Name: Miyokard Doku Mühendisliği Biyolojik Türetilmiş Enjektabl Malzeme imalatı (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2010-12-20T15:00:00.000+00:00
Duration: 11 min 32 s
Description: Öğrenin, deküllüize perikard dokusundan enjektabl matris jelleri üretmeyi ve sıçan miyokardında in vivo uygulamayı. Bu yöntem, doku mühendisliği için umut vadeden bir iskele sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu araştırma, hibe sayısı 1-DP2-OD004309-01 ile NIH Müdürü Yenilikçisi Ödülü Programı, Tıbbi Araştırma NIH Yol haritasının parçası kısmen desteklenmiştir. SBS-N. Yüksek Lisans Araştırma Bursu için NSF teşekkür etmek istiyorum.

1. Ön işleme Doku hazırlanması <ol class="lalpha"><li> Bu protokol kullanmadan önce, biri zaten seçim doku decellularized sahip olmalıdır. Bu örnek için, hipotonik ve hipertonik durular deiyonize (DI) su ve sodyum dodesil sülfat (SDS) kullanarak taze domuz ve insan perikard örnekleri decellularized. </li><li> Özellikle, ilk 30 dakika için domuz perikard DI suyla yıkayın, daha sonra% 1'lik SDS fosfat sürekli karıştırın salin (PBS), 5 saat DI suyla durulama, 24 saat boyunca tamponlu. Insan pericardia, ilk kez bir gecede DI durulama ardından, 60-65 saat süreyle PBS içinde% 1 SDS sürekli karıştırın, sonra 30 dakika boyunca DI suyla durulayın. Nihai çözüm tüm örnekler çıkarın ve DI su 1 altında tekrar yıkayın. </li><li> Decellularization doğrulamak için, Ekim dondurma orta dondurma taze, küçük bir parça çıkarmak ve 10 mikron doku kesitlerinde boyunca her 100 mikron histolojik analizi ile inceleme için örnek almak, daha önce 34-36 bildirdi. </li><li> Hematoksilen ve eosin (H &amp; E) lekeleri çekirdeğinin olmaması için doku incelemek için kullanın. Bir de H &amp; E sonuçları doğrulamak için DNA'nın bir floresan Hoescht 33.342 leke (1.0 mcg / mL) kullanmak olabilir; kısaca bölümleri düzeltmek rehidrate ve su ile durulayın, 10 dakika boyunca leke, ve sonra iyi durulayın ve karanlıkta saklayın. Alternatif olarak, bir örnek toplam DNA içeriği ölçmek için tasarlanmış olan Qiagen DNeasy Kan ve Doku kiti, kit gibi kullanabilirsiniz. </li></ol> 2. Enjektabl ECM hazırlanması <ol class="lalpha"><li> Liyofilizasyon <ol class="lroman"><li> Uygun ön hazırlıktan sonra, sıvı nitrojen ya da -80 ° C'de saklayarak decellularized örnekleri dondurma Tamamen kuruyana kadar örnekleri Lyophilize. Sistemi ve su içeriği örneklerinin bağlı olarak, bu yerden 12 ila 72 saat arasında sürebilir. </li></ol></li><li> Frezeleme <ol class="lroman"><li> Bir kere tamamen kuru bir Wiley Mini Mill ince bir toz haline kuru ECM öğütmek için kullanılır. Amaçlarınız için uygun elek boyutunu seçin, burada, 40 gauge örgü kullanılır. Örnek çoğunluğu filtre aracılığıyla geldi sonra, öğütülmüş ECM toz toplama kavanozu çıkarmak. Sadece küçük bir örnek varsa, numunenin geri kalanı çeşitli şekillerde değirmen ayıklanır; burada, bir Q-tip değirmen sabit bıçakları arkasına takılıp ECM kaldırmak için kullanılır. </li><li> Her zaman değirmen temiz ve enkaz serbest olduğundan emin olun. Değirmen ve örnek tamamen kuru olduğundan emin olmak için de önemlidir; Kalan nemi başarılı freze önlemede bir araya gelme agrega ve ECM neden olacaktır. ECM havadaki nem pick up ve değirmen lyophilizer doğrudan gitmek gerekir. </li></ol></li><li> Sindirim <ol class="lroman"><li> Enjektabl ECM oluşturmak için, toz pepsin sindirilir. Aşağıdaki protokol ve ark, Freyetes güncellenmiştir. (2). </li><li> In vivo olarak enjekte edilir ve kirlenme komplikasyonlara neden olabilir, mümkün olduğu kadar steril bir ürün olarak korumak için önemlidir. Bu nedenle, steril flakon kullanımı ve kaşık tartmak ve kullanmadan önce tüm çözümleri filtre. Freze sonra ve sindirim önce liyofilizasyon adım da kısırlık korumaya yardımcı olacaktır. </li><li> ECM tozu istenilen miktarda, uygun bir sintilasyon şişenin içine tartılır. Daha küçük toplam hacim 1 ml, 2 ml flakon kullanımı önerilir ve daha büyük miktarlar için, 20 ml flakon Bu, etkili bir şekilde karıştırmak için flakonun alt yeterince sıvı olduğunu sağlar. </li><li> Pepsin istenilen miktarda bir parıldamanın şişenin içine tartılır. Pepsin 1 mg / ml 'lik bir konsantrasyon olduğu gibi 0.1 M HCl ekleyin. Pepsin çözüm vorteks hızlandırdı olabilir kullanmadan önce pepsin tamamen çözülür (partiküller) emin olun. </li><li> ECM 10 mg / ml konsantrasyonda böylece ECM tozu ile sintilasyon flakon pepsin / HCl çözeltisi ekleyin. </li><li> Ağırlığında bir kaşık veya spatula ile periyodik flakonun tarafı aşağı kazıma, 60-65 saat boyunca sürekli çözüm karıştırın. </li></ol></li><li> pH Ayarı <ol class="lroman"><li> Bu adım, fizyolojik pH sıvı matris malzemesi getirmek ve daha fazla ECM yarma tutarak, pepsin inaktive etmek için yapılır. Yine, Millipore su ile yapılan süzülmüş çözümler kullandığınızdan emin olun. </li><li> 1 M NaOH 1 / 10 orijinal ses eklenir. Bu noktada pH Test ve istenilen pH (7.4) ulaşmış olduğu NaOH veya HCl gibi az miktarda (2-10 ul) ekleyin. Nötralizasyon için eklenen ya da pH testi için çıkarılan tüm küçük miktarlarda takip edin. Sonra çözüm nötralize olmuştur, 10x PBS son hacmi (1 / 9 geçerli ses) 1 / 10 'u ekleyin. Enjektabl ECM konsantrasyonu belirlemek ve daha sonra istenilen son işbirliği ulaşmak için 1x PBS eklemekncentration, burada 6 mg / ml. </li><li> Enjektabl ECM Karakterizasyonu SDS-PAGE Blyscan Kolorimetrik GAG Testi, ve kütle spektroskopisi ile yapılabilir. </li><li> Bu noktada, matris malzemesi in vivo olarak miyokard doku mühendisliği için bir iskele oluşturacak şekilde enjekte edilir. </li></ol></li><li> Biotin-etiketleme <ol class="lroman"><li> ECM enjekte ECM daha kolay görsellik için enjeksiyon önce biotin ile etiketlenmiş olabilir. </li><li> Biotin bir 10mM çözüm hazırlayın ve 0.3mg/mg bir oranında enjektabl ECM ekleyin. ECM enjeksiyon için istenilen konsantrasyonda olmalıdır. 