Name: Safen Ven ve Kardiyak Delinme Ratlarda Kan Alma (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-08-23T00:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 27 s
Description: Öğrenin, sıçanlarda safen ven ve kardiyak delinme yöntemleriyle kan alma tekniklerini. Farmakokinetik çalışmalar için minimal anestezi gerektiren bu yöntemler, etik hayvan araştırmalarına katkı sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Safen Ven ve Kardiyak Delinme Ratlarda Kan Alma Not: Tüm işlemler enstitünün hayvan bakımı ve kullanımı komitesi tarafından onaylanmış olmalıdır. 1. Safen ven Kan berabere <ol><li> Bu işlemi anestezi verilmeden yapılan ve iki kişilik, sıçan kolları ve beraberlik yapar gerektirir. </li><li> Bir koni bir havlu veya bir arka bacak maruz bırakarak, kemirgen taşıma eldivenleri ile sıçan tutun. </li><li> Safen ven görünür oluncaya kadar bir elektrik düzeltici bacak arka Tıraş. Hiç saç ponksiyon site ile temas gelecektir ki, yeterince büyük bir alan tıraş. Ponksiyon sitesinden olmayan saçları tıraş uzakta tutmak için küçük bir miktar olmayan kokulu el losyonu kullanın. </li><li> Safen ven çıkıntı (bir insan veya büyük hayvan kan çizerken bir turnike kullanarak benzeri) yapmak için bacak üssünde bir sıkıştırma noktasına olun. Delinme 20G iğne ile ven ve kan kepçe microvette kullanarak çıkar. Bacak ile daha fazla kan pompalanması çekmek yardımcı olacaktır. Yeterli kan toplandığı zaman, kanamayı durdurmak için temiz bir kompres ponksiyon sitesinde tutun. </li></ol> 2. Kan beraberlik kalp ponksiyon <ol><li> Bu işlem anestezi gerektirir ve terminal. Hayvanlar hemen bir kardiyak ponksiyon sonunda ötenazi olmalı. </li><li> 23G1 bir iğne ile 5 ml şırınga hazırlayın. </li><li> Derinden sıçan anesthesize ve spontan hareket eksikliği, yavaş solunum hızını ve uyaranlar (ayak kısma gibi) yanıt eksikliği anestezi için onay. Uzun süreli anestezi sağlamak için, işlem sırasında sıçan burun volatil anestetik batırılmış kağıt havlu içeren bir şırınga varil yerleştirin. </li><li> Size dönük sırtında sıçan, yerleştirin. </li><li> Sağ elini iseniz, herhangi bir baskı uygulamadan, en düşük kaburga düzeyinde sol işaret parmağı yerleştirin. Kalp bu noktada yukarıda ~ 1 cm, biraz sağa doğru yer alacaktır. </li><li> 45 derecelik bir açıyla şırınga Holding, iğne haline gelmek için kan bir damla, iki kaburga ve saat arasında iğne takın. Bu kalp olduğunu bir göstergesidir. Şırınga hareket olmadan, şırınga doldurmak için pistonu çekiniz. Sonra şırınga tam, iğne dikkatlice kesin ve bir tüp içine boşaltın. Sonra daha fazla kan çizmek için şırınga, iğne yeniden eklenmiş olabilir. 120-180 g sıçan 5-10 ml kan çekmek mümkün olmalıdır. </li><li> Hemen sıçan euthanize. </li></ol>

