Name: İmmünositokimya: İnsan Sinir Kök Hücreler (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2007-08-24T00:00:00.000+00:00
Duration: 19 min 41 s
Description: Öğrenin, insan sinir kök hücrelerinde immünositokimya tekniğini kullanarak antijen lokalizasyonunu analiz etmeyi. Bu yöntem, antikor kullanımını optimize ederek nörobilim araştırmalarında tekrarlanabilir sonuçlar sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar, Çocuk Hastanesi, Emory Üniversitesi&#39;nde hNSPC kültürler ve Dr. Gary Bassell parafilm boyama tekniği ilk öğretim sağlamak için Orange County Araştırma Enstitüsü Ulusal İnsan Nöral Kök Hücre Kaynak Dr. Philip H. Schwartz kabul etmek istiyorum.

1. Gün: Alman Cam lameller hazırlanması ve Seeding Hücreler Not: Alman cam lamelleri genellikle kültür birincil sinir kök hücreleri ve nöronlar için tercih edilir. Biz hücre yapışması ve yayılmasını geliştirmek için aşağıdaki temizleme protokolünü kullanır. Lamel her iki taraf için sıvı erişim sağlayacaktır küçük bir raf pozisyon lamelleri. İlk olarak, 10 dakika boyunca% 1 Liquinox inkübe lamelleri, deiyonize su ile 3 yıkar. Sabun köpükleri kalır emin olun. Sonra, 30 dakika boyunca inkübe fişleri 1M HCl, deiyonize su ile 3 yıkar. Kuru lamelleri 65 ° C geceleme. Sterilize etmek için bir bardak çanak ve otoklav lamelleri aktarın. <ol><li> Bir doku kültürü kaputu, uygun büyüklükte bir plaka steril lamelleri yerleştirin. </li><li> Hücre adezyon laminin ile Coat lamelleri. 10 mg / 5 dakika oda sıcaklığında ml steril su poli D-Lizin (PDL) inkübe edin lamelleri. 37 ° C doku kültürü inkübatör, bir gecede 4 saat, ya da için EMEM de 20 mikrogram / ml laminin PDL ve inkübe lamelleri çıkarın. <ol><li> Not: Pasajlanması İnsan Nöral Kök Hücreler makale (bakın <a href="/index/Details.stp?ID=263">https://www.jove.com/index/Details.stp?ID=263</a> ) ve Sayım İnsan Nöral Kök Hücreler makale ( <a href="/index/Details.stp?ID=262">https://www.jove.com / index / Details.stp? ID = 262</a> hNSPCs tekrar süspansiyon ve saymak nasıl öğrenmek için). </li></ol></li><li> Her lamel içeren belirli bir yoğunluk (genellikle immün için kaplama olduğunu hücreler için 100,000-300,000 hücre / ml &#39;lik bir başlangıç ​​kaplama yoğunluğu), laminin PBS ve tohum hücreleri ile kaplı lamelleri durulayın. </li><li> 37 Place plaka hücreleri lamelleri (genellikle gerekli olan en az 4 saat) bağlı ° C doku kültürü kuvöz ve izin verir. </li></ol> 2. Gün: Sabitleme, Permeabilizing, engelleme ve Hücreler İlköğretim Antikor ekleme Not: Biz hücre morfolojisi korumak için aşağıdaki% 4 paraformaldehid fiksatif kullanın. Tarifi paraformaldehid çözüm içine gitmek için izin pH geçiş içerir. Formik asit, floresan kullanırken arka plan boyama artırabilir nesil yüksek sıcaklıklarda yol açabilir, çünkü bu yöntem yerine paraformaldehid çözmek için ısı kullanımı tercih ederler. Diğerleri genel morfolojisi (sukroz) korumak için yardım ederken fiksatif yardım bazı bileşenleri, iskelet yapısı (MgCl 2 ve EGTA) korumak için. Hücreler için% 4 Paraformaldehit Sabitleme <table style="border-collapse: collapse; border: medium none" border="1" cellspacing="0" cellpadding="0"><tbody><tr><td> Reaktifler ve adımları izleyin: </td><td> 100 ml için sabitleştirici Miktarı: </td></tr><tr><td> MilliQ su </td><td> 75 ml </td></tr><tr><td> Paraformaldehit (davlumbaz dışarı tartmak) </td><td> 4 g </td></tr><tr><td> 10N NaOH, karıştırın ve çözüm netleşene kadar damla damla ekleyin </td><td> gerektiği gibi </td></tr><tr><td> 10X PBS </td><td> 10 ml </td></tr><tr><td> 1M MgCl 2 </td><td> 0.5 ml </td></tr><tr><td> 0.5 M EGTA </td><td> 2 ml </td></tr><tr><td> Sakaroz </td><td> 4 g </td></tr><tr><td> 6N HCl, pH 7.4 ile titre </td><td> gerektiği gibi </td></tr><tr><td> MilliQ su </td><td> 100 ml getirmek </td></tr><tr><td colspan="2"> 1 hafta kadar 4 ° C&#39;de saklayın. 37 sıcak ° C kullanmadan önce </td></tr></tbody></table><ol><li> Bankta, medyayı çıkartın ve prewarmed fiksatif eklemek. 