6 mg / ml konsantrasyonda enjekte ise, ECM 1 ml başına 40 mcL Biotin ekleyin. Enjeksiyonu öncesinde, en az 1 saat buz biotin-ECM çözümü tutmak. </li></ol></li><li> Tüm işlem adımları, oda sıcaklığında yapılabilir. Jelleşme enjektabl matris tutmak için, pH ayarı adım, buz üzerinde yapılabilir. </li></ol> 3. Miyokard Enjeksiyonlar <ol class="lalpha"><li> Enjeksiyon hazırlık <ol class="lroman"><li> Burada kullanılan dişi sıçan (225-250 g), pH 7.4 enjektabl ECM 75 mcL enjeksiyonları 0,1 ml şırınga 30 gösterge iğne uçlu olarak hazırlanmıştır. Erkek sıçanlar (375-400 g) kullanılmış olsaydı, 90 mcL enjekte olabilir. </li><li> Tüm cerrahi malzemeleri, cerrahi öncesi sterilize edilmelidir; burada tüm gerekli araçları içeren bir otoklavlanmış cerrahi paketi kullanabilirsiniz. </li></ol></li><li> Ameliyat günü, bir Harlan Sprague-Dawley sıçan% 5 izofluran kullanarak anestezi otoskop kullanılarak entübe ve daha sonra işlem boyunca% 2.5 izofluran muhafaza. </li><li> Kuruluk ve saç karşı korumak için suni gözyaşı merhemi hayvanın gözleri ekleyin. Ameliyat sırasında hidrasyon için 3 mL Laktatlı Ringers çözüm yönetme. Bu alt karın bölgesinde subkütan enjeksiyon yoluyla yapılmalıdır. </li><li> Hayvan uzuvları aşağı cerrahi tablo ve hafifçe bant yatar pozisyonda yerleştirin. Karın ve ovma için önce vakum ücretsiz saç saç kaldırmak için kesme makineleri kullanın. </li><li> Zyphoid süreci karnın sağ alt tarafta köşegen boyunca lidokain% 2 küçük enjeksiyonlar (yaklaşık 50 mcL her) bir dizi olun. Sonra ortasında başlayan ve dışa doğru hareket, betadin ile üç kez fırçalayın. % 70 etanol ile tekrarlayın. Kapak önceden yapılmış yuvarlak bir pencere ile bir cerrahi örtü kullanarak hayvan; gerekirse, havlu kelepçeler ile güvenli. </li><li> No 10 neşter xiphoid süreci karnın sağ alt taraftan 3-4 cm'lik kesi yapmak. Xiphoid sürecini bulun ve sağ kas dikey olarak aşağı teşrih, sağda büyük damar önlemek için dikkatli olmak. Kas disseke, diyafram açığa, kas ile yanal kesmek için makas kullanmak. Karaciğer önlemek için dikkatli olun. </li><li> Zyphoid süreci boyunca 3-0 Vicrile sütür 36 inç uzunluğunda ve hemostat bir çift, sürücü bir iğne kullanma ve yarım yoluyla sütür çekin. Teyp dikiş birlikte sona erer ve aslında zyphoid yukarı kaldırarak ve diyafram açığa hayvan üstünde ve arkasında bir noktaya kadar bunu düzeltmek. 3-0 Vicrile dikiş başka bir 36 inç uzunluğu ile, bir iğne xiphoid süreci yakın kas sürücü ve, yine, tam cerrahi kavite açıklamanızı, cerrahi tablonun sağ başka bir noktaya sonlarına doğru çekin ve düzeltmek. </li><li> Bu noktada, diyafram ile kalp görmek gerekir. Küçük bir sıçan diş microforceps çifti, diyafram merkezi kapmak, kendinize doğru çekin ve künt makas ile çok küçük bir kesi yapmak. Akciğerlere alay önlemek için çok künt makas kullanmak son derece önemlidir. Bu delik yapıldıktan sonra, akciğerler, kalp görselleştirmek için diyafram üzerinden dikey 2-3 cm'lik bir kesi yapmak için izin, geri çekilecektir. </li><li> Boşluğunun sol yol akciğerlerden dışarı itmek için bir 3-inç S-ucu yerleştirin. Q-ucu yerinde sabitlemek için havlu kelepçe kullanın. Perikardiyal kese bulmak için yolun sağ akciğer dışarı taşımak için başka bir Q-tip kullanın. Microforceps bir çift ve bir çift büyük dişli forseps kullanarak, kalp apeksi açığa perikardiyal kese ile gözyaşı. Hayvanın daha önce enfarktüs prosedürüne tabi varsa, perikard zaten yok olacaktır. </li><li> Sıçan diş microforceps kalbin apeks alın ve apeks sıvı matris malzemesi üçüncü bir yol enjekte. Epikardiyal yüzeyine paralel iğne takın ve sol iğne kesik kenar ile enjekte. Büyük kalp damar önlemek için emin olun. Iğne çıkarmadan önce birkaç saniye bekleyin. Enjeksiyon yerinde doku bir beyazlatma göreceksiniz. </li><li> Temizlik boşluğunda kan ve sağ akciğer tutuyordu havlu kelepçe ve Q-tip kaldırmak. Kavisli microhemostats ve sıçan kullanın.diş diyafram kapatmak için microforceps. Bir ilk düğüm yapın ve sonra sürekli bir dikiş ve konik bir iğne ile diyafram kapatmak için tırtıklı forseps ve microhemostats kullanın. Tamamen kapatmadan önce, PE160 emme boru takın ve dikiş sıkılır gibi göğüs boşluğuna tahliye için 10 ml şırınga kullanın. </li><li> Düzgün bir şekilde boşaltıldı ve kapandığı zaman, diyafram iç bükey olmalıdır. Bir konveks diyafram boşluğunda hala hava olduğunu gösterir. </li><li> Bu noktada% 1 izofluran açılabilir. </li><li> Boşluğuna açık tutarak hem 3-0 Vicrile sütür dışarı atın. Q-tip veya steril gazlı bez ile silerek fazla kas hidrat steril su kullanın. Aralıklı sütürler ile kas tabakası kapatmak için yeni bir 3-0 dikiş uzunluğu kullanın. </li><li> Bu noktada, izofluran kapalı olabilir. </li><li> Temizlik steril su ve cilt kapatmak için kullanılması zımba alan. Zımba çalışmaya engel olacak ise, 5-0 prolin dikiş de kullanılabilir. Bu durumda, aralıklı sütürler ile deriye yakın bir ters kesme (RC) iğne kullanınız. Her iki durumda da, kapalı kesi üzerinden cerrahi yapıştırıcı nokta. </li><li> Kesi yeri üçlü bir antibiyotik merhem sürersin bir Q-ucu kullanın. </li><li> % 