Name: DsRNA Enjeksiyon RNAi Girişim içine Drosophila Embriyolar (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-04-11T11:00:00.000+00:00
Duration: 8 min 30 s
Description: Öğrenin Drosophila embriyolarına dsRNA enjeksiyonu ile gen ekspresyonunu susturma yöntemini. Bu teknik, organ gelişimi için gerekli genleri hızlıca belirlemeye ve trakeal gelişimi incelemeye olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarları Stephen Ekipler dysfusion cDNA, DYS antikor ve w 1118 sinekler için teşekkür etmek istiyorum.

1. Embriyo Koleksiyon <ol><li> 25 kafesleri ayarlayın ° C 2-4 gün eski w 1118 flies.Grape suyu plakaları kullanarak toplama önce 1-2 gün süre içinde yumurta toplama senkronize etmek için gün boyunca her saat başı değiştirilir </li><li> 25 1hr için embriyolar toplayın ° C </li><li> Üzüm suyu agar ortasında bir jiletle hafifçe kesilmiş bir dikdörtgen parça, Kes, agar bir çizgi terk </li><li> , Üzüm suyu agar parça, üzüm suyu plaka embriyo transferine yönelik bir metal prob kullanın agar ortasında hattına 45 derecelik bir açıyla embriyonun uzun ekseni ile düz bir çizgi, onları hizaya. Yaklaşık 50 embriyoların düz bir çizgi alın. Hat uzak işaret arka ucu ile, tüm embriyoların noktası aynı yönde olduğundan emin olun. </li><li> Çift kaset sopa dikdörtgen bir parça kesin ve 18x18mm bir kapak kayma yerleştirin. </li><li> Kapak astar üzerine çift kaset sopa ile embriyolar Pick up </li><li> Koyun, bir bardak slayt kapak kayma, embriyo yaklaşık 10 dakika süreyle havada kurutun. </li><li> 700 Halokarbon yağı ince bir tabaka ile embriyo Kapak, şimdi enjeksiyon için hazır. </li></ol> 2. İğne Çekme Cam kılcal tüpler çekerek mikroenjeksiyon iğneler olun. Biz Dünya Hassas Aracı (Model PUL-1) bir iğne çektirmesi kullanın. İğne çektirmesi programın özellikleri şunlardır: Isı: 1, gecikme 4. 3. İğneler Dolum Back-Eppendorf Microloader ipuçları ile donatılmış Eppendorf P20 pipet kullanarak yük iğneler, normal yük 1.5-2 mcL dsRNA 4. İğneler Molası <ol><li> Iğne kırılması önce, bir slayt üzerine bir lamel. </li><li> Bir slayt slayt ortasında bir damla yağ ile hazırlayın </li><li> Hava basıncı ayarlamak için Picospritzer III picopump açın </li><li> Keskin bir noktası oluşturarak, bir kapak kayma kenarına dolu iğne kırın. </li><li> Ucu kırık, ayak pedalı Picospritzer III picopump adım, bazı dsRNA iğne ucu kaçağına sebep olur. </li><li> Lamel ile slayt dışarı atın. </li><li> Önce hazırlanan slayt ortasında yağ damlası altında iğne yerleştirin. </li><li> 100-200pl dsRNA ayak pedalı adım almak için Picospritzer III picopump ayarını değiştirin. dsRNA bir küçük damlacık olarak görülebilir. </li></ol> 5. Enjeksiyon <ol><li> Iğne ucu aynı odak düzlemi içine ilk blastodermin embriyo arka kısmına getirin ve% 30-50 yumurta uzunluğu etrafında merkezden embriyo enjekte. </li><li> Picospritzer III picopump ayak pedalı adımdan sonra, küçük bir miktarda dsRNA enjeksiyon yerinde küçük bir nokta olarak görünür. </li></ol> 6. Fenotipik Analizi <ol><li> Embriyoların istenilen embriyonik aşamada geliştirmek kadar, enjeksiyondan sonra 18 yaşında bir kapalı nemli ortamdan (plastik Petri kabı) ° C slayt. </li><li> Çift taraflı bant embriyolar kaldırmak ve kapak kayma kenarına itmek için prob kullanın. Heptan kullanarak alt kısmında naylon örgü bir koleksiyon şişenin içine slayt kapalı embriyoların yıkayın, PBT ile 3 kere yıkayın. 