<ol><li>Van Herck, H., Baumans, V., Brandt, C. J. W. M., Boere, H. A. G., Hesp, A. P. M., Van Lith, H. A., Schurink, M., Beynen, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sampling+from+the+retro-orbital+plexus%2C+the+saphenous+vein+and+the+tail+vein+in+rats%3A+comparative+effects+on+selected+behavioural+and+blood+variables%5BTitle%5D)+AND+%22Laboratory+Animals%22%5BJournal%5D)">Blood sampling from the retro-orbital plexus, the saphenous vein and the tail vein in rats: comparative effects on selected behavioural and blood variables.</a> Laboratory Animals. 35, 131-139 (2001).</li>
<li>Luzzi, M., Skoumbourdis, E., Baumans, V., Conte, A., Sherwin, C., Kerwin, A., Lang, T., Morton, D., Barley, J., Moreau, E., Weilenmann, R. F., Reinhardt, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collecting+blood+from+rodents%3A+a+discussion+by+the+laboratory+animal+refinement+and+enrichment+forum%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Technology+and+Welfare%22%5BJournal%5D)">Collecting blood from rodents: a discussion by the laboratory animal refinement and enrichment forum.</a> Animal Technology and Welfare. 4, 99-102 (2005).</li>
<li>Angelow, O., Schroer, R. A., Heft, S., James, V. C., Noble, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+comparison+of+two+methods+of+bleeding+rats%3A+the+venous+plexus+of+the+eye+versus+the+vena+sublingualis%5BTitle%5D)+AND+%22Jounal+of+Applied+Toxicology%22%5BJournal%5D)">A comparison of two methods of bleeding rats: the venous plexus of the eye versus the vena sublingualis.</a> Jounal of Applied Toxicology. 4, 258-260 (2006).</li>
<li>Beeton, C., Wulff, H., Barbaria, J., Clot-Faybesse, O., Pennington, M., Bernard, D., Cahalan, M. D., Chandy, K. G., Beraud, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+blockade+of+T+lymphocyte+K%2B+channels+ameliorates+experimental+autoimmune+encephalomyelitis%2C+a+model+for+multiple+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad%22%5BJournal%5D)">Selective blockade of T lymphocyte K+ channels ameliorates experimental autoimmune encephalomyelitis, a model for multiple sclerosis.</a> Proc. Natl. Acad. , 13942-13947 (2001).</li>
<li>Beeton, C., Pennington, M. W., Wulff, H., Singh, S., Nugent, D., Crossley, G., Khaytin, I., Chen, C. Y., Calabresi, P. A., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+effector+memory+T+cells+with+a+selective+peptide+inhibitor+of+Kv1.3+channels+for+therapy+of+autoimmune+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Pharmacol%22%5BJournal%5D)">Targeting effector memory T cells with a selective peptide inhibitor of Kv1.3 channels for therapy of autoimmune diseases.</a> Mol. Pharmacol. , 1369-1381 (2005).</li>
<li>Beeton, C., Wulff, H., Standifer, N. E., Azam, P., Mullen, K. M., Pennington, M. W., Kolski-Andreaco, A., Wei, E., Grino, A., Counts, D. R., Wang, P. H., LeeHealey, C. J., Andrews, B. S., Sankaranarayanan, A., Homerick, D., Roeck, W. W., Tehranzadeh, J., Stanhope, K. L., Zimin, P., Havel, P. J., Griffey, S., Knaus, H. G., Nepom, G. T., Gutman, G. A., Calabresi, P. A., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Kv1.3+channels+are+a+therapeutic+target+for+T+cell+mediated+autoimmune+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+USA%22%5BJournal%5D)">Kv1.3 channels are a therapeutic target for T cell mediated autoimmune diseases.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. USA. , 17414-17419 (2006).</li>
<li>Beeton, C., Barbaria, J., Devaux, J., Benoliel, A. -M., Gola, M., Sabatier, J. -M., Bernard, D., Crest, M., Beraud, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Selective+blocking+of+voltage-gated+K%2B+channels+treats+experimental+autoimmune+encephalomyelitis+and+inhibits+T-cell+activation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Selective blocking of voltage-gated K+ channels treats experimental autoimmune encephalomyelitis and inhibits T-cell activation.</a> J. Immunol. , 936-944 (2001).</li>
<li>Devaux, J., Forni, C., Beeton, C., Barbaria, J., Beraud, E., Gola, M., Crest, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myelin+basic+protein-reactive+T+cells+induce+conduction+failure+in+vivo+but+not+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Myelin basic protein-reactive T cells induce conduction failure in vivo but not in vitro.</a> Neuroreport. , 317-320 (2003).</li>
<li>Beeton, C., Chandy, K. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Induction+and+monitoring+of+adoptive+delayed+type+hypersensitivity+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Induction and monitoring of adoptive delayed type hypersensitivity in rats.</a> Journal of Visualized Experiments. 8, (2007).</li>
</ol>

Safen ven kan Çizim anestezi olmadan küçük miktarda kan almak için uygun bir yoldur. Tekrarlanan örnekleme gerekiyorsa, bir sıçan çok fazla kan çizmezseniz sağlamak için düzenlemeler kontrol edin. Kalp ponksiyonu ile kan Çizim büyük miktarda kan almak için uygun bir yoldur ama bu bir terminal işlemdir. Hayvan kan beraberlik sonunda ötenazi olmalı. Bu teknikler (canlı hayvanlar üzerinde yapılan tüm teknikler gibi), ilk hayvanların doğru işlenir ve gereksiz ağrı ve / veya sıkıntı tabi olmadığını değerlendirmek mümkün olacak bi...

