Name: Yetişkin hazırlanması Drosophila Gözler İnce Kesit ve Mikroskobik Analizi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2011-08-27T14:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 49 s
Description: Öğrenin yetişkin Drosophila gözlerinin ince kesitlenmesi için hazırlanma yöntemini. Epoksi reçine gömme ve mikrotom kullanımı ile mutant fenotipleri analiz edin. Genetik etkileşimleri ve göz gelişimini detaylı inceleyin.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

playerTrialDesktop

Dr. Jennifer Curtiss Şekil resimler için teşekkür etmek istiyorum. 1 ve Jeremy Fagan ve Floransa Marlow eleştirel bir yazının okunması için Dr. Çalışmalarımız NIH hibe 1R01GM088202 tarafından desteklenmektedir.

1. Fly baş diseksiyonu <ol><li> (Jelatin kaplı slaytlar dahil) tüm malzemeler el altında olduğundan emin olun. Glutaraldehit ve Osmium fiksatif (aşağıya bakın) hazırlayın. Buz üzerinde 1,5 ml tüpler, kısım 200μl glutaraldehid düzeltme çözüm gömmek için genotip Per. </li><li> CO 2 pad (genellikle bir kafası işlem sırasında yıkılmış durumda genotip başına altı gömmek için yedi sinek kafaları teşrih) sinekler anestezisi. </li><li> Tutun ve biraz cımbız, sinek, sırt tarafı toraks basın ve kafasını kesmek için keskin bir neşter kullanabilirsiniz. </li><li> Cımbız ile boyun dokunarak sinek kafası stabilize eder ve dikkatlice bir göz küçük bir bölümünü kapalı dilim. Bu fiksatif penetrasyon (klonal analizi için göz bölümleri kullanmak istiyorsanız, herhangi bir ya da daha küçük klonları ile göz kesme) artırır. Dokunarak ve sonra kesitli olacak sağlam gözün zarar kaçının. </li><li> Disseke başkanları, cımbız veya neşter ile kafa kesme göz yüzeyinde dokunun ve (fiksatif üst yüzer sık ​​sık başları) glutaraldehid / fosfat fiksatif içine buz üzerinde kafa transfer glutaraldehid gidermek için uzun tutulmalıdır olmamalı Osmium ek önce 15 dakikadan fazla. Aynı genotip diğer sinekler 1,2-1,5 adımları tekrarlayın. </li></ol> 2. Fiksasyon ve gömme (tüm adımlar için eldiven kullanın!) <ol><li> 1 dakika 10.000 rpm'de Eppendorf santrifüj flyheads dönerler. Kafaları lavabo yoksa bile devam edin. </li><li> OsO 4 çözümü 200μl ekleyin ve en az 30 dakika ve 1 saat kadar buz üzerinde düzeltmek. </li><li> Pasteur pipeti kullanarak, glutaraldehit / Osmium çözüm (uygun atık bertaraf işlemleri kullandığınızdan emin olun!) Kaldırın ve 200μl Osmium çözümü ile değiştirin. 1-6 saat için buz üzerinde inkübe edin. Sürekli kafaları tamamen sıvı ile kaplıdır sağlamak ve başını veya gözlerini çöküşü gibi tüm çözüm kaldırmak asla! </li><li> Pasteur pipeti kullanarak, fiksatif atın (etanol Osmium içerdiğinden uygun atık bertaraf işlemleri kullandığınızdan emin olun!) 0.5-1 ml% 30 etanol ve buz üzerinde en az 5 dakika inkübe ekleyin. </li><li> % 50,% 70 (% 80),% 90 ve iki kez% 100 etanol ile yukarıdaki adımı yineleyin. Elektron mikroskobik analizi için gözleri kullanıyorsanız% 80 etanol adım ekleyin. % 70 yıkama adımdan sonra, buz örnekleri çıkarılabilir. </li><li> Etanol, propilen oksit (uçucu, kaput çalışmaya devam) eşit hacmi ile değiştirin. Oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edin. </li><li> Propilen oksit yıkama tekrarlayın. Propilen oksit buharlaşma nedeniyle gözlerin çöken önlemek için paralel olarak pek çok genotipleri işlenmesi halinde gruplar halinde çalışın. </li><li> , Propilen oksit ve plastik bir transfer pipet kullanarak çıkarın 1:1 reçine 500μl hakkında ekleyin: propilen oksit çözüm. Oda sıcaklığında gece dengeye. </li></ol> 3. Kalıplara gömülmesi ve düzenlenmesi <ol><li> Tüm kalıpları farklı genotipleri takip etmek etiketli olduğundan emin olun, sonra% 100 reçine ile kalıpları doldurun. Aşırı doldurmayın (kalıp yüzey üzerinde herhangi bir 'yüksek tepeler' düz kalıp yüzeyi boyunca) etmeyin. EM analizi için sert reçine kullanın. </li><li> Bir transfer pipet kullanarak, kafalar% 50 reçine çıkarmak,% 100 reçine ile değiştirin ve oda sıcaklığında 3-4 saat inkübe. Kafaları reçine ile infiltre olduğundan, tüp dibine batar. </li><li> Küçük bir kanca oluşturmak için bir kez sert bir zemine vurulduktan sonra bir kürdan kullanarak, bir kalıp içine anda bir kafa aktarmak. </li><li> Reçine dökülmelere karşı korumak için diseksiyon kapsamı çalışma alanı alüminyum folyo üzerine yerleştirin. </li><li> Bir diseksiyon iğnesi kullanma ve reçine kafası biraz kapsamı, girdap rağmen sivri ucu yakın ve dikkatli bir kalıp altına taşıyın. </li><li> Dikkatlice göz teğet yüzey kabaca yarım bir kafa tutmak için emin olun, kalıbın ön duvarı ile sağlam (!) Göz (ya da kesitler yapmak istiyorsanız gelecek kesit düzlemi) boyun yüzeyi aşağı hizalamak kalıp duvarı uzak çapı. Nadir durumlarda, göz yüzeyi ve baş kütikül arasında boş bir alan olarak görülebilir bir göz çöker. Çökmüş bir göz varsa, 7. yedek göz ile değiştirin. </li><li> Tüm başkanları ile tekrarlayın. Bir kez tüm hizalanmalar ile yapılan, reçine iğne dışarı çıkardığında kıpırdamadı emin olmak için tüm gözler yeniden kontrol edin. </li><li> Diseksiyon iğnesi kaldırmak gözleri hareketli bir sorun varsa, istediğiniz gibi göz pozisyonu hızlı iğne başından biraz uzakta geri çekmek ve sonra yavaş yavaş iğne tamamen kaldırmak. </li><li> Kalıpları pişirin gecede 70 ° C. </li></ol> 4. Budama ve kesit <ol><li> K, kalıpları bükme kalıpları sertleştirilmiş blokları kaldırmakblok karşılık hangi eeping izlemek için hangi genotip (örneğin küçük sintilasyon şişeleri saklamak). </li><li> Düzeltmek için, pleksiglas veya alüminyum bir blok yüzü yukarıya monte edilir mikrotom için uygun bir mandren kullanın. Mandreni Döşeme blok, göz, monte edin. </li><li> Teflon kaplı jilet kullanarak diseksiyonu kapsamı bade altında, blok sadece üst tabaka dikkatlice kesti. Bu, göz ve böylece gelecek kesit düzlemine tahmin edebilirsiniz ama net bir yüzey bırakacaktır. Parmaklarınızı kesme kaçının! </li><li> Başının etrafında plastik kesilir kadar başın her iki tarafında ve ön yüzünde (gözünde hizalayarak zaman üst kalıp olarak kullanılan