Name: Clonogenic Testi: yapışkan Hücreler (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-03-13T11:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 30 s
Description: Öğrenin, yapışkan hücrelerde klonojenik test yöntemiyle hücresel üreme canlılığını değerlendirmeyi. Bu teknik, radyasyon ve kimyasal ajanların etkilerini analiz ederek radyasyon biyolojisinde temel bir araçtır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Avustralya Nükleer Bilimi ve Mühendisliği Enstitüsü destek kabul edilmektedir. TCK AINSE ödül layık görüldü. Epigenomic Tıp Laboratuarı, Ulusal Sağlık ve Tıbbi Araştırma Konseyi (566.559) Avustralya tarafından desteklenmektedir. İK, Avustralya, mezuniyet sonrası ve BakerIDI parlak kıvılcım ödül tarafından desteklenmektedir. Bu çalışma, Biyomedikal Görüntüleme Geliştirme Ltd (CRC-BID), kurulan ve Avustralya Hükümeti Ortak Araştırma Merkezleri programı kapsamında desteklenen CRC tarafından finanse edilmektedir. CO Avustralyalı bir mezuniyet sonrası ödül ve CRC-BID ek burs almıştır.

1. Hücre Kültürü ve Deneysel Set-up <ol><li> İnsan keratinositler keratinosit-SFM 15 mL (K-SFM) içeren 75 cm 2 doku kültürü şişeleri mono tabakaları olarak korunur, L-glutamin (2 mM), epidermal büyüme faktörü (5 ng ile desteklenmiş orta (Gibco, serum serbest orta ) / ml), sığır hipofiz ekstresi (40 mg / ml) ve 20 mg / ml gentamisin. Hücreler 37 ° C nemlendirilmiş bir% 5 CO 2 ortamında yetiştirilen </li><li> Hücreler, 5 ml K-SFM orta içeren 12 x 25 cm 2 doku kültürü şişeler içine numaralı seribaşı . </li></ol> Tek hücre süspansiyonları trypsinization tarafından hazırlanır. Hücreler, fosfat tamponlu tuzlu su ile yıkanır ve 5-10 dakika için% 0.05 tripsin / EDTA çözeltisi ile inkübe edilir. Hücreler haline başladığınızda yuvarlak ve müstakil ~% 30,% 10 fetal sığır serumu içeren Dulbecco&#39;nun modifiye kartal orta 3 cilt tripsin nötralize etmek için eklenir. Hücreleri (20 kez) yukarı ve aşağı pipetleme ayrılır. Hücreler hemasitometre kullanarak sayılır. Uygun hücre sayıları iki katına zaman hücre hattı (insan FEP-1811 keratinositler için yaklaşık 20 saat) göre seribaşı. Amacı, deney günü ~% 90 confluency (şişesi ortalama ~ 10 6 hücre) elde etmektir . 12 şişe oluşan bir deney yaklaşık dört saat içinde tamamlanmalıdır tek bir clonogenic assay (altı ışınlanmamış kontrolü ve altı ışınlanmış şişeler) için en uygunudur. 2. Tedavi ve ışınlama <ol><li> Ilgili bir radyasyon değiştirerek bileşik uygun bir zaman için hücreleri tedavi ve hücreleri iyonize radyasyon γ-radyasyon veya X-ışınları ya maruz. </li></ol> Genellikle altı şişeler, kaplama verimlilik (işlenmemiş) ve ilaç denetimlerin sadece olarak hizmet vermektedir. Diğer altı şişeler ışınlanmış. 1 saat suda eriyen bir doğal antioksidan formülasyonu, bu örnekte insan keratinositler Cinnulin PF çeşitli konsantrasyonlarda (20 mg / ml aşağıda gösterilmiştir temsilcisi veri; Dürüstlük Nutraceuticals Uluslararası, Spring Hill, TN, ABD CPF) ile tedavi edilir 37 ° C Hücreler 137 Cs kaynak (Nordion Uluslararası, ON, Kanada; 1.6 Gy / dk Gammacell 1000 Elite ışınlama) kullanılarak 4 Gy ışınlanmış. 3. Kaplama <ol><li> Daha önce açıklandığı gibi, tedavisi sonrasında, tek hücre süspansiyonları elde edilir. </li><li> Her bir numune hücrelerinin sayısını dikkatli bir şekilde hemasitometre kullanarak, uygun hücre sayıları (beş 15 mm yemekleri her çoğaltır) petri kutularının içine numaralı seribaşı sayılır ve seyreltilir. Plaka başına tohum hücrelerinin sayısını karar verirken kaplama verimliliği ve / veya fraksiyon hayatta tahmin edilmelidir. 150 koloniler - 20 arasında bir dizi amacı gerçekleştirmek için. </li></ol> Petri kutularına nemlendirilmiş bir plastik klonlama kutusu olarak düzenlenmiş ve koloni oluşumu için 37 ° C,% 5 CO 2 ortamında inkübe . Koloni oluşumu için inkübasyon süresi 1-3 hafta farklı hücre hatları için değişir, o zaman en az altı hücre bölünmeleri eşdeğer olması gerektiğini kabul edilir. Bu örnekte, insan keratinositler için kontrol yemekleri sekiz gün, 50 ya da daha fazla hücreden oluşan yeterince büyük klonlar formu gerektirir. 4. Tespit ve Boyama Kolonileri Davlumbaz aşağıdaki adımları tamamlayın. <ol><li> Aspirasyon ile hafifçe plakaların her medya çıkarın. </li><li> Her plaka 5 ml% 0.9 &#39;luk tuzlu su ile yıkayın. </li><li> 15-30 dakika için 5 ml% 10&#39;luk nötral tamponlu formalin ile koloniler sabitleyin. </li><li> 30-60 dakika dH 2 O 5 ml% 0,01 (w / v) kristal viyole ile Leke. </li><li> DH 2 O ile aşırı kristal viyole yıkayın ve yemekleri kurumasını bekleyin. </li></ol> 5. Koloni Sayım Stereomikroskopta <ol><li> 50 den fazla bireysel hücre içeren Kolonileri stereomikroskopta kullanarak sayılır. </li></ol> Dijital görüntüleme ve görüntüleme yazılımı kullanarak sayma <ol><li> Kolonilerin Dijital görüntüler bir kamera kullanarak ya da cihaz tarama elde edilir </li><li> Kolonileri aşağıda açıklandığı gibi görüntü analiz yazılımı paketleri kullanarak sayılır. </li></ol> ImageJ (Fiji Sürüm 1.44a) kullanarak hücre sayımı <ol><li> Fiji görüntü dosyasını açın, Dosya -&gt; Aç. </li><li> &gt; Ayarlayın ...-&gt; Eşik görüntü 8-bit formatına dönüştürebilirsiniz Gerekirse, Görüntü gitmek. </li><li> Böylece sadece koloniler tespit non-spesifik arka plan seviyesini düşürmek için eşik ayarlayın. </li><li> Aşağıdaki kullanarak kolonilerin sayısı: Proses -&gt; Binary -&gt; maxima bul. </li></ol> Bu görüntü formatı için, gürültü toleransı 0 olarak ayarlanır. O ışık arka plan seçeneği işaretli olduğundan emin olun vetespit maxima önizleme tüm hücre kolonileri doğru kayıtlı olup olmadığını kontrol edin.