5 dakika boyunca% 50 çamaşır Dechorionate embriyolar ve PBT ile 3 kere yıkayın. Toplama şişeden bir parça naylon örgü embriyo transferi ve ardından embriyoları serbest fiksatif solüsyonu (5ml heptan, 4.5ml PBS, 0.5 ml% 37 formaldehit) naylon örgü içine batırın. 30 dakika için fiksatif çözüm embriyolar sabitleyin. Eppendorf tüp embriyo transferi ve standart protokolleri kullanarak embriyolar immunostain, metanol ile embriyolar Devitellinize. </li><li> Embriyolar uygun larva dönemi de gelişebilir. </li><li> Ortasında Halokarbon 700 petrol bir damla bir slayt hazırlayın </li><li> Slayta bir larva transferi, üstüne bir kapak kayma koymak </li><li> Parlak alan mikroskobu altında larvaları uyun. </li></ol> 7. Temsilcisi Sonuçlar: DsRNA, bir örnek Fig1 gösterilen Drosophlia embriyo dysfusion (DYS) gen yıkmak. GFP-dsRNA enjekte edilen embriyolar, negatif kontrol edilir. Disfonksiyonu, trakeal füzyon hücreleri ifade bHLH PAS transkripsiyon faktörü. GFP-dsRNA enjekte edilen embriyolar normal trakeal füzyon, füzyon hücreleri (Şekil 1A) ve DYS protein bulunur. Öte yandan, dis-dsRNA embriyolar başarısız şube füzyon enjekte ve DYS proteinler füzyon hücreleri (Şekil 1B) mevcut değildir. DsRNA embriyolar larva aşamasında geliştirmek enjekte edildiğinde, dis-dsRNA enjekte larvaları GFP-dsRNA enjekte negatif kontrol (Şekil 1C) ile karşılaştırıldığında başarısız şube füzyon (Fig.1D) gösterdi. Bu sonuçlar, Drosophila embriyolara dsRNA enjeksiyon etkili endojen disfonksiyonu gen ekspresyonu yıkmak gösterdi <img src="/files/ftp_upload/2477/2477fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1, dis-RNAi dis fonksiyon Kaldırma ortaya koymaktadır trakeal füzyon defects. Blastodermin embriyolar (w 1118), GFP dsRNA (negatif kontrol) veya disfonksiyonu dsRNA ile enjekte edilir ve trakeal kusurlar için ölçüldü . (A) Sahne 16 embriyo GFP-dsRNA ile enjekte edilen ve α-DYS ve MAb 2A12 lekeleri trakeal lümen ile boyandı. Göze çarpacak erimiş sahip yan gövde, gösterilir. Oklar yan gövde DYS pozitif füzyon hücreleri üzerine gelin. (B) Sahne 16 embriyo disfonksiyonu dsRNA ile enjekte edilen ve α-DYS ve MAb 2A12 ile boyandı. Embriyo, lateral gövde füzyon (yıldız kontrolü embriyolar bir yan gövde füzyon normal yeri gösterir) eksikliği gösterdi. Dis-RNA etkili DYS protein kaldırıldı olduğunu belirterek, DYS-pozitif hücrelerin yok gözlendi. (C D) GFP-dsRNA veya disfonksiyonu dsRNA İkinci instar larvaları trakeal kusurları için parlak alan mikroskobu ile incelendi. (C) füzyon siteler GFP-dsRNA enjekte kontrolü larvaları bir yıldız işareti ile belirtilmiştir. (D) lateral dis-RNA enjekte larvalar gövde sigorta başarısız lateral gövde füzyon (*) normal yeri gösterir.