100 oksijen altında hayvan kurtarmak için izin verin. </li><li> Hayvanlar ventilatör geçici bir nefes almaya başladığında, trakea tüp çıkarın. </li><li> Hayvanlar sternal sonra, 0,05 mg / kg buprenorfin hidroklorür bir subkütan enjeksiyon yönetmek ve steril bir havlu onları evlerine kafesine geri dönmek. </li><li> Hayvanlar, post-operatif gözlem ve bakım almalıdır. </li><li> Ilgi zaman noktalarında, hayvanların ötenazi ve kalpleri analiz için kaldırılmıştır. Kısa eksen kesitleri alınır ve brüt doku analizi için hematoksilen ve eosin (H &amp; E) ile boyandı. Kısa zaman noktalarında, enjekte edilen bölgede interstisyel yayıldı pembe bir fibröz bir ağ olarak görünecektir. Daha sonraki zaman noktalarında, tek bir hücre akını ve 2 ila 3 hafta sonra enjekte edilen matris nihai bir bozulma gözlemlemek olacaktır. ECM enjekte önce biotin ile etiketlenmiş ise, HRP-konjuge streptavidin biotin boyama ile daha doğrudan görüntülenmiştir olabilir. Immünohistokimyasal boyama slaytları burada bir Alexafluor ikincil endotel hücreleri ve fluoresces yeşil ve bir anti-düz kas aktin antikor bağlanır FITC-konjuge isolectin ile birlikte lekeli olan, enjeksiyon bölgesinde belirli hücreleri veya yapıların tanımlamak için kullanılır. kırmızı SMC'lere raporlar antikor. </li></ol> 4. Temsilcisi Sonuçlar Bu şekilde hazırlanan matris malzemelerin Önceki karakterizasyonu makromoleküllerin çeşitli tutma gösterdi. Özellikle, birden fazla lifli proteinler ve glikoproteinler kütle spektrometresi (Tablo 1) ile tespit edildi. Bu protokole göre işleme matris malzemeleri makromoleküllerin karmaşık bir dizi içeren artık tespit edilirse, istihdam decellularization protokolü çok sert olabilir. Bir kez tam liyofilize, kurutulmuş perikardiyal ECM, çok sert, buruşuk kağıt gibi görünüyor. Diğer doku tiplerinin fıstık paketleme benziyor. Eğer iyi öğütülmüş, ECM elekten düşmeli ve altındaki kavanoza toplanabilir. ECM, nem örnek bırakılırsa, bir araya gelme ve freze odasında yapışmış olsun. Sindirim sonra, ECM çözümü sütlü bir renk ve görünür partiküller tamamen ücretsiz olmalıdır. Aynı zamanda HCl sadece biraz daha viskoz olacaktır. ECM sindirimi değilse, flakon büyük parçacık hala orada; alternatif olarak, ECM çözümü çökebilir. PH ayarlaması sonra, gözle görülür hiçbir değişiklik çözüm ve ECM hala bulutlu, homojen bir sıvıdır. Jel başlarsa, viskozite artacak ve malzeme bir şırınga içine çekmek için zor ya da imkansız olacaktır. Bu durumda, önceden soğutulmuş çözümleri ile, buz üzerinde pH ayarlaması adım gerçekleştirin. Enjeksiyonları hazırlanmıştır sonra, kullanılıncaya kadar buz üzerinde saklayın. Enjeksiyon başarılı olursa, iğne ucu çevresindeki bölgede beyazlatır ve küçük bir bolus görülebilir. Eğer bu görülmez, enjeksiyon yerine duvara doğru odasına gitmiş olabilir. Enjeksiyonundan sonra hayvan dikilmesi, diyafram dikkatli kapanış en önemli adımdır. Doğru yapılırsa, diyafram, akciğerler karşı sıkı olacak ve içbükey görünecektir. Akciğerler içinde kalan herhangi bir hava varsa, diyaframın konveks kalır, ya da balonları bir alana sahip olacak. Erken bir zaman noktası (4 saat enjeksiyon sonrası 30 dakika) enjeksiyon bölgenin histoloji incelerken, bir yeniden birleştirilen matris malzemesi, enjeksiyon sonrası (Şekil 2) hücrelerinden yoksun bir pembe, lifli alan görmelisiniz . Ağ genellikle interstisyel yayılır ve birçok bölüm boyunca mevcut olabilir. Bir possmatris jel sadece çok küçük bir alanda görmek için ible açıklama enjeksiyon bir kısmı intramural hedef cevapsız ve ya LV odasına enjekte veya enjeksiyon yerini dışarı sızdırılmış. Buna ek olarak, interstisyel yayılması, jelleşme süresi bağlı olarak değişebilir. <img src="/files/ftp_upload/2109/2109fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1 Poliakrilamid jel elektroforezi (PAGE) sonuçları. (A) Molekül ağırlığı standart. (B) (C) çözünür insan ve domuz (D) perikardiyal ECM (7 mg / ml) ile karşılaştırıldığında Sıçan kuyruğu Kollajen Tip I (2.5 mg / ml). Kollajen varlığı yanı sıra diğer birçok protein ve perikardiyal matris örnekleri peptidler unutmayın. <img src="/files/ftp_upload/2109/2109table1.jpg" alt="Tablo 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Tablo 1"> Tablo 1: ECM bileşenlerini kütle spektroskopisi ile belirlenmiştir. <img src="/files/ftp_upload/2109/2109fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2: Miyokard enjeksiyonları in vivo jelleşme. H &amp; E insan (A) ve domuz leke (B) perikardiyal matris enjeksiyonları in vivo 45 dakika sonra jel var. Oklar matris konumu, lekeli açık pembe miyokard daha göstermektedir. Ölçek çubuğu 500 mm. <img src="/files/ftp_upload/2109/2109fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3. Vasküler hücre infiltrasyonu. Enjekte insan (AC) ve iki hafta domuz (DF) matris jeller gemiler için Floresan lekeleri. Endotel hücreleri, düz kas hücrelerinin kırmızı (B, E) etiketli ise, yeşil (A, D) olarak etiketlenir. Birleştirilen görüntülerin gösterildiği gibi C ve F. Ölçek çubuğu 100 mikron. H &amp; E analizi yakındaki bir bölümü tarafından belirlenen matris enjeksiyon alanında, beyaz noktalı çizgiler gösterir. <img src="/files/ftp_upload/2109/2109fig4.jpg" alt="Şekil 4" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 4"> Şekil 4 matris enjeksiyon bölgesi içinde hücreler Kök. Hoescht çekirdekleri leke (mavi) ve c-kit (yeşil), insan ve domuz (A) (B) matris enjeksiyon bölgelerinde kök hücreleri tanımlayan. Ölçek çubuğu 50 mm.