ne yani) aşırı plastik kesiniz. Yavaş yavaş, plastikten çok ince tabakalar keserek kafa yaklaşım en iyisidir. </li><li> Temiz bir jilet kullanarak, dikkatli bir sonraki bölümde (genellikle göz teğet, orijinal kalıp yüzeyine hafif bir açıyla) istediğiniz tam düzlemde gözün üstüne ince tabakalar kaldırmak. </li><li> Sadece gözün dış yüzeyi kesip başlayana kadar devam edin. Mikrotom kolay uyum sağlayan, parlak, şeffaf yüzey elde etmek için bıçak temiz alanlarda kullanırsanız emin olun. </li><li> Jiletler kaydetmek için, ham blok kenarlara kırparak için büyük bıçaklar ve ince kırparak (İlk kesilen ve 4.6) için yeni bir bıçak kullanın. Sonunda gelecekteki düzlemini karşılık gelen hafif eğimli, cut-off üst üç taraflı piramit olacak. </li><li> Mikrotom blok monte edin. Gerçek kesit mikrotom türüne bağlı olarak değişir ve burada ayrıntılı olarak açıklanmıştır olmayacaktır. Biz 0,5 ila 1 mikrona kadar bölümleri kesmek için bir doku kalitesi elmas bıçak ile bir Sorvall MT5000 kullanın. Işık mikroskobik inceleme için kesit kalınlığı küçük farklılıklar önemli değil. Kesit klonlar Beyaz + transgen, bir bölümü tarafından işaretlenmiş 1 mikrona kadar bölümleri, bölüm başına rhabdomeres (Şekil 2) bitişik yeterli pigment granülleri sağlamak. </li><li> Bölüm, su üstünde yüzer. Dönen bir hareket su yüzeyinin altında bir ahşap Q-ucu düzleştirilmiş bir ucu ile ilk 20-30 bölümleri kaldırın ve bir jelatin kaplı cam slayt (yaklaşık 100 ° C'de ısıtma plakası tutulur bir damla su içine transfer .) </li><li> 20-30 bölümleri ile tekrarlayın. Buharlaşan su ve bölümleri slayt sopa kadar bekleyin. Genellikle, 3 gözde bölümleri bir slayt iyi uyum twp sıra üç sütun (üç gözleri) (üst / alt bölümleri) olarak düzenlenmiş. </li></ol> 5. Boyama ve mikroskopik analiz <ol><li> Sürece kesit klonlar, leke bölümleri. Ayarlanmış bir ısıtma bloğu bölümleri ile koyun slayt 90 ° C 30 ml şırınga slayt üzerine 0.22μm bir filtreye bağlı bir Toluidine-mavi boyama çözüm koyun ve 10 saniye boyunca leke. Distile su ile hemen yoğun durulayın. Hava kuruması. </li><li> , Plastik bir transfer pipet kullanarak, slayt üzerine orta montaj DPX 3 damla dağıtmak ve bir lamel ile kaplayın. Top 3 Dimes ve montaj orta sertleşmesine izin (oda sıcaklığında örneğin gece). </li><li> Işık mikroskobu ile Resim. 5x yada 10x lens iyi bir bölüm bulmak ve daha sonra ayrıntılı bir analiz ve fotoğrafların 63x immersiyon yağı lens geçmek için kullanın. Biz genellikle faz kontrast ayarlarını kullanabilirsiniz, ancak karanlık alan optik olarak iyi iş görür. </li></ol> 6. Temsilcisi sonuçları: En sık, göz, genetik bir ekran parçası olarak veya genel göz yapısı veya kutup etkilediği bilinen genleri ile genetik etkileşimler test sürecinde tespit edilen dış kaba göz fenotipleri ayrıntılı bir analiz için plastik gömülür. Göz bölümleri tipik sonuçlar Şekil 3'te gösterilmiştir. Wild-tip ommatidia (Şekil 3A), pigment hücrelerinin bir kafes ile çevrili tam fotoreseptör tamamlayıcı göstermektedir. Buna karşılık, bir şaşılık (stbm, nam-van-gogh 7) mutant, ommatidial polarite tam fotoreseptör tamamlayıcı mevcut olmasına rağmen, kayıp ve rotasyon ve kiralite randomize (Şekil 3B). Ayrıca, kesitli stbm allel aw bu yana arka plan, pigment granülleri Şekil eksik. 3b. Şekil 3C, klonal bir analizin bir örneğini gösterir. Drosophila Rho kinaz (drok) ommatidial dönme yanı sıra göz 8 yapısal bütünlüğü için gereklidir . Vahşi mutasyon homozigot drok 2 klonlar pigment hücreleri ve rhabdomeres (genellikle pigment yokluğu ile tespit edilebilir, klonlar gözsüz-FLP ve bir arka plan w tamamlayan güçlü bir şekilde ifade beyaz işaretleyici gen ile P-element kullanılarak uyarılan. tip ve heterozigot doku). Pigment eksikliği mutant alanları tespit etmek mümkün olur. R-ce pigmentasyon hücre özerklik nedeniyleLLS önce, bireysel R-hücrelerinin genotipler tespit edilebilir (Şekil 3C ok uçları görmek) bahsetti. <img src="/files/ftp_upload/2959/2959fig1.jpg" alt="Şekil 1" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1. Drosophila gözü bu yana biyologlar için mükemmel bir model sistem, yabani tip bir göz (A) pürüzsüz bir yüzey aksine, mutant bir göz yüzeyi dışarıdan sık sık, (B) kaba altında yatan göz fenotipleri göstergesi . Tüm şekil, ön sol ve dorsal kadar. Dr. Jennifer Curtiss, NMSU, Las Cruces, NM, ABD Görüntüler izniyle. <img src="/files/ftp_upload/2959/2959fig2.jpg" alt="Şekil 2" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2'de açıklanan yöntemi kullanarak kesitli tek ommatidia Işık mikroskobik görüntüler. R7 R8 üstüne yatıyor bu yana, sadece yedi R-hücrelerinin ommatidium başına bir zaman görünür. (A, A ') (R7 düzeyde, R7 hücre gövdesi R1 ​​ve R6 A sarı ok) arasında tespit edilirse'. Buna karşılık, R8 düzey (B), R8 hücre gövdesi, R1 ve R2 (B sarı ok ') arasındaki algılanır . Mavi ok uçları, bir hücre özerk pigment belirteci olarak kullanılabilir pigment granülleri işaretleyin. <img src="/files/ftp_upload/2959/2959fig3.jpg" alt="Şekil 3" data-altupdatedat="1787634011000" data-alt="Şekil 3"> Şekil 3 wild-tip (A), stbm (B) ve drok (C) mutant yetişkin Drosophila gözleri ile Teğet bölümleri. Bölümleri altında Şemalar ommatidia polarite (oklar için (A)) gösterir. Çemberleri fotoreseptör tamamlayıcı hatalarına ommatidia temsil eder. Sarı çizgiler simetri / dorsal ventral hattı (ekvator) temsil eder. Wild-tip (A) iyi odaklı ommatidia aksine, düzlemsel bir organizasyon stbm mutant (B) kaybolur . - Stbm mutant bölümünde gösterilen Not w nedeniyle pigment mutant arka plan yoksundur. (C) drok mutasyonlar öldürücü olduğundan, onlar klonlar analiz edilmesi gerekir. R-hücreleri eksik pigment (açık mavi ok başları) homozigot mutant Böylece, pigmentli hücreleri (dolu mavi ok başları), wild-tip veya heterozigot. Rotasyon kusurları yanı sıra, drok mutantlar da eksik veya fazla sayıda R-hücreleri de dahil olmak üzere yapısal kusurlar göstermektedir. Klonal analizi için, bölümleri pigment granülleri obscuring önlemek için lekeli olduğunu unutmayın.