5-15 dakika (antijen tespit edilmesi bağlı olarak, biz genellikle 10 dakika) inkübe edin. Bu ve oda sıcaklığında aşağıdaki adımları uygulayın. </li><li> Pek çok kurum, tehlikeli atık olarak paraformaldehid sapı gibi, uygun bir kap içine fiksatif atın. Hücreleri PBS ile 3 kez, 5 dakika, her zaman yıkayınız. Hücrelerin çözüm çıkarırken, emme hücrelerin kurumasına olmadığını dikkatli olun. Ayrıca, her zaman kat onları böylece hücreleri kurumaya bırakılır değildir ki çözüm çıkarmadan önce hücre eklemek yandan sonraki çözüm var. </li><li> Ilgi antijen, hücre zarı, hücre içinde antikor girişine izin geçirgen hale gerekir ise. Hücreler permeabilize için, PBS içinde taze% 0.3 Triton X-100 çözümü kullanın. Pipet yavaş Triton viskoz, ve deterjanın tamamen hücrelere eklemeden önce PBS içinde çözülür emin olun çünkü. PBS, 5 dakika her zaman hücreleri 3 kez yıkanarak 5 dakika hücreleri, Permeabilize. </li><li> Hücreler non-spesifik antikor bağlanma önlemek için engelleyici bir ajan ile tedavi edilmelidir. Biz (BSA) engelleyici bir ajan olarak sığır serum albumin kullanın. (Bunu çözmek için zaman alır, çünkü bir rocker veya rotator) engelleme çözüm PBS% 5 BSA eriterek sonra sol filtreleme0.45 mikron şırınga filtresi ile ution. Oda sıcaklığında 1 saat süreyle% 5 BSA / PBS çözüm hücrelerin engelleyin. </li></ol> Primer antikor (umarım özel ilgi protein)% 1 önceden belirlenmiş bir konsantrasyona seyreltilir BSA / PBS (% 5 BSA / PBS seyreltme tarafından hazırlanan). Yeri parafilm ile kaplanmış bir cam plaka üzerinde birincil antikor (25 mm lamel başına 30 ul, 18 mm lamel başına 20 ul, 12 mm lamel başına 15 ul) seyreltilir. Hücre aşağı yüz, ve böylece hücrelerin antikor ile temas antikor çözüm üzerinde yattığını, invert sabit hücreleri ile lamel Pick up. Tüm yapı üzerinde ikinci bir parafilm şeridi yerleştirin. 4 ° C gece boyunca inkübe edin. 3. Gün: Yıkama, İkincil Antikor Kuluçka, Nükleer Leke ve Montaj <ol><li> Dikkatlice hücreler yukarı bakacak şekilde üst parafilm şerit kaldırmak ve lamel pick up, ters ve her iyi yıkama için PBS ile plaka içine geri koyun. </li><li> Hücreleri PBS ile 3 kez, 5 dakika, her zaman yıkayınız. </li><li> Birincil antikor tespit birincil antikor bir tavşan yapıldı örneğin, ikincil antikor tavşan IgG tanımalıdır ikincil bir antikor seçin. (IgG, IgM, vb.) Antikor izotip maç için özen gösterin. Multipl primer antikorlar kullanılarak, farklı türler veya isotypes ve ikincil antikorlar bağlı farklı belirleyicileri ile tespit etmek için planı emin olun. Örneğin, yeşil bir fluorofor bir anti-fare ikincil birleştiğinde kırmızı fluorofor bir anti-tavşan ikincil birleştiğinde kullanabilirsiniz. Ilköğretim için aynı tekniği kullanarak, karanlıkta, oda sıcaklığında 2 saat için% 1 BSA uygun bir konsantrasyon seyreltilmiş ikincil antikor çözüm hücreleri inkübe (video gösterilmeyen adımlar). Ikincil bir gliserol solüsyonu (25 mm lamel başına 40 ul, 18 mm lamel başına 30 ul, 12 mm lamel başına 25 ul) olarak saklanır, kuluçka için gerekli ikincil antikor hacmi birincil antikor için biraz daha büyük olabilir . <ul><li> Not: floresan moleküller ikincil antikor görselleştirmek için kullanıyorsanız, örnek ikincil antikor eklenmiştir sonra ışıktan korunması gerekir. Karanlık, ya da folyo kaplı plaka inkübe edin. </li></ul></li><li> Primer antikor açıklandığı gibi parafilm lamelleri dikkatlice çıkarın. Hücreleri, 2 mcg / ml Hoechst nükleer PBS içinde seyreltilmesi leke (bir nükleer counterstain tercih edilir) bir 1 dakika inkübasyon PBS ile 2 kez, her zaman 5 dakika yıkayınız. Hoechst leke eski ve sinyal çok zayıfsa, inkübasyon süresi ve / veya konsantrasyonu artırabilir. Hoechst ile inkübasyondan sonra, 5 dakika boyunca 1 kez PBS ile yıkayın. </li><li> Lamelleri mikroskop görünüm için montaj medya ile bir slayt monte edilmelidir. Ikincil antikor görselleştirme için kullanılan floresan molekül olduğu durumlarda, montaj medya photobleaching en aza indirmek için ajan içermelidir. Biz, floresan bir montaj medya olarak Vectashield kullanın. Bir mikroskop lamı (25 mm lamel başına 12 ul, 18 mm lamel başına 6 ul, 12 mm lamel başına 3 ul) Vectashield uygun bir boyut damla yerleştirin. </li><li> Lamel dikkatlice pick up ve arka tuzları (PBS) kaldırmak için deiyonize su ile durulayın. Kimwipe veya kağıt havlu üzerine aşırı su kapalı Dab ve aşağı bakacak hücreleri ile Vectashield açılan yatıyordu. Lamel bir açıyla yerleştirin ve yakalama hava kabarcıkları önlemek için yavaş yavaş inmeye izin. Tarih ve herhangi bir örnek bilgileri slayt etiketleyin. </li><li> Lamelleri ile slaytlar lamel kenarı etrafında (koyu) aşırı Vectashield kapalı sonra emme kurumasını bekleyin. Istenirse lamel kenarları (özellikle yararlıdır lamelleri ters bir mikroskopta görülebilir.), Oje ile kapatılmış olabilir. Biz genellikle, bizim slaytlar -20 ° C derin dondurucuda saklayın. </li></ol>

