Name: Hücre Döngüsü FRET oranlı metrik sayesinde Kinaz ve Fosfataz Aktiviteleri İzleme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-27T12:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 38 s
Description: Öğrenin, FRET tabanlı canlı hücre görüntüleme ile hücre döngüsü boyunca kinaz ve fosfataz aktivitelerini izlemeyi. Bu yöntem, U2 OS hücrelerinde fosforilasyon değişikliklerini gerçek zamanlı analiz etmeyi sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar, İsveç araştırma konseyi, İsveç temel stratejik araştırma, İsveçli kanser toplum, İsveçli çocuk kanser toplumu, Åke WIBERGS vakıf ve Jeanssons vakıf tarafından desteklenmektedir.

1. Probu hücrelere Tanıtımı <ol><li> FRET-temelli bir prob ve bir plazmid görüşmekte direnci ile birlikte transfect hücreleri. Ilgi hücre tipi verimli bir transfeksiyon yöntemi seçin. U2OS hücreler için, standart kalsiyum fosfat transfeksiyon yöntemler yeterli sonuç verir 15. </li><li> En az yedi gün süreyle uygun antibiyotik hücreleri seçin. Bu zenginleştirir prob ve sınırları ciddi hücre döngüsünü etkileyen toksik ifade seviyeleri ya da ekspresyon düzeyleri ile hücrelerin miktarını ifade hücrelerin miktarı. </li><li> (Isteğe bağlı) istikrarlı klonlar için seçin. </li><li> Sabit veya canlı hücreler kullanarak, hem OBP ve YFP yaklaşık aynı oranda bütün hücrelerde mevcut olduğunu doğrulayın. </li><li> Bazı hücreler sadece CFP veya YFP içeren durumunda, muhtemelen rekombinasyon meydana geldi. Rekombinasyon bakteriyel büyüme sırasında veya prob transfeksiyon sonra da ortaya çıkabilir ve ikinci durumda plazmid kalite bağlı olarak değişebilir. Plazmid p tekrarlayınonarım ve sorun devam ederse transfeksiyon önce plazmid linearize. </li></ol> 2. İzleme oranlı metrik FRET <ol><li> Tohum hücrelerinin bir oda montaj için cam alt yemekler, veya kapak fişleri. Tabaklar / kapak fişleri hiçbir 1.5 (170 mikron kalınlığında) olduğunu emin olun. </li><li> 37 ° C'ye kadar sıcaklık kontrolü ile motorlu Epifloresans mikroskop fenol kırmızısı olmadan Mount besi hücreleri PH düzenleme, medya ya da CO 2 veya CO 2-bağımsız medya gibi Liebowitz-15 olarak kullanarak emin olun. </li><li> Iletilen ışık kullanarak hücrelerin odaklanın. Floresan ışığı kullanarak hücreleri üzerinde bakmayın. </li><li> YFP uyarma (YFPex) ve YFP emisyon (YFPem) filtreleri ve uygun bir dikroik ayna kullanarak 12 veya 16 bit görüntü satın alarak başlayın. Hala gerekli Subselüler çözünürlük izin maksimal binning kullanın. Maruz kalma süresi ya da şiddeti azaltmak için yüksek bir binning fototoksisite önlemek için çok önemlidir. </li><li> Banaaşure veya hücrelerinden yoksun bir alanda kaba bir ortalama, minimum ve maksimum piksel değerleri ölçmek veya tahmin edilerek arka plan yoğunluğu ve yaklaşık gürültü tahmin. Değişim maruz kalma süresi ve nötral yoğunluk filtreleri hücre ortalama sinyal yaklaşık arka plan yoğunluğu artı 5-10 kez max ve min arka plan şiddetleri arasında fark olduğunu. </li><li> Doymuş olan yakın olmadığını görüntüler doğrulayın. Görüntüde maksimum yoğunluğu hücrelerin mitoz girdiğinizde yoğunluk farkları için izin vermek için dinamik aralık (örneğin bir 12 bit görüntü max 2000) yarısından daha az olmalıdır. </li><li> Adım 2,4-2,6 CFP uyarma ve YFP emisyon filtreleri ve uygun bir dikroik ayna kullanarak