<ol><li>Harvey, K. F., Pfleger, C. M., Hariharan, I. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Drosophila+Mst+ortholog%2C+hippo%2C+restricts+growth+and+cell+proliferation+and+promotes+apoptosis%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">The Drosophila Mst ortholog, hippo, restricts growth and cell proliferation and promotes apoptosis.</a> Cell. 114, 457-457 (2003).</li>
<li>Secombe, J., Li, L., Carlos, L., Eisenman, R. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Trithorax+group+protein+Lid+is+a+trimethyl+histone+H3K4+demethylase+required+for+dMyc-induced+cell+growth%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">The Trithorax group protein Lid is a trimethyl histone H3K4 demethylase required for dMyc-induced cell growth.</a> Genes Dev. 21, 537-537 (2007).</li>
<li>Cagan, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Principles+of+Drosophila+eye+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Top+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Principles of Drosophila eye differentiation.</a> Curr Top Dev Biol. 89, 115-115 (2009).</li>
<li>Jenny, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Planar+cell+polarity+signaling+in+the+Drosophila+eye%5BTitle%5D)+AND+%22Curr+Top+Dev+Biol%22%5BJournal%5D)">Planar cell polarity signaling in the Drosophila eye.</a> Curr Top Dev Biol. 93, 189-189 (2010).</li>
<li>Tomlinson, A., Ready, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+fate+in+the+Drosophila+Ommatidium%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell fate in the Drosophila Ommatidium.</a> Dev. Biol. 123, 264-264 (1987).</li>
<li>Tomlinson, A., Ready, D. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuronal+differentiation+in+the+Drosophila+ommatidium%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Neuronal differentiation in the Drosophila ommatidium.</a> Dev. Biol. 120, 366-366 (1987).</li>
<li>Jenny, A., Darken, R. S., Wilson, P. A., Mlodzik, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Prickle+and+Strabismus+form+a+functional+complex+to+generate+a+correct+axis+during+planar+cell+polarity+signaling%5BTitle%5D)+AND+%22Embo+J%22%5BJournal%5D)">Prickle and Strabismus form a functional complex to generate a correct axis during planar cell polarity signaling.</a> Embo J. 22, 4409-4409 (2003).</li>
<li>Zheng, L., Zhang, J., Carthew, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((frizzled+regulates+mirror-symmetric+pattern+formation+in+the+Drosophila+eye%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">frizzled regulates mirror-symmetric pattern formation in the Drosophila eye.</a> Development. 121, 3045-3045 (1995).</li>
<li>Reinke, R., Zipursky, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell-cell+interaction+in+the+Drosophila+Retina%3A+The+bride+of+sevenless+Gene+is+required+in+photoreceptor+cell+R8+for+R7+cell+development%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Cell-cell interaction in the Drosophila Retina: The bride of sevenless Gene is required in photoreceptor cell R8 for R7 cell development.</a> Cell. 55, 321-321 (1988).</li>
<li>Wolff, T., Rubin, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((strabismus%2C+a+novel+gene+that+regulates+tissue+polarity+and+cell+fate+decisions+in+Drosophila%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">strabismus, a novel gene that regulates tissue polarity and cell fate decisions in Drosophila.</a> Development. 125, 1149-1149 (1998).</li>
<li>Winter, C. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Drosophila+Rho-associated+kinase+%28Drok%29+links+Frizzled-mediated+planar+cell+polarity+signaling+to+the+actin+cytoskeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Drosophila Rho-associated kinase (Drok) links Frizzled-mediated planar cell polarity signaling to the actin cytoskeleton.</a> Cell. 105, 81-81 (2001).</li>
<li>Xu, T., Rubin, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+genetic+mosaics+in+developing+and+adult+Drosophila+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Analysis of genetic mosaics in developing and adult Drosophila tissues.</a> Development. 117, 1223-1223 (1993).</li>
<li>Stocker, H., Gallant, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aStocker%2C+H+%22Methods+Mol+Biol%22">Methods Mol Biol</a>. Dahmann, C. 420, Springer. 27-27 (2008).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Drosophila model organizma, insanlar da dahil olmak üzere yüksek ökaryotlarda yüksek derecede korunmuş sinyal yollarının en önemli gen ailelerinin kurucu üyelerinden birçok tanımlanmasına yol açan genetik ekranları gibi kullanma. Laboratuvar koşullarında hayatta kalmak için, fonksiyonel bir gözle vazgeçilebilir olduğu için, göz, yeni genlerin fonksiyonlarının keşfi ve genetik ağlarının değerlendirilmesi için özellikle uygundur doku. Böylece açıklanan yöntemi kullanarak sinek göz ultrastrüktürel analizi geliştirme ve hastalık ile ilgili temel keşiflere yol açtı. Başlangıçta tek bir hücre klonal analiz bilinen yakından ilişkili hücre özerk resesif belirteçler ile birlikte X-ışını indüklenen klonlar kullanılarak gerçekleştirildi. Daha yakın zamanlarda, klonlar oluşturmak için FLP / FRT sistemin durumu büyük ölçüde göz bölümleri 6,9 ölümcül mutasyonlar fenotipik analizi kolaylaştırmıştır . Burada açıklanan teğet bölümlerine göz bölümden Analizi sınırlı değildir. İsterseniz, kafaları kalıplarda herhangi bir yönde uyumlu hale getirilmesi ve enine bölümler lamina ve medulla gibi kafasında derin katmanları çalışma elde edilebilir. Burada açıklanan protokol bu nedenle göz ve kafa yapıları Drosophila yetişkin analizleri için çok yönlü bir yöntemdir.

