Name: Çift Floresans In situ Taze Beyin Bölüm Hibridizasyon (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-08-14T17:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 15 s
Description: Öğrenin çift floresans in situ hibridizasyon yöntemiyle taze dondurulmuş beyin kesitlerinde iki mRNA transkriptini aynı anda tek hücre çözünürlüğünde tespit etmeyi. Bu teknik sinirbilim araştırmalarında gen düzenlemesini incelemek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

NIH / NIDCD ve RP Schmitt Vakfı hibe tarafından desteklenen çalışın.

Bu protokol, önce bir ya da iki beyin dokusu 1-7 transkript türlerini tespit etmek için, biz ve diğerleri tarafından geliştirilen standart radyoaktif ve radyoaktif olmayan in-situ hibridizasyon yöntemleri, dayalı geliştirilen ve rafine oldu. Aşağıda açıklanan protokol, son kullanıcı tarafından seçilen usul kesintilerinin sayısına bağlı olarak 2 veya 3 gün toplam uzunluğu vardır. Aşağıda ayrıntılı olarak tüm adımları Spastine Özgü Riboprop hibridizasyon adım ve sonrası hibridizasyon yıkar dışında, oda sıcaklığında yapılacak. Bu yöntemde ilgili tüm adımları için gerekli çözümleri ve tamponlar bu protokol sonunda bulunabilir. 1. Doku hazırlanması ve Kesit <ol><li> Başını kesmek ve deneğin beyin hızla ayıklamak ve yeterli büyüklükte plastik bir kalıp içine yerleştirin. </li><li> Kapak Doku Tek gömme orta beyin ve hızlı bir şekilde hızlı dondurma dry-ice/alcohol banyo plastik kalıp. Dondurulmuş doku -80 ° C kullanana kadar saklanabilir. </li><li> Bir Kriyostat kullanarak, tahsil SuperFrost Plus Slaytlarınıza slayt başına 2 veya 3 beyin bölümlerde toplamak. Bölümlerde kalınlığı 10-12 mikron olmalıdır. Slaytlar -80 ° C kullanana kadar saklanabilir. </li></ol> 2. Probe Arıtma Sephadex G50 Sütunlar hazırlanması "Sephadex sütunları ticari kaynaklardan satın alınabilir, ancak, sütunlar, prob arıtma için gerekli olacak nesil için aşağıdaki düşük maliyetli bir alternatif sağlar. <ol><li> RNaz-free, oda sıcaklığında DEPC ile tedavi edilen su (örneğin, 2 gram toz, DEPC arıtılmış su 100 ml), mix çözüm kısaca ve mağaza Sephadex G50 toz Hidrat yeterli miktarda aşırı Sephadex G50 hızlandırabilir. </li><li> Sephadex G50 yağış (suyun üst tabakası) süpernatantı. </li><li> 3 - 5 kat yukarıdaki işlemi tekrarlayın. </li><li> Son yıkamadan sonra, kullanana kadar 4 Sephadex G50 TE tamponu (1:1 oranı) çözüm ve mağaza ° C yeniden askıya. </li><li> 1 ml steril bir şırınga içine yerleştirin cam yünü otoklavlanabilir ve kompakt bir alt katmanı yapmak için piston ile sıkıştırmak ve sonra 15 ml Falcon tüp içine şırınga. </li><li> TE Sephadex G50 çözümü karıştırın. Bu çözüm ile şırınga / sütun doldurun. </li><li> 1000 rpm'de 30 saniye süreyle sütun santrifüjleyin. </li><li> Sütun neredeyse tamamen Sephadex G50 boncuklar ile dolana kadar bu işlemi tekrarlayın. </li><li> Sütun sütun yıkama tamponu 200 ul uygulayın ve 1000 rpm'de 2 dk santrifüj. Flow-through atın. </li><li> 200 ul sütun sütun engelleme tampon uygulayın ve 1000 rpm'de 2 dakika döndürün. Sütun dengelenmesi için bu adımı 4-5 kez tekrarlayın. ° C kullanana kadar Parafilm ile mühürlenmiş Sütunlar 4 saklanabilir. </li></ol> 3. Riboprobes Etiketlenmesi ve Arıtma Detaylı, tek bir Spastine Özgü Riboprop üretim