<table><tbody><tr><td>20G 1/2 İğne</td><td>Araç</td><td>BD Biosciences</td><td>305176</td><td>Safen venini delmek için</td></tr><tr><td>Microvette 300</td><td>Araç</td><td>Sarstedt Ltd</td><td>20.1308.100</td><td>Safen veninden kan toplamak için</td></tr><tr><td>Elektrikli tüy kırpma makinesi</td><td>Araç</td><td>Braintree Scientific, Inc.</td><td>CLP-32130</td><td></td></tr><tr><td>23 G 1 İğne</td><td>Araç</td><td>BD Biosciences</td><td>305145</td><td>Kardiyak ponksiyon için</td></tr><tr><td>5 ml plastik şırınga, slip uçlu</td><td>Araç</td><td>Fisher Scientific</td><td>14-826-12</td><td>Kardiyak ponksiyon için</td></tr></tbody></table>

safen ven ve kardiyak delinme ratlarda kan alma

Drawing Blood from Rats through the Saphenous Vein and by Cardiac Puncture

Kemirgenler gelen kan Çizim, hem de çok sayıda in vitro ve in vivo çalışmalar gerekli. Kan Siteleri kemirgenlerde çoktur çizer: retroorbital sinüs, juguler ven, maksiller ven, safen ven, kalp. Her tekniğin avantajları ve dezavantajları vardır ve bazılarında (örneğin, retro-orbital çekiyor Hollanda), bazı ülkelerde daha fazla uygun değildir. Çizim kan için farklı teknikler bir tartışma 1-3. Burada, sıçanlarda kan çizmek için her iki teknikleri, kendine özgü uygulamaları ile sunuyoruz. , Düzgün bir şekilde yapılır safen ven kan beraberlik, hayvanlarda en az sıkıntı neden olur ve anestezi gerektirmez. Bu teknik, tekrarlanan plazma kimyası, ya da kan sayımı 6 belirlenmesi, 4,5 farmakokinetik çalışmalar için gerekli gibi, az miktarda kan çekiyor sağlar . Kardiyak ponksiyon tek bir hayvan, kan, büyük miktarda (10 ml kadar kan toplanması 150 g sıçan çizilebilir) yapılmasını sağlar. Bu teknik, bu nedenle kan safen çizerken, yeterince büyük bir örnek teşkil etmeyecektir bir terminal prosedür olarak çok yararlıdır. Sıçanlarda belirli bir zorlanma, in vitro 4-9 T lenfosit hatları büyümeye yeterli miktarda serum ihtiyacınız olduğunda kalp ponksiyon kullanın .

Kan gerekli çalışmalar çok sayıda beraberlik, örneğin bir bileşiktir farmakokinetik profili çalışma. Safen ven veya kalp ponksiyonu ile kan alımından: Burada iki teknikleri kullanılarak sıçanların kan çekmek için nasıl göstermektedir.

Safen Ven ve Kardiyak Delinme Ratlarda Kan Alma

Kemirgenlerden kan alma işlemi, çok sayıda in vitro ve in vivo çalışma için gereklidir. Kemirgenlerde kan alma bölgeleri çeşitlidir: ...

Merhaba, ben Christine Beaton. California Üniversitesi Irvine'deki Fizyoloji ve Biyofizik Bölümü'nde George Chen'in laboratuvarında araştırma görevlisiyim. İzlemek üzere olduğunuz videoda, laboratuvardaki lisansüstü öğrencisi Adriana Garcia'nın yardımıyla sizlere eşlik edeceğiz.Sizlere sıçanlardan kan alma için iki teknik göstereceğim. İlk olarak göstereceğimiz teknik, safen veninden kan alma yöntemidir. Bu teknik, anestezi uygulamadan sıçanlardan küçük miktarlarda kan almak istediğinizde oldukça kullanışlıdır.Örneğin, az miktarda kan gerektiren ancak düzenli aralıklarla alınan bir farmakokinetik çalışma yürütüyorsanız bu yöntem uygundur. Size göstereceğimiz ikinci teknik ise kardiyak ponksiyon ile kan alma işlemidir. Bu terminal bir tekniktir, dolayısıyla kan alma işleminin sonunda sıçanın sakrifiye edilmesi gerekir.Ancak bu tekniğin avantajı, size çok daha yüksek miktarlarda, birkaç mililitre kan sağlayabilmesidir. Alanı hazırladıktan sonra, tüpün içine tüy kaçmasını ve kanın pıhtılaşmasını önlemek amacıyla genellikle standart bir cilt losyonu süreriz. Ardından başparmağım ile venin hafifçe belirginleşmesi için bir noktaya baskı uygulayacağım; bu sırada Adriana veni ponktüre edec

drawing-blood-from-rats-through-saphenous-vein-cardiac

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Sıçanlarda kan damarlarının Kronik kateterizasyon sık sık bir süre üzerinden veya direkt bilinçli bir kan basıncı ölçümü için kan örneği almak, maddelerin yönetimi için gereklidir. Sıçan ve ilgili bilinçli hayvan kan basıncı ölçümleri Femoral arteriyel kateterizasyon gösterilmelidir.