Genel ekipmanlar: <ul><li> Genel sinek yetiştiriciliği için bkz: 10 </li><li> Ellerinizi bir gölge döküm önlemek için tercihen bir halka ışık kaynağı Standart diseksiyon mikroskobu (örneğin Nikon SMZ-645 Stereo Zoom Mikroskop). </li><li> Diseksiyon sırasında kire karşı koruma sağlamak için 3MM whatman kağıt ile kaplı CO 2 Fly yüzeyi,. </li><li> Jelatin kaplı slaytlar: (neredeyse bir raddeye getirmek, yaklaşık 2 saat sürer) 1L su ısıtma plakası 10g jelatin ve 1g CrKSO 4 x 12 H 2 O çözülür. Dip iyi yıkanmış (dH 2 O) (sabun) ve durulanır gecede folyo kaplı jelatin çözüm ve kurumaya içine sahipleri slaytlar. </li><li> Isıtma fırını (70 ° C; nitroselüloz filtre kurutmak için kullanılan eski elektrikli fırın ve bu amaç için uygundur). </li><li> Mikrotom yeteneğine sahip ultra ince kesit (0.5-1 mikron kalınlığında kesitler), elektron mikroskobu tesisleri tarafından kullanılan gibi. Histolojik kaliteli elmas bıçak ile bir Sorvall MT5000 Ultramicrotome kullanın. Cam bıçak da çalışır. </li></ul> Fiksasyon çözümler: <ul><li> 0.2 M sodyum fosfat tamponu, pH 7.2 stok solüsyonu hazırlayın. </li><li> 0.1M Sodyum Fosfat tamponu, pH 7.2 (4 ° C 4 hafta saklanabilir)% 2 glutaraldehid hazırlayın. Genotip ortalama gömmek istediğiniz 200μl en azından yeterli olun. Buz üzerinde tutun. </li><li> Osmium çözüm:% 2 OsO 4 0.1M Sodyum Fosfat tamponu, pH 7.2. Gömmek istediğiniz genotip ortalama 200μl çözüm saklanan olamaz bu yana, sadece yeterli olun. Buz üzerinde tutun. </li></ul> Glutaraldehit ve OsO 4 yüksek derecede toksik ve iyi havalandırılan bir kaput çok dikkatli ele alınmalıdır. Pipetin kararmasını önlemek için OsO 4 işlerken filtre ipuçlarını kullanın. Dehidrasyon:% 30,% 50,% 70 (% 80),% 90 ve% 100 etanol çözümler olun. Tercihen serin% 30,% 50, kullanmadan önce buz üzerinde% 70 etanol. Çözüm Boyama: % 1% 1 Boraks Toluidine-mavi. <table border="1"><tbody><tr><th></th><th> Yumuşak </th><th> Zor </th></tr><tr><td> Reçine A </td><td> 54g </td><td> 50g </td></tr><tr><td> Sertleştirici B </td><td> 44.5g </td><td> 50g </td></tr><tr><td> Hızlandırıcı C </td><td> 2.5g </td><td> 1.75g </td></tr><tr><td> Akışkanlaştırıcı D </td><td> 10g </td><td> 0.75g </td></tr></tbody></table> Tablo 1. Reçine hazırlama Dikkatle, reçine hazırlamak, ancak büyük bir heyecan bar ile bir manyetik karıştırıcı kullanarak plastik bir beher tüm malzemeyi iyice karıştırın. Kabarcıkları kaçının. -20 ° C&#39;de standart sintilasyon şişeleri ya da benzeri kaplar ve donma karıştırma, kısım sonra EM tesisi zor formülasyonu için istemediği sürece, tüm uygulamalar için yumuşak reçine kullanın. (Unpolymerized formu kanserojen) reçinesi ele eldiven kullanın. 70 ° C gecede, ekipman ve atık fırında reçine polimerize için. Atık güvenle sonra atılır ve ekipman temizlenir ve yeniden olabilir. Dökülen unpolymerized reçine izopropanol ile temizlenebilir. <table border="1"><tbody><tr><th> Reaktif </th><th> Satıcı </th><th> Katalog numarası </th></tr><tr><td> Ped Fly </td><td> örneğin Genesee </td><td> 59-119 </td></tr><tr><td> Glutaraldehyde </td><td> Sigma </td><td> G7526-10 X 10 ML </td></tr><tr><td> OsO 4 </td><td> Polysciences, Inc. </td><td> 0972A-20 </td></tr><tr><td> Propilenoksit </td><td> Balıkçı </td><td> 04332-1 </td></tr><tr><td> # 3 bisturi sapları, </td><td> Balıkçı </td><td> 22080046 </td></tr><tr><td> # 11 bisturi ağızları </td><td> Balıkçı </td><td> 08-916-5B </td></tr><tr><td> Transferi pipetler </td><td> Balıkçı </td><td> 13-711-7M </td></tr><tr><td> Durcupan (R) ACM, reçine </td><td> Sigma (Fluka) </td><td> 44.610-1EA </td></tr><tr><td> Çelik diseksiyon iğnesi </td><td> Balıkçı </td><td> S17346 </td></tr><tr><td> BEEM düz gömme kalıp </td><td> Elektron Mikroskopi Sci. </td><td> 70904-12 </td></tr><tr><td> Teflon kaplı Jilet </td><td> Elektron Mikroskopi Sci. </td><td> 71970 </td></tr><tr><td> Q-tip (steril pamuklu çubuklar) </td><td> Balıkçı </td><td> 14-959-81 </td></tr><tr><td> Cam slaytlar </td><td> Balıkçı </td><td> 12-550-143 </td></tr><tr><td> Kapak No 1, 22X60 mm kayar </td><td> Balıkçı </td><td> 12-531K </td></tr><tr><td> Jelâtin </td><td> Balıkçı </td><td> ICN96010280 </td></tr><tr><td> Cr (III) K 4 dodekahidratı SO </td><td> Sigma </td><td> 243361 </td></tr><tr><td> 6mm Diamond Histolojik bıçak, </td><td> Diatome ABD </td><td> 60-Onun </td></tr><tr><td> Toluidine Blue O </td><td> Balıkçı </td><td> BP107-10 </td></tr><tr><td> Boraks (Na-tetraborat) </td><td> Balıkçı </td><td> AC20629-1000 </td></tr><tr><td> DPX montaj orta </td><td> Sigma </td><td> 44.581-100ML </td></tr></tbody></table> Tablo 2. Malzemeler

