Name: İki Boyutlu Gabor Filtreler dayanarak Optik Scatter Mikroskopi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-06-02T17:15:00.000+00:00
Duration: 14 min 58 s
Description: Öğrenin, Gabor benzeri filtreleme kullanan optik saçılma mikroskobisi ile apoptotik hücrelerde mitokondrial fragmentasyonu nasıl nicelendirebilirsiniz. Bu yöntem, organel dinamiklerini floresan gerektirmeden izlemenizi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu araştırma mikro ayna cihazı, N. Boustany, Whitaker Vakfı Hibe RG-02-0682 tarafından finanse edildi. Devam eden işler N. Boustany NSF DBI-0852857 hibe tarafından finanse edilmektedir. RM Pasternack kısmen Rutgers Cumhurbaşkanlığı Yüksek Lisans Bursu ile desteklenmiştir. Biz de yararlı bir tartışma için optik filtreleme stratejileri ile ilgili çalışmalar ve Dr. DN Metaxas kullanılan iBMK hücreler için Dr. E. Beyaz teşekkür etmek istiyorum.

1. Hücrelerin hazırlanıyor <ol><li> Gerekir önce mitokondri floresan görüntüleme için Mitotracker yeşil etiketli olmak için gün kaplanmış hücre. </li><li> 100 mcM stok solüsyonu Mitotracker DMSO yeşil önceden yapılmış, 4 ° C derin dondurucu ve el ile oda sıcaklığına çıkarın. Ayrıca, sığır aort endotel hücreleri (BAEC) ° C benchtop su banyosunda 37 de önceden hazırlanmış ve sıcak hücre kültür ortamı çıkarın. </li><li> Mitotracker ve kültür ortamı ısındı sonra, eldivenli elleri ve% 70 etanol çözeltisi ile konteyner tüm dış yüzeyleri sterilize etmek için emin olun kaputu bu yerde. Floresan etiket ışığa karşı hassastır ve hızlı bir şekilde ortam ışığında photobleach, kaput ışığı açmayın. </li><li> Mitokondriyal etiketlenmesi için doğru konsantrasyon çok önemlidir. Çok Mitotracker toksik etkileri olabilir, çok az mitokondri etkili bir etiket değil. Hücreleri ile 45 dakika inkübe Mitotracker 100 nM bir konsantrasyon iyi çalışır. 15 mL tüp içinde 10 ml kültür ortamı Mitotracker stokunun 100 mcL ekleyerek bu konsantrasyon hazırlayın. Bu deney için en az bir bol yapacak. </li><li> Vakum hattına bağlı bir Pasteur pipeti ile eski orta emerek etiketli orta mevcut orta değiştirin. 6 plaka Sonra hemen her işgal altındaki kültür etiketli orta 2 mL ekleyin. </li><li> Floresan etiket ışığa duyarlı olduğundan, doğrudan oda ışığına maruz kalmadan hızlı bir şekilde inkübatör hücrelerin yerine. Kapsayan elleri ile 6 plaka, bunun için iyi çalışır. Hücreleri için 45 dakika inkübatör kalacak. </li></ol> 2. Optik kurulum hazırlanıyor <ol><li> Hücrelerin inkübatör beklerken, biz optik kurulum çevirmek zorunda. Optik oda, ilk olarak, bilgisayar, mikroskop, kameralar ve lazer, civa ark lambası açmak. Sonra dijital micromirror cihazı (DMD) ve iplik difüzör takın. </li><li> Optik lansman görüş alanında parlak bir lazer ışığı ile aydınlatılmış olmasını sağlamak için mikroskop mercek aracılığıyla bakarak uyumlu olduğundan emin olmak için kontrol edin. </li><li> Tek parça sıkı bir kare içine lens kağıt katlama hedefi temizleyin ve bir hemostat sıkıca kavramak. Mercek kağıdı, kağıt içine küçük bir miktar absorbe amonyak içermeyen cam temizleme solüsyonu içine batırın. Rap ücretsiz birkaç kez el hemostat fazlalıkları kaldırın. Sıkıca ortasında lensin üzerinden, diğer bir ucundan objektif karşısında temiz, sürekli tokatlamak uygulayarak amacı silin. Yeniden tokatlamak ya da fırçalayın. Kullanılan kağıt atın. </li><li> Örnek yüklemek için, 63x immersiyon yağı hedefi üzerinde graticule hedefi aşağı tüm yol ise amaç üzerinde 1-2 küçük bir damla immersiyon yağı bırakarak yerleştirin. Ardından sahne graticule yerleştirin. Sonra yağ örnek "kapmak" böylece hedefi yükseltmek. Mercekten örnek odaklanın. </li><li> Kondenser hizalamak için, kondenser alanının stop altıgen kenar odaklanarak, merkezi Kohler aydınlatma hizalanacak şekilde kondenser yükseklik ayarı. Merkezi kondenser alan kondansatör merkezleme düğmeleri çevirerek gerektiğinde görüş alanın üzerine durdurun. Kondansatör diyafram durağı kapatılmış olmalıdır. </li><li> RoperScientific Cascade 512 fotoğraf makinesini çalıştırmak için IPlab program ve giriş ayarları başlayın. Kamera transfer modu kare için ayarlanmış olduğundan emin olun. "Focus Edinme" komutunu çalıştırarak canlı önizleme başlayın. Dizin önek ve dosya konumu olan görüntüleri kaydedilir ayarlayın. </li><li> CoolSnap programı çalıştırmak için RSImage programı ve giriş ayarları başlayın. Clocking modu normal olarak ayarlanmış olmalıdır. </li><li> DMD yazılımını başlatın ve komut menüsünden takip karanlık alan iris, yer, "Yük ve Reset" komutu ve komut dosyasını çalıştırın. </li><li> DMD ve Cascade 512 kamera LSM mikroskop optovar ve viewport ayarlayarak ışık gönder. Bu DF görüntü CCD üzerine projelendirme, DMD ve hizalı optik üzerinden göndermek. Karanlık alan (DF) görüntü IPlab zaten devam canlı önizleme görünmelidir. Gerekli olan canlı önizleme görüntü odak mikroskop ince odağı ayarlayın. </li><li> "Tek elde" komutunu kullanarak görünümü alanında bir anlık görüntü alabilir. Maruz kalma süresi en az 10000 sayar görüntü sinyal sağlamak için yeterince yüksek ayarlayın. Satın alınmasından sonra, diske görüntü kaydetmek için "endeksli kaydet" komutunu kullanabilirsiniz. Graticule Bu görüntü view (FOV) alanın boyutu ölçer. </li><li> Şimdi, sadece arka plan görünür graticule FOV ötesinde böylece graticule örnek hareket ettirin. Alan bir arka plan görüntü elde.5000 sayıları en az sinyal elde olduğundan emin olmak için yeterince uzun bir pozlama süresi. Bu görüntü, filtrelenmemiş görüntülerin arka plan çıkartılması konusunda yardımcı olacaktır. </li></ol> 3. Süzgeç Yükleme ve kurulum süzülmüş-arka plan görüntüleri elde etmek için kullanarak <ol><li> Şimdi, arka plan Gabor filtreden görüntüler elde etmek gerekir. Gabor filtre bankası script DMD kontrol yazılımı yükleyin. DMD dahili bellek için filtreleri arabellek tüm komut dosyasını çalıştırın; bu birkaç dakika sürebilir. </li><li> Tüm betik tamponlu sonra, şimdi arka plan filtrelenmiş görüntü elde edebilirsiniz. Başlangıç ​​kullanın ve bir defada bir Gabor gibi filtre ile ilgili filtreler sadece bir set yüklemek için DMD talimat DMD yazılım içinde belirteçleri durdurmak ve komut dosyasını çalıştırın. O filtre için filtrelenmiş bir görüntü canlı görüntü önizlemesi karanlık alan değiştirmek gerekir. </li><li> Diskten IPlab satın komut dosyası açın. 2000 sayıları en az sinyal elde ediliyor sağlamak için maruz kalma süresi ayarlayın. DMD komut dosyası çalıştırarak, IPlab canlı önizleme iptal ve satın komut dosyasını çalıştırın. Bu otomatik olarak algılamak, indeks ve filtrelenmiş bir görüntü diske kaydetmek. </li><li> Sonra ilk görüntü elde edilir, DMD yazılımı çalıştıran komut dosyası durdurmak ve komut dosyası kullanılmış komutları silin. Sonraki filtre seti başında ve sonunda başlangıç ​​ve bitiş belirteçlerinin değiştirin. IPlab satın tekrarlayın. </li><li> Tüm Süzgeç kullanılan ve tüm filtre görüntüleri elde kaydedildi kadar 3.4 adımı tekrarlayın. </li></ol> 4. Hücreleri Kaplama <ol><li> Artık, hücreler, yakında deney için plaka hazır olacak. Laboratuar benchtop havyanızla takın. 37 ° C'ye kadar L15 inceleyen orta ve ısı çıkarın Bir kağıt havlu ile bir iş istasyonu ve bir Kimwipe olun. Yırtılma ve twirling Kimwipes çeşitli fitiller olun. Fitiller ve hücre tabak sıvı transferi yardımcı olacaktır. </li><li> Bundan sonra, biz örnek plaka gerekir. Biz, metal plaka arasına bir "lamel sandviç" hücreleri plaka işlenmiş metal örnek tutucuları kullanın. Her tarafta oluk uçlarında yaklaşık yarım uzanan metal plaka deliğin üst çevre etrafında bir şırınga ince bir boncuk vakum gres yağı uygulayın. Nazik bir şekilde temiz bir basın. 