<ol><li>St Johnston, D., Nusslein-Volhard, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+origin+of+pattern+and+polarity+in+the+Drosophila+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The origin of pattern and polarity in the Drosophila embryo.</a> Cell. 68, 201-219 (1992).</li>
<li>Venken, K. J., Bellen, H. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Emerging+technologies+for+gene+manipulation+in+Drosophila+melanogaster%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">Emerging technologies for gene manipulation in Drosophila melanogaster.</a> Nat. Rev. Genet. 6, 167-178 (2005).</li>
<li>Fire, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Potent+and+specific+genetic+interference+by+double-stranded+RNA+in+Caenorhabditis+elegans%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans.</a> Nature. 391, 806-811 (1998).</li>
<li>Kennerdell, J. R., Carthew, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+dsRNA-mediated+genetic+interference+to+demonstrate+that+frizzled+and+frizzled+2+act+in+the+wingless+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Use of dsRNA-mediated genetic interference to demonstrate that frizzled and frizzled 2 act in the wingless pathway.</a> Cell. 95, 1017-1026 (1998).</li>
<li>Misquitta, L., Paterson, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeted+disruption+of+gene+function+in+Drosophila+by+RNA+interference+%28RNA-i%29%3A+a+role+for+nautilus+in+embryonic+somatic+muscle+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.+S.+A%22%5BJournal%5D)">Targeted disruption of gene function in Drosophila by RNA interference (RNA-i): a role for nautilus in embryonic somatic muscle formation.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 96, 1451-1456 (1999).</li>
<li>Horowitz, A., Simons, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Branching+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Circ.+Res%22%5BJournal%5D)">Branching morphogenesis.</a> Circ. Res. 103, 784-795 (2008).</li>
<li>Hogan, B. L., Kolodziej, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organogenesis%3A+molecular+mechanisms+of+tubulogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Genet%22%5BJournal%5D)">Organogenesis: molecular mechanisms of tubulogenesis.</a> Nat. Rev. Genet. 3, 513-523 (2002).</li>
<li>Ghabrial, A., Luschnig, S., Metzstein, M. M., Krasnow, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Branching+morphogenesis+of+the+Drosophila+tracheal+system%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Cell+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Branching morphogenesis of the Drosophila tracheal system.</a> Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 19, 623-647 (2003).</li>
<li>Jiang, L., Crews, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dysfusion+transcriptional+control+of+Drosophila+tracheal+migration%2C+adhesion%2C+and+fusion%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Dysfusion transcriptional control of Drosophila tracheal migration, adhesion, and fusion.</a> Mol. Cell. Biol. 26, 6547-6556 (2006).</li>
<li>Jiang, L., Crews, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+dysfusion+basic+helix-loop-helix+%28bHLH%29-PAS+gene+controls+tracheal+fusion+and+levels+of+the+trachealess+bHLH-PAS+protein%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">The Drosophila dysfusion basic helix-loop-helix (bHLH)-PAS gene controls tracheal fusion and levels of the trachealess bHLH-PAS protein.</a> Mol. Cell. Biol. 23, 5625-5637 (2003).</li>
</ol>

DsRNA enjeksiyon yöntemi mevcut burada çok hassas ve hızlı analiz Drosophila trakeal gelişme gen fonksiyonu sağlar. Bu yöntem, potansiyel olarak diğer doku ve organ gelişimi için gen fonksiyonu analiz etmek için de uygulanabilir.

<table><tbody><tr><td>Halokarbon yağı 700</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>H8898</td><td></td></tr><tr><td>Picospritzer III pikopompa</td><td>Parker Hannifin Corporation</td><td>051-0500-900</td><td></td></tr><tr><td>Mikropipetler</td><td>Fisher Scientific</td><td>21170M</td><td></td></tr><tr><td>Mikroyükleyiciler</td><td>Eppendorf</td><td>930001007</td><td></td></tr></tbody></table>