ve arıtma Aşağıda. DFISH için, her sonda hazırlık probların biotin etiketli UTP ile diğeri ise digoxigenin (DİJİTAL) etiketli UTP etiketli olacağını dışında, aynı metodoloji içerecektir. <ol><li> Duygusu (kontrol) veya antisens riboprobes oluşturmak için bir ilgi konsantre (&gt; 150 ng / ml) ve saflaştırılmış Lineerleştirilmiş cDNA çözüm hazırlayın. </li><li> 1.5 ml mikrofuge'de tüp, cDNA şablon, 5X prob etiketleme tampon 2 ul, 10X DIG 1 ul (veya biotin) etiketleme karışımı, RNasin 0.5 ul ve uygun RNA polimeraz 1 ul saflaştırılmış 0.5-1 mg eklemek ve son hacmi RNAse-free (DEPC tedavi) su ile 10 ul çözüm getirmek. </li><li> 37, bir su banyosu içinde çözüm ° C de 2 saat süreyle inkübe edin. </li><li> Çözüm ve sütun engelleme tampon 39 ul; tRNA 1 ul (20 mg / ml hisse senedi) ekleyin. </li><li> Prob arıtma Sephadex G50 sütun hazırlayın. Bu amaçla 50 ul engelleme tampon, sütun ekleyin ve 1000 rpm'de 10 saniye boyunca döndürün. Kolon (yani tam 50 ul sütuna uygulanan santrifüj döngüsü sonra kurtarıldı.) Dengelenmesi için bu adımı 2-3 kez tekrarlayın. </li><li> Sephadex G50 sütun, pozisyon, sütunun alt kısmında yeni bir mikrofuge'de tüp prob çözümü uygulayın ve saflaştırılmış 50 ul Spastine Özgü Riboprop çözüm elde etmek için 1000 rpm'de 3 dakika döndürün. </li><li> Ya bir standart formaldehit agaroz RNA jel, ya da bir spektrofotometre kullanarak etiketli Spastine Özgü Riboprop kalite ve verim değerlendirin. </li></ol> 4. Post-fiksasyon, Asetilasyon ve Hibritleşme <ol><li> -80 ° C derin dondurucu bölümleri çıkartın ve oda sıcaklığına denge sağlaması için izin. Daha sonra, 5 dakika süreyle soğuk, taze% 3 paraformaldehid çözüm bölümler kuluçkaya yatmaktadır. </li><li> Kısaca p bölümleri durulamahosphate iki kez tamponlu salin (PBS). </li><li> Standart bir alkol serisi (70, 95, ve% 100, 2 dk) ile bölümleri, kurutmak ve hava kurumaya bırakın. </li><li> 10 dakika bir asetilasyonu çözüm bölümleri inkübe edin. </li><li> 2X SSPE bölümler 3 kez durulayın. </li><li> Yukarıda açıklanan standart alkol serisi ile tekrar bölümleri dehydrate ve onları kurumasını sağlar. </li><li> Hibridizasyon çözüm yeterli bir hacmi hazırlayın ve hem riboprobes çözüm (prob konsantrasyonu her probu için 1 ng / ml) ekleyin. Hibridizasyon çözüm toplam hacmi (hibridizasyon çözüm Bölüm başına 16 ul) melezleşmiştir bölümlerin sayısına göre belirlenir. </li><li> Herhangi bir hava kabarcıkları bindirme sağlayarak doku doku ve kapak slaytlara hibridizasyon çözüm yeterli hacim uygulayın. </li><li> Metal bir slayt tutucuya yerleştirin slaytlar. Daldırın tutucu bir mineral yağ banyosu içinde 65 ° C gece ayarlayın. Bu lamelleri (yani, slayt sahibinin lateral mineral yağ kabın alt kısmına temas edilmelidir) yukarı bakacak olun. </li></ol> 5. Post-Hibridizasyon yıkar <ol><li> Ertesi gün, mineral yağ banyosu dikkatle slayt tutucu kaldırmak ve slaytlar kısaca aşırı yağ kaldırmak için kloroform durulayın. </li><li> Yer 2X SSPE çözümü için bir 5-10 dakika slaytlar. Lameller çözelti içinde iken slaytlar ayırmak gerekir. </li><li> Yeni bir 2X SSPE çözüm slaytları transferi ve 1 saat oda sıcaklığında saklayın. </li><li> 2X SSPE artı% 50 formamid içeren bir çözüm bölümleri aktarın. Bu çözümün sıcaklık gecelik hibridizasyon yöntemi kullanılan sıcaklık uyumlu olmalıdır. 