<ol><li>Puck, T. T., Marcus, P. I. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Action+of+x-rays+on+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J+Exp+Med%22%5BJournal%5D)">Action of x-rays on mammalian cells.</a> J Exp Med. 103, 653-666 (1956).</li>
<li>Hurlin, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progression+of+human+papillomavirus+type+18-immortalized+human+keratinocytes+to+a+malignant+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Proc+Natl+Acad+Sci+U+S+A%22%5BJournal%5D)">Progression of human papillomavirus type 18-immortalized human keratinocytes to a malignant phenotype.</a> Proc Natl Acad Sci U S A. 88, 570-574 (1991).</li>
</ol>

Bu örnekte, 100 mcg / ml CPF insan FEP-1811 keratinositler çeşitli konsantrasyonlarda ile tedavi edildi; veriler 37 1 saat için 20 mg / ml CPF ° C için gösterilen Ardından tedavi hücreleri 137 Cs kaynak (Nordion Uluslararası, ON, Kanada; 1.6 Gy / dk Gammacell 1000 Elite ışınlama) kullanılarak 4 Gy ışınlanmış. Tedavi edilmemiş ve ilaç tedavileri 100 hücre kontrolü için her bir petri kaplama ve çanak başına 1000 hücreleri ışınlanmış örnekler için kaplanmıştır. Yukarıdaki tabloda belirtildiği gibi, koloniler ste...

