir. Periton boşluğundan primer immün hücrelerin bir karışımı izole edildikten sonra, uygun kültür koşulları altında mast hücrelerinin seçici proliferasyonu gerçekleştirilir.

Primer Mast Hücrelerini Murin Periton Boşluğundan İzole Etme Tekniği

Bu video, bir fare beyninden serebral perisitleri izole etmek için bir yöntemi göstermektedir. İzole edilen hücreler, perisit proliferasyonunu teşvik etmek için perisite özgü ortamda kültürlenir.

Fare Serebral Perisitlerinin İzole Edilmesi ve Kültürlenmesi

Peyer plaklarında hücrelerin belirli altgrupları (PPs), gut-ilişkili lenfoid dokuların primer endüktif sitelerin immünolojik işlevlerini anlamak giderek artan bir ilgi var. Burada akım sitometri analizi ve immun için PP cryosections için tek hücre hazırlıkları PP hazırlamak için paralel protokolleri anahat.

Lenfositler ve mürin Peyer en Yamalar itibaren Dendritik Hücreler İzolasyon Ve immün

Burada murin peritoneal makrofajları izole etmek için basit bir protokolü açıklıyoruz. Bu prosedürü, Toll benzeri reseptörlerin uyarılması üzerine gen ekspresyon analizi yapmak için RNA ekstraksiyonu takip eder.

Fare Periton Makrofagların izolasyonu Toll-benzeri reseptörler Uyarım üzerine Gen İfadesi Analizi Yapacak

Burada, izole ve fare peritoneal mast hücreleri yetiştirmek için bir protokol mevcut. Biz de onların fonksiyonel karakterizasyonu için iki protokol tarif: hücre içi ücretsiz Ca2 + toplama ve degranulation tahlil floresan bir görüntüleme dayalı yayımlanan β-hexosaminidase Renkölçer miktar üzerinde.

Yalıtım Karın zarını kaynaklı Mast hücreleri ve onların fonksiyonel karakterizasyonu ile Ca2 +-görüntüleme ve Degranulation deneyleri

Enterochromaffin (EC) hücreleri küçük bir alt gastrointestinal epitel hücrelerinin oluşturmaktadır. EC hücreleri elektriksel olarak heyecanlı ve kültür ve EC hücreleri tanımlayan zorlukları fizyolojik çalışmalar sınırlı henüz serotonin, bırakın. Burada sunulan yöntem bir birincil kültür model tek EC hücrelerin incelenmesi için mükellef tarafından Elektrofizyoloji kurar.

Tüm cep telefonu Elektrofizyoloji birincil kültürlü fare Enterochromaffin hücre

Burada, telositler de dahil olmak üzere murin bağırsak mezenkimini izole etmek için bir protokol sunuyoruz. Bunlar, büyümeyi desteklemek ve orijinal dokudaki durumu daha iyi yansıtmak için fare veya insan kaynaklı organoidlerle birlikte kültür gibi çeşitli uygulamalar için kullanılabilir.

Murin bağırsak mezenkiminin izolasyonu yüksek telosit verimi ile sonuçlanır

Bu protokol, farelerden kemik iliği kaynaklı makrofajların izolasyonunu ve kültürünü açıklamaktadır.

Farelerden Kemik İliği Kaynaklı Makrofajların İzolasyonu ve Kültürü

Bu makale, murin endotel hücrelerinin dermal lenfatik kılcal damarlardan manyetik boncuk bazlı izolasyonu için bir yöntemi açıklamaktadır. İzole edilmiş lenfatik endotel hücreleri, aşağı akış in vitro deneyler ve protein ekspresyon analizi için kullanılabilir.

Murin Dermal Lenfatik Endotel Hücre İzolasyonu

Öğrenin fare periton boşluğu hücre izolasyonu yöntemini immünoloji ve hücre biyolojisi çalışmaları için. Bu teknik 5-10 milyon hücre elde ederek B hücreleri, makrofajlar ve T hücreleri analizini mümkün kılar.

Fare Periton Boşluk Hücreleri İzolasyon

Daha fazla video keşfet