yetişkin hazırlanması drosophila gözler İnce kesit ve mikroskobik analizi

Preparation of Adult Drosophila Eyes for Thin Sectioning and Microscopic Analysis

Drosophila uzun genetik uysal olduğu kolaylığı nedeniyle, geliştirme çalışma modeli bir sistem olarak kullanılır olmuştur. Yıllar geçtikçe, mutant bir bolluk ve teknik hileler sofistike sorulan sorular ve makul bir zaman içinde cevaplanması gereken izin vermek için geliştirilmiştir. Temel fikir, bilinen tüm önemli sinyal yolakları bileşenlerinin etkileşim içine ileriye doğru elde edilen ve genetik Drosophila çalışmalar ters olmuştur. Laboratuvar koşullarında, sinekler fonksiyonel gözleri olmadan hayatta kalabilir, çünkü sinek göz, son derece iyi mutasyon analizi için uygun olduğu kanıtlanmıştır. Ayrıca, böcek göz yüzeyinde bir diseksiyon mikroskop altında bakıldığında düzenli, düzgün bir yüzey oluşturan yaklaşık 800 ayrı ünitesi gözleri (yönü veya ommatidia) oluşmaktadır. Sırasıyla veya genel göz boyutu, (ekranlar dayalı örnekler için; Böylece, bir mutasyon, dışarıdan pürüzsüz bir yüzey kaybı (Şekil 1 &#39;kaba göz&#39; fenotip) bakarak göz gelişimi ve büyümeyi etkileyebilecek olup olmadığını görmek için kolaydır dış göz morfoloji) örneğin 1. Göz fenotipleri sonraki detaylı analizler fiksasyon, plastik gömme ve yetişkin gözleri ince kesit gerektirir. Drosophila göz sözde göz hayali disk, (inceleme için örneğin 2) larva ve pupa aşamalarında çoğalırlar ve ayırt epitel hücrelerinin bir çanta geliştirir. Dört lens salgılayan koni hücreleri, pigment hücreleri (R-hücre küme etrafında &#39;altıgen) ve kıl; Her ommatidium sekiz fotoreseptör (Şekil 2 PR veya R-hücreler) olmak üzere toplam 20 hücrelerinden oluşur. R8 [Şek, en kolay, ışığa duyarlı organelleri rhabdomeres (R1-6) altı &quot;dış&quot; ve iki &quot;iç&quot; fotoreseptör (R7 / 8 oluşan bir yamuk düzenlenen her ommatidium fotoreseptörlerin tespit 2]) R7 altında ve bu nedenle sadece göz derin alanlardan bölümlerinde görülmektedir. Her faset yamuk komşuları ve göz (Şekil 3A) genel bir ön-arka ve dorsoventral eksenleri ile tam uyumludur. Özellikle, dorsal ve ventral (sırasıyla siyah ve kırmızı oklar) ommatidia göz yarıları birbirlerinin ayna görüntüsü ve düzlemsel hücre polaritesi sinyalizasyon (inceleme için bakınız örneğin 3) sırasında kurulan iki kiral biçimlerine karşılık gelir. Burada anlatılan yöntemi (Şekil 3 sunulan bu gibi) yarı-ince göz bölümleri oluşturmak için başlangıçta Tomlinson ve 4 Hazır açıklanan biraz değiştirilmiş. Şeffaf koni hücreleri hariç tüm hücrelerin morfolojik analiz sağlar. Buna ek olarak, Ar-hücrelerinin (mavi ok uçları Şekil 2 ve 3), pigment genotip bir R-hücre için bir hücre özerk işaretleyici, böylece genlerin genetik gereksinimlerini Ar-hücrelerinin bir alt kümesi olarak kullanılabilir kolayca 5,6 belirlenir.