<table><tbody><tr><td>Keratinosit serumsuz besiyeri</td><td>Büyütme besiyeri</td><td>Invitrogen</td><td>17005042</td><td>2mM L-glutamin, 20&amp;#x03BC;g/ml gentamisin, epidermal büyüme faktörü ve sığır hipofiz ekstresi ile takviye edilmiştir.</td></tr><tr><td>Trypsin-EDTA</td><td></td><td>Invitrogen</td><td>15400-054</td><td>Adherent hücreleri ayırmak için %0,05 tripsin / EDTA; Ca&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt;/Mg&lt;sup&gt;2+&lt;/sup&gt; içermeyen PBS ile seyreltilmiş 10 kat stok çözelti.</td></tr><tr><td>Dulbecco&amp;rsquo;s modifiye esansiyel besiyeri</td><td>Büyütme besiyeri</td><td>Invitrogen</td><td>11885-084</td><td>%10 FBS ve 20&amp;#x03BC;g/ml gentamisin ile takviye edilmiştir; tripsin/EDTA'yı nötralize etmek için kullanılır.</td></tr><tr><td>%0,09'luk Salin</td><td>Çözelti</td><td></td><td></td><td>Kolonileri yıkamak için kullanılır.</td></tr><tr><td>%10 Nötral tamponlu formalin çözeltisi</td><td>Çözelti</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>HT501128</td><td>~%4 formaldehit; kolonileri tespit etmek için kullanılır.</td></tr><tr><td>Kristal viyole</td><td>Toz</td><td>SPI Supplies</td><td>02577-MB</td><td>dH&lt;sub&gt;2&lt;/sub&gt;O içinde hazırlanmış %0,01'lik kristal viyole çözeltisi, kolonileri boyamak için kullanılır.</td></tr><tr><td>Gammacell 1000 elite ışınlatıcı</td><td></td><td>Nordion International Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Petri kapları</td><td>60 x 15 mm</td><td>Falcon BD</td><td>353002</td><td></td></tr><tr><td>Hemositometre</td><td></td><td>Hawksley; Medical and Laboratory Equipment</td><td>AC1000</td><td></td></tr><tr><td>Klonlama kutusu</td><td></td><td></td><td></td><td>Kapağın karşıt taraflarında delikler bulunan plastik kutu; koloni oluşumu için uzun süreli inkübasyon sırasında petri kaplarını saklamak için kullanılır.</td></tr><tr><td>Stereomikroskop</td><td>Tip 102</td><td>Nikon Instruments</td><td></td><td>&amp;gt;50 hücreden oluşan kolonileri saymak için kullanılır.</td></tr></tbody></table>

clonogenic testi: yapışkan hücreler

Clonogenic Assay: Adherent Cells

Clonogenic (ya da koloni oluşturan) testinin, 50 yılı aşkın kurulmuştur; 1956 1 tekniğini anlatan orijinal kağıt yayımlandı. Yöntemini belgeleyen dışında, ilk dönüm noktası çalışma kültürü 1 X-ray ışınlanmış memeli (HeLa) hücreleri için ilk radyasyon doz yanıt eğrisi oluşturulur. Kontrolü tedavi edilmezse hücreleri ve bu tür maruz kalma gibi değişik işlemlerden geçirilmiş hücreleri arasında; Temelde, clonogenic testi üreme canlılığı farklılıkları (50 veya daha fazla hücre bir koloni oluşturmak için tek bir hücre yani döl hücreleri kapasitesi) bir değerlendirme sağlar radyasyon iyonize, çeşitli kimyasal bileşikler (örneğin sitotoksik ilaçlar) ya da diğer durumlarda genetik manipülasyon. Tahlil radyasyon biyolojisi en yaygın kabul gören bir tekniği haline gelmiştir ve farklı hücre hatları radyasyon duyarlılığı değerlendirmek için yaygın olarak kullanılır olmuştur. Ayrıca, clonogenic testi yaygın radyasyon değiştirerek bileşiklerin etkinliğinin izlenmesi ve koloni oluşturan farklı hücre hatları yeteneği, sitotoksik ajanlar ve diğer anti-kanser tedavileri etkileri belirlemek için kullanılır. Yapışık hücrelere hatları ile tipik bir clonogenic hayatta kalma deney koloniler tespit ve boyama üç farklı bileşenleri, 1), doku kültürü şişeler, hücre monolayer tedavisi, 2) tek bir hücre süspansiyonlarının hazırlanması ve uygun bir hücre sayısı petri kaplarına ve 3 kaplama) içerir. ilgili bir kuluçka dönemi sonrası, hangi hücre hattı bağlı olarak, 1-3 hafta arasında olabilir. İşte biz, bir ölümsüzleştirdi insan keratinosit hücre hattı kullanımı (FEP-1811) 2 ile yapışık hücre hatları ile clonogenic tahlil yapmak için genel prosedürü göstermektedir . Ayrıca, bizim hedeflerimize hücreleri radyasyona maruz kaldıktan sonra kaplama verimliliği ve hayatta kalma fraksiyonları hesaplama da dahil olmak üzere clonogenic testlerinin ortak özelliklerini tanımlamak ve doğal bir antioksidan formülasyonu kullanımı ile radyasyon cevap modifikasyonu örneklemek için.