<ol><li>Flanagan, L. A., Chou, J., Falet, H., Neujahr, R., Hartwig, J. H., Stossel, T. P., Filamin, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Filamin+A%2C+the+Arp2%2F3+complex%2C+and+the+morphology+and+function+of+cortical+actin+filaments+in+human+melanoma+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Filamin A, the Arp2/3 complex, and the morphology and function of cortical actin filaments in human melanoma cells.</a> J. Cell Biol. 155, 511-518 (2001).</li>
<li>Flanagan, L. A., Rebaza, L. M., Derzic, S., Schwartz, P. H., Monuki, E. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+human+neural+precursor+cells+by+laminin+and+integrins%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci.+Res%22%5BJournal%5D)">Regulation of human neural precursor cells by laminin and integrins.</a> J. Neurosci. Res. 83, 845-856 (2006).</li>
<li>Flanagan, L. A., Ziaeian, B., Palmer, T., Schwartz, P. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Immunocytochemical+analysis+of+stem+cells%5BTitle%5D)+AND+%22In+Human+Stem+Cell+Manual%3A+A+Laboratory+Guide%22%5BJournal%5D)">Immunocytochemical analysis of stem cells.</a> In Human Stem Cell Manual: A Laboratory Guide. Loring, J. F., Wesselschmidt, R. W., Schwartz, P. H. , Elsevier/Cell Press. (2007).</li>
<li>Marchenko, S., Flanagan, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Passaging+Human+Neural+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Passaging Human Neural Stem Cells.</a> Journal of Visualized Experiments. 7, (2007).</li>
<li>Marchenko, S., Flanagan, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Counting+Human+Neural+Stem+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Visualized+Experiments%22%5BJournal%5D)">Counting Human Neural Stem Cells.</a> Journal of Visualized Experiments. 7, (2007).</li>
</ol>