Yetişkin hazırlamak için standart bir yaklaşım<em&gt; Drosophila</em&gt; Gözleri yarı-ince kesit ve ışık mikroskobik inceleme için burada sunulmuştur. Göz kusurları brüt morfolojik analizi için kullanılan protokol, ya da belirtilen ayarlamaları ile, göz belirli hücre tipleri (örneğin fotoreseptörlerin klonal analizi) veya elektron mikroskobik analizi için genlerin genetik gereksinimlerini belirlemek için kullanılabilir.

Yetişkin hazırlanması Drosophila Gözler İnce Kesit ve Mikroskobik Analizi

Drosophila, temel olarak genetik olarak işlenebilirliğinin kolaylığı nedeniyle, gelişimi incelemek için uzun süredir model sistem olarak kullanılmaktadır. Yıllar içinde, karmaşık soruların sorulmasına ve makul bir süre içinde yanıtlanmasına olanak tanıyan çok sayıda mutant suş ve teknik yöntem geliştirilmiştir. İleri ve ters genetik Drosophila çalışmalarıyla, bilinen tüm temel sinyal yolaklarının bileşenleri arasındaki etkileşime dair temel bilgiler edinilmiştir. Laboratuvar koşullarında sinekler fonksiyonel gözleri olmadan da hayatta kalabildikleri için, sinek gözünün mutasyonel analizler için olağanüstü derecede uygun olduğu kanıtlanmıştır. Ayrıca, böcek gözünün yüzeyi, bir diseksiyon mikroskobu altında bakıldığında düzenli ve pürüzsüz bir yüzey oluşturan yaklaşık 800 bireysel birim gözdür (fasetler veya ommatidyumlar). Bu nedenle, düz yüzeyin kaybı ("pürüzlü göz" fenotipi; Şekil 1) veya genel göz boyutuna dışarıdan bakarak, bir mutasyonun göz gelişimini veya büyümesini etkileyip etkilemediğini görmek kolaydır (dış göz morfolojisine dayalı tarama örnekleri için bkz. örn. 1). Göz fenotiplerinin sonraki ayrıntılı analizleri; yetişkin gözlerin fiksasyonunu, plastik gömülmesini ve ince kesitler alınmasını gerektirir. Drosophila gözü, larval ve pupal evrelerde prolifere olan ve farklılaşan epitelyal hücrelerden oluşan bir kese olan göz imajinal diskinden gelişir (derleme için bkz. örn. 2). Her ommatidyum; sekiz fotoreseptör (PR veya R-hücreleri; Şekil 2), dört lens salgılayan koni hücresi, pigment hücreleri (R-hücre kümesinin etrafındaki "hekzagon") ve bir kıllı yapı dahil olmak üzere 20 hücreden oluşur. Her ommatidyumun, ışığa duyarlı organelleri olan rabdomerleri sayesinde en kolay şekilde tanımlanan fotoreseptörleri; altı "dış" (R1-6) ve iki "iç" fotoreseptörden (R7/8; R8 [Şekil 2], R7'nin altında yer alır ve bu nedenle yalnızca gözün daha derin bölgelerinden alınan kesitlerde görülür) oluşan bir yamuk şeklinde organize olmuştur. Her fasetin yamuğu, komşularınınkilerle ve gözün genel anteroposterior ve dorsoventral eksenleriyle tam olarak hizalanmıştır (Şekil 3A). Özellikle, gözün dorsal ve ventral (sırasıyla siyah ve kırmızı oklar) yarılarının ommatidyumları birbirinin ayna görüntüsüdür ve planar hücre polaritesi sinyalizasyonu sırasında belirlenen iki kiral forma karşılık gelir (derleme için bkz. örn. 3). Burada açıklanan yarı ince göz kesitleri (Şekil 3'te sunulanlar gibi) oluşturma yöntemi, başlangıçta Tomlinson ve Ready tarafından açıklanan yöntemin hafifçe modifiye edilmiş halidir. Bu yöntem, şeffaf koni hücreleri dışındaki tüm hücrelerin morfolojik analizine olanak tanır. Ayrıca, R-hücrelerinin pigmenti (Şekil 2 ve 3'teki mavi ok uçları), bir R-hücresinin genotipi için hücre-otonom bir markör olarak kullanılabilir; böylece belirli bir R-hücresi alt kümesindeki genlerin genetik gereksinimleri kolayca belirlenebilir.