tekrarlayın. </li><li> Transfekte hücreler ile 2.7 ila 2.4 için kullanılan bölgeler hariç, birden çok bölge seçin ve bu maksimum yoğunluğu sağlamak tüm hücrelerde dinamik aralık yarısından daha az. </li><li> Iki görüntü her 4 edinme time-lapse Denemeyi başlatYFPex kullanarak 5 dakika - YFPem ve CFPex - YFPem filtre setleri. </li></ol> 3. Koşulları doğrulanıyor ve optimize <ol><li> Elde edilen görüntüleri açın ve mitoz transfekte sonda ifade hücrelerin mitoz hücre döngüsü süresi izlemek. </li><li> Ölçülen hücre döngüsü süresi, kullanılan hücre tipi için yayınlanmış veriler karşılaştırın. Alternatif olarak, film, referans hücre döngüsü kez almak için sadece iletilen ışık bir görüntü (örneğin, DIC veya faz kontrast) her saat satın alarak hücreleri untransfected. </li><li> Mitoz bölünme ile mitoz hücre döngüsü zamanlamaları referans karşılık durumda, 4. adıma geçin. Alternatif olarak, yeniden kazanmak zor maruz kullanarak görüntü, daha fazla zaman noktaları veya birden fazla z düzeyleri ve 3. adımı tekrarlayın. </li><li> Hücre döngüsü zamanlamaları referans karşılık gelmez mitoz bölünme ile mitoz durumda, filmin sonunda sadece iletilen ışık bir görüntü (örneğin, DIC veya faz kontrast) her saat bir görüntü elde hücreleri transfektetransfekte hücreleri belirlemek için deney. </li><li> Transfekte hücreler hala uzun bir hücre döngüsü kez göstermesi durumunda, 1. adımı tekrarlayın fakat daha az prob transfect veya prob çok düşük miktarda içeren kararlı klonlar için seçin. </li><li> Transfekte hücreler floresan ışık yokluğunda normal hücre döngüsü kez göstermesi durumunda, görüntüleri arasında binning, nötral yoğunluk filtreleri, maruz kalma süresi ve zamanı değiştirerek adım 2 ancak düşük maruziyet tekrarlayın. </li></ol> 4. FRET analiz <ol><li> Mikroskopi için adanmış birçok yazılım tarafından analiz yapılabilir. Burada ücretsiz ImageJ (kullanarak analiz yapmak için nasıl tarif <a href="http://rsb.info.nih.gov/ij" target="_blank">http://rsb.info.nih.gov/ij</a> eklenti Oranı Plus (kullanan) <a href="http://imagej.nih.gov/ij/plugins/ratio-plus.html" target="_blank">http://imagej.nih.gov/ij/plugins/ratio-plus html</a> ). </li><li> ImageJ görüntüleri açın. Durumda da görüntüler çok renkli Stac formattak (örneğin Deltavision) ilk kez bir hyperstack onları dönüştürerek tek tek kanallarını da ayrı: hyperstack Görüntü hyperstack yığını ve daha sonra onları kullanarak tek kanal yığınlarını bölünmüş: boyutluluk Görüntü hyperstack azaltmak </li><li> Bu adım sadece oranları, 0 ve 1 aralığında olmadığını sağlayarak görüntülerin görsel netlik artırmaya yönelik olarak, isteğe bağlı Süreç Matematik-çarpın: YFPem yığını - YFPex 3 ile çarpın . </li><li> YFPex - YFPem yığını, hücrelerinden yoksun bir alana ilgi bir bölge (ROI) çizmek, ancak bu ölçülebilir bir hücreye yakındır. Aynı görüntünün farklı hücreler, arka plan ve sinyal yoğunluğu hem de tipik bir görüntünün merkezinde güçlü olarak farklı bölgelerde gerekebilir. </li><li> ROI yöneticisi ROI ekle: Analiz-araçlar-ROI yöneticisi. </li><li> Analiz-Tedbir: - YFPem ve CFPex YFPem yığını YFPex hem de yatırım getirisi ortalama yoğunluğu ölçün </li><li> Birden fazla timepoints tekrarlayın ve yakın ilgi hücre arka plan şiddetleri film boyunca benzer doğrulamak. </li><li> Minimum yoğunluğu ölçümleri analiz-Set-Min ve Max gri değeri: ölçümleri ayarlayın. </li><li> Ilgi bir hücrenin çoğunu kapsayan bir bölge çizin ve YFPex hem de en az yoğunluğu ölçmek - YFPem ve CFPex - YFPem yığını. 