50 yıldan fazla üreme canlılığını değerlendirmek için clonogenic testin uygulanabilirliği için kurulmuştur. Burada yapışık hücrelere clonogenic tahlil yapmak için genel prosedür göstermektedir.

Clonogenic Testi: yapışkan Hücreler

Klonojenik (veya koloni oluşturma) analiz yöntemi 50 yılı aşkın bir süredir kullanılmaktadır; tekniği tanımlayan orijinal makale 1956 yılında yayınlanmıştır1. ...

Merhaba, benim adım Lum ve şu anda Epigenomik Tıp Laboratuvarı'nın başkanı olan Dr. Tom Carianne'in danışmanlığında BE IDI Kalp ve Diyabet Enstitüsü'nde doktora çalışmalarımı yürütüyorum. Bu videoda, Klonojenik Sağkalım Analizi olarak bilinen prosedürü göstereceğim. Bu, radyasyona veya kimyasal ajanlara maruz kalma gibi farklı tedavilerin hücresel reprodüktif canlılık üzerindeki etkilerinin değerlendirilmesine olanak tanıyan 50 yıllık bir tekniktir.Konjenik sağkalım analizi, farklı hücre hatlarının radyasyon duyarlılığını değerlendirmek ve farklı radyoprotektif veya radyosensitize edici bileşiklerin etkinliğini test etmek için radyasyon biyolojisinde kullanılan temel bir tekniktir. Adherent bir hücre hattı kullanıldığında, kriyojenik sağkalım analizi üç aşamadan oluşur. İlk olarak, adherent hücrelerin monokatmanının uygulanacak işleme tabi tutulması.İkinci olarak, tek hücre süspansiyonunun hazırlanması, bilinen sayıda hücrenin ekilmesi ve kapların boyanması; üçüncü olarak ise boyama, sayım ve bir inkübasyon süresinin ardından oluşan kolonilerin değerlendirilmesi işlemleri gerçekleştirilir. Bu videoda, doğal bir antioksidanın radyoprotektif özelliklerini belirlemek için poligenik Bible assay yönteminin nasıl kullanılabileceğini göstermek amacıyla ölümsüzleştirilmiş insan sinosit hücrelerini kullanacağım. Deney gününde flask başına 1 milyon hücre olması için, önceden beş ml besiyeri içeren 25 ml'lik flasklara hücreler ekilmiştir.Gerekli konsantrasyonu elde etmek için, uygun şekilde etiketlenmiş her bir flasktaki beş ml besiyerine farklı konsantrasyonlarda 50 µL ilaç eklenir; bu durumda beş farklı konsantrasyonun yanı sıra araç kontrol olarak PBS kullanılır. İlaç eklendikten sonra hücreler, kullanılan hücre hattı için uygun koşullarda bir saat boyunca inkübe edilir. İnkübasyon sonrası, kontrol grubu hariç tüm flasklar, bu örnekte gama ışını yayan bir sezyum kaynağı tarafından üretilen dört Gy seçilen dozda ışınlanır.Işınlama sonrası, besiyerleri dökülür ve her bir flask beş dakika boyunca iki ml PBS ile yıkanır. PBS döküldükten sonra, flasklara yapışmış hücreleri ayırmak için her bir flaska iki ml %0,05 tripsin eklenir. Ardından, tripsini inaktive etmek için her bir flaska %10 fetal bovine serum içeren beş ml DMEM eklenir.Ardından, flask içeriğinin tamamı etiketlenmiş 10 mililitrelik falcon tüplerine aktarılır. İşlem tamamlandığında, bu tüpler beş dakika boyunca santrifüj edilir; sonrasında süpernatant, pelleti rahatsız etmeden dikkatlice uzaklaştırılır ve her tüpe beş mililitre crecy medyumu eklenir. Her örnek için hücre konsantrasyonu hesaplanır ve her örnekten, her biri beş mililitre medyum içeren örnek başına beş Petri kabına ekilecek hücrelerin nihai konsantrasyonuna ulaşmak için gereken hacim belirlenir.