dsrna enjeksiyon rnai girişim içine drosophila embriyolar

RNAi Interference by dsRNA Injection into Drosophila Embryos

Genetik tarama karmaşık biyolojik süreci 1 içgörüler kazanmak için mevcut olan en güçlü yöntemlerden biridir. Drosophila 2 yıl içinde genetik manipülasyon için birçok yenilik ve araçlar haline gelmiştir. Yakında çift iplikli RNA RNA enterferans (RNAi) Drosophila organ gelişimi gen fonksiyonlarını analiz için güçlü bir ters genetik yaklaşım sağlamak için gösterilen Caenorhabditis elegans, bireysel genlerin aktivitesi demonte etmek için kullanılabilir Frie ve Mello 3 tarafından ilk keşfinden sonra 4, 5. , Akciğer, böbrek, karaciğer, ve damar sistemi de dahil olmak üzere birçok organı, dallı tübüler ağları oluşan taşıma hayati sıvı veya gazlar, 6, 7 . Drosophila trakeal oluşumu analiz tübüler diğer organların 8 morfolojilerinden çalışmak için mükemmel bir model sistemi sağlar. Berkeley Drosophila genom projesi, trakeal sistem olarak ifade edilir yüzlerce gen ortaya çıkardı . Tüp oluşumunun moleküler ve hücresel mekanizma çalışmak için, meydan trakeal gelişiminde bu genlerin rollerini anlamak. Burada, demonte bireysel gen ekspresyonu Drosophila embriyo haline dsRNA enjeksiyon ayrıntılı bir yöntem tanımlanmıştır. Biz başarıyla dsRNA enjeksiyon endojen dysfusion (DYS) gen ekspresyonu çaldı. Disfonksiyonu, trakeal füzyon hücreleri ifade bHLH-PAS protein ve trakeal şube füzyon 9, 10 için gereklidir . disfonksiyonu RNAi disfonksiyonu ifadesi tamamen ortadan kaldırdı ve trakeal füzyon defekti sonuçlandı. Bu nispeten basit bir yöntem Drosophilia&#39;daki tissure ve organ gelişimi için requried genleri tanımlamak için bir araç sağlar.

RNA girişim gen fonksiyonu analiz etmek için çok etkili olduğu kanıtlanmıştır<em&gt; Drosophila</em&gt; Trakeal geliştirilmesi. Jiang laboratuarı tarafından demonte gen ekspresyonu sinek embriyolara dsRNA enjekte etmek için kullanılan ayrıntılı bir protokol gösterilmiştir. Bu teknik, doku ve organ gelişimi için gerekli tarama genler için bir potansiyele sahiptir<em&gt; Drosophila</em&gt;.

DsRNA Enjeksiyon RNAi Girişim içine Drosophila Embriyolar

Genetik tarama, karmaşık biyolojik süreçler hakkında bilgi edinmek için mevcut olan en güçlü yöntemlerden biridir 1. Yıllar içinde birçok geliştirme ...