4.6 ölçülen minimum yoğunluğu ve arka plan yoğunluğu arasındaki fark atın ve ikiye bölün. Bu kırpma değeri için bir başlangıç ​​tahmin sağlar. </li><li> Açık Oranı Plus. CFPex ve YFPem - YFPem yığını YFPex seçin. Stack 1 olarak YFPem oranı seçin CFPex FRET - - yığını 1 olarak YFPem, ters fosforilasyon üzerine düşürür.Düzeltme FRET probları seçin YFPex görselleştirme oranı FRET için. </li><li> Ölçülen arka plan yoğunlukları ve kırpma değerleri yerleştirin. </li><li> Ölçekleme oranı yığını uygun bir göz u ayarlayın ve uygulayınp oranı değişiklikleri görmenizi tablosu (LUT). </li></ol> 5. Temsilcisi Sonuçlar Plk1 faaliyet mitoz sırasında G2 faz ve zirveleri çekirdeğinde ilk görünür. Şekil 3, 2 numaralı bölümde açıklandığı gibi, minimal fototoksisite ayarları kullanarak bir deney gösterir. Lütfen bu temsili bir ilk sonucu olduğuna dikkat ve maruz kalma koşulları veya görüntüleri arasında zaman sinyal gürültü oranı ya da zamansal çözünürlüğü artırmak için modifiye edilebilir. Prob ifade eden hücrelerin büyük bir çoğunluğu, 20 ila 25 saat arasında bir hücre döngü süresi ile görüntüleme koşulları ve prob ekspresyon düzeyleri hücre döngüsü zamanlamaları etkilemez belirten çoğaldığını Şekil 3D gösterir. Önemli gürültü olmasına rağmen, Plk1 aktivite trendi artan G2 ve mitoz 14 pik açıkça görülebilir (Şekil 3A). Burada, ham verilerin işlenmesi anlamına gelir ortalama ters ra kymograph (Şekil 3B) veya miktar olarak sunulan filtreleme tio (Şekil 3C) netlik artırabilirsiniz. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3410/3410fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1 FRET tabanlı prob Prensibi kinaz ve fosfataz faaliyetlerini izlemek için. İki fluorophores, genellikle CFP (mavi) ve YFP (yeşil), fosfor bağlayıcı bir etki alanı (turuncu) ve phosphorylatable dizisi (sarı) bağlanır. Böylece prob bir konformasyonel değişikliği indükleyen fosfor bağlayıcı etki alanı bağlayıcı Fosforilasyon (kırmızı) aracılık,. OBP ve YFP arasında FRET verimliliği etkileyen iki fluorophores arasındaki mesafe veya yönde bir fark konformasyonel değiştirme sonuçları. FRET, heyecan verici OBP ve izleme YFP emisyonu (noktalı çizgiler) tarafından görüntülenmiştir olabilir. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3410/3410fig2.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Şekil 2"> Şekil 2 deneysel işlemin şematik anahat. p_upload/3410/3410fig3.jpg "/&gt; Şekil 3 Plk1 faaliyet mitoz sırasında G2 faz ve zirveleri çekirdeğinde ilk görünür. 20x NA 0.7 hava objektif ve cıva lambası ile donatılmış bir Deltavision Spectris Görüntüleme sistemi kullanılarak 60 saat süreyle bir FRET tabanlı prob izleme Plk1 aktivitesi 9,14 ifade U2OS hücreleri çekildi. Görüntüleme koşulları 4x binning ve nötral yoğunluk filtreleri kullanarak, 2. bölümünde belirtildiği gibi, minimal fototoksisite neden seçildi gelen ışığın% 99 blok. 4 bölünmelerin bir hücre ters FRET-oranı, yanlış renk gösterimi,. B, ortalama bir filtre uyguladıktan sonra A gösterilen hücre kymograph. C, ters ölçümü A. D hücresi, 50 kümülatif mitotik giriş oranı FRET kızı hücreleri bölümleri de dahil olmak üzere ifade hücreleri, prob FRET.