1 yağ üzerine lamel. Plakayı ters çevirin ve deliğin etrafındaki gres sürün. Odanın lambalarını kapatın. </li><li> Şimdi inkübatör içeriği% 70 etanol ile sterilize nitril sınav eldiven ile işleme, inkübatör hücreleri olsun. Nefesinizi tutarak inkübatör kapı açıkken, inkübatör hücre plaka çıkarın. Oda ışığına maruz kalma en aza indirmek için dikkatli olun. </li><li> Iyi yüzü yukarı hücreleri bağlı yan tarafında olduğunu belirterek, altı plaka deney için kullanılacak olan lamel çıkarın. Lamel yan hücreleri parça hangi tutarken, neredeyse tamamen kuruyana kadar her iki tarafta lamel dikkatlice kurutun. Daha sonra herhangi bir yağ tabakası içinde hava boşlukları kalması emin olmak için, görüntüleme delik üzerine yağlanmış metal plaka, aşağı lamel, hücre yan basın. Yağ, su geçirmez bir mühür formu bize L15 orta hücrelerin yüklemek için izin gerekir. Bu belli, plaka üzerinden geri çevirin. </li><li> Üst lamel ve metal plaka arasındaki oluk yoluyla sıvı zorlayarak kaplı hücrelerin içine L15 orta Pipet. Bir seferde 200 mcL Pipetleme iyi çalışır. Ilk hacmi pipet sıvı ile diğer tarafta oluk neredeyse uzanan lamelleri arasında sıkışmış boşluğu doldurmak gerekir. </li><li> Kaplama hücrelerin içine orta bir başka 200 mcL Pipet, ama bu sefer, bir orta, bir taraftan diğerine doğru akar ve böylece karşı koru fitil tutun. Bu hücreler yıkar ve eski orta izlerini kaldırır. Bu adım sırasında sıvı içinde oluşan herhangi bir kabarcıklarını engellemek için dikkatli olun. Bu sürecin her durulama için yeni bir fitil kullanılarak 2-3 kez tekrarlayın. </li><li> Biz takılı havyanızla hatırlıyor musun? Şimdi kullanılan alır. Bu sıvı, hücre rezervuar içinde sıkışıp ve damlayabilir olamaz kenarlarından plaka destekleyen bir kez daha ters plaka çevirin. Havyanızla valap beher içine batırın. Bu hızla, sonra havyanızla ucu tutunacaktır valap bazı eriyecek. Havyanızla ucu bir aplikatör kullanarak alt lamel (şimdi yukarı bakacak şekilde) kenarlarında erimiş valap dikkatlice uygulayın. Lamel metal plaka sızdırmazlık, lamel çevresinde bir gidene kadar tüm yol daldırma ve uygulayarak devam edin. </li><li> Hücrelerin alt lamel üzerinde büyüyen, ve maruz kalan tarafta kurutulmuş kadar orta kalıntı olabilir. Kimwipe ve dezenfeksiyon kadar balling lamel yüzeyinden herhangi bir kalıntı temizleying çok objektif temizleme gibi tek bir kayan hareket lamel. Bu lamel görülecektir merkezinde temiz olmasını sağlar. </li><li> Havyanızla çıkarın ve aynı çevreleme ve sterilite prosedürleri gözlemleyerek inkübatör 6 plaka dönüş. Adımları 2.4 ve 2.5 'de açıklandığı gibi objektif optik laboratuar ve montajı kaplı hücreler alın. </li></ol> 5. Deney yaparak <ol><li> Sağlıklı görünümlü hücreler güzel bir alanını bulun. </li><li> Görüş alanında karanlık bir alan görüntü elde. Diferansiyel girişim kontrast (DIC) mikroskop hizalayın ve DIC bir görüntü elde. Pozlama süreleri, bu sinyali yeterli olduğundan emin olmak için yeterince uzun olduğundan emin olun. </li><li> Şimdi, diğer kamera floresan görüntüleri elde etmek için var. CoolSnap DIC görüntüleri almak için, mavi bir yerine ve gerektiğinde çıkarmadan, kondansatör bağlı LED kullanır. Mikroskop hala DIC uyumlu iken,% 100 dürbün 1.0x ve viewport mikroskop optovar ayarı CoolSnap ışık gönder. Mercek kamera görüntü aktar. LED alanında aydınlatmak ve RSimage FOV önizleme ve gerekirse ince odak ayarlamak için kondansatör üzerinde yerleştirin. DIC bir görüntü elde etme ve diskinize kaydedin. FOV Cascade kameradan elde edilen farklı nasıl unutmayın. Bu görüntüler deney sonucunda analiz aşamasında kayıtlı olması. </li><li> Floresein filtercube filtre küp ayarlayarak bir floresan görüntü elde edin. Kısaca mikroskop kullanılarak floresans uyarma çevirerek bir görüntü elde etme ve satın alma tamamlandıktan sonra en kısa sürede kapatmak. DIC odaklı örnek beri, floresan görüntü yine iyi odaklanmış. Bu böylece photobleaching yavaşlatmadan, floresan maruz kalma süresi kaydeder. Diske floresan görüntü kaydetme. </li><li> Şimdi filtrelenmiş görüntüler elde etmek için var. Karanlık alan mikroskobu sıfırlayın ve 2.9 olarak LSM bağlantı noktası üzerinden ışığında yeniden gönderin. </li><li> 3,3-3,5 gibi tüm Gabor Süzgeç komut dosyasını çalıştırın. Biz şimdi bir zaman noktası için veri toplama tamamladık. </li></ol> 6. Staurosporine (STS) hücreleri ortaya çıkarmak için orta açma ve deney boyunca orta korumak <ol><li> Hücreleri hala sahnede ve görüş alanı bozmadan, aynı DMSO STS 4 mM stok çözüm yapılan STS 1 mcM çözüm içeren düzenli L-15 orta geçin. Medya geçiş adımları 4.6 açıklanan esneklik yöntemi kullanın. </li><li> Şimdi, daha sonraki zaman noktalarında adımları 5,2-5,6 tekrarlayın. Deney tamamlanana kadar bu işlemi tekrarlayın. </li><li> Deney sırasında, daha fazla orta örnek birbirinden ayrılacak şekilde eklenmesi gerekmektedir. Bu hücre plaka koru aşamasından çıkarmadan ve FOV bozmadan orta pipetleme tarafından gerçekleştirilir. </li></ol> 7. Temsilcisi Sonuçlar Deney bitiminde, toplanan veriler, çok sayıda hücre içi yapısal veri ayıklamak için işlenmesi gereken süzülmüş görüntüleri yer alacak. İki örnek filtre dönemde S = 0.95μm, Gauss zarf standart sapma s = S / 2 = 0.45μm ve yönelimleri Φ = 0 ° 'ye kadar Φ = 160 ° 20 9 Gabor gibi filtreler oluşan bir optik filtre banka için gösterilir ° 'lik artışlarla. ([1] Daha fazla ayrıntı için bakınız). Örnek 1: Deniz Diyatom Önce karanlık alan (DF) görüntüleme (Şekil 1) açıkça görülüyordu odaklı özelliklere sahip bir deniz diatom örneği (Carolina Biyolojik Supply Company) yönlendirme hassas filtre banka uygulanır. Optik süzülmüş görüntüleri filtrelenmemiş görüntünün yanında, karşılaştırma için örnek gösterilmiştir. <img src="/files/ftp_upload/1915/1915fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1: Koyu alan (DF) ve deniz diatom optik filtrelenmiş bir görüntü çıkar. Biz görüntü (en sol panelinde beyaz ok) sağ alt diatom analiz edecektir. Diatom dokuz Gabor filtreden görüntüleri seti, nesne yönelimi ve yuvarlaklık için piksel-piksel işlendi. İşleme (1), böylece yanıt önemi kodlama sinyal yanıt genel büyüklüğünü belirlemek için her pikselin Gabor filtreden dokuz görüntüleri ölçülen tepkiler toplayarak, ve (2) Gabor filtresi yönünü bulma oluşuyordu, Φ, hangi yanıtı maksimize eden ve böylece her pikselin nesneleri tercih edilen bir yönelim var ölçüde kodlama tüm açılardan bu maksimal yanıt oranı ortalama yanıt alınması. Oryantasyon derecesi parçacık geometrik boy oranına yakından ilişkilidir. Şekil. 2B, incie filtre banka (parametre 1) ve yönelim ya da en-boy oranı (parametre 2) derecesi piksel genel yanıt sırasıyla, renk doygunluğu ve renk tonu olarak kodlanmış. Büyük değerler (kırmızı) daha yüksek bir tercih açısı yanıt mevcut olduğu alanlarda gösterir yakın bir boy oranı 1 (mavi), tercih edilen hiçbir yanıt açısı var olduğu alanlarda mevcut. Altyapı parçacık yönü her satırı yakından filtrelenmemiş karanlık alan (Şekil 2A) görünür altta yatan bir yerel nesne yönelimi ile mutabık kalınan bir sadak arsa (Şekil 2C), kodlanır. <img src="/files/ftp_upload/1915/1915fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2: A: diatom Karanlık saha görüntüsü. B: Nesne yönelim görüntü. Parlaklık toplam Gabor filtre yanıt önemi kodlar çalışırken renk skalası oryantasyon derecesi (en boy oranı) gösterir. C: yanıt yoğunluk ≥% 10 maksimum nesneleri Yönlendirme. Çizgi segment ilgili yapının uzun ekseni gösterir. Örnek 2: Apoptotik hücreleri İşte biz, diatom olarak aynı şekilde işlendi staurosporine (STS) ile tedavi edilen sığır endotel hücreleri filtre görüntüleri göstermek. Şekil 3 T anında dokuz süzülmüş görüntüleri =- 180 dakika ile birlikte hücrelerin filtrelenmemiş bir karanlık alan (DF) görüntü gösterir. STS tedavi öncesinde. <img src="/files/ftp_upload/1915/1915fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3: birkaç yaşam endotel hücreleri içeren bir alanın Karanlık saha (DF) ve optik süzülmüş görüntüleri. Süzülmüş görüntüleri sonradan STS tedavi sonrası üç saatlik bir süre boyunca her 20 dakikada elde edildi. Şekil 4a, zamanın bir fonksiyonu olarak hücrelerin bir boy oranı haritasını gösterir. Bu durumda, renk tonu, renk tonu için Şekil olarak oryantasyon derecesi (etiketli odaklığı) temsil eder. Yukarıda 2b. Ancak, en-boy oranı parlaklığı ortalama filtre cevabı ağırlıklı değildi. (Şekil 4b) etiketli bu hücrelerde mitokondri floresan görüntüleri ile boy oranı haritaları kayıt olarak, ölçülen boy oranı düşüşü mitokondri içeren hücresel bölgelerde sınırlı olduğunu belirledi ve doğrudan görülebiliyor mitokondriyal parçalanma ile eş zamanlı aynı hücrelerin floresans görüntüler. Şekil 5 tasvir zaman araziler hücrelerde apoptozis geçiren zamanın bir fonksiyonu olarak en-boy oranı değişiklik gösterir. = 60-100 floresan mitokondri kayıt bölgelerde dakika değil, loş bir arka plan floresan alanları ile kayıt bölgelerde her bir hücrenin içinde, T-boy oranı bir düşüş var. <img src="/files/ftp_upload/1915/1915fig4.jpg" alt="Şekil 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 4"> Şekil 4: En-boy oranı (a) ve floresan (b) endotel hücreleri apopitoz indükleyen staurosporine ile tedavi edilen görüntüler . <img src="/files/ftp_upload/1915/1915fig5.jpg" alt="Şekil 5" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 5"> Şekil 5: staurosporine ile tedavi edilen endotel hücreleri parçacık boy oranı (odaklığı) azalma karşılaştırarak Zaman araziler. Bireysel izleri tek hücre zaman içinde araziler temsil eder. Odaklığı içinde damla floresan mitokondri (sol panel) hücreleri ile kayıt bölgeleri ile sınırlı kalan eşiğe bölgede (sağ panel) yoktur. Şimdi en-boy oranı düşüşü mitokondriyal parçalanma karşılık geldiğini tespit ettik, biz, bu hücrelerin apoptoz neden hücreleri etiket kalmadan optik dağılım yöntemi kullanılarak parçalanma ölçmek ve bu farklı genetik ve deneysel koşullar etkisinin araştırılması dinamik.