1.5 saat süreyle bu çözüm slaytlar tutun. </li><li> 0.1x SSPE çözüm hibridizasyon adım aynı sıcaklıkta önceden ısıtılmış bölümler aktarın. 30 dakika için bu çözüm bölümleri inkübe edin. Ek bir 30 dakika için bu adımı tekrarlayın. </li></ol> 6. Riboprobes Algılama ve Görselleştirme <ol><li> % 0.3 'lük hidrojen peroksit 10 dakika eklenmiştir TNT tampon Slaytları aktarın. </li><li> TNT tampon, 3 kez (10 dk) bölümleri yıkayın. </li><li> Bir DAKO kalem kullanarak, beynin bölümleri içeren alanı çevresinde iyi çizin. Daha da önemlisi, dikkatli bölümlere kuru değil sağlamak için dikkatli olunmalıdır. </li><li> Her bir slayt 150 ul TNB tampon uygulayın ve nemli bir odasında, bu çözüm bölümleri 30 dakika inkübe edin. </li><li> Devrilir slaytlar aşırı TNB çözüm çıkarın. </li><li> TNB çözüm 2 saat süreyle nemli odasında peroksidaz anti-DIG-konjuge antikor, ve mağaza slaytlar içeren 150 ul uygulayın. Antikor konsantrasyonu önce dFISH yürüten ilgi her transkript için ayrı ayrı tespit edilmelidir. </li><li> TNT tampon bölümleri yıkayın; 3 kez, her biri 10 dk. </li><li> Alexa her slayt için 594-konjuge tyramide çalışma çözeltisi 150 ul uygulayın ve 1 saat için nemli bir oda saklayabilirsiniz. Bu çözüm üretici yöne göre hazırlanmalıdır. </li><li> TNT tampon bölümleri yıkayın; 3 kez, her biri 10 dk. </li><li> - 30 dakika inkübe bölümleri TNT tampon hangi% 0.3 'lük hidrojen peroksit 10 eklendi olmuştur. </li><li> TNT tampon bölümleri yıkayın; 3 kez, her biri 10 dk. </li><li> Slayt başına 150 ul TNB tampon uygulayın ve 30 dakika için nemli bir oda tutmak. </li><li> Devrilir slaytlar aşırı TNB çözüm çıkarın. </li><li> TNB çözüm 2 saat süreyle nemli odasında peroksidaz-konjuge anti-biotin antikor, ve mağaza slaytlar içeren 150 ul ekleyin. </li><li> TNT tampon bölümleri yıkayın; 3 kez, her biri 10 dk. </li><li> Bir Alexa 150 ul 488-konjuge slaytlar ve 1 saat süreyle inkübe bölümleri tyramide çalışma çözümü uygulayın. Bu çözüm, üreticinin tavsiyelerine göre hazırlanmalıdır. </li><li> TNT tampon bölümleri yıkayın; 3 kez, her biri 10 dk. </li><li> Hoechst çözümü (TNT tampon 1:1000) 150 ul bölümlere ekleyin ve 2 dakika süreyle nemli odasına saklayın. </li><li> TNT tampon bölümlerin yıkayın; 3 kez, her biri 5 dakika. </li><li> Lamel bir floresan uyumlu montaj orta (örneğin, Vectashield veya antifade uzatmak) bölümleri. </li></ol> 7. Temsilcisi Sonuçlar <img src="/files/ftp_upload/2102/2102fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1: Biz burada zebra ispinozu beyin elde temsilcisi dFISH sonuçlarını gösterir. Caudomedial nidopallium (NCM), memeli işitsel korteks Songbird analog elde fotomikrografı gösterilir. Beyin bölümleri parvalbumin (A), inhibitör nöronların alt nüfus için bir marker yöneltilen bir biotinlenmiş Spastine Özgü Riboprop melezleşmiştir ve Ribo DIG etiketliprob, şarkı odaklı nöronlar için güvenilir bir belirteç aktivite bağımlı gen zenk (B) karşı yöneltilmiş. C) (A) ve (B) işitsel deneyim ile aktive olan inhibitör nöronların bir nüfus gösterir Yerleşimi. Oklar ve ok uçları, her iki riboprobes özel etiketli hücreleri gösterir ve yıldızlarla ortak ilgi her iki transkript ifade temsilcisi nöronlar göstermektedir. Ölçek çubuğu = 25 mm.