<ol><li>Sun, Y., Wallrabe, H., Seo, S. A., Periasamy, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((FRET+microscopy+in+2010%3A+the+legacy+of+Theodor+Forster+on+the+100th+anniversary+of+his+birth%5BTitle%5D)+AND+%22Chemphyschem%22%5BJournal%5D)">FRET microscopy in 2010: the legacy of Theodor Forster on the 100th anniversary of his birth.</a> Chemphyschem. 12, 462-474 (2011).</li>
<li>Allen, M. D., Zhang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Subcellular+dynamics+of+protein+kinase+A+activity+visualized+by+FRET-based+reporters%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Subcellular dynamics of protein kinase A activity visualized by FRET-based reporters.</a> Biochem. Biophys. Res. Commun. 348, 716-721 (2006).</li>
<li>Kunkel, M. T., Ni, Q., Tsien, R. Y., Zhang, J., Newton, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatio-temporal+dynamics+of+protein+kinase+B%2FAkt+signaling+revealed+by+a+genetically+encoded+fluorescent+reporter%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Spatio-temporal dynamics of protein kinase B/Akt signaling revealed by a genetically encoded fluorescent reporter.</a> J. Biol. Chem. 280, (2005).</li>
<li>Violin, J. D., Zhang, J., Tsien, R. Y., Newton, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genetically+encoded+fluorescent+reporter+reveals+oscillatory+phosphorylation+by+protein+kinase%5BTitle%5D)+AND+%22C.+J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">A genetically encoded fluorescent reporter reveals oscillatory phosphorylation by protein kinase.</a> C. J. Cell. Biol. 161, 899-909 (2003).</li>
<li>Kunkel, M. T., Toker, A., Tsien, R. Y., Newton, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium-dependent+regulation+of+protein+kinase+D+revealed+by+a+genetically+encoded+kinase+activity+reporter%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Calcium-dependent regulation of protein kinase D revealed by a genetically encoded kinase activity reporter.</a> Journal of Biological Chemistry. 282, 6733-6742 (2007).</li>
<li>Harvey, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genetically+encoded+fluorescent+sensor+of+ERK+activity%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A genetically encoded fluorescent sensor of ERK activity.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 19264-19269 (2008).</li>
<li>Fosbrink, M., Aye-Han, N. N., Cheong, R., Levchenko, A., Zhang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualization+of+JNK+activity+dynamics+with+a+genetically+encoded+fluorescent+biosensor%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Visualization of JNK activity dynamics with a genetically encoded fluorescent biosensor.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 5459-5464 (2010).</li>
<li>Gavet, O., Pines, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Progressive+activation+of+CyclinB1-Cdk1+coordinates+entry+to+mitosis%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Cell%22%5BJournal%5D)">Progressive activation of CyclinB1-Cdk1 coordinates entry to mitosis.</a> Dev. Cell. 18, 533-543 (2010).</li>
<li>Fuller, B. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Midzone+activation+of+aurora+B+in+anaphase+produces+an+intracellular+phosphorylation+gradient%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Midzone activation of aurora B in anaphase produces an intracellular phosphorylation gradient.</a> Nature. 453, 1132-1136 (2008).</li>
<li>Ni, Q., Titov, D. V., Zhang, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analyzing+protein+kinase+dynamics+in+living+cells+with+FRET+reporters%5BTitle%5D)+AND+%22Methods%22%5BJournal%5D)">Analyzing protein kinase dynamics in living cells with FRET reporters.</a> Methods. 40, 279-286 Forthcoming.</li>
<li>Morgan, D. O. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aMorgan%2C+DO+%22The+cell+cycle+%3A+principles+of+control%22">The cell cycle : principles of control</a>. , New Science Press, in association with Oxford University Press. (2007).</li>
<li>Lindqvist, A., Rodriguez-Bravo, V., Medema, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+decision+to+enter+mitosis%3A+feedback+and+redundancy+in+the+mitotic+entry+network%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">The decision to enter mitosis: feedback and redundancy in the mitotic entry network.</a> J. Cell. Biol. 185, 193-202 (2009).</li>
<li>Gavet, O., Pines, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activation+of+cyclin+B1-Cdk1+synchronizes+events+in+the+nucleus+and+the+cytoplasm+at+mitosis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Activation of cyclin B1-Cdk1 synchronizes events in the nucleus and the cytoplasm at mitosis.</a> J. Cell. Biol. 189, 247-259 (2010).</li>
<li>Macurek, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polo-like+kinase-1+is+activated+by+aurora+A+to+promote+checkpoint+recovery%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Polo-like kinase-1 is activated by aurora A to promote checkpoint recovery.</a> Nature. 455, 119-123 (2008).</li>
<li>van der Eb, A. J., Graham, F. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assay+of+transforming+activity+of+tumor+virus+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Methods.+Enzymol%22%5BJournal%5D)">Assay of transforming activity of tumor virus DNA.</a> Methods. Enzymol. 65, 826-839 (1980).</li>
<li>Lamprecht, M. R., Sabatini, D. M., Carpenter, A. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((CellProfiler%3A+free%2C+versatile+software+for+automated+biological+image+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechniques%22%5BJournal%5D)">CellProfiler: free, versatile software for automated biological image analysis.</a> Biotechniques. 42, 71-75 (2007).</li>
<li>Roszik, J., Lisboa, D., Szollosi, J., Vereb, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evaluation+of+intensity-based+ratiometric+FRET+in+image+cytometry--approaches+and+a+software+solution%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Evaluation of intensity-based ratiometric FRET in image cytometry--approaches and a software solution.</a> Cytometry A. 75, 761-767 (2009).</li>
</ol>