<ol><li>Pasternack, R. M., Qian, Z., Zheng, J. -Y., Metaxas, D. N., White, E., Boustany, N. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Measurement+of+Subcellular+Texture+by+Optical+Gabor-Like+Filtering+with+a+Digitial+Micromirror+Device%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Letters%22%5BJournal%5D)">Measurement of Subcellular Texture by Optical Gabor-Like Filtering with a Digitial Micromirror Device.</a> Optics Letters. 33 (19), 2209-2211 (2008).</li>
<li>Pasternack, R. M., Qian, Z., Zheng, J. -Y., Metaxas, D. N., Boustany, N. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Highly+sensitive+size+discrimination+of+submicron+objects+using+optical+Fourier+filtering+based+on+two-dimensional+Gabor+filters%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Express%22%5BJournal%5D)">Highly sensitive size discrimination of submicron objects using optical Fourier filtering based on two-dimensional Gabor filters.</a> Optics Express. 17 (14), 12001-12012 (2009).</li>
<li>Zheng, J. -Y., Pasternack, R. M., Boustany, N. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optical+scatter+imaging+with+a+digital+micromirror+device%5BTitle%5D)+AND+%22Optics+Express%22%5BJournal%5D)">Optical scatter imaging with a digital micromirror device.</a> Optics Express. 17 (22), 20401-20414 (2009).</li>
</ol>