Bu protokol, gerekli antikor hacmi en aza indirir ve güvenilir hücre boyama verir hNSPCs bir immün prosedürü anlatılmaktadır. Açıklandığı gibi işlem hücre içi antijenler için iyi, ama hücre yüzey molekülleri leke veya hücre iskeletinin boyama artırmak için modifiye edilebilir.

<table><tbody><tr><td>Alman camı (Deutsche Spiegelglas) lamel</td><td>Ekipman</td><td>Carolina Biological</td><td>WW-63-3029</td><td>12,15,18, 22, 25 mm lamel seçenekleri mevcuttur</td></tr><tr><td>Liquinox fosfatsız deterjan</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>Z273279</td><td>çok viskoz</td></tr><tr><td>Poly-D-lysine hidrobromür</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P7280</td><td></td></tr><tr><td>Laminin, doğal fare</td><td>Reaktif</td><td>Invitrogen</td><td>23017-015</td><td></td></tr><tr><td>EMEM (1X)</td><td>Reaktif</td><td>Mediatech, Inc.</td><td>MT-10-010-CV</td><td>Belirtilen katalog # altında Fisher tarafından dağıtılmaktadır</td></tr><tr><td>24 kuyucuklu plaka</td><td>Ekipman</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-772-1</td><td></td></tr><tr><td>Triton X-100</td><td>Reaktif</td><td>Fisher Scientific</td><td>BP151-500</td><td>çok viskoz</td></tr><tr><td>Paraformaldehit</td><td>Reaktif</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>P6148</td><td>potansiyel karsinojen, toz ve solüsyon formunda kullanılırken dikkatli olunmalıdır</td></tr><tr><td>Sığır Serum Albümini, IgG-free</td><td>Reaktif</td><td>Jackson ImmunoResearch</td><td>001-000-161</td><td></td></tr><tr><td>H&amp;#8211;chst 33342</td><td>Reaktif</td><td>Invitrogen</td><td>H-1399</td><td></td></tr><tr><td>Vectashield</td><td>Reaktif</td><td>Vector Laboratories</td><td>H-1000</td><td>viskoz</td></tr></tbody></table>

İmmünositokimya: İnsan sinir kök hücreler

Immunocytochemistry: Human Neural Stem Cells

İmmünositokimya olup olmadığının belirlenmesi için çok güçlü ve oldukça basit bir yöntemi, hücre içi lokalizasyonu ve faiz, en yaygın kültür hücrelerinde protein, antijen göreceli bolluk. Bu protokol sunan, kolay takip onların boyama, yüksek kalite, tekrarlanabilir nitel ve nicel veri alırken araştırmacılar primer ve sekonder antikorlar tasarrufu sağlayacak adımları bir dizi. Bu protokolün boyanması için gerekli antikor hacminin korunmasına yardımcı iki yönü vardır. Biri için, hücrelerin doku kültürü plaka kuyulara yerleştirilen küçük, yuvarlak lamelleri yetiştirilmektedir. Fiksasyon sonra, lamelleri hücreleri plaka kuyulardan silinebilir. Antikor boyama, hücre ile lamel parafilm antikor çözüm küçük bir damla üzerine ters ve parafilm kurumasını önlemek için ikinci bir parça ile kaplıdır. Bu yöntemi kullanarak, sadece antikor çözüm ~ 25 ul boyanmış her lamel (ya da örnek) için gereklidir. Bu protokol, insan sinir kök / prekürsör hücrelerinin (hNSPCs) immün açıklar, ama birçok diğer hücre türleri için kullanılabilir.

