7 Şubat 2011
Hiperinsülinemik öglisemik kelepçe insülin eylem değerlendirmesi için "altın standart". İnsülin, glukoz alımını teşvik sabit bir hızla doluyor. Bu düşüşün karşı aşılanmış eksojen glukoz miktarı insülin duyarlılığını göstermektedir. İşte prosedür bilinçli bir dizginlenmemiş sıçan yapılır.
Bu prosedürün genel amacı, bilinçli ve kontrolsüz sıçanlarda insülin duyarlılığını değerlendirmektir. Bu, ilk olarak sol karotis arterin kateterize edilmesiyle gerçekleştirilir. Daha sonra, en iyi sonuçları sağlamak için sağ juguler ven kateterize edilir.
Ameliyat sonrası beş günlük iyileşme süresi boyunca açıklığı korumak için kateterler günlük olarak yıkanır. Sonuçta, tüm vücut glukoz infüzyon hızlarını gösteren hiperinsülinemik U glisemik klempten sonuçlar elde edilebilir. Bu tekniğin temel avantajı, yüksek fizyolojik insülin seviyelerinde tüm vücut glikoz atma oranlarının doğrudan ölçümlerinin elde edilebilmesidir.
Arteriyel ve venöz kateterler cerrahi işlemden önce hazırlanmalıdır. Kateterin uçları künt olmalı, heparinize salin ile doldurulmalı ve arteriyel ve venöz kateterler için sırasıyla bir uçtan 2.7 veya 3.2 santimetreye güvenli bir şekilde tutturulmuş bir kısıtlama vuruşu ile etanol sterilize edilmelidir. Bu işlemde yaklaşık 300 gramlık yetişkin erkek sprey dolly sıçanları kullanılır.
Hayvanın başlangıç ağırlığını kaydedin ve bu ağırlığı ameliyat sonrası kilo alımını izlemek için kullanın. Aseptik cerrahi alanda çalışmak. Fareyi bir anestezik kutuya yerleştirerek% 3 flor ile uyuşturun.
Hayvanı cerrahi alandan uzaklaştırın ve boyun ve omuz çevresinden tüyleri alarak kesi bölgesini hazırlayın. Tüyler alındıktan sonra, yaklaşık% 2 flor ile anesteziyi sürdürmek için hayvanı bir burun konisine yerleştirin. Hayvanı ameliyat masasına sabitleyin.
Ayak ve/veya göz reflekslerinin varlığını kontrol ederek farenin tamamen uyuşturulduğundan emin olun. Kesi bölgesini %70 etanol ile temizleyin, ardından bir Betadine fırçalayın ve ardından tekrar %70 etanol uygulayın. İşlemin ilk adımı, sternumdan 10 milimetre daha üstün küçük bir dikey orta hat kesisi yapmaktır.
Diseksiyon dokusunu köreltmek ve sol sternal mastoid kasını ortaya çıkarmak için kavisli mikro diseksiyon forsepsleri kullanın. Sol karotis arterin yaklaşık bir santimetresini ortaya çıkarmak için bu kası yansıtın. Bağ dokusunu nazikçe uzaklaştırırken yerinde tutmak için karotis arterin altına mikro diseksiyon forsepsleri yerleştirin.
Atardamara veya sinire zarar vermeden vagus sinirini atardamardan izole etmek önemlidir. Sefalad ucunu bağlamak için steril dört oh ipek sütür kullanın. Damarı tırtıklı mikro diseksiyon forsepsleri ile sıkıştırın.
Bağlı olanı delin. 21 gauge ven eject multis numune yem adaptörü ile bitirin. Paslanmaz çelik tapayı kateterden çıkarın ve artere yönlendirmek için steril bir kateter tanıtıcı kullanın.
Kateterin güvenli olduğundan emin olmak için forseps kullanın. Kısmen. Mikro diseksiyon forsepslerini serbest bırakın, arteri sıkıştırın ve kateteri boncuğa kadar yerleştirmeye devam edin. Bu noktada sondanın ucu aort arkının içinde olmalıdır.
Boncuğun altına ve üstüne iki sütür sabitleyin ve hattı mililitre heparinize salin başına 10 birim ile yıkayın. Kateterin numune alacağını doğrulamak için, kateterin dış ucunu paslanmaz çelik bir tapa ile yeniden takın. Sonraki künt diseksiyon dokusu Sağ dış juguler veni ortaya çıkarmak için, damarı dikkatlice izole edin ve sefalik ligate edin.
İpek sütür ile bitirin. Damarı 21 gauge damarla delin. Çoklu örnek yem adaptörünü çıkarın.