Yöntemleri bazı yönlerini ve buluş açıklama, Rutgers Üniversitesi Hulasa # 09-049 dahil edilmiştir.

Bu yöntem, örneğin parçacık boyutunu veya yönünü kodlamak nesnenin verim morfometrik haritalar yukarıda açıklanan. Bu yapısal bilgiler çeşitli şekillerde kullanılabilir: <ol><li> Bu, belirli bir tedavisi sırasında değiştirilmiş ve daha sonra bu bölgelerde spesifik moleküler ve biyokimyasal testlerin analiz doku veya hücre bölgeleri belirlemek için bir başlangıç ​​ekranı olarak kullanılabilir. </li><li> Bu hücrelerin hücre içi yapısı (bu yöntemle) kantitatif karakterizasyonu ile moleküler aktivitenin eş zamanlı anlay...

<table><tbody><tr><td>DMEM</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>Düşük glukozlu DMEM</td></tr><tr><td>Liebowitz L15 besiyeri</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>Fenol kırmızısız</td></tr><tr><td>L-glutamin</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Mitotracker Green</td><td>Invitrogen</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sığır Beyin Ekstraktı</td><td>Clonetics</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu</td><td>Gemini Bio Products</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Heparin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Staurosporin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Dimetilsülfoksit</td><td>Sigma-Aldrich</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Inverted mikroskop</td><td>Carl Zeiss, Inc.</td><td>Axiovert 200M</td><td></td></tr><tr><td>DMD</td><td>Texas Instruments</td><td>TI 0.7 XGA DMD 1100</td><td></td></tr><tr><td>CCD</td><td>Roper Scientific</td><td>Cascase 512B</td><td>Yüksek (16 bit) dinamik aralıklı CCD</td></tr><tr><td>CCD</td><td>Roper Scientific</td><td>Coolsnap cf</td><td></td></tr></tbody></table>