<ol><li>Jin, L., Lloyd, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+hybridization%3A+methods+and+applications%5BTitle%5D)+AND+%22J+Clin+Lab+Anal%22%5BJournal%5D)">In situ hybridization: methods and applications.</a> J Clin Lab Anal. 11, 2-9 (1997).</li>
<li>Stoler, M. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Lab+Med%22%5BJournal%5D)">In situ hybridization.</a> Clin Lab Med. 10, 215-236 (1990).</li>
<li>Komminoth, P., Werner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Target+and+signal+amplification%3A+approaches+to+increase+the+sensitivity+of+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22+Histochem+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Target and signal amplification: approaches to increase the sensitivity of in situ hybridization.</a> Histochem Cell Biol. 108, 325-3233 (1997).</li>
<li>Kessler, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+digoxigenin%3Aanti-digoxigenin+%28DIG%29+technology--a+survey+on+the+concept+and+realization+of+a+novel+bioanalytical+indicator+system%5BTitle%5D)+AND+%22Mol+Cell+Probes%22%5BJournal%5D)">The digoxigenin:anti-digoxigenin (DIG) technology--a survey on the concept and realization of a novel bioanalytical indicator system.</a> Mol Cell Probes. 5, 161-205 (1991).</li>
<li>Panoskaltsis-Mortari, A., Bucy, R. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+situ+hybridization+with+digoxigenin-labeled+RNA+probes%3A+facts+and+artifacts%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">In situ hybridization with digoxigenin-labeled RNA probes: facts and artifacts.</a> Biotechniques. 18, 300-307 (1995).</li>
<li>Qian, X., Lloyd, R. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+developments+in+signal+amplification+methods+for+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Diagn+Mol+Pathol%22%5BJournal%5D)">Recent developments in signal amplification methods for in situ hybridization.</a> Diagn Mol Pathol. 12, 1-13 (2003).</li>
<li>Mello, C. V., Jarvis, E. D., Denisenko, N., Rivas, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+of+song-regulated+genes+in+the+brain+of+songbirds%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol+Biol%22%5BJournal%5D)">Isolation of song-regulated genes in the brain of songbirds.</a> Methods Mol Biol. 85, 205-217 (1997).</li>
<li>Pinaud, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((GABAergic+neurons+participate+in+the+brain%27s+response+to+birdsong+auditory+stimulation%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">GABAergic neurons participate in the brain's response to birdsong auditory stimulation.</a> Eur J Neurosci. 20, 1318-1330 (2004).</li>
<li>Velho, T. A., Pinaud, R., Rodrigues, P. V., Mello, C. V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Co-induction+of+activity-dependent+genes+in+songbirds%5BTitle%5D)+AND+%22Eur+J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Co-induction of activity-dependent genes in songbirds.</a> Eur J Neurosci. 22, 1667-1678 (2005).</li>
<li>Tremere, L. A., Jeong, J. K., Pinaud, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Estradiol+shapes+auditory+processing+in+the+adult+brain+by+regulating+inhibitory+transmission+and+plasticity-associated+gene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22J+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Estradiol shapes auditory processing in the adult brain by regulating inhibitory transmission and plasticity-associated gene expression.</a> J Neurosci. 29, 5949-5963 (2009).</li>
<li>Pinaud, R., Mello, C. V., Velho, T. A., Wynne, R. D., Tremere, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Detection+of+two+mRNA+species+at+single-cell+resolution+by+double-fluorescence+in+situ+hybridization%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Detection of two mRNA species at single-cell resolution by double-fluorescence in situ hybridization.</a> Nat Protoc. 3, 1370-1379 (2008).</li>
<li>Pinaud, R., Jeong, J. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Duplex+fluorescence+in+situ+hybridization+in+the+study+of+gene+co-regulation+in+the+vertebrate+brain.+Methods+Mol+Biol%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Duplex fluorescence in situ hybridization in the study of gene co-regulation in the vertebrate brain. Methods Mol Biol.</a> 611, 115-129 (2010).</li>
</ol>