Biz ifşa etmek başka bir şey var.

Hücre döngüsü boyunca FRET izlenmesi, kısa vadeli dış uyaranlara tepkilerin değerlendirilmesi daha az önemli olan hususlar gerektirir. İlk olarak, hücre döngüsünün ilerlemesi kolayca bu fototoksisite minimumda tutulması gerektiren stres sinyalizasyon tarafından rahatsız edilir. İkincisi, tüm gazetecilere potansiyel kinazlar, fosfatazlar veya etkileşim alanları titre edilerek hücresel süreçleri etkileyebilir. Deneysel koşullar yeterli olup olmadığını değerlendirmek için belki de en basit yolu, mitoz bölünme ile mitoz hüc...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif </td><td> Katalog Numarası </td><td> Şirket </td></tr><tr><td> Leibovitz L-15, herhangi bir fenol kırmızısı </td><td> 21083-027 </td><td> Gibco, Yaşam Teknolojileri tarafından </td></tr><tr><td> DMEM + Glutamax-I </td><td> 31966 </td><td> Gibco, Yaşam Teknolojileri tarafından </td></tr><tr><td> Fetal sığır serumu (FBS) </td><td> SV30160.03 </td><td> HyClone </td></tr><tr><td> % 0.05 tripsin EDTA </td><td> SH30236.01 </td><td> HyClone </td></tr><tr><td> Penisilin-Streptomisin </td><td> SV30010 </td><td> HyClone </td></tr><tr><td> DPBS </td><td> 14287 </td><td> Gibco, Yaşam Teknolojileri tarafından </td></tr><tr><td> Puromycin </td><td> P8833 </td><td> Sigma-Aldrich </td></tr></tbody></table>

hücre döngüsü fret oranlı metrik sayesinde kinaz ve fosfataz aktiviteleri İzleme

Monitoring Kinase and Phosphatase Activities Through the Cell Cycle by Ratiometric FRET