İki boyutlu gabor filtreler dayanarak optik scatter mikroskopi

Optical Scatter Microscopy Based on Two-Dimensional Gabor Filters

Biz lekesiz canlı hücrelerin içinde organel morfolojisi ve organizasyon kaynaklanan hücre içi doku ölçebilirsiniz mikroskopik bir enstrüman ortaya koymaktadır. Önerilen araç organel boyut ve şekil nanoölçekli değişiklikleri, etiket optik mikroskopi hassasiyet uzanır ve programlanmış hücre ölümü ya da hücresel organel dinamikleri altında yatan temel biyolojik süreçlere ilişkin yapı-işlev ilişkisi çalışmada, hızlandırmak için kullanılabilir farklılaşması. Mikroskop kolayca mevcut mikroskopi platformlarda uygulanacak ve bu nedenle, bilim adamları, uygulamak ve sınırsız erişim ile önerilen yöntemler kullanabilirsiniz bireysel laboratuarlar, dissemine olabilir. Önerilen tekniği iki boyutlu optik Gabor filtreleri yoluyla hücre gözlemleyerek ve hücre içi yapısını karakterize etmek mümkün. Bu filtreler anlamda nano ölçekli (10 nm) hassasiyet, boyutu ve yönü olmayan küresel hücre içi organelleri ile ilgili spesifik morfolojik özellikleri ile ayarlanmış olabilir. Elastik saçılma tarafından oluşturulan kontrast dayalı, teknik, detaylı bir ters saçılma modeli veya Mie teorisi üzerine morfometrik ölçümler ayıklamak için güvenmeye gelmez. Bu teknik, bu yüzden kesin bir teorik dağılım açıklamasına kolayca verilmez için küresel olmayan organelleri ve fonksiyonunu değerlendirmek için lekesiz canlı hücrelerin içinde elde edilebilir ayırt edici morfometrik parametreler sağlar. Discretized nesnenin yoğunluğu yerine dönüşümü doğrudan nesne alanında faaliyet gösterdiği dijital görüntü işleme tekniği göre avantajlıdır. Yüksek görüntü örnekleme oranları dayalı değildir ve bu nedenle oldukça büyütülmüş dijital görüntüler floresan konfokal mikroskopi tek tek organel segmentasyon ve yeniden yapılanma ötesine böylece büyük ölçüde organel yapısı çalışmanın kolaylaştırılması, hızla bir seferde yüzlerce hücre içinde morfolojik aktivite ekranı için kullanılabilir sınırlı görüş alanları. Bu gösteriye metodoloji göstermek için bir deniz diatom veri göstermektedir. Biz de ilgili bir biyolojik bağlamda yöntem nasıl uygulanabilir bir fikir vermek için canlı hücreler alınan ön veriler göstermektedir.

Biz Gabor gibi tek bir canlı hücre içinde hücre içi dinamiklerini ölçmek için filtreleme dayalı bir karanlık alan mikroskobu yöntemi göstermektedir. Teknik mitokondriyal parçalanma gibi organellerin yapısında değişiklikler, duyarlı.

İki Boyutlu Gabor Filtreler dayanarak Optik Scatter Mikroskopi

Boyanmamış canlı... içerisindeki organel morfolojisi ve organizasyonundan kaynaklanan hücresel altı dokuyu ölçebilen mikroskobik bir cihazı tanıtıyoruz.