Bu prosedürün genel amacı, organ gelişimi için gerekli olan genleri belirlemek amacıyla drosophila embriyolarına çift zincirli RNA enjekte ederek endojen gen ekspresyonunu baskılamaktır. Bu işlem, öncelikle embriyoların toplanıp düz bir hat boyunca dizilmesiyle gerçekleştirilir. Ardından, iğneler hazırlanır ve embriyolara çift zincirli RNA enjekte etmek için kullanılır.Son olarak, embriyolar gelişmeleri için nemli bir hazneye yerleştirilir. Nihayetinde, geç evre embriyoların antikor boyamasıyla veya larvaların parlak alan mikroskobu altında gözlemlenmesi yoluyla drosophila trakeal dal füzyonundaki defektleri gösteren sonuçlar elde edilebilir. Bu tekniğin, organ gelişimi için gerekli genleri belirlemeye yönelik ileri genetik tarama gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, bir gen için mutant mevcut olmadan önce gen fonksiyonlarını analiz etmeye yönelik nispeten basit ve hızlı bir ters genetik yaklaşım olmasıdır.Bu yöntem, D trake sisteminin gelişimi için gerekli olan kritik genlerin tanımlanması gibi gelişimsel biyoloji alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Bu, omurgalı hava yolları, dolaşım sistemi, böbrek kanalları ve keşifsel epitel gibi memeli organlarının morfojenezini incelemek için mükemmel bir modeldir. Genellikle, bu yöntemde yeni olan kişiler; embriyoları hizalama, iğneleri kırma ve embriyolara stranded RNA enjekte etme gibi yöntemleri öğrenmek zaman aldığı için zorluk yaşayacaklardır.Çift sarmallı RNA'nın enjekte edildiği miktar embriyolar arasında farklılık gösterdiğinden ve sinsityal blastoderm embriyoların nasıl göründüğüne dair yazılı anlatımlar zor olabildiğinden, bu yöntemin görsel olarak gösterilmesi kritik öneme sahiptir. Sinsityal blastoderm embriyolara uygun miktarlarda çift sarmallı RNA enjekte etmek, endojen genlerin ekspresyonunu etkili bir şekilde susturmak için çok kritik bir adım olduğundan, bu aşamaları öğrenmek güçtür.Başlamak için, iki ila dört günlük W 1 1 1 8 sineklerini kullanarak kafesleri 25 °C'ye ayarlayın; yumurta toplama işlemini bir ila iki günlük bir süre boyunca senkronize etmek için gün boyunca üzüm suyu plakalarını her saat başı değiştirin. Toplama işleminden önce, syn city veya blaster derm embriyolarını 25 °C'de bir saat boyunca dikdörtgen bir üzüm suyu agar parçası üzerine toplayın, ardından jiletle agarın ortasına hafifçe bir çizgi çizin.Embriyoları üzüm suyu plağından üzüm suyu agar parçasına aktarmak için metal bir prob kullanın. Yaklaşık 50 embriyoyu, uzun eksenleri agarın ortasındaki hatta 45 derecelik bir açı yapacak şekilde düz bir hat boyunca dizin. Tüm embriyoların aynı yönü gösterdiğinden ve posterior uçlarının hattan dışarıya doğru baktığından emin olun.Çift taraflı banttan dikdörtgen bir parça kesin ve bunu 18 x 18 milimetrelik bir lamelle yapıştırın. Lamel üzerindeki bandı kullanarak embriyoları alın. Lameli bir lam üzerine yerleştirin.Embriyoları çift taraflı bant üzerine hafifçe bastırın ve yaklaşık 10 dakika boyunca havada kurumaya bırakın. Embriyoların üzerini ince bir tabaka 700 halo karbon yağı ile kaplayın. Embriyolar mikroskop altında netleşene kadar yaklaşık 10 dakika bekleyin.Mikroenjeksiyon iğneleri, cam kapiler tüpler çekilerek hazırlanır. World Precision Instruments marka bir iğne çekiciyi şu program ayarlarıyla kullanıyoruz: Isıtma (Heat) bir, gecikme (delay) dört, geri çekme (back).Einor P 20 pipet ve einor mikro yükleyici uçlar kullanarak iğneye iki µL çift zincirli RNA yükleyin. Üzerinde temiz bir lamel bulunan bir lam hazırlayın ve bunları birlikte bantlayın. Dolu iğneyi, keskin bir uç oluşturacak şekilde lamelin kenarına getirin.