<ol><li>Seif-Naraghi, S. B., Salvatore, M. A., Magoffin-Schup, P. J., Hu, D. P., Christman, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+characterization+of+an+injectable+pericardial+matrix+gel%3A+A+potentially+autologous+scaffold+for+cardiac+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Engineering%22%5BJournal%5D)">Design and characterization of an injectable pericardial matrix gel: A potentially autologous scaffold for cardiac tissue engineering.</a> Tissue Engineering. , (2009).</li>
<li>Freytes, D. O., Martin, J., Velankar, S. S., Lee, A. S., Badylak, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+rheological+characterization+of+a+gel+form+of+the+porcine+urinary+bladder+matrix%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Preparation and rheological characterization of a gel form of the porcine urinary bladder matrix.</a> Biomaterials. 29, 1630-1630 (2008).</li>
<li>Gilbert, T. W., Sellaro, T. L., Badylak, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Decellularization+of+tissues+and+organs%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Decellularization of tissues and organs.</a> Biomaterials. 27, 3675-3675 (2006).</li>
<li>Liao, J., Joyce, E. M., Sacks, M. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+decellularization+on+the+mechanical+and+structural+properties+of+the+porcine+aortic+valve+leaflet%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Effects of decellularization on the mechanical and structural properties of the porcine aortic valve leaflet.</a> Biomaterials. 29, 1065-1065 (2008).</li>
<li>Singelyn, J. M., DeQuach, J. A., Seif-Naraghi, S. B., Littlefield, R. B., Schup-Magoffin, P. J., Christman, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Naturally+derived+myocardial+matrix+as+an+injectable+scaffold+for+cardiac+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Naturally derived myocardial matrix as an injectable scaffold for cardiac tissue engineering.</a> Biomaterials. 30, 5409-5409 (2009).</li>
<li>Christman, K. L., Vardanian, A. J., Fang, Q., Sievers, R. E., Fok, H. H., Lee, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Injectable+fibrin+scaffold+improves+cell+transplant+survival%2C+reduces+infarct+expansion%2C+and+induces+neovasculature+formation+in+ischemic+myocardium%5BTitle%5D)+AND+%22J+Am+Coll+Cardiol%22%5BJournal%5D)">Injectable fibrin scaffold improves cell transplant survival, reduces infarct expansion, and induces neovasculature formation in ischemic myocardium.</a> J Am Coll Cardiol. 44, 654-654 (2004).</li>
<li>Christman, K. L., Fok, H. H., Sievers, R. E., Fang, Q., Lee, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibrin+glue+alone+and+skeletal+myoblasts+in+a+fibrin+scaffold+preserve+cardiac+function+after+myocardial+infarction%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Fibrin glue alone and skeletal myoblasts in a fibrin scaffold preserve cardiac function after myocardial infarction.</a> Tissue Eng. 10, 403-410 (2004).</li>
<li>Huang, N. F., Sievers, R. E., Park, J. S., Fang, Q., Li, S., Lee, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rodent+model+of+myocardial+infarction+for+testing+the+efficacy+of+cells+and+polymers+for+myocardial+reconstruction%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">A rodent model of myocardial infarction for testing the efficacy of cells and polymers for myocardial reconstruction.</a> Nat Protoc. (1), 1596-1609 (2006).</li>
<li>Ott, H. C., Matthiesen, T. S., Goh, S. K., Black, L. D., Kren, S. M., Netoff, T. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Perfusion-decellularized+matrix%3A+using+nature%27s+platform+to+engineer+a+bioartificial+heart%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Med%22%5BJournal%5D)">Perfusion-decellularized matrix: using nature's platform to engineer a bioartificial heart.</a> Nat Med. 14, 213-221 (2008).</li>
<li>Badylak, S. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+extracellular+matrix+as+a+biologic+scaffold+material%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The extracellular matrix as a biologic scaffold material.</a> Biomaterials. 28, 3587-3593 (2007).</li>
</ol>