İmmünositokimya varlığı, hücre içi lokalizasyonu ve kültür hücreleri ilgi antijen göreceli bolluk belirlemek için güçlü bir yöntemdir. Bu protokol sunan, kolay takip serisi bir antikorlar korunması ve boyama en iyi şekilde almak için sağlayacak adımlar.

İmmünositokimya: İnsan Sinir Kök Hücreler

İmmünositokimya; ... varlığını, hücre içi lokalizasyonunu ve göreceli bolluğunu belirlemek için kullanılan oldukça güçlü ve oldukça basit bir yöntemdir.

Merhaba, ben Steve. UC, Irvine'deki Patoloji Bölümü'nde Dr. Flanagan'ın laboratuvarında çalışıyorum. Ve bugün size insan nöral öncü hücrelerinin immünokimyasını nasıl yapacağınızı göstereceğim.Bu protokol, hücrelerin lain kaplı örtü fişlerine yerleştirilmesini ve hücrelerin gece boyunca birincil antikorda bloke edilmesini ve inkübe edilmesini ve daha sonra birkaç WAS yapılmasını ve ikincil antikorun oda sıcaklığında takılmasını içerir. Ve son olarak, kapak kızaklarının mikroskop uçuşlarına monte edilmesi. Başlayalım.Bu yüzden ilk olarak, laminatla kaplamak için 24 oyuklu bir plakaya 12 milimetre genişliğinde üç steril Alman cam kapak fişi yerleştireceğim. Şimdi kapak fişlerim plakada ve önce bir PDL poli lizin çözeltisi ekleyeceğim ve kapak altlarını oda sıcaklığında beş dakika PDL'de inkübe edeceğim. Şimdi beş dakikanın sonunda, PDL'yi çıkaracağım ve laminin takacağım ve kapak fişlerini gece boyunca en az dört saat veya daha iyi bir süre laminatta inkübe edeceğim.Bu yüzden plakayı gece boyunca laminatta inkübe ettim ve şimdi kapak fişlerini PBS ve daha önce saydığım plaka insan nöral öncü hücreleri ile durulayacağım. Bu yüzden laminat solüsyonlarını yeni çıkardım ve şimdi kapak fi

immunocytochemistry-human-neural-stem-cells

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Gözlem ve ölçümü için bir tek tabaka hücreleri oluşturmak için bir self-made sitospin cihazların kullanımı dayalı, insan pluripotent kök hücreleri hücre yüzey belirteçleri için Süspansiyon immünositokimyasal boyama (hPSCs) (SSEA-3/SSEA-4) elde edildi.

Self-Made sitospin Aparatı kullanarak İnsan Pluripotent Kök Hücre İmmünositokimyasal Analizi

Bu video protokolü iyi niyetli nöral kök hücreler nöral prekürsör hücrelerin koloni oluşturan nöral hücre çalışması ile oluşan karışık bir nüfus nasıl ayrımcılık ve numaralandırmak göstermektedir.

Hücre Testi Şekillendirme Sinir-Koloni: Sinir Progenitör Hücreler Bona Fide Sinir Kök Hücreler Ayırım Bir Testi

Bu video, EdU dahil edilmesi kullanılarak beyin dokusu kesitlerinde yeni çoğalan nöral kök hücrelerin boyanması prosedürünü ve ardından spesifik proteinleri görselleştirmek için immünofloresan ile hücre dinamiklerinin ve proliferasyonunun anlaşılmasını geliştirme prosedürünü göstermektedir.

Fare Beyin Bölümlerinde Prolifere Nöral Kök Hücreleri Görselleştirmek için İmmünofloresan Boyama

Kaynak: Becker-Kojić, Z. A., et. al., Kan Kaynaklı Nöronal Hücrelerin GM İçermeyen Üretimi. J. Vis. Uzm. (2021)Video, floresan mikroskobu için yeniden programlanmış periferik kan hücrelerinden türetilen nöral hücrelerin hazırlanmasına yönelik bir protokolü gösterir ve immünofloresan görüntüleme yoluyla farklı hücre tiplerini ve gelişim aşamalarını gösterir.