Çift sarmallı RNA iğne ucundan dışarı sızar. Piko pompanın ayak pedalı basıldığında, ortasında bir damla yağ bulunan bir lam hazırlayın. İğneyi yağ damlasının içine yerleştirin.Ayak pedalı basıldığında 100 ile 200 piko litre arasında çift zincirli RNA püskürtmek için piko pompanın ayarını düzenleyin. Çift zincirli RNA, konumlandırılmış küçük bir damlacık olarak görülebilir.İğne ucu ilk embriyonun posterior kısmındayken piko pompa ayak pedalına basın. Çift zincirli RNA, enjeksiyon bölgesinde küçük bir damlacık şeklinde görünecektir.Slayttaki embriyolara çift zincirli RNA enjeksiyonunu tamamlayın. Blastoderm aşamasına gelmemiş tüm embriyoları imha edin. Embriyolar istenen embriyonik veya larval evreye gelene kadar, lameli 18 °C'de plastik bir Petri kabı gibi kapalı ve nemli bir ortama yerleştirin.İstenen embriyonik aşamaya gelmiş embriyolar için, embriyoları çift taraflı banttan çıkarmak amacıyla bir prob kullanın ve onları lamın kenarına doğru itin. Embriyoları heptan ile yıkayarak alt kısmında naylon ağ bulunan bir toplama tüpüne aktarın. Embriyoları üç kez PBT ile yıkayın, ardından beş dakika boyunca %50'lik çamaşır suyunda bekletin ve embriyoları tekrar üç kez PBT ile yıkayın.Embriyoları bir pipet kullanarak toplama tüpünden naylon bir ağ parçasına aktarın ve naylon ağ parçasını fiksatif çözeltiye daldırın. Embriyoları 30 dakika boyunca fikse edin. Fiksatif çözeltinin alt katmanını uzaklaştırın.Ardından, metanol ile fikse edilen embriyolar bir eppendorf tüpüne aktarılır ve istenilen larva evresine gelmiş embriyolar için standart antikor boyama protokolleri kullanılarak iki A 12 ve difüzyon antikorları ile immünboyama yapılır. Ortasında bir damla halokarbon 700 yağı ve yağ damlasının her iki yanında iki küçük lameli bulunan bir lam hazırlayın. Bir larvayı lama aktarın ve ardından yağ damlasının üzerine bir lamel yerleştirin.Larvaları bir aydınlık alan mikroskobu altında gözlemleyin. Hem difüzyon çift zincirli RNA hem de GFP çift zincirli RNA enjeksiyonunun temsili sonuçları burada gösterilmiştir.GFP çift zincirli RNA enjekte edilen embriyolar normal trakeal füzyon göstermektedir ve füzyon hücrelerinde difüzyon proteini mevcuttur. Oklar, lateral gövdede difüzyon pozitif füzyon hücrelerini göstermekte ve yıldız işareti normal füzyonun konumunu belirtmektedir.Buna karşın, çift zincirli RNA enjekte edilen difüzyon embriyolarında trake dal füzyonunun başarısız olduğu görülmektedir ve füzyon hücrelerinde difüzyon proteinleri mevcut değildir. Üçgen, çift zincirli RNA enjekte edilen embriyolar larva aşamasına geldiğinde başarısız olan dal füzyon bölgesini göstermektedir. G-F-P-R-N AI larvaları, yıldızla belirtilen normal trake dal füzyonunu sergilemektedir.Öte yandan, diffusion RN AI larvaları üçgenlerle belirtilen başarısız dal füzyonu göstermiştir. Bu sonuçlar, drosophila embriyolarına çift zincirli RNA enjeksiyonu yoluyla endojen diffusion gen ekspresyonunun susturulmasının etkisini göstermektedir. Bu prosedür uygulanırken, gelişiminden sonra tüm enseal blaster embriyolarının öldürülmesinin önemli olduğu unutulmamalıdır.Bu teknik, gelişimsel biyoloji alanındaki araştırmacıların drosophila'da organ gelişimi için yeni genlerin fonksiyonlarını keşfetmelerinin önünü açmıştır. Bu videoyu izledikten sonra, drosophila embriyolarına çift zincirli RNA enjekte ederek endojen genlerin nasıl susturulacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