Örneğin, kontrol grubu için kap başına 100 hücre ekilir; bu nedenle, 25 mililitrede 500 hücreye ulaşmak için gereken hacim hesaplanır. Daha konsantre örnekler için, 100 mikrolitrenin altındaki hacimler kullanılırken oluşabilecek hataları en aza indirmek amacıyla 10 kat seyreltme veya 100 kat seri seyreltme işlemi gerçekleştirilir. Ardından, her örnek için önceden hesaplanan hacim, 25 mililitre besiyeri içeren bir Falcon tüpü içerisinde hazırlanır. Örnekler, daha kolay taşıma ve işlem yapabilmek adına her bir kaba beş mililitre eklenecek şekilde, önceden etiketlenmiş kaplara aktarılabilir.Kapları büyük, steril veya dezenfekte edilmiş bir kapta saklayın. Kaplar daha sonra uygun koşullarda nemlendirilmiş bir inkübatöre yerleştirilir ve sekiz gün boyunca inkübe edilir. Sekiz gün sonra keratinositler kullanılacaksa, kapları dikkatlice inkübatörden çıkarın ve bir çeker ocak içerisinde her birini tek tek yan yana dizin.Oluşmuş olan kolonilerin bozulmaması için plağı nazikçe tutmaya dikkat edin. Kapakları çıkarın ve yıkama yapmak için her bir kaba beş ml %0.9 saline ekleyin. Hazırlama ucunu kabın köşesine doğru yönlendirin ve kolonilerin yanlışlıkla sıyrılıp kalkmasını önlemek için kabın tabanına değdirmekten kaçının.Beş dakika sonra, salini dikkatlice aspire edin. Şimdi, koloniler 3 mL %4'lük formül ile fikse edilir ve buharlaşmayı önlemek için kapaklar kapatılmalıdır. 15 dakika ile yarım saat arasında, formül aspire edilir ve uygun şekilde imha edilir.Koloniler artık %0,1 Kristal viyole ile boyanmaya hazırdır; her bir petriye beş mililitre eklenir ve yarım saat ile bir saat sonra kapaklar kapatılır. Ardından boya, distile su ile yıkanarak temizlenir, petri kapları ters çevrilir ve gece boyunca kurumaya bırakılır. Koloniler artık sayılmaya hazırdır.Koloniler, bir diseksiyon mikroskobu kullanılarak manuel olarak sayılabilir. 50 veya daha fazla hücre içeren her hücre kümesi bir koloni olarak kabul edilir. Böylece Konjenik sağkalım testi gösterimimizi tamamlamış olduk.Bu analizin diğer tekniklere göre temel avantajı, inanılmaz derecede hassas olması ve altı logluk hücre ölümü sonrası bile geniş bir aralıktaki sağkalımı tespit edebilmesidir. Bu hassasiyet, daha fazla sayıda hücre ekilerek sağlanır. Bu analiz, sitotoksisite testi gibi diğer amaçlar için de kolaylıkla kullanılabilir.İzlediğiniz için teşekkürler.

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Bu video protokolü iyi niyetli nöral kök hücreler nöral prekürsör hücrelerin koloni oluşturan nöral hücre çalışması ile oluşan karışık bir nüfus nasıl ayrımcılık ve numaralandırmak göstermektedir.

Hücre Testi Şekillendirme Sinir-Koloni: Sinir Progenitör Hücreler Bona Fide Sinir Kök Hücreler Ayırım Bir Testi

Bu protokol, kültür hücreleri üzerine yapıştırılır birimler oluşturan bakteri kolonisi sayısının sayma oluşan basit bir bakteriyel yapışma testtir. Testin sağlam, adhesin bağımsız olarak okudu ve çeşitli varyasyonlar bakteriyel patogenezi üzerinde çalışan çoğu laboratuvarlarda kullanılır.