Hayvan kullanın: Bu çalışmadaki tüm deneyler, California Üniversitesi, San Diego ve Laboratuar Hayvan Bakımı Akreditasyon Amerikan Derneği Kurumsal Hayvan Bakım ve Kullanım Kurulu tarafından yayımlanan kurallarına uygun olarak yapıldı.

Bu yöntem miyokardiyal doku mühendisliği için biyolojik olarak türetilmiş, enjektabl iskeleleri üretimi sağlar. Bu yöntemlerin ilk imalatı için geliştirilmiştir ve miyokard matris perikardiyal matris jel ile burada sunulan jel ve in vivo testler, bu protokolü, herhangi bir doku ile kullanım için adapte edilebilir olmasına rağmen, dokuya uygun decellularized olabilir. Decellularization yapılır ve matris jel DNA varlığı istenmeyen bir immün yanıt neden olabilir, bu yöntemlerin kullanılması için önce doğrulanmış o...

<table><tbody><tr><td>&lt;strong&gt;Reaktifler:&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pepsin</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>p6887-1G</td><td>Liyofilize</td></tr><tr><td>Biotin</td><td>Thermo Fisher Scientific, Inc.</td><td>21217</td><td></td></tr><tr><td>Neutravidin-HRP</td><td>Thomas Scientific</td><td>21130</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Ekipman:&lt;/strong&gt; </td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Wiley Mini Mill</td><td>Thomas Scientific</td><td>3383L10</td><td></td></tr><tr><td>Labconco Liyofilizatör</td><td>Labconco Corp.</td><td>7670520</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Cerrahi malzemeler:&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Betadin</td><td>Purdue Products L.P.</td><td>67618-154-16</td><td></td></tr><tr><td>Laktatlı Ringer Solüsyonu</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>003966</td><td></td></tr><tr><td>KY Jelly</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>28658</td><td></td></tr><tr><td>Lidokain, %2</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>17767</td><td></td></tr><tr><td>Buprenorfin hidroklorür</td><td>Reckitt Benckiser</td><td>12496-0757-1</td><td></td></tr><tr><td>Suni gözyaşı pomadı</td><td>Fisher Scientific</td><td>NC9860843</td><td></td></tr><tr><td>Üçlü antibiyotik pomadı</td><td>Fisher Scientific</td><td>19082795</td><td></td></tr><tr><td>İzofluran</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>60307-120-25</td><td></td></tr><tr><td>Otoskop</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>008699</td><td></td></tr><tr><td>Klempli musluk</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>006245</td><td></td></tr><tr><td>3-0 Vicryl sütür</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>J327H</td><td></td></tr><tr><td>5-0 Prolene sütür</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>s-1173</td><td></td></tr><tr><td>Ters kesimli (RC) iğne</td><td>Ethicon Inc.</td><td>8684G</td><td></td></tr><tr><td>Mikrohemostatlar</td><td>Fine Science Tools</td><td>13013-14</td><td></td></tr><tr><td>Sıçan dişi mikro pens</td><td>Fine Science Tools</td><td>11084-07</td><td></td></tr><tr><td>10 numara bistüri</td><td>Fine Science Tools</td><td>10110-01</td><td></td></tr><tr><td>Küt uçlu makas</td><td>Fine Science Tools</td><td>14108-09</td><td></td></tr><tr><td>Sivri, eğri makas</td><td>Fine Science Tools</td><td>14085-08</td><td></td></tr><tr><td>Büyük, tırtıklı pens</td><td>Fine Science Tools</td><td>1106-12</td><td></td></tr><tr><td>PE160 aspirasyon tüpü</td><td>BD Biosciences</td><td>427430</td><td></td></tr><tr><td>Tüy temizleme makinesi</td><td>MWI Veterinary Supply</td><td>21608</td><td></tr><tr><td>Cilt zımbası/zımbalama cihazı</td><td>Ethicon Inc.</td><td>PRR35</td><td></td></tr><tr><td>&lt;strong&gt;Genel malzemeler:&lt;/strong&gt;</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Manyetik karıştırıcılar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.1 M HCl</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1 M NaOH</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10x PBS</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>1x PBS</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>%70 Etanol</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>0.1 mL şırıngalar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>10 mL şırınga</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Pamuklu çubuklar</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cerrahi yapıştırıcı</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Cerrahi örtü</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Havlu kıskaçları</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>Küçük el tipi vakum cihazı</td><td></td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

miyokard doku mühendisliği biyolojik türetilmiş enjektabl malzeme imalatı

Fabrication of Biologically Derived Injectable Materials for Myocardial Tissue Engineering

Bu protokol, miyokard doku mühendisliği uygulamaları için bir enjektabl ekstrasellüler matriks (ECM) jel hazırlanması için yöntemler sağlar. Kısaca, decellularized doku, liyofilize öğütülmüş, enzimatik sindirilir ve sonra fizyolojik pH getirdi. Liyofilizasyon küçük bir değirmen ile ince bir toz haline zemin kuru ECM sonuçlanan doku tüm su içeriği kaldırır. Freze sonra, ECM tozu enjektabl bir matris pepsin ile sindirilir. PH 7.4 düzeltmeler yapıldıktan sonra, sıvı matris malzemesi miyokard içine enjekte edilebilir. Önceki karakterizasyonu testlerinin sonuçları decellularized perikardiyal ve miyokardiyal doku üretilen matris jeller, çeşitli proteinler, peptidler ve glikozaminoglikanlar dahil olmak üzere, yerli ECM bileşenleri, korumak olduğunu göstermiştir. Doku mühendisliği için bu malzemenin kullanımı göz önüne alındığında, in vivo karakterizasyonu, özellikle yararlıdır; burada, sol ventrikül içine intramural bir enjeksiyon yapmak için bir yöntem (LV) serbest duvarında matris jel konak cevabı analiz aracı olarak sunulmuştur küçük bir hayvan modeli. Diyafram göğüs boşluğuna erişim yoluyla kazanılan ve enjeksiyon, hafif sol ventrikül serbest duvarında apeks yukarıda yapılır. Biyolojik olarak elde edilen iskele, enjeksiyondan önce biotin etiketleme görüntülenebilmekte ve sonra bir at turp peroksidaz-konjuge neutravidin diaminobenzidin (DAB) boyama ile boyama ve doku kesitlerinde görselleştirme. Histolojik ve immünohistokimyasal boyama ile enjeksiyon bölgesi analizi de yapılabilir. Bu şekilde, daha önce incelenmiş perikardiyal ve miyokardiyal matris jeller, lifli, gözenekli ağlar formu damar oluşumu ve enjeksiyon bölgesi içinde teşvik etmek gösterildi.

Enjektabl bir matris jel decellularized doku hazırlanması ve sıçan miyokardın içine enjekte Yöntemleri<em&gt; In vivo</em&gt; Tarif.

Miyokard Doku Mühendisliği Biyolojik Türetilmiş Enjektabl Malzeme imalatı

Bu protokol, miyokard doku mühendisliği uygulamaları için enjekte edilebilir bir ekstrasellüler matriks (ECM) jelinin hazırlanmasına yönelik yöntemler sunmaktadır.