Kan Örnekleme, İlaç İdaresi ve Bilinçli Kan Basıncı ve Nabız ölçümleri Femoral Arter ve Venöz Kateterizasyon

Kan örnekleri, in vivo fizyolojik durumların veya hastalıkların biyobelirteçlerini değerlendirmek için yararlıdır. Burada, sıçandaki lateral kuyruk damarından kan örneği almak için metodolojiyi açıklıyoruz. Bu yöntem, minimum ağrı ve invazivlik ile hızlı numuneler sağlar.

Rat Yanal Kuyruk Ven gelen Kan Örnekleme

Burada, bir vakum ekstraksiyon tüp sistemi kullanarak olmayan anestezi Sıçanlarda basit kuyruk damar kan örnekleme yöntemi açıklanmaktadır. Bu yöntem kan doğrudan maruz kalma riskini azaltır ve tek bir iz birden çok örnekleri alarak basitleştirir.

Kuyruk damar anestezi sıçan bir vakum kan toplama sistemi ile kan koleksiyonundan tekrarlanan

Burada, sıçan subklaviyan ven kan örnekleri toplamak için bir protokol mevcut.

Subklaviyan ven ponksiyon kan örnek fareleri koleksiyonunda alternatif bir yöntem olarak

Aynı hayvanda sıralı kan alımı için daha uzun süreli juguler ven kanülasyon sıçanı modeli oluşturmak için ayrıntılı mikrocerrahi teknikler gösterilmiştir. Sıçanın iyileşme aşamasında fizyolojik ve hematolojik parametreler izlenmiştir. Bu model, hayvan stresine neden olmadan oral yoldan uygulanan polifenolün farmakokinetiğini incelemek için uygulanmıştır.

Oral Yoldan Verilen İlacın Seri Kan Örneklemesi için Sıçanlarda Kalıcı Juguler Ven Kanülasyonu Oluşturma Mikrocerrahi Becerileri

Mevcut protokol, mikrodiyaliz tekniğini kullanarak sıçan kalp kanının gerçek zamanlı ve dinamik olarak toplanması için basit ve etkili bir yöntemi tanımlamaktadır.

Noninvaziv Mikrodiyaliz Tekniği ile Sıçan Kalbinden Dinamik Sürekli Kan Ekstraksiyonu

Burada, sıçan modeli için hızlı, kolay ve güvenilir kan alma alternatifleri sunmak için bir protokol sunuyoruz. Bağlama göre üç farklı kan örnekleme yöntemini tanımlıyoruz: anestezi altında veya bilinçli bir hayvanda kuyruk damarı delinmesi ve anestezi altında dorsal penil ven delinmesi.

Sıçan Modelinde Kan Örneklemesi için Modifiye Kuyruk Veni ve Penil Ven Delinmesi

Burada, sıçanlarda anestezi olmadan hızlı, güvenli ve tekrarlanan kan alımını sağlayan etkili sıçan kısıtlaması ve subklavyen ven ponksiyon yöntemlerinin bir kombinasyonunu sunuyoruz.

Bilinçli Sıçanlarda Subklavyen Ven Kan Örneklemesi

Subklavian kardiyak ponksiyon, farelerde terminal kan toplamak için basit ve güvenilir bir yöntemdir. Kullanımı kolaydır ve yüksek saflıkta örnekler sağlar.

Farelerde Subklavian Ponksiyon Yoluyla Kalp Kan Toplama

Doğal katil hücreler, lenfosit küçük bir nüfus. Burada StemCell Teknolojileri kit kullanarak, bu hücrelerin insan kanı negatif seleksiyon tarafından nasıl izole etmek göstermektedir. Elde edilen hücreler, bu nedenle bir takım prosedürler için kullanılacak hazır antikorlar tarafından uygulanabilir ve bakir, ve.

İnsan Kanı StemCell Teknolojileri RosetteSep Kit ile gelen NK Hücreleri zenginleştirilmesi

Öğrenin, sıçanlarda safen ven ve kardiyak delinme yöntemleriyle kan alma tekniklerini. Farmakokinetik çalışmalar için minimal anestezi gerektiren bu yöntemler, etik hayvan araştırmalarına katkı sağlar.

Safen Ven ve Kardiyak Delinme Ratlarda Kan Alma

Daha fazla video keşfet