Bakteriyel Yapışma Memeli Epitel Hücreleri üzerine In Vitro Testi

Bu videoda, akciğer kanseri hücrelerinin süresiz olarak çoğalma ve bireysel koloniler oluşturma yeteneğini belirlemeye yardımcı olan koloni oluşumu testi açıklanmaktadır. Bir antikanser ajanının koloni oluşturan hücreler üzerindeki etkisini, ortaya çıkan kolonilerin sayısındaki ve/veya boyutundaki değişiklikleri analiz ederek analiz edebiliriz.

Koloni Oluşumu Deneyi: Antikanser Ajanların Koloni Oluşturan Akciğer Kanseri Hücreleri Üzerindeki Etkinliğinin Değerlendirilmesi

Bu videoda, tek tek hücrelerin çoğalma ve koloniler oluşturma yeteneğini belirlemek için yetişkin farelerden toplanan keratinositlerin klonojenik bir tahlilini gerçekleştiriyoruz. Bu keratinosit toplama tekniği, kutanöz kimyasal karsinogenez ve tümör tanıtımının diğer alt yönlerini incelemek için yararlıdır.

Keratinosit Koloni Oluşum Deneyi: Keratinositlerin Kolonilere Dönüşme Yeteneğini Değerlendirmek İçin Bir İn Vitro Test

Östrojene duyarlı meme kanseri hücreleri için kemik iliğinde in vitro bir uyku hali modeli geliştirdik. Bu protokolün amacı, uyku halinin moleküler ve hücresel biyolojisinin incelenmesi ve daha sonraki in vivo testler için hipotezlerin üretilmesi için modelin kullanımını göstermektir.

Bir<em&gt; In Vitro</em&gt; Kemik İliği östrojen duyarlı Meme Kanseri Dormansi Model: Moleküler Mekanizması Çalışmaları ve Hipotez Üretimi için A Takım

Nöral kök hücreler (NSC'lerde) kendini yenilemek ve üç sinir soy içine ayırt edebilirsiniz hücrelere bakın. Burada, klonal koşullarda neurosphere oluşumu ve farklılaşmayı kullanarak belirli bir hücre popülasyonu MGK sıklığını belirlemek için bir protokol açıklar.

Nöral Kök Hücre Sayım klonal Tahliller Kullanma

Yeşil floresan protein ve lusiferaz muhabir ifade lentiviral parçacıklar ile hasta edilen ksenograftlan (PDXs) sabit etiketlenmesi için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu yöntem, birinci bölgede PDXs büyümesini izlemek, hem de in vivo görüntüleme sistemleri kullanarak kendiliğinden ve deney metastazları sağlar.

Tümör Büyüme ve metastaz Çalışmaları İzlenebilir Muhabirleri ile Meme Kanseri Hasta kaynaklı ksenogratflarının Etiketleme

Burada fare embriyonik gelişim sırasında hematopoetik kök hücre öncüleri klonal analizi için metodoloji mevcut. Endotel hücre ortak kültür ve fenotipik özellikleri ve tek hematopoetik öncüleri potansiyelini engraftment karakterize nakli ile embriyonik aort-erbezi-mesonephros bölgesinden tek hücre dizin sıralama birleştirin.

Embriyonik hematopoetik kök hücre öncüleri endotel hücre niş ortak kültürü ile kombine sıralama tek hücre dizini kullanarak klonal analizi

İyon kanallarının farmakolojik olarak hedeflenmesi, solid tümörlerin tedavisinde umut verici bir yaklaşımdır. Kanser hücrelerinde iyon kanalı fonksiyonunu karakterize etmek ve iyon kanalı modülatörlerinin kanser canlılığı üzerindeki etkilerini test etmek için ayrıntılı protokoller sağlanmıştır.

Kanser Hücrelerinde İyon Kanallarının Taranması

6 plaka mekansal ve zamansal oksijenasyonu üzerinden gelişmiş kontrol imkanı sağlayan bir add-on bir platform imalatı ve doğrulama. Cihaz bir dizi kültür sistemleri uyarlanabilir ve yara iyileşmesi üzerine oksijen etkilerini araştırmak amacıyla kullanılabilir.

İmalat ve Operasyon yapışkan Hücresel Kültürler Oksijen Ekle

Öğrenin, yapışkan hücrelerde klonojenik test yöntemiyle hücresel üreme canlılığını değerlendirmeyi. Bu teknik, radyasyon ve kimyasal ajanların etkilerini analiz ederek radyasyon biyolojisinde temel bir araçtır.

Clonogenic Testi: yapışkan Hücreler

Daha fazla video keşfet