Biz omurgalı beyin neurochemically ve işlevsel nasıl düzenlendiğini incelemek ve davranışsal ilgili duyusal uyaranlar etkisi, yetişkin beyin 8-10 nöronları genomik makine belirlemek için bu protokolü kullanılır . Biz başarılı, fare, sıçan ve ötücü beyin dokusu bu yöntem kullanılabilir, ancak bu protokol omurgalı türlerin bir dizi ve belki de, non-nöral dokuların elde edilen beyin bölümlerine kolayca adapte olacağını tahmin ediyoruz. Güvenilir sonuçlar ve en iyi sinyal elde etmek için gerekli olan kontrol tuşl...

Çözümler <ol><li> Sütun yıkama tamponu: 50 ml DEPC arıtılmış su 10 mM Tris-HCl, 0.15 M NaCl, 0.05 mM EDTA, 50 mg / ml tRNA,% 0.1 SDS. </li><li> Sütun engelleme tampon: 50 ml DEPC arıtılmış su 10 mM Tris-HCl, 50 mM NaCl, 0.1 mM EDTA. </li><li> TNT tampon: 60 ml 1 M Tris-HCl, 5 M NaCl 18 ml ve 1.8 ml, DEPC arıtılmış su 600 ml X-100 Triton. </li><li> TNB tampon: 100 mM Tris-HCl, 8.3 mikrogram / ul BSA, 0.15 M NaCl ve% 3 Triton DEPC arıtılmış su X-100. </li><li> TE tampon: 10 mM Tris-HCl, pH 7.5 artı 1 mM EDTA, pH 7.5. </li><li> Asetilasyon çözüm: trietanolamin artı 0.5 ml, DEPC arıtılmış su 200 ml asetik anhidrit 2.7 ml. </li><li> Hibridizasyon çözüm:% 50 formamid, 2X SSPE, 2 mg / ul tRNA, 1 mcg / ml BSA ve 1 mg / ul DEPC arıtılmış su bir poli. Bölüm başına 16 l ihtiyacı var. </li></ol>

Çift floresans in situ taze beyin bölüm hibridizasyon

Double Fluorescence in situ Hybridization in Fresh Brain Sections

Burada bir çift floresan değiştirilmiş bir versiyonu tarif<em&gt; In situ</em&gt; Hibridizasyon (dFISH) yöntemi, taze donmuş beyin bölümlerde ilgi iki mRNA&#39;ların tespit etmek için optimize edilmiş. Grubumuz bu yaklaşımın başarılı gen co-yönetmelik çalışma kullandı. Daha spesifik olarak, tek bir hücre çözünürlükte, anatomik organizasyonu, nöro-kimyasal özellikleri, ve duyusal deneyim merkezi duyusal devreleri etkisini keşfetmek için, bu dFISH yöntem kullanılır. Bu protokol, fare, sıçan ve ötücü beyin dokusu onaylandı ancak kolayca diğer omurgalı türlerinin yanı sıra uyarlanabilir, non-nöral dokuların bir dizi olması bekleniyor. Bu filmde bu prosedürün ana adımları ayrıntılı bir gösteri sağlar.

Bu protokol bir radyoaktif olmayan içerir<em&gt; In-situ</em&gt; Hibridizasyon işlemi, tek bir hücrenin çözünürlükte, omurgalı beynin ince bölümlerde aynı anda iki transkript türlerin belirlenmesini sağlar.

Çift Floresans In situ Taze Beyin Bölüm Hibridizasyon

Burada, taze ... örneklerde ilgilenilen iki mRNA'yı tespit etmek için optimize edilmiş, çift floresan in situ hibridizasyon (dFISH) yönteminin modifiye edilmiş bir versiyonunu tanımlıyoruz.