Paslanmaz çelik tapayı kateterden çıkarın ve boncuğa takmak için steril bir kateter tanıtıcı kullanın. Boncuğun altından iki dikiş ve üst bir dikiş atın. Ve hattı mililitre başına 10 birim heparin buz tuzlu su ile yıkayın.
Kateterin numune alacağını doğrulamak için, kateterin dış ucunu cilt altında 14 gauge künt iğne tüneli kullanarak paslanmaz çelik bir tapa ile yeniden tıkayın ve sırtta kürek kemikleri arasında bir kesi yapın. Daha sonra, kateterleri farenin arkasından çıkacak şekilde iğneden geçirin. Her kateterin yaklaşık dört santimetresi görünür olmalıdır.
Tigon S 50 HL medikal borudan 0,5 santimetre kesin ve her iki dış kateterin etrafına yerleştirin. Damarlar için mavi, arterler için kırmızı bantla sabitleyin. Açıklığı sağlamak için kateterleri tekrar test edin ve ardından pıhtılaşmayı önlemek için mililitre başına 150 birim heparinize salin ile yıkayın ve doldurun.
Tüm kesileri üç adet ipek dikiş ile kapatın. Fareyi yüzüstü pozisyonda, yiyeceklerin kolayca erişilebileceği önceden uyarılmış temiz bir kafese yerleştirin. Sıçan tam yürüme kabiliyetini ve uyanıklığını geri kazandığında, onu ev kafesine geri koyun.
Sıçanın üç ila beş gün boyunca iyileşmesine izin verin, enfeksiyon, ağrı ve kilo değişiklikleri için günlük olarak izleyin. Çalışma boyunca kateter açıklığının korunması önemlidir. Ameliyattan sonra her gün bir mililitre kayma uçlu şırıngaları mililitre başına 150 birim heparinize salin ile doldurun ve 22 gauge künt iğne ile kapatın.
Kör iğne, diğer ucunda 23 gauge paslanmaz çelik boru kuplörü ile 20 santimetre PE 50 boruya yerleştirilir. Hattaki tüm hava kabarcıklarını çıkardığınızdan emin olun: Sıçandan dışlanan arteriyel hattı hemostatlarla sıkıştırın. Fişin hemen altında.
Başka bir çift kanama durdurucu kullanarak çelik kateter tapasını çıkarın. Şırıngaya bağlı boru kuplörünü arteriyel hatta yerleştirin ve eksternalize arteriyel kateteri tıkayan kanama durdurucuları serbest bırakın. Daha sonra, kateterin arteriyel kanını şırıngaya aspire edin.
Kateter kolayca çekilmezse, ucu yerinden çıkarmak için kateterden çok az miktarda solüsyon itmek gerekebilir. Kateter temizlenmiş olarak kabul edilir. Kan şırıngaya ulaştığında, P 50 hortumunu bir mililitrelik şırıngaya yakın bir yere sıkıştırın ve şırıngayı atın.
Taze heparin buz salini ile doldurulmuş yeni bir şırınga ile değiştirin. Hortumu açınamp ve yeni şırıngayı dik tutarken, hava kabarcıklarını yukarı doğru ve hattan uzaklaştırmak için yeni şırıngayı hafifçe vurun. Kateter hattı berraklaşana ve kandan arınana kadar heparinize salin enjekte edin.
Boru kuplörünün hemen altındaki arteriyel hattı sıkıştırın. Şırınga konektörünü arteriyel kateter hattından çıkarın ve paslanmaz çelik boru tapasıyla değiştirin. Eksternalize arteriyel kateter olan hemostatları tıkayan serbest bırakın.
Venöz hat için bu işlemi tekrarlayın. Düşük venöz basınç nedeniyle örnekleme mümkün olmayabilir. Genel olarak, heparinize salin minimum dirençle infüze edilebilirse, kateterin damar içinde iyi bir şekilde konumlandırılmış olması muhtemeldir.
Prosedüre başlamadan önce, hayvanlar tartılmalı, solüsyonlar hazırlanmalı ve kelepçe aparatı monte edilmelidir Hayvan tartıldıktan ve kateter açıklığı onaylandıktan sonra, hareketi sınırlayan ancak kısıtlamayan yatak takımlı küçük bir kaba koyun. Bu çalışmada kullanılan sıçanlar en az beş saat aç bırakılmış ve postoperatif kilo alma gereksinimlerini karşılamıştır. Sıçanın ağırlığı burada gerekli olan insülin miktarını belirler.
Dakikada kilogram başına dört mili birim, dakikada iki mikrolitre oranında uygulanır. % 50'lik bir dekstroz çözeltisi hazırlayın ve her iki çözeltiden de yaklaşık iki saat yetecek kadar olduğundan emin olun, burada üç mililitre şırınga kullanılır. Artık kelepçe aparatını monte etmeye hazırsınız.