Deselülarize edilmiş perikardiyal ve miyokardiyal dokulardan üretilen matriks jeller; çeşitli proteinler, peptitler ve glikozaminoglikanlar dahil olmak üzere doğal hücre dışı matriks bileşenlerini korur. Bu doku matriksleri doku mühendisliği için kullanılabilir. Bu videoda, aselüler hücre dışı matriks elde etmek amacıyla perikardiyal dokunun deselülarize edilmesiyle matriks jeller hazırlanmaktadır.Hücre dışı matris, daha sonra çözünür sıvı bir versiyon oluşturmak için işlenir. Ardından, çözünür matrisin enjekte edilebilir bir iskele olarak uygulanabilirliğini belirlemek amacıyla küçük bir hayvan modelinde testi yapılır. Histolojik ve immünohistokimyasal analizler, in vivo ortamda enjekte edilen materyalin, vasküler hücre infiltrasyonuna izin veren gözenekli lifli bir iskele oluşturduğunu göstermektedir.Merhaba, benim adım Sonia Zeki. California Üniversitesi San Diego'da Dr. Karen Chrisman'ın laboratuvarında lisansüstü öğrencisiyim. Bugün, deselülarize edilmiş dokudan Solubilize edilmiş ECM üreteceğiz ve kalp dokusu mühendisliği uygulamaları için in vivo testleri göstereceğiz.Bu teknikler, kalp yetmezliği tedavisine yönelik enjekte edilebilir bir biyomalzeme terapisinin geliştirilmesi için önemlidir. Miyokard enfarktüsü sonrası cerrahi prosedürü laboratuvarımızdaki veteriner nörocerrah Pam shoot McGuffin gösterecek. Hadi başlayalım.Bu protokole, dokuyu hücreden arındırarak yalnızca hücre dışı matrisin (ECM) kalmasını sağlayarak başlayın; öncelikle porcine perikardiyumu deiyonize su içeren bir behere yerleştirin ve oda sıcaklığında 30 dakika boyunca karıştırarak yıkayın. Yıkama işleminden sonra dokuyu, %1 SDS ve %1 penisilin streptomisin içeren 1x PBS içine yerleştirin ve oda sıcaklığında 24 saat boyunca sürekli karıştırın. Ertesi gün dokuyu tekrar deiyonize suya aktarın ve beş saat boyunca sürekli karıştırın, tüm köpükler gidene kadar 50 mL'lik bir tüp içerisinde çalkalayın.Hematin ve eozin boyaması, deselülarize edilmiş dokuda çekirdeklerin olmadığını göstermelidir. Deselülarize edilmiş dokunun geri kalanını 15 ila 50 mililitrelik konik bir tüpe yerleştirin. Ardından dokuyu -80 °C dondurucuya koyun.Dondurulmuş numuneleri, tamamen kuruyana kadar çok düşük basınç ve çok düşük sıcaklık altında dondurarak kurutun (liyofilize edin). Kullanılan sisteme ve numunelerin su içeriğine bağlı olarak bu işlem 12 ila 72 saat arasında sürebilir. Deselülarize doku tamamen kuruduğunda, dokuyu bir Wiley Minim değirmene aktarın.40 gauge mesh ile hazırlanan düzenekte, dokuyu ince bir toz haline gelene kadar öğütün. Numunenin büyük çoğunluğu filtreden geçtikten sonra toplama kavanozunu çıkarın. Bu numune artık hücre dışı matris veya ECM tozu olarak adlandırılır.Eğer bir sonraki adıma hemen geçilmeyecekse, bu aşamada ikinci bir liyofilizasyon adımı gerçekleştirilebilir. Bu işlem, ECM'yi çözmek için kaydedilen ağırlığın doğruluğunu sağlar. İstenilen miktarda ECM tozunu steril bir tartım şişesine tartın.ECM tozunun bulunduğu sintilasyon şişesine, ECM konsantrasyonu 10 mg/mL olacak şekilde mililitre başına bir miligram içeren steril filtrelenmiş hidroklorik asit çözeltisi ekleyin. Bir manyetik karıştırıcı çubuk ekleyin ve şişeyi karıştırıcı plaka üzerine yerleştirin.Steril bir WHE kaşığı veya spatula ile şişenin kenarlarını periyodik olarak sıyırarak 48 ila 60 saat boyunca sürekli karıştırın. Bu işlem tüm ECM tozunun sindirildiğinden emin olmak içindir. ECM sindirildikçe çözelti haline gelecektir.ECM çözündürüldükten sonra, örneği buza yerleştirin ve sodyum hidroksit ile hidroklorik asit kullanarak pH değerini 7.4'e ayarlayın. pH ayarlandıktan sonra, çözeltinin nihai konsantrasyonu 1x PBS olacak şekilde 10x PBS ekleyin. Örneğin, 900 µL ECM çözeltisine, pH ayarlamalarının ardından 100 µL 10x PBS eklenmelidir.Nötralizasyon için eklenen hacimleri ve pH testi için alınan hacimleri hesaplayarak çözünür hale getirilmiş ECM çözeltisinin konsantrasyonunu belirleyin. Ardından, istenen nihai konsantrasyona ulaşmak için buraya bir katı PBS ekleyin. Mililitre başına altı miligram.Cerrahi gününde, 30 gauge iğne uçlu 0.1 mililitrelik bir şırınga içerisinde çözünmüş ECM'den 75 µL'lik bir enjeksiyon hazırlayın. Entübe edilmiş dişi bir Harlan dolly sıçağın anestezi durumunu %2.5 izofluran ile sürdürün. Gözü ekleyin, ardından ayak parmağı sıkıştırma testi yaparak anestezinin etkili olduğunu doğrulayın.Hidrasyon için alt karın bölgesinden subkütan enjeksiyon yoluyla üç mililitre laktatlı ringer solüsyonu uygulayın. Ardından, hayvanı cerrahi masa üzerinde sırt üstü pozisyona getirin ve ekstremitelerini nazikçe bantla sabitleyin. Karın bölgesindeki tüyleri temizlemek için tıraş makinesi kullanın ve serbest tüyleri vakumla çekin.Ksifoid çıkıntıdan karnın sağ alt tarafına doğru diyagonal bir hat boyunca 50 µL'lik %2 lidokain enjeksiyonlarından oluşan bir seri yapın. Ardından, merkezden başlayıp dışarıya doğru hareket ederek üç kez Betadine ile ovalama yapın. Ovalama işlemini izopropil alkol ile tekrarlayın.Ardından, hayvanı önceden hazırlanmış dairesel pencereli bir cerrahi örtü ile örtün. Cerrahi örtü ile sabitleyin. 