Förster rezonans enerji transferi (FRET) tabanlı gazetecilere 1 canlı hücrelerde bulunan endojen kinaz ve fosfataz faaliyetlerinin değerlendirilmesine izin verir. Bu problar genellikle phosphorylatable dizisi ve fosfor bağlayıcı etki alanı tarafından müdahale, OBP ve YFP türevleri oluşur. Fosforilasyon üzerine bir değişikliğe yol OBP ve YFP arasındaki mesafe veya yön değişikliği prob değişiklikler konformasyon, verimliliği FRET (Şekil 1). Birkaç probları PKA 2, PKB 3, KZÇ 4, 5 PKD, ERK 6, JNK 7, Cdk 18, Aurora B 9 gazetecilere ve Plk1 9 dahil olmak üzere birden fazla kinazlar ve fosfatazların faaliyet dengesi, izleme, son on yıl içinde yayınlanmış olan . Modüler tasarımı göz önüne alındığında, ek problar, yakın bir gelecekte 10 ortaya çıkması muhtemeldir . Hücre döngüsü boyunca ilerlemesi, stres signali etkilenirng 11 yolakları. Özellikle, hücre döngüsü, hücrelerin strese 12 kurtarma ile karşılaştırıldığında büyüme soğukkanlı sırasında farklı düzenlenir. Hücrelerinin hücre döngüsü boyunca Time-lapse görüntüleme, bu nedenle özel dikkat gerektirir. Oranlı metrik görüntüleme istihdam, özellikle yüksek sinyal gürültü oranı ile iki görüntü sonuçlarını doğru yorumlamak için gereklidir, çünkü bu bir sorun haline gelir. Oranlı metrik kinaz ve fosfataz aktiviteleri hücre döngüsü bağımlı değişiklikler görüntüleme ağırlıklı hücre döngüsü 8,9,13,14 alt bölümlerine sınırlı olmuştur FRET. Burada, insan hücre döngüsü boyunca oranlı metrik görüntüleme kullanarak FRET tabanlı probları izlemek için bir yöntem tartışın. Bu yöntem, pek çok araştırmacı, yaşam bilimleri ve mikroskopi veya görüntü işleme uzman bilgisi gerektirmez ekipman dayanmaktadır.

FRET tabanlı gazetecilere giderek canlı hücre kinaz ve fosfataz aktiviteleri izlemek için kullanılır. Burada hedef fosforilasyon hücre döngüsü bağımlı değişiklikleri değerlendirmek için FRET tabanlı gazetecilere nasıl kullanılacağı hakkında bir metodu tanımlar.

Hücre Döngüsü FRET oranlı metrik sayesinde Kinaz ve Fosfataz Aktiviteleri İzleme

Förster rezonans enerji transferi (FRET) tabanlı raporlar1 canlı hücrelerde endojen kinaz ve fosfataz aktivitelerinin değerlendirilmesine olanak tanır. Bu tür...

Bu videoda, kinaz ve fosfataz aktiviteleri hücre döngüsü boyunca Förster Rezonans Enerji Transferi veya FRET kullanılarak izlenmektedir. Burada, bir polo benzeri kinaz 1 veya PLK1 aktivite probunun bir ucuna siyan floresan protein CFP, diğer ucuna ise sarı floresan protein YFP yerleştirilmiştir. Bu prob, U2 OS hücrelerine transfekte edilir.Ardından, G2/M geçişi sırasında LKK1 hedeflerinin fosforilasyon durumunu incelemek için, TRANSFEKTE edilmiş U2 OS hücrelerine zaman ayarlı floresan görüntüleme uygulanır. CFP ve YFP birbirine yakın olduğunda ve CFP uyarıldığında, enerji YFP'ye aktarılır ve YFP emisyonu tespit edilebilir. Ancak, prob fosforile olduğunda, proteindeki konformasyonel bir değişiklik CFP ve YFP'yi birbirinden ayırır.Şu anda CFP uyarıldığında, güçlü bir CFP emisyonu ve yalnızca zayıf bir YFP emisyonu tespit edilir; hem CFP hem de YFP uyarımı sonrası YFP emisyonu oranının kantifikasyonu, PLK1 aktivitesinin G2 evresinde arttığını ve mitoz sırasında zirveye ulaştığını göstermektedir. Dolayısıyla bu tekniğin, standart geometrik görüntüleme gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, hücre döngüsünün ne görüntüleme koşulları ne de bir probun ekspresyonu tarafından bozulmamas

monitoring-kinase-phosphatase-activities-through-cell-cycle

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

, Hücrelerden oluşan bir nüfus hücre döngüsü konumunun belirlenmesi, ya da sinyalleri çoğalması nasıl etkilediğini anlamak, bu protokolü kullanarak flow sitometri ile kolayca ölçülebilir. Biz hücreleri boyama ve hücre döngüsü konumlarını miktarının belirlenmesi için basit bir deneysel yaklaşım raporu.