Hatları ve infüzyon pompalarını burada görüldüğü gibi ayarlayın. Glikoz ve insülin şırıngalarını şırınga pompasına yerleştirin. Çizgileri sıkıştırın ve deneye başlamadan önce farenin 30 dakika rahatlamasına izin verin.
Prosedüre başlamak için, bir başlangıç insülin ve hematokrit örneği alın hematokrit örneklemesi, deney boyunca kan hacminin korunmasını sağlar. Genel olarak, hematokrit seviyeleri başlangıç değerinin% 10'undan fazla düşmemelidir. Bir temel glikoz numunesi alın ve klemplenecek glikoz seviyesini belirleyin.
Burada U glisemi veya beş milimolar'da klempliyoruz. Her kan örneğinden sonra, pıhtılaşmayı önlemek için arteriyel hattı mililitre heparinize salin başına 10 birimlik küçük bir hacimle yıkayın. Klemplenecek glikoz seviyesini belirledikten sonra, insülin çözeltisinin infüzyonuna başlayın.
Kan şekerini beş ila 10 dakikalık aralıklarla kaydedin ve kararlı bir durum elde edilene kadar glikoz infüzyon hızını gerektiği gibi ayarlayın. Bu genellikle bir deneme yanılma sürecidir ve 30 dakikadan iki saate kadar sürebilir. Glisemiyi korumak için gereken glikoz seviyesi deneysel protokole bağlıdır.
Mevcut türler ve koşullar Kenetlenmiş olarak kabul edilebilmesi için, ardışık üç okumanın belirli bir aralık içinde kalması gerekir. Birbirinin yaklaşık bir milimolar içindeki üç okuma, glikoz seviyelerinin sabit bir durum kaydına ulaştığını gösterir. Glisemiyi 30 dakikalık bir süre boyunca korumak için gereken glikoz infüzyon hızı, bu süre zarfında en az ek kan örnekleri alınabilir.
Kelepçe prosedürü tamamlandıktan sonra ikinci bir plazma insülin hematokrit örneği alınmalıdır. Hayvanlar daha fazla test için kullanılabilir veya daha fazla analiz için toplanan dokularda ötenazi yapılabilir. Hayvana bağlı olarak, kateter hatları doğru yapıldığında beş ila yedi gün boyunca patentli kalabilir.
Kelepçe prosedürü, kararlı durum insülin duyarlılığını ölçebilir. İnsülin ve glikoz seviyelerinin yanı sıra glikoz infüzyon hızları ve hematokrit değerlerinin kaydedilmesi önemlidir. Glikoz seviyeleri 30 dakikalık bir süre boyunca birbirinin bir milimolar içinde kaldığında kararlı duruma ulaşılır.
Glikoz infüzyon hızı, tek bir ortalama zaman noktasının aksine, mümkün olan oranın zaman içinde aşılanması gereken U glisemiyi korumak için gereken eksojen glikoz seviyesini ortaya çıkarır. Hem açlık hem de klempli insülin seviyeleri rapor edilmelidir. Bu önlemler, insülinin başarılı bir şekilde verildiğini doğrular ve başlangıçta hematokrit seviyelerini ölçen tedavi grupları arasındaki insülin yanıtındaki herhangi bir farklılığı tespit eder ve prosedürden sonra, seviyelerin deney boyunca taban çizgisinin% 5'inden daha fazla düşmediğini garanti eder.
İzotopik izleyici uygulaması gibi diğer yöntemler, tüm vücut ve dokuya özgü glikoz kullanımını değerlendirmek için kullanılabilir.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Hiperinsülinemi-öyküde glisemi klipsi, bilinçli, kısıtlanmamış sıçanlar üzerinde insülin duyarlılığını değerlendirmek için kilit bir yöntemdir. Bu yöntem, yüksek fizyolojik insülin seviyelerinde glukoz atım oranlarının doğrudan ölçülmesini sağlar.
The hyperinsulinemic-euglycemic clamp provides a gold-standard method for assessing whole-body insulin sensitivity in conscious rats, enabling direct measurement of glucose disposal rates under physiological insulin levels. This approach supports target validation in metabolic disease research by delivering quantitative, reproducible data on insulin action, which is critical for de-risking therapeutic hypotheses in diabetes and obesity drug discovery programs. The use of unrestrained, chronically catheterized animals reduces stress-induced variability, enhancing data reliability for preclinical decision-making.
The hyperinsulinemic-euglycemic clamp fits within the discovery-to-preclinical continuum, particularly after target identification and before lead optimization, where functional validation of insulin sensitivity is required to prioritize candidates.