Periferik Kan Kaynaklı Hücrelerden Farklılaşan Nöral Hücrelerin İmmünofloresan Mikroskobu 

Yetişkin beyin hasat nöral kök hücreler sinir sistemi gelişiminin temel araştırma rejeneratif tıpta potansiyel klinik uygulamaları keşfetmek için çeşitli uygulamalar kullanılmaktadır artmaktadır. Bu deneysel sonuçların ses için kritik bu hücreleri büyümek için kullanılan yalıtım ve kültür koşullarında titiz kontrolü yapar.

Yetişkin Kemirgen Beyin konvansiyonel ve konvansiyonel olmayan Bölgelerinden Nöral Kök Hücreler Büyüyen

Nöral hücre tiplerinde yüzey antijenlerinin ve/veya hücre içi antijenlerin akış sitometrik analizi için bir protokolün ayrıntılı bir tanımını sunuyoruz. Nörobiyologların bu güçlü teknolojiden yararlanmalarını sağlamak için deneysel planlamanın kritik yönleri, adım adım metodolojik prosedürler ve akış sitometrisinin temel ilkeleri açıklanmaktadır.

Sinir Hücresi Tipleri Yüzey Akış Sitometri Protokolleri ve Hücre içi Antijen Analizleri

Bir yöntem de periferik kan hücrelerinden zenginleştirilen hematopoietik projenitör hücrelerinden insan nöral kök hücrelerini elde etmek için geliştirilmiştir.

Periferik kan Hematopoetik Progenitör Hücreleri İnsan Sinir Kök Hücre Doğrudan İndüksiyon

Nöral kök hücreler (NSC'lerde) kendini yenilemek ve üç sinir soy içine ayırt edebilirsiniz hücrelere bakın. Burada, klonal koşullarda neurosphere oluşumu ve farklılaşmayı kullanarak belirli bir hücre popülasyonu MGK sıklığını belirlemek için bir protokol açıklar.

Nöral Kök Hücre Sayım klonal Tahliller Kullanma

Bu protokol, Açık kafatası travmatik beyin hasarı ve kültür insan kaynaklı pluripotent kök hücre türeyen hücrelerin transplantasyonu için bir fare modeli için metodolojileri yaralanma sitesine gösterir. Bu prosedürlerden gelen sonuçların davranışsal ve histolojik testleri de kısaca açıklanmıştır.

Insan kaynaklı pluripotent kök hücre türetilen nöral hücrelerin terapötik transplantasyonu ile fare beyin yaralanması kontrollü Kortiik darbe modeli

Burada sunulan insan embriyonik kök hücrelerinin tek hücreli kültür ve nöral progenitor hücrelere sonraki farklılaşma için bir protokoldür. Protokol basit, sağlam, ölçeklenebilir ve ilaç tarama ve rejeneratif tıp uygulamaları için uygundur.

İnsan Embriyonik Kök Hücrelerinin Tek Hücre Kültürünü Kullanarak Etkin Nöral Farklılaşma

Bu protokol, i) konfokal bir mikroskop, ii) yoğunluk görüntülemesi yapmak için bir floresan aktive hücre sıralayıcısı veya iii) floresan ömür boyu görüntüleme gerçekleştirmek için bir çoklu foton mikroskobu kullanarak otofloresan görüntüleme yoluyla birincil yetişkin fare nöral kök hücre kültürlerinde hücre durumunu tanımlama ve zenginleştirme stratejilerini açıklar.

Nöral Kök Hücre Aktivasyon Durumunun İn Vitro Otofloresan Kullanılarak Sınıflandırılması

Öğrenin, insan sinir kök hücrelerinde immünositokimya tekniğini kullanarak antijen lokalizasyonunu analiz etmeyi. Bu yöntem, antikor kullanımını optimize ederek nörobilim araştırmalarında tekrarlanabilir sonuçlar sağlar.

İmmünositokimya: İnsan Sinir Kök Hücreler

Daha fazla video keşfet