Merhaba, ben Rochester Üniversitesi'ndeki AL yardımcı laboratuvarında doktora sonrası araştırma görevlisi JA. Bu videoda, tek hücre çözünürlüğünde iki MRN transkriptini eş zamanlı olarak saptamak için taze dondurulmuş beyin kesitlerinde uygulanan Proses Enstitüsü hibrit sindirim yöntemini göstereceğiz. Bu yöntem, beyin devresinin anatomik, fonksiyonel, moleküler ve nörokimyasal organizasyonuna ilişkin uygulamalar gibi nörobilim alanındaki sorularınıza yanıt bulmanıza yardımcı olabilir.Bu yöntem, AV beynindeki nöronlarda gen koagülasyonuna dair bilgiler sağlayabilse de kemirgenler gibi diğer sistemlerin yanı sıra çeşitli sinir dokularına da uygulanabilir. Bu prosedüre başlamak için, yeterli miktarda SDX G 50 tozunu su aracılığıyla RNA'lar ile hidrate edin.Çözeltiyi kısa bir süre karıştırın ve oda sıcaklığında iki ila beş dakika bekletin. Bu adım, Sedex G 50 çöktürmesini takiben, ticari sedex tozunda bulunan dekstrozun SDX boncuklarından ayrılmasını sağlar. Süpernatantı uzaklaştırın ve işlemi üç ila beş kez tekrarlayın; son yıkamadan sonra SX G 50 çözeltisini, bir-bir tampon/boncuk hacim oranında TE tamponu ile yeniden süspande edin ve kullanıma kadar 4 °C'de saklayın.Ardından, kolon

double-fluorescence-in-situ-hybridization-in-fresh-brain-sections

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Burada yarı kalın beyin dilimleri görüntü floresan işaretli hücrelerin hızlı ve basit bir yöntem açıklanmaktadır. Sabitleme, dilimleme, beyin dokusu ve optik temizleme standart epifluorescent veya konfokal görüntüleme, sağlam sinir dokusu içinde bireysel hücreleri ve nöral ağların görselleştirmek için nasıl kullanılabileceğini açıklar.

Yarı Kalın Beyin Slices Yüksek Çözünürlük Floresans Görüntüleme Hızlı Bir Yaklaşım

Kaynak: Jolly, S., et.al. Fare Beyin Bölümlerinde Üç Genin Ekspresyonunun Tespiti için Çift Floresan In Situ Hibridizasyonunun İmmünoetiketleme ile Birleştirilmesi. J. Vis. Uzm. (2016). Bu video, fare beyni bölümlerindeki iki RNA hedefinin ekspresyonunu görselleştirmek için çift floresan in situ hibridizasyonun kullanımını göstermektedir. Protokol, floresein, izotiyosiyanat ve digoksijenenin ile etiketlenmiş problar kullanılarak RNA'nın sıralı tespitini ve ardından duyarlılığı artırmak için...

 Fare Beyin Bölümlerinde Gen Ekspresyonunu Tespit Etmek için Çift Floresan In Situ Hibridizasyon Yapılması

Kaynak: Baleriola, J., et. al., Yüksek Çözünürlüklü In Situ Hibridizasyon Kullanılarak Beyin Bölümlerinde Aksonal Lokalize mRNA'ların Tespiti.  J. Vis. Uzm. (2015)Bu video, floresan in situ hibridizasyon ve antikor boyama kullanılarak sabit fare hipokampal dilimlerinde kolinerjik aksonlar içinde mRNA'nın tespitini göstermektedir. Floresan mikroskobu, kolinerjik nöronlarda prob etiketli mRNA'ların ve kolin asetiltransferazın mekansal lokalizasyonunu ortaya çıkarır.

Floresan In Situ Hibridizasyonun Ardından Fare Beyin Dilimlerinde Nöronların İmmün Boyanması

RNA in situ hibridizasyon (ISH), hücre ve dokulardaki RNA'ların görselleştirilmesini sağlar. Burada, RNAscope ISH'nin immünohistokimya veya histolojik boyalarla kombinasyonunun, fare ve insan beyninin bölümlerinde aksonlara lokalize mRNA'ları tespit etmek için nasıl başarılı bir şekilde kullanılabileceğini gösteriyoruz.

Yüksek Çözünürlük kullanma Beyin bölümlerde Axonally Lokalize mRNA&#39;larının Algılama<em&gt; In Situ</em&gt; Melezleme

Bu protokol, in utero elektroporasyon yoluyla C57BL/6 merkezi sinir sistemindeki farklı bölgelerin spesifik olarak nasıl transfekte edileceğini ayrıntılı olarak açıklar. Bu protokolde korteks, hipokampus, talamus, hipotalamus, lateral septal çekirdek ve striatuma dönüşen bölgelerin transfeksiyonları için ayrıntılı talimatlar bulunmaktadır.