Bu videoda, apoptoz sırasında mitokondriyal fragmantasyonu nicelleştirmek için optik saçılım mikroskopisi kullanılmaktadır. Bu protokolde optik saçılım mikroskopisi normalde floresan gerektirmese de, doğrulama amacıyla floresan görüntüler alınacaktır. Görüntüleme sisteminin kurulumunun ardından, hücreler MIT tracker green ile işaretlenecek ve apoptozu tetiklemek için staurosporin ile işlem görecektir.Hücresel organellerin oryantasyonundaki değişimleri iki saat içinde tespit etmek için optik veriler elde edilir. Mitokondriyal fragmantasyonun başlangıcı, hücre altı partiküllerin oryantasyon derecesindeki azalmayı gösteren optik saçılma verileri kullanılarak ölçülebilir. Ardından, optik saçılma verileri ile mitokondrileri içeren floresan bölgeler ilişkilendirilerek veriler doğrulanır.Merhaba, ben Rutgers Üniversitesi Biyomedikal Mühendisliği Bölümü Biyo Optik Laboratuvarı'ndan Nada Bustani. Ben Biyo Optik Laboratuvarı'ndan Rob Pak ve ben de Biyo Laboratuvarı'ndan Deen. Bugün size, floresan boyalara dayanmayan bir yöntem kullanarak hücre altı morfolojik dinamiklerin nicelleştirilmesine yönelik bir prosedür göstereceğiz.Laboratuvarımızda bu tekniği, apoptoz veya programlı hücre ölümü sırasındaki sübseküler yapıdaki dinamik değişiklikleri incelemek için kullanıyoruz. Öyleyse başlayalım. Bu prosedüre, eldivenli elleri %70 ethanol ile sterilize ederek başlayın.Ardından, hazırlanan 100 nano molar miot tracker green stok çözeltisini ve önceden ısıtılmış BAEC hücre kültür ortamını, ışıklar kapalıyken çeker ocağa yerleştirin ve tüm yüzeyleri sterilize edin. Daha sonra, üzerindeki lamel camlara hücreler ekilmiş altı kuyucuklu bir kültür kabını çeker ocağa yerleştirin. Vakum hattına bağlı bir pasta pipeti kullanın.Kuyucuklardaki hücre besiyerini uzaklaştırın. Ardından hücreleri etiketlemek için her kuyucuğa derhal iki mililitre etiketli besiyeri ekleyin. Mitokondri. Oda ışığına doğrudan maruz kalmayı önlemek için doku kültürü plağının üzerini kapatın ve hücreleri hızla inkübatöre geri yerleştirin.Hücreler inkübe edilirken 45 dakika boyunca 37 °C'de inkübe edin. Optik düzeneği hazırlamak için önce cıva ark lambasını açın. Ardından bilgisayarı, mikroskop kameralarını ve lazeri açarak dijital mikro ayna cihazını veya DMD'yi döner difüzöre bağlayın.Ardından, optik lansmanın hizalanıp hizalanmadığını görmek için mikroskop okülerinden bakın. Görüş alanı lazer ışığıyla parlak bir şekilde aydınlatılmış olmalıdır. Numuneyi yüklemek için, 63 x yağ daldırma objektifi tamamen aşağıdayken üzerine bir ila iki küçük damla imersiyon yağı damlatın.Ardından sahneye, gradi adı verilen ve 10 µm düzenli aralıklarla çizgilere sahip bir ızgaradan oluşan bir lam yerleştirin ve objektifi, yağ odağı yakalayana kadar yükseltin. Sonra, kondansatör alanının altıgen kenarına odaklayın. Merkezi Kohler aydınlatmasıyla hizalandığında durun.Altıgen kenar, okülerde merkezlenmiş ve net bir şekilde odaklanmış olmalıdır. Ardından, kondansatör alan durdurucu konum düğmelerini kullanarak kondansatör alanını görüş alanına göre merkezleyin. IP lab uygulamasını başlatın ve kamerayı çalıştırmak için ayarları girin.Kameranın kare aktarım moduna ayarlandığını doğrulayın. Canlı önizlemeyi başlatmak için odaklama edinimi komutunu çalıştırın. Ardından, indeks ön ekini ve görüntülerin kaydedileceği dosya konumunu belirleyin.Ardından, RS görüntüsünü başlatın. Coolsnap kamerayı çalıştırmak için gerekli ayarları belirleyin. Saatleme modu "normal" olarak ayarlanmalıdır.DMD yazılımını başlatın. Koyu alan diyaframını script menüsüne yerleştirin. Ardından yükle (load) ve sıfırla (reset) seçeneklerine tıklayın.Betiği manuel olarak çalıştırmak için viewport'taki mikroskop optik çubuğunu LSM olarak ayarlayın. Bu işlem, görüntüyü hizalanmış optikler içindeki DMD üzerinden gönderecektir. Karanlık alan görüntüsü, Cascade five 12 kameranın CCD'si üzerine yansıtılır.Karanlık alan görüntüsü, IP laboratuvarındaki canlı önizlemede görünmelidir. Gerekiyorsa, canlı önizlemedeki görüntüyü odaklayın. Görüntüde en az 10.000 sinyal sayımı olduğundan emin olmak için pozlama süresini yeterince yüksek bir değere ayarlayın.Ardından, görüntüleme sonrası tekil edinme komutunu kullanarak görüş alanının bir anlık görüntüsünü alın. Görüntüyü diske kaydetmek için dizinlenmiş olarak kaydet komutunu kullanın. GTI görüntüsü, görüş alanının boyutunu ölçer.Şimdi GTI örneğini, görüş alanının dışında kalacak ve yalnızca arka planın görünecek şekilde hareket ettirin. En az 5.000 sayım elde etmeye yetecek bir pozlama süresiyle alanın bir arka plan görüntüsünü yakalayın. Bu görüntü, filtrelenmemiş görüntülerin arka plan çıkarma işlemine yardımcı olacaktır.Şimdi arka planın Gabor filtreli görüntülerini elde etmek için, Gabor Filtre Bankası betiğini DMD kontrol yazılımına yükleyin. Filtrelerin DMD'nin yerleşik belleğine tamponlanması için betiğin tamamını çalıştırın. Tüm betik tamponlandıktan sonra bu işlem birkaç dakika sürebilir.Her seferinde yalnızca bir Gabor benzeri filtreye karşılık gelen tek bir filtre setinin yüklendiğinden emin olmak için DMD yazılımındaki başlangıç ve bitiş işaretleyicilerini kullanın. Arka planın filtrelenmiş görüntülerini elde etmek için betiği çalıştırın. Canlı görüntü önizlemesi, karanlık alandan filtrelenmiş görüntüye dönüşmelidir.Söz konusu filtre için, diskteki IP lab üzerinden görüntüleme betiğini açın. En az 2000 sayım elde edildiğinden emin olmak için pozlama süresini ayarlayın. DMD betiği çalışırken, IP lab'daki canlı önizlemeyi iptal edin ve görüntüleme betiğini çalıştırın.Bu işlem, indeksi otomatik olarak alacak ve filtrelenmiş görüntüyü diske kaydedecektir. İlk görüntü alındığında, DMD'de çalışan betiği durdurun. Kullanılan komutları betikten silin.Ardından, bir sonraki filtre setinin başındaki ve sonundaki başlangıç ve bitiş işaretlerini değiştirin. Tüm filtre bankası kullanılıp filtrelenmiş tüm görüntüler elde edilene ve kaydedilene kadar IP laboratuvarındaki veri toplama işlemini tekrarlayın. Laboratuvar tezgahındaki havyayı fişe takarak ve L 15 medyumunu 37 °C'ye ısıtarak hücreleri ekime hazırlayın.Dökülen herhangi bir besiyerini absorbe etmek ve alanı temiz tutmak için kağıt havlu ve Kim wipe içeren bir çalışma istasyonu hazırlayın. Kim wipe'ları yırtıp döndürerek birkaç fitil hazırlayın. Bu fitiller, sıvıyı hücre plakası üzerinden çekmek için kullanılacaktır.Ardından, bir hücre sandviç yapısı oluşturmak için metal numune tutucuyu kullanın. Bir şırınga yardımıyla, işlenmiş metal plaktaki deliğin üst çevresine, her iki taraftaki kanalların uçlarına yaklaşık yarıya kadar uzanacak şekilde ince bir vakum gresi şeridi sürün. Temiz bir bir numaralı lamel ile gresin üzerine nazikçe geçiş yapın.Plakayı ters çevirin ve deliğin etrafına gres uygulayın. Etanolle sterilize edilmiş NI deneme muayene eldivenleri giyerek oda ışıklarını kapatın. Hücreleri inkübatörden çıkarın.Deneyde kullanılacak olan lameli altı kuyucuklu plakadan çıkarın. Lameli dikkatlice kurulayın. Ardından, lameli hücre tarafı aşağı gelecek şekilde, gözlem deliğinin üzerindeki yağlanmış metal plakaya bastırarak yerleştirin.Hücreleri plaka içerisinde sandviç şeklinde hapsedin. Besiyerinin yüklenebilmesi için hiçbir hava boşluğu kalmadığından ve gresin su sızdırmaz bir conta oluşturduğundan emin olun. Şimdi plakayı tekrar ters çevirerek her seferinde 200 µL pipetleyin.