rnai-interference-by-dsrna-injection-into-drosophila-embryos

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Biz protein ekspresyonu ve lokalizasyonu postembryonic düzenleyiciler tanımlamak için duyarlı bir yöntem...

Içinde Postembryonic Fenotiplerin Belirleme RNAi Tarama C. elegans</em

Bu yayının amacı, görselleştirmek ve Drosophila çıkarılan RNA bir Geliştirilmiş Northern Blot protokolünün ameliyat adımları görüşmek embriyolar, hücreleri ve dokuları melanogaster etmektir. Bu protokol küçük RNA türünün etkin tespiti için özellikle yararlıdır.

Küçük RNA Türlerin Northern Blot Algılama geliştirilmiş Drosophila melanogaster

RNA enterferans (RNAi) tabanlı gen demonte teknikleri Tribolium araştırma özünde vardır. Burada, biz Tribolium castaneum'ların bizim larva RNAi tekniğinin bir bakış sağlar. Larva RNAi araştırmacılar farklı bağlamlarda gen fonksiyonlarını incelemek için izin, kayıp fonksiyon-fenotiplerine hızlı erişim sağlayan basit, ama güçlü bir tekniktir.

Kırmızı Un Beetle Larva RNA Girişim, Tribolium castaneum

RNA girişimi (RNAi), gen fonksiyonunu ortaya çıkarmak için son derece değerli bir araçtır. Bununla birlikte, yetişkinlik öncesi aşamalarda RNAi kullanarak genleri hedefleme yeteneği, başlıca insan sıtma vektörü Anopheles gambiae'de sınırlıdır. Pupa gelişimi sırasında doğrudan enjeksiyon yoluyla gen fonksiyonunu azaltmak için bir RNAi protokolü tanımladık.

içine RNAi Tetik Teslimat<em&gt; Anofel gambiae</em&gt; Pupa

Burada, laboratuarda bir ara-germ böceği, Dermestes maculatus (D. maculatus) yetiştirme için protokolleri sunuyoruz. Biz de bu türün gen fonksiyonunu incelemek için embriyonik fenotipleri analiz etmek için embriyonik ve ebeveyn RNAi için protokolleri ve yöntemleri paylaşır.

Yetiştirme ve Gizle böcek RNA aracılı gen demonte çift sarmallı, Dermestes maculatus

Bu makalede damar doku bitkiler için RNA müdahale (RNAi) böcekler besleme phloem sap ile çift iplikçikli RNA (dsRNA) oral teslimat için geliştirilen roman tekniklerini gösterir.

Phloem ve Hemipteran böcekler bitki su besleme RNA müdahale ikna etmek için çift iplikçikli RNA Oral teslim yöntemleri

RNA paraziti, gen ekspresyonunu belirli gelişimsel evrelerde manipüle etmek için yaygın olarak uygulanabilir ve güçlü bir tekniktir. Burada, sudalış böceği Thermonectus marmoratusbu tekniğiuygulamak için gerekli adımları açıklar , gen dizilerinin edinimi gelen yapı veya davranışı etkileyen genlerin yıkılması.

Belirli Gelişimsel Zaman Noktalarında Gen İfadesi Manipüle Etmek Için Güçlü Bir Araç Olarak Su Böcekleri RNA Girişim

Caenorhabditis elegans'ta rutin olarak kullanılan RNA girişimi (RNAi) için bir dağıtım yöntemi olan bakteriler tarafından üretilen dsRNA'nın oral yoldan uygulanması, burada yetişkin sivrisineklere başarıyla uygulanmıştır. Yöntemimiz, enjeksiyon kullanmadan sağlam ters genetik çalışmalarına ve iletimi engelleyen vektör çalışmalarına izin verir.

Yetişkin Anofeller gambiae Sivrisineklerine Etkili Oral RNA İnferferi (RNAi) Uygulaması

RNA girişiminin (RNAi) manipülasyonu, Trichogramma yaban arıları gibi küçücük boyuta sahip birçok parazitoid türünde zorlu bir zorluk teşkil eder. Bu çalışma, Trichogramma denrolimi'de etkili bir RNAi yöntemini tanımlamıştır. Mevcut metodoloji, Trichogramma yaban arılarında gen regülasyonunu araştırmak için sağlam bir model sunmaktadır.

Yumurta Parazitoidinde RNA Girişimi, Trichogramma dendrolimi Matsumura

Bu makale, Drosophila'daki phiC31 integraz aracılı transgenezi örnek olarak almakta ve transgenik sinekler oluşturmak için çok önemli bir adım olan embriyo mikroenjeksiyonu için optimize edilmiş bir protokol sunmaktadır.

Drosophila'da Transgenez için Embriyo Mikroenjeksiyonu

Öğrenin Drosophila embriyolarına dsRNA enjeksiyonu ile gen ekspresyonunu susturma yöntemini. Bu teknik, organ gelişimi için gerekli genleri hızlıca belirlemeye ve trakeal gelişimi incelemeye olanak tanır.

DsRNA Enjeksiyon RNAi Girişim içine Drosophila Embriyolar

Daha fazla video keşfet