10 numara neşter kullanın.Ksifoid çıkıntıdan karnın sağ alt tarafına doğru üç ila dört santimetrelik bir insizyon yapın. Ksifoid çıkıntıyı bulun ve sağ taraftaki büyük damara zarar vermemeye dikkat ederek kas boyunca dikey olarak aşağıya, sağa doğru diseke edin. Ardından, diyaframı açığa çıkarmak için makas kullanarak kası lateral olarak kesin.36 inç uzunluğunda 3-0 Vicryl sütür ve bir çift hemostat kullanarak karaciğere zarar vermemeye dikkat edin. Bir iğneyi xiphoid process üzerinden geçirin ve sütürü yarıya kadar çekin. Sütür uçlarını birbirine bantlayın ve hayvanın üst ve arka tarafındaki bir noktaya sabitleyerek xiphoid process'i yukarı kaldırın ve başka bir 36 inç uzunluğunda 3-0 Vicryl sütür ile diyaframı açığa çıkarın.Xifoid çıkıntıya en yakın kastan bir iğne geçirin ve ardından iğneyi çekip ucunu cerrahi masanın sağındaki başka bir noktaya sabitleyerek cerrahi boşluğu tamamen açın. Daha sonra, küçük bir sıçan dişi mikro forseps kullanarak diyaframın merkezini tutun, dışarı çekin ve küt uçlu makasla çok küçük bir insizyon yapın. Bu delik açıldığında, akciğerler geri çekilecektir.Kalbi görüntülemek için diyafram boyunca dikey olarak iki ila üç santimetrelik bir insizyon yapın. Ardından, boşluğun soluna üç inçlik bir pamuklu çubuk yerleştirin ve akciğerleri kenara itin. Pamuklu çubuğu bir havlu klempi kullanarak sabitleyin.Başka bir pamuklu çubuk kullanarak, perikard kesesini bulmak için sağ akciğeri kenara çekin. Ardından, bir çift mikro forseps ve bir çift büyük tırtıklı forseps kullanarak perikard kesesini yırtın ve kalbin apeksini açığa çıkarın. Kalbin apeksini sağ dişli mikro forseps ile tutun ve çözünürleştirilmiş matriksi enjekte etmek için iğneyi eğik ucu sola gelecek şekilde yerleştirin.Apeksin üçte bir yüksekliğinde, epikardiyal yüzeye paralel şekilde. Büyük kalp veninden kaçındığınızdan emin olun. Çözünürleştirilmiş matris jelini enjekte edin ve iğneyi çıkarmadan önce birkaç saniye bekleyin.Enjeksiyon bölgesindeki doku beyazlaşmalıdır; boşluktaki kanı pamuklu çubukla temizleyin, sağ akciğeri tutan havlu klempsini ve pamuklu çubuğu kavisli mikro hemostatlar kullanarak çıkarın ve 30 inç uzunluğunda 5-0 proline sütür ile ilk düğümü atın. Ardından, tamamen kapatmadan önce diyaframı sürekli sütür ve konik bir iğne ile kapatmak için sıçan dişli mikro pens kullanın. Göğüs boşluğunu tahliye etmek için PE 1 60 vakum tüpünü yerleştirin ve 10 mililitrelik bir şırınga kullanarak etrafını kapatın.Sütür sıkılaştırıldığında, diyafram konkav olmalıdır. Florlu buzu %1'e indirin. Kaviteyi açık tutan her iki 3-0 Vicryl sütürü çıkarın. Kasın fazla kısmını bir pamuklu çubuk veya steril gazlı bezle silerek nemlendirin.Kas tabakasını aralıklı dikişlerle kapatmak için yeni bir üç sıfır sütür parçası kullanın. Ardından izofloranı kapatın. Bölgeyi temizleyin ve cildi kapatmak için zımba kullanın.Ardından insizyon bölgesine üçlü antibiyotikli pomad uygulayın. Sıçanın %100 oksijen altında iyileşmesini bekleyin. Hayvan ventilatör çevresinde nefes almaya başladığında, trakeal tübü çıkarın.Hayvan tekrar ayağa kalktığında, kilogram başına 0,05 miligram buprenorfin hidroklorür analjezikle deri altı enjeksiyonu yapın ve hayvanı steril bir havlu üzerine, ana kafesine geri yerleştirin. Suda çözünür matriks jeller enjekte edilen sıçanlardan alınan kalp dokuları, çeşitli zaman noktalarında genel doku analizi için kesitlenmiş; hematoksilin ve eozin ile boyanmıştır. Cerrahi sonrası erken zaman noktalarında, enjekte edilen bölge pembe lifli bir ağ olarak görünürken, daha geç zaman noktalarında interstisyel olarak yayılmıştır.İki hafta sonra hücre girişi gözlemlenir. Enjekte edilen matriksin degradasyonu görülür. Eğer ECM enjeksiyondan önce biyotinle işaretlenmişse, matriks enjeksiyon bölgesindeki damar içi büyümesini ve oluşumunu görselleştirmek için biyotinin HRP konjuge streptavidin ile boyanmasıyla daha doğrudan görselleştirme sağlanabilir.Buradaki lamlar fitzy ile birlikte boyanmıştır. Yeşil renkte gösterilen konjuge selektin endotel hücrelerine bağlanır ve kırmızı renkte gösterilen anti-düz kas aktin antikoru kullanılır. Enjeksiyon bölgesinin yakınında kök hücreler de tanımlanabilir.Burada, C kit için yapılan bir immünohistokimya boyaması ile görselleştirilmişlerdir. Bu videoyu izledikten sonra, deselülerize dokudan çözünür ECM'nin nasıl oluşturulacağı ve kalp dokusu mühendisliği uygulamaları için in vivo olarak nasıl test edileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Perikardiyal doku kullanıyor olsak da, herhangi bir doku kaynağıyla kullanılabilmesi için bu genel prosedürün modifiye edilmesi gerektiğini unutmayın.İzlediğiniz için teşekkür eder, deneylerinizde başarılar dileriz.