Korteks, Hippocampus-, Thalamus-, Hypothalamus-, Lateral Septal Nucleus- ve Striatum özgü<em&gt; In Utero</em&gt; C57BL / 6 Fare Elektroporasyon

Gen ekspresyonunu spesifik hücre tiplerine lokalize etmek, spesifik antikorların eksikliği nedeniyle zor olabilir. Burada, çift floresan RNA'nın yerinde hibridizasyonunun immün boyama ile birleştirilmesiyle gen ekspresyonunun eşzamanlı üçlü tespiti için bir protokol açıklıyoruz.

Çift Floresan birleştiren<em&gt; In Situ</em&gt; Fare Beyin Bölüm Üç Genlerin İfade tespiti için immünoişaretleme ile Hibridizasyon

Serbest yüzen teknik, araştırmacıların biyolojik yapıları, hücre tipini ve protein ekspresyonunu ve lokalizasyonunu görselleştirmek için sabit doku kesitlerinde immünohistokimya da dahil olmak üzere histolojik tabanlı boyamalar yapmalarını sağlar. Bu, beyin, kalp ve karaciğer gibi çok sayıda dokuyu araştırmak için yararlı olabilecek etkili ve güvenilir bir histokimyasal tekniktir.

Serbest Yüzen Doku Kesitleri Kullanılarak Histolojik Tabanlı Boyamalar

Bu protokol, çok etiketli FISH ve floresan IHC sinyali elde etmek amacıyla hem taze dondurulmuş hem de sabit fare beyin bölümlerinde floresan in situ hibridizasyon (FISH) ve floresan immünohistokimyasını (IHC) birleştirmek için bir yöntemi açıklar. IHC, sitoplazmik ve membrana bağlı proteinleri hedefledi.

Multipleks Floresan In Situ Hibridizasyonun Floresan İmmünohistokimya ile Taze Dondurulmuş veya Sabit Fare Beyin Kesitlerinde Birleştirilmesi

mScarlet adı verilen bir floresan proteini kullanarak Epon gömme sonrası bağıntılı ışık ve elektron mikroskobu için ayrıntılı bir protokol sunuyoruz. Bu yöntem, floresan ve üst yapıyı aynı anda koruyabilir. Bu teknik, çok çeşitli biyolojik uygulamalara uygundur.

Epon Post Gömme Korbağıntılı Işık ve Elektron Mikroskobu

Genişleme Destekli Yinelemeli Floresan In Situ Hibridizasyon (EASI-FISH), kalın dokuda birden fazla genin ekspresyonunu tespit etmek için genleşme mikroskobunu floresan in situ hibridizasyon (FISH) ile birleştiren sağlam bir tekniktir. Bu protokol, yöntemdeki son gelişmeleri ve bozulmamış Drosophila merkezi sinir sistemini etiketlemek için adaptasyonunu özetlemektedir.

Genişleme Destekli Yinelemeli Floresan In Situ Hibridizasyon Kullanılarak Sağlam Drosophila Beyindeki Gen Ekspresyonunun Multipleks Tespiti

Bu çalışma, dekapitasyon, fiksasyon, kriyoseksiyon, floresan boyama, immün boyama ve görüntülemeyi içeren, konfokal ve multifoton görüntülemeye genişletilebilen basitleştirilmiş bir doku işleme protokolü sunmaktadır. Yöntem, gelişmiş motor becerilere olan ihtiyacı atlayarak karmaşık diseksiyonlarla karşılaştırılabilir etkinliği korur. Kantitatif görüntü analizi, kapsamlı bir araştırma potansiyeli sağlar.

Gelişmiş beyin floresan boyaması ve immün boyama için Drosophila kafalarının doğrudan kriyoseksiyonu

Öğrenin çift floresans in situ hibridizasyon yöntemiyle taze dondurulmuş beyin kesitlerinde iki mRNA transkriptini aynı anda tek hücre çözünürlüğünde tespit etmeyi. Bu teknik sinirbilim araştırmalarında gen düzenlemesini incelemek için kullanılır.

Çift Floresans In situ Taze Beyin Bölüm Hibridizasyon

Daha fazla video keşfet