Önceden ısıtılmış L 15 medyumunu, sıvı diğer taraftaki oluğa neredeyse ulaşana kadar üst lam ile metal plaka arasındaki oluktan sandviç yapıya ekleyin. Ardından, karşı taraftaki oluğa bir fitil tutarak ve sandviç yapıya ek 200 µL medyum pipetleyerek hücreleri yıkayın. Fitil eski medyumu çektikçe, medyum bir taraftan diğerine akacaktır.Bu adım sırasında sıvı içerisinde hava kabarcığı oluşmamasına dikkat edin. Her durulama için yeni bir fitil kullanarak bu işlemi iki ila üç kez tekrarlayın. Şimdi, sıvının hücre rezervuarında hapsolmasını sağlamak için plakayı kenarlarından destekleyerek bir kez daha ters çevirin.Havya ucunu, bir miktar veap'ı hızlıca eritmek için veap beherine daldırın; böylece eriyen madde havya ucuna yapışacaktır. Havya ucunu kullanarak, erimiş veap'ı alt kapatma lamelinin kenarlarına dikkatlice uygulayın. Kapatma lamelinin çevresi boyunca daldırma ve uygulama işlemine devam ederek, lameli metal plakaya mühürleyin.Bu işlem, ince örtü camının inceleme sırasında plakadan ayrılmaması için iyi bir mekanik sızdırmazlık sağlar. Alt kısımdaki tüm kalıntıları temizleyin. Bir Kimwipe'ı top haline getirerek örtü camı yüzeyini temizleyin.Lamelin, incelenecek olan merkez kısmının en temiz kalmasını sağlamak için tek bir kaydırma hareketiyle yerleştirin. Altı kuyucuklu plakayı inkübatöre geri koyun. Plakadaki hücreleri optik laboratuvarına götürün ve objektife yerleştirin.Daha önce yapıldığı gibi, sağlıklı görünümlü hücrelerin bulunduğu bir alan bulun ve bu görüş alanının karanlık alan görüntüsünü alın. Ardından mikroskobu DIC moduna getirin ve pozlama sürelerinin yeterli olduğundan emin olun. Bir kaskad kamera ile DIC görüntüsü alın.Bu düzenekte, mikroskop hala DIC modunda hizalıyken floresan görüntüler cool SNAP kamera kullanılarak elde edilir. Mikroskop VAR değerini 1x'e ve viewport ayarını %100 binokülere getirin ve görüntüyü okülerden kameraya yönlendirin. Alanı aydınlatmak için kondansatörün üzerine mavi bir LED yerleştirin.Ardından, görüş alanını RSS görüntüsünde önizleyin ve ince odağı ayarlayın. Gerekiyorsa, bir DIC görüntüsü edinin ve diske kaydedin. Görüş alanının kaskad kameradan elde edilenden nasıl farklı olduğuna dikkat edin.Bu görüntüler, deneyin analiz aşamasında kaydedilmelidir. Ardından, floresan filtre küpünü konumuna getirin ve mikroskop kepenklerini kullanarak floresan eksitasyonu kısa süreliğine açıp bir floresan görüntüsü elde edin, ardından görüntüleme tamamlanır tamamlanmaz eksitasyonu kapatın. Fotobeyazlamayı (photobleaching) en aza indirmek için floresan görüntüsünü diske kaydedin.Filtrelenmiş görüntüleri elde etmek için mikroskobu alana sıfırlayın ve ışığı LSM portundan gönderin. Hücreler hâlâ sahnedeyken ve görüş alanı bozulmadan, tek bir zaman noktası için veri toplama işlemini tamamlamak üzere tüm Gabor filtre bankası betiğini daha önce yaptığınız gibi çalıştırın. Standart L 15 besiyerini, 1 µM STS çözeltisi içeren aynı besiyeri ile değiştirmek için emme yöntemini kullanın.Deney süresince, hücre plakasını sahneden kaldırmadan veya görüş alanını bozmadan, plakadaki kanala pipetle besiyeri ekleyerek kurumasını önleyin. Şimdi, deney tamamlanana kadar bu adımları sonraki zaman noktaları için tekrarlayın. Toplanan veriler, hücre altı yapısal verileri elde etmek için işlenmesi gereken çok sayıda filtrelenmiş görüntü içerecektir.Burada iki örnek deney gösterilmiştir. Bu şekil, bir deniz diyatomu alg örneğinin sıralı görüntülerini göstermektedir. Yönelimli özellikler açıkça görülmektedir.Karanlık alan görüntülemede, beş eşittir 0 dereceden beş eşittir 160 dereceye kadar etiketlenmiş optik olarak filtrelenmiş görüntüler, numunenin filtrelenmemiş görüntüsünün yanında gösterilmiştir. Karşılaştırma amacıyla, diyatomun dokuz Gabor filtrelenmiş görüntüsünden oluşan set, nesne yönelimi için piksel piksel işlenmiştir.Her bir pikselde, maksimum sinyal, filtre yöneliminin bir fonksiyonu olarak ortalama sinyale bölünerek bir en-boy oranı değeri elde edilmiştir. Burada, mavi ile belirtilen bire yakın bir en-boy oranı, tercih edilen bir yanıt açısının bulunmadığı alanları gösterir. Kırmızı ile belirtilen daha yüksek değerler ise, daha yüksek bir tercih edilen açı yanıtının mevcut olduğu alanları gösterir.Toplam GABOR filtre yanıtının parlaklığı ve kod anlamlılığı ile filtre yönelimi, her pikselde maksimum sinyalin verildiği yönün alt nesne yönelimine dik olduğu anlamına gelir. Alt yapı partikül yönelimi, her bir çizginin filtresiz karanlık alanda görünen yerel nesne yönelimiyle yakından örtüştüğü bir ok diyagramı (quiver plot) ile kodlanmıştır. Ok diyagramı, maksimumun %10'undan daha büyük yanıt yoğunluğuna sahip nesnelerin yönelimini göstermektedir.Canlı sığır endotel hücreleri içeren bir alanın bu karanlık alan ve optik filtreli görüntülerinde, apoptosis indükleyicisi staurosporin ile işlem yapıldıktan sonra üç saatlik bir süre boyunca her 20 dakikada bir filtreli görüntüler elde edilmiştir. Burada, üst paneldeki görünüm oranı (aspect ratio) haritası ve alt paneldeki mitokondri floresan görüntülemesi zamanın bir fonksiyonu olarak gösterilmektedir. Renk tonu yönelim derecesini temsil eder; bu zaman grafikleri, staurosporin ile işlem görmüş endotel hücrelerindeki partikül görünüm oranının yönelim derecesindeki azalmayı karşılaştırmaktadır; münferit izler tekil hücrelerdeki zaman grafiklerini temsil eder.Damla yönelimi, hücrelerin floresan bölgelerle eşleşen bölgeleriyle sınırlıdır. Böylece, floresanla doğrulama işlemi gerçekleştirilmiş oldu. Bu işlem arşivlenir.Bu nedenle, sonraki deneylerde florösans görüntüleme adımları atlanarak doğrudan optik saçılma yöntemi kullanılarak mitokondriyal ölçümler yapılabilir. Gabor filtrelerine dayalı ışık saçılma imzalarını kullanarak apoptoz sırasında mitokondriyal fragmantasyonu nasıl izleyeceğinizi göstermiş olduk. Bu prosedürü uygularken, iyi bir yaşam tarzı hazırlığına sahip olmak ve optik düzeneğin iyi hizalandığından ve kalibre edildiğinden emin olmak önemlidir.Öyleyse, UI deneyleri ile izleme ve CoLab için mantığı kavrayalım.