Bu prosedürün genel amacı, düzlemsel hücre polaritesi kusurları gibi mutant göz fenotiplerinin ayrıntılı değerlendirmesine olanak sağlamak amacıyla, yetişkin drosophila gözlerini ince kesit almaya hazır hale getirmektir. Bu işlem, öncelikle anestezi uygulanmış sineklerin kafalarının kesilmesiyle gerçekleştirilir. Ardından göz dokusu fikse edilir ve bir epoksi reçineye gömülür.Reçine katılaştığında, gömülmüş gözler düzeltilir. Kesit alma işlemi için son adım, elmas bıçakla donatılmış bir mikrotom kullanarak gözlerin ince kesitler halinde alınmasıdır. Nihayetinde, göz kesitinin analizi, yeni mutantların göz fenotiplerinin karakterize edilmesine veya PCP yolu gibi bir sinyal yolundaki genler arasındaki genetik etkileşimlerin nicelleştirilmesine olanak tanıyacaktır.Her ikisi de yeni tanımlanan genlerin fizyolojik rolünün karakterize edilmesine yardımcı olacaktır. Bu yöntem, yeni mutasyonların göz gelişimini nasıl etkilediği veya genetik etkileşim deneylerinde genlerin nasıl etkileşime girdiği gibi Drosophila alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Göz gömme prosedürünün, gözlerin kesit kalıplarına hizalanması gibi birkaç adımı, metin formundan ziyade görsel olarak çok daha kolay anlaşılmaktadır. Başlamak için, toksik kimyasallar olan glutaraldehit ve osmiyum ile sinek kafalarının fiksasyonuna hazırlık amacıyla bir çift eldiven giyin.Ardından, sinekleri CO2 kullanarak anesteziye alın ve bir diseksiyon mikroskobu altında watman kağıdı ile korunan bir sinek pedi üzerine aktarın; genellikle, genotip başına altı gömülü sinek kafası olduğundan emin olmak için altı sinek artı bir ek sinek ayırın, cımbızla sinek toraksına nazikçe bastırın ve ardından bir skalpel kullanarak sineğin kafasını çıkarın, cımbızla boyun bölgesine dokunarak sinek kafasını sabitleyin ve fiksatifin nüfuz etmesini artırmak için bir gözün küçük bir kısmını dikkatlice kesin. Kafayı, buz üzerindeki glutaraldehit fosfat fiksatifine aktarmak için cımbızla veya skalpel ile kesilen gözün yüzeyine dokunun. Fiksasyon işlemi boyunca eldiven giydiğinizden emin olun.Farklı genotipleri takip edebilmek için önce tüm kalıpları etiketleyin. Ardından, her kalıbı aşırı doldurmamaya dikkat ederek %100 reçine ile doldurun. Üst yüzey düz olmalıdır.Bir transfer pipeti kullanarak, kafalardaki %50 reçineyi uzaklaştırın. %100 reçine ile değiştirin ve oda sıcaklığında üç ila dört saat boyunca inkübe edin. İnkübasyon süreci boyunca kafalar reçine ile dengeye geldikçe tüpün dibine çökecektir.Küçük bir kanca oluşturmak için bir kürdanı sert bir yüzeye vurun. Bu aleti kullanarak, her bir kalıba tek bir sinek başı aktarın. Dökülen reçineye karşı korumak için diseksiyon mikroskobunun çalışma alanına alüminyum folyo yerleştirin.Diseksiyon mikroskobu yardımıyla, diseksiyon iğnesini kullanarak başı hafifçe ve dikkatli bir şekilde döndürün. Başı, kalıbın alt kısmına, sivri uca yakın olan bölgeye taşıyın. Sağlam gözün yüzeyini, boyun kısmı aşağıya bakacak şekilde kalıbın ön duvarıyla dikkatlice hizalayın.Gözün tanjansiyel yüzeyinin, kalıp duvarından yaklaşık yarım kafa çapı kadar uzakta olduğundan emin olun. Diseksiyon iğnesini çıkarırken gözler hareket ederse, gözleri istenen konuma getirin, iğneyi kafadan hafifçe ve hızla geri çekin ve ardından iğneyi yavaşça tamamen çıkarın. Tüm kafalar hizalandıktan sonra, hareket etmediklerinden emin olmak için tüm gözleri yeniden kontrol edin.İğneyi reçineden çıkardığınızda, eğer herhangi bir kayma varsa baş kısmını yeniden hizalayın, kalıpları bir fırına aktarın ve gece boyunca 70 degrees sıcaklıkta pişirin. Gece boyu pişirme işleminden sonra, kalıpları bükerek sertleşmiş blokları kalıplardan çıkarın. Blokları etiketli kaplarda tutarak hangi bloğun hangi genotipe karşılık geldiğini takip edin.Blokları düzeltmek için, göz diseksiyon mikroskobunda yukarıya bakacak şekilde bir bloğu mikrotom tutucusuna monte edin. Teflon kaplı bir jilet kullanarak, bloğun sadece en üst katmanını dikkatlice kesin. Bu işlem, gözün görülebileceği net bir yüzey oluşturur ve kesit düzlemi belirlenebilir.Ardından, başın her iki yanındaki ve önündeki fazla plastiği, başın etrafındaki plastiğin çoğu kesilene kadar kesin. Temiz bir jilet kullanarak çok sayıda ince plastik tabakayı kesip başa yavaşça yaklaşmak en iyi yöntemdir. İstenen kesit düzleminde, gözün üst kısmından ince tabakaları dikkatlice kaldırın.Her kesim için jiletin temiz alanlarını kullandığınızdan emin olun ve gözün dış yüzeyine ulaşana kadar işleme devam edin. Elde edilen kırpılmış blok, kesit düzlemine karşılık gelen, üst kısmı hafifçe eğik kesilmiş üç kenarlı bir piramit şeklinde olacaktır. Bloğu mikrotoma yerleştirin ve kesit almaya başlayın.20 ila 30 kesit oluşturulana kadar, elde edilen kesitler rezervuarla suyun yüzeyinde yüzecektir. Bir lamı 100 derece Celsius'ye ayarlanmış bir ısıtma plakasına yerleştirin. Ardından, ilk kesit grubunu, ahşap bir kulak çubuğunun düzleştirilmiş ucunu kullanarak su yüzeyinin altından döndürme hareketiyle kaldırın ve ardından bunları bir su damlasının içine aktarın.Lam üzerinde, suyun buharlaşmasını ve kesitlerin lama yapışmasını bekleyin, ardından işlemi başka bir 20 ila 30 kesit ile tekrarlayın. Tipik olarak, altı su damlası içine yerleştirilmiş üç göze ait kesitler bir lama rahatlıkla sığar. Tüm kesitler lam üzerinde toplandıktan sonra, boyanabilir ve mikroskopi için kapatılabilir. Yabani tip bir sineğin gözünden alınan tanjansiyel kesit.TIA'lar normal polarite sergiler ve aşağıdaki şemada sarı bir çizgiyle gösterilen dorsal ventral simetri hattına göre iyi yönlenmişlerdir. Yabani tip gözün iyi yönlenmiş tia'larının aksine, burada bir strabismus mutant gözünde tia polaritesi kaybolmuştur ve tüm fotoreseptör tamamlayıcıları mevcut olsa bile, rotasyon ve polarite rastgeleleşmiştir. Ayrıca, pigment hücresi ağının pigmentinin ve bireysel fotoreseptör hücrelerinin yokluğuna dikkat ediniz.Strabismus mutantı white minus genetik arka planda olduğu için, drosophila ro kinaz veya drop homozigot letal bir mutasyondur ve bu nedenle klonal analiz gerektirir. Burada, homozigot mutant klonlar pigment yokluğu ile işaretlenmiştir ve rotasyon kusurlarının yanı verilen tek hücre düzeyinde eksik veya fazla fotoreseptör hücre sayısı dahil olmak üzere yapısal kusurları göstermektedir. Mutant ve vahşi tip fotoreseptör örnekleri sırasıyla boş veya dolu mavi ok başları ile belirtilmiştir.Bu videoyu izledikten sonra, sinek gözlerini nasıl gömeceğiniz ve kesite ayıracağınız konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Yaklaşık üç gün içerisinde, göz fenotiplerini detaylı bir şekilde rutin olarak analiz edebilecek düzeye gelmeli ve böylece göz gelişimi sırasında yeni genlerin işlevlerini belirleyebilmelisiniz.