fabrication-biologically-derived-injectable-materials-for-myocardial

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Burada, kolajen doku, iskelet matür içeren yapıları imalatı göstermektedir. Bu 3-D mühendislik yapıları dokuların değiştirmek veya onarmak için kullanılan...

MİYOJEN Engineered Doku oluşturur imalatı

Hizalanmış miyokard doku nesil klinik açıdan yararlı amaçlar için kök hücre biyolojisi ile ilgili güncel gelişmeleri adapte için önemli bir gerekliliktir. Bu yazıda hücre şekli ve fonksiyonu hassas kontrolü için mikrokontak baskı yaklaşımı açıklar. Kardiyak progenitörler türetilmiş embriyonik kök hücre son derece saf popülasyonlarının kullanarak, biz sonra anizotropik fonksiyonel miyokard doku oluşturur.

Mikrokontak baskı sayesinde Bağlantısızlar Fonksiyonel Miyokard Doku Üretimi

Karmaşık dokunun son derece organize yapılarının oluşturulması için, birden fazla materyal ve hücre tipini entegre bir kompozitte bir araya getirmek gerekir.  Bu kombinatoryal tasarım, güçlü bir fibröz matris tabanı içeren iki farklı biyolojik olarak türetilmiş materyal ve yeni damar oluşumunu arttırmak için endotel hücreleri ile organa özgü katmanlı hücre tabakalarını içerir.

Doku Mühendisliği: Katmanlı Hücre Sheets teslimi için bir Multisellüler 3D İskele İnşaatı

Bu protokol, miyokard enfarktüslerinin kök hücre tedavisi için bir hidrojel sistemi ve fibrin bazlı bir yapıştırıcı kullanılarak zayıf hücre aşılamasının sınırlamasını hafifletmeyi amaçlamaktadır. Bu yaklaşımla, enfarktüs sonrası hücreden dokuya temas korunabilir ve bu da yaralanma bölgesindeki faydalı ajanların terapötik potansiyelini artırır.

Bir Hidrojel Construct ve Fare Miyokard Enfarktüsü Modeli Therapeutics sunun için Tutkal Yaklaşım Fibrin tabanlı.

Bu el yazması, yüzey işaretleyici ekspresyonu ve hücre sıralaması kullanılarak tanımlanmış tasarlanmış kardiyak dokuların oluşturulmasını açıklar. Tanımlanan dokular daha sonra insan kalbinin işlevsel, ancak kontrollü bir model sistemini sağlamak için kardiyak hücre tedavisi mekanizmalarını araştırmak için çok dokulu bir biyoreaktörde kullanılabilir.

Tanımlı İnsan Engineered Kalp Dokuların inşaatı Kardiyak Hücre Tedavisinin Mekanizmaları Eğitim için

Bu iletişim kuralı elastik 3D macroporous microcryogels imalatı microfabrication cryogelation teknolojisi ile entegre ederek açıklar. Hücrelerle yükleme üzerine, 3D microtissues, hangi rejeneratif terapi kolaylaştırmak için kolayca enjekte içinde vivo olabilir veya diziler vitro yüksek üretilen iş uyuşturucu tarama için içine monte oluşturulur.

Enjekte edilebilir rejeneratif terapi ve yüksek-den geçerek uyuşturucu tarama için 3D Microtissues

Bu iletişim kuralı tam decellularization insan Miyokardiyum, hücre dışı matriks bileşenlerinin koruma sırasında açıklar. Microparticles ve cytoprotective kendi kendine montaj hidrojel üretiminde hücre dışı matriks sonuçlarının daha fazla alay.

İnsan kalp dokusu hücre dışı matriks hidrojel Vitro ve In Vivo uygulamaları için kendi kendine montaj doğru işlenmesi

Bu protokol, kalp hastalıkları için hücre implantasyon tedavisinin araştırılmasına olanak sağlamak için insan kaynaklı pluripotent kök hücrelerden elde edilen kardiyovasküler hücreleri içeren mesh şeklinde tasarlanmış kardiyak dokular üreder.

In Vivo Miyokardiyal Onarım için İnsan iPS Hücrelerinden Elde Edilen Örgü Şekilli Mühendislik Kardiyak Dokuların Hazırlanması

Kök hücre bazlı tedavi, miyokard enfarktüsünden sonra yaralı kalp dokularını onarmak için etkili bir strateji olarak ortaya çıkmıştır. Enzmatik olarak çapraz bağlanabilen jelatin hidrojelleri kullanarak kök hücre nakli için en uygun in vivo uygulamayı sağlıyoruz.

Murine Modelinde Miyokard İnfarktüsünden Sonra MSC Yüklemeli Enjekte Edilebilir Hidrojellerin intramiyokardiyal Transplantasyonu

Kök hücre kaynaklı kardiyomiyositler kullanılarak biyomühendislik yapılan üç boyutlu kalp dokuları, doğal kardiyak nişin temel yönlerini özetlerken, sağlıklı ve hastalıklı insan miyokardını in vitro incelemek için umut verici modeller olarak ortaya çıkmıştır. Bu makale, insan kaynaklı pluripotent kök hücre kaynaklı kardiyomiyositlerden üretilen yüksek içerikli tasarlanmış kardiyak dokuların üretilmesi ve analiz edilmesi için bir protokolü açıklamaktadır.

Tasarlanmış Kardiyak Dokuların Veri Toplamasını ve Model Verimini İyileştirmek için Bir Biyoreaktör Tasarlama

Eriyik elektrospinning yazma (MEW), polikaprolakton (PCL) iskeleleri ve fibrin hidrojelleri hiPSC türevi kardiyomiyositler ve fibroblastlarla birleştiren 3D miyokardiyal dokular oluşturmak için tekrarlanabilir bir yöntem sunulmuştur. Bu teknik, iskele mimarisi üzerinde hassas kontrol sağlar ve klinik öncesi ilaç testlerinde ve kalp hastalığı modellemesinde uygulanabilir.

Polikaprolakton İskelelerinin ve hiPSC'den Türetilmiş Kardiyak Hücrelerin Eriyik Elektrospinning Yazımı Kullanılarak 3D İnsan Miyokard Dokusu Üretimi

Öğrenin, deküllüize perikard dokusundan enjektabl matris jelleri üretmeyi ve sıçan miyokardında in vivo uygulamayı. Bu yöntem, doku mühendisliği için umut vadeden bir iskele sağlar.

Miyokard Doku Mühendisliği Biyolojik Türetilmiş Enjektabl Malzeme imalatı

Daha fazla video keşfet