optical-scatter-microscopy-based-on-two-dimensional-gabor-filters

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Source: Espinoza, R., et al. Doku teşhisi için fare beyninin gerçek zamanlı, iki renkli uyarılmış Raman saçılma görüntülemesi. J. Vis. Exp. (2022). Video, fare beyin dokusu bölümlerinin iki renkli uyarılmış Raman saçılması (SRS) görüntülemesini gösterir. İki senkronize lazer ışını, moleküler titreşimleri uyarmak için doku bölümüne yönlendirilir ve bu da ışınlarda nispi bir yoğunluk değişikliğine neden olur. Dokudaki lipitler ve proteinler, lazer ışınlarının farklı frekans çiftleri kullanılarak...

Fare Beyin Dokusunun İki Renkli Uyarılmış Raman Saçılması Görüntülemesi

Biz yapısal karmaşık malzemelerden dağınık ışık yönünde mekansal değişimi örnekleme için bir tahribatsız yöntem mevcut. Aynı anda yüksek çözünürlüklü görüntüleme ince ölçekli yönlü katkıları çekerken malzeme sağlam tutarak, biz, brüt ölçekli saçılma davranışı korumak. Sonuçlar biyolojik-ilgili pozisyonlarda ve ölçeklerde yazılım görüntülendi.

Biyolojik materyalden mekansal-ve Yönde-değişen ışık saçılımı Ölçme

Önceden mamogram mimari bozulma saptanması için yöntemler göstermektedir. Odaklı yapılar doku kalıpları ışırken siteleri tespit etmek için Gabor filtreleri ve faz portreleri kullanılarak analiz edilmektedir. Her site özelliği ve spiculating desenleri temsil etmek için önlemler kullanılarak sınıflandırılmıştır. Yöntemler Meme kanserinin saptanmasında yardımcı olmalıdır.

Önceki mamogram Mimari Bozulma Algılama Via Analiz

Zayıf yaymalı nesnelerin üç boyutlu yerleri benzersiz standart bir mikroskop için küçük bir değişiklik içerir dijital inline holografik mikroskobu (DIHM) kullanılarak tespit edilebilir. Bizim yazılım üç boyutlu pozisyon ve bir mikroskopik faz nesnenin geometrisine vermek üzere Rayleigh-Sommerfeld geri yayılma ile birlikte basit bir görüntüleme buluşsal kullanır.

Zayıf-saçılma Konular Dijital Inline Holografik Mikroskop (DIHM)

Bu makale, dinamik biyolojik süreçleri birden çok renkte optik süper çözünürlükle görüntülemek için toplam iç yansıma floresan aydınlatması (TIRF-SIM) ile çalışan yapılandırılmış bir aydınlatma mikroskobunun montajı ve çalıştırılması için derinlemesine bir kılavuz sağlar.

Çoklu Renkler Yüksek hızında Yapısal Aydınlatma TIRF Mikroskopi A Guide

Sigara karıştırıldı çökelti polimerizasyonu uyaranlara duyarlı poli (N -isopropylacrylamide) dar bir boyut dağılımı mikrojelleri sentezi için hızlı, kopyalanabilir bir prototip bir yaklaşım sağlar. Bu protokol sentezinde, ışık saçılması karakterizasyonu ve geniş alan mikroskopisi kurulumunda bu mikrojellerin tek parçacık floresan izleme gösterilmiştir.

Kontrollü Sentezi ve yüksek Düzgün Poli Floresan Takibi (<em&gt; K</em&gt; -isopropylacrylamide) Mikrojeller

Bu protokol, goniofotometre prensipleri kullanarak intraoküler merceklerden (IOL'ler) gelen ışığın ileri ve geri saçılmasının tam açılı kantitatif değerlendirilmesini sağlayan tarama ışık saçılım profilerini (SLSP) tanımlamaktadır.

Işık saçılma Profiler (SLPS) Tabanlı Metodoloji İntraoküler Lenslerden İleri ve Geri Işık Saçılımını Kantitatif Olarak Değerlendirmek İçin Tarama

Bu metodoloji genel amacı en iyi deneysel koşullar numune hazırlama resim alma ve yeniden yapılanma için 2D çift renk dSTORM görüntülerini mikrotübüller ve ara filamentler sabit hücrelerde gerçekleştirmek için...

Ara filamentler ve mikrotübüller 2 boyutlu doğrudan Stokastik optik imar mikroskobu ile görüntüleme

Hedef reseptörleri hücre yüzeyinde bağlanan antikorlar uyum ve küme değişikliklerini görüşmek. Bu dinamik değişiklikler ilaç geliştirme hedef hücrelerdeki karakterize konusunda da etkileri vardır. Bu iletişim kuralı confocal mikroskobu ve görüntü korelasyon spektroskopisi ile hücre yüzeyinde kümeleme reseptör kapsamını ölçmek için ImageJ/FIJI kullanır.

Confocal mikroskobu ortaya hücre yüzey reseptör toplama görüntü korelasyon spektroskopisi ile

Burada, bir roman görüntüleme multimodal platformu kullanarak bir geniş görüş alanı (FOV) üç boyutlu (3D) floresan ve OCT Retina görüntü almak için bir iletişim kuralı mevcut. Sistem Kurulumu, hizalama yöntemi ve operasyonel iletişim kurallarını tanıtacak. Vivo görüntüleme gösterilecektir ve temsilcisi sonuçları sağlanacaktır.

Eğik tarama Lazer Ophthalmoscopy (oSLO) ve optik koherens tomografi (OCT) tarafından Multimodal hacimsel Retina Görüntüleme

Bu protokolde, bir parlama keskinliği aparatının kavramsal tasarım öğelerini ve yapısal gelişimini özetliriz. Ayrıca, pozitif disfotofoti (haleler, uçlar) ve iki noktalı ışık eşiklerini ölçmek için bir cihazın tasarımı açıklanmıştır.

Göz İçi Saçılımın Davranışsal Etkilerinin Ölçülmesi

Öğrenin, Gabor benzeri filtreleme kullanan optik saçılma mikroskobisi ile apoptotik hücrelerde mitokondrial fragmentasyonu nasıl nicelendirebilirsiniz. Bu yöntem, organel dinamiklerini floresan gerektirmeden izlemenizi sağlar.

İki Boyutlu Gabor Filtreler dayanarak Optik Scatter Mikroskopi

Daha fazla video keşfet