preparation-adult-drosophila-eyes-for-thin-sectioning-microscopic

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Biz fiksasyon, gömme, kesit, bir süreç tarif etmek, ve geç dönem...

Elektron Mikroskobu için embriyo Hazırlık Drosophila Embriyonik kalp tüpü

Geliştirilmesi ve Yetişkin hazırlanması Drosophila Brain ve Canlı Görüntüleme için Retinae

Larva, Pupa ve Erişkin diseksiyonu ve İmmünohistokimya<em&gt; Drosophila</em&gt; Retinaları

Bu videoda, sinek kafalarını seri kesitlere hazırlayan bir teknik olan yaka yöntemi kullanılarak Drosophila kafalarının parafine nasıl gömüleceği açıklanmaktadır. Parafin bölümleri, beyin anatomisinin histolojik incelemeleri ve nörodejenerasyonun değerlendirilmesi için kullanılır. Öne çıkan protokol, tek bir preparatta birden fazla sineğin nasıl işlenebileceğini, böylece zaman verimliliğini artırdığını ve deneysel artefaktları en aza indirdiğini göstermektedir.

Yetişkin Drosophila Kafalarının Parafin İçine Gömülmesi: Histoloji için Doku Hazırlama

Bu video, yetişkin Drosophila beyninin nasıl inceleneceğini ve izole edileceğini açıklar – aksi takdirde kütikül, göz ve trakeal doku tarafından gizlenen organı görselleştirmek için gerekli bir prosedür. Örnek protokol, Drosophila nörobiyolojisinde immün boyama ve görüntüleme yöntemleri için kullanılabilecek yüksek kaliteli preparatları veren ayrıntılı bir gösterimi göstermektedir.

Drosophila Erişkin Beyin Diseksiyonu: Sinek Nörobiyolojisinde Bir Yöntem

Bu videoda, göz-beyin kompleksinin Drosophila pupae'den nasıl disekatlanacağı ve izole edileceği anlatılmaktadır. Öne çıkan protokol, örneğin immün boyama ve diğer gen ekspresyonu deneyleri ile uyumlu, yüksek kaliteli doku veren prosedürü göstermektedir.

Sinek Pupalarından Göz-Beyin Kompleksinin Diseksiyonu: Retina Dokusunu İzole Etmek İçin Bir Yöntem

Yetişkin Drosophila beyin nöronal devreleri, yüksek beyin fonksiyonları ve karmaşık bozuklukları çalışmak için değerli bir sistemdir. Etkin bir yöntem, beyin temelli çalışmalar kolaylaştıracak küçük sinek kafasından tüm beyin dokusu incelemek için. Burada iyi korunmuş morfolojisi ile yetişkin beyinlerinde basit, tek adımlı diseksiyon protokol açıklar.

Basit Bir adım Yetişkin Tüm montaj Hazırlama Diseksiyon Protokolü<em&gt; Drosophila</em&gt; Brain

SEM analiz tür kimlik ya da fenotipik ayrımcılık yardım etmek için etkili bir yöntemdir. Bu iletişim kuralı organizmalar üç temsilcisi tür özel morfolojik detayları inceleyerek yöntemlerini açıklar ve birçok organizma özelliklerinin incelenmesi için genel olarak geçerli olacaktır ve doku türleri.

Elektron mikroskobu (SEM) tarama morfolojik analiz için kimyasal kurutma kullanarak prokaryotik ve ökaryotik organizmaların hazırlanması

Bu kağıt doku immünhistokimya, Batı analiz ve RNA-ekstraksiyon için işlenmesi için protokolleri ile birlikte Drosophila pupa retina dissekan için cerrahi bir yöntem sunuyor.

Drosophila pupa Retina diseksiyon immünhistokimya, Batı analiz ve RNA izolasyon için

Bu protokol, larva ve yetişkin Drosophila optik loblarını görüntüleme için hazırlamak için üç adımı tanımlar: 1) beyin diseksiyonları, 2) immünohistokimya ve 3) montaj. Belirli optik lob yapılarını görselleştirmek için farklı montaj yönleri gerektiğinden, adım 3'e vurgu yapılır.

Optik lob görselleştirmesi için larva ve erişkin drosophila beyinlerinin diseksiyonu, immünohistokimyası ve montajı

Burada, desenlenme ve büyüme kusurlarını ölçmek için yetişkin Drosophila gözlerinin yüksek çözünürlüklü görüntülemesi için hızlı, düşük maliyetli bir iş akışı sunuyoruz. Nokta montajı, yüksek çözünürlüklü görüntü elde etme ve görüntü analizi ile numune hazırlama protokolümüzü açıklıyoruz.

Harici yetişkin Drosophila yapılarının miktarının belirlenmesi için hızlı ve basit bir iş akışı

Öğrenin yetişkin Drosophila gözlerinin ince kesitlenmesi için hazırlanma yöntemini. Epoksi reçine gömme ve mikrotom kullanımı ile mutant fenotipleri analiz edin. Genetik etkileşimleri ve göz gelişimini detaylı inceleyin.

Yetişkin hazırlanması Drosophila Gözler İnce Kesit ve Mikroskobik Analizi

Daha fazla video keşfet