Memeli Hücreler, Hücre Döngüsü Pozisyon Analizi

Förster rezonans enerji transferi (FRET) mikroskopi gazetecilere gibi çeşitli biyosensör kullanılarak canlı hücrelerde olayların sinyalizasyon gerçek zamanlı izleme için güçlü bir tekniktir. Burada nasıl bir özelleştirilmiş Epifloresans oluşturmak için ticari olarak mevcut bileşenleri ve nasıl deneyler FRET için kullanmak, görüntüleme sistemi FRET tarif.

Unimoleküler Biyosensörler kullanma Canlı Hücreler Olaylar Sinyal gerçek zamanlı izlenmesi için Mikroskopi FRET

Bu video, bir test proteinine özgü antikorlar üzerinde etiketlenmiş donör ve alıcı floroforların yardımıyla endojen protein fosforilasyonunu belirlemek için zamana bağlı Förster rezonans enerji transferini veya TR-FRET testini açıklar. Bu teknik, hücre lizatlarındaki test proteinlerinin fosforilasyonunu ölçmek için tasarlanmıştır.

Hücrelerde protein fosforilasyonunun izlenmesi için zamana bağlı Forster rezonans enerji transferi

Protein kinazlar, inter-ve intraselüler sinyal iletimi için kritik olan, oldukça gelişen sinyalleme enzimleri ve iskeletleridir. Radyoaktif işaretli adenosin trifosfatın ([γ- 32 P] ATP) kinaz aktivitesini ölçmek için bir protokol sunuyoruz, bu hücresel sinyal düzenlenmesinin aydınlatılmasına yardımcı olan güvenilir bir yöntemdir.

Protein Kinaz Aktivitesini Radyoaktif Etiketli ATP ile Tahlil

Siklin bağımlı kinaz 1 (Cdk1) hücre döngüsünün G2 aşamasında aktif ve birçok hücresel yolları düzenler. Burada, bir vitro kinaz tahlil için bir protokol ile bu önemli kinaz hücresel hedefleri oluşturmak üzere Cdk1 özgü fosforilasyon siteler tanımlaması sağlar Cdk1 mevcut.

Siklin bağımlı kinaz 1 tanımlaması belirli fosforilasyon siteleri bir Vitro kinaz tarafından tahlil

Çok fonksiyonlu Ser/Thr kinaz AURKA'nın aktivasyonu, Thr288'deki otofosforilasyonu ile ayırt edilir. Burada, mitoz boyunca kinaz aktivasyonunu takip etmek için hızlı bir FRET protokolü ile birlikte prob mühendisliği için bazı stratejileri göstermektedir.

Aurora kinazının Gerçek Zamanlı İzlenmesi Canlı Hücrelerde Konformasyonsal FRET Biyosensörleri Kullanılarak Aktivasyon

Zaman çözümlü Förster rezonans enerji transfer hücresi tabanlı tahlil protokolleri, endojen fosforile sinyal dönüştürücüsünün ve transkripsiyon aktivatörü (STAT) 1/3/4/5/6 proteinlerinin 384 kuyucuklu bir formatta basit, spesifik, hassas ve sağlam bir şekilde ölçülmesi için tanımlanmıştır.

İnsan Hücrelerinde Endojen Fosforile STAT Proteinlerinin Ölçümü için Zaman Çözülmüş Förster Rezonans Enerji Transfer Testleri

Burada, endojen fosfoprotein fosfatazların ve bunların hücre ve dokulardan etkileşen proteinlerinin zenginleştirilmesi ve kütle spektrometrisine dayalı proteomiklerle tanımlanması ve nicelleştirilmesi için bir protokol sunuyoruz.

Fosfoprotein fosfatazları ve bunların interaktörlerini tanımlamak için kütle spektrometrisine dayalı bir yaklaşım

Bu çalışmada sunulan protokol, cAMP Fark Dedektörünün In Situ  olarak cAMP ölçümündeki etkinliğini iki yöntemle göstermektedir. Bir yöntem, HEK-293 hücreli 96 oyuklu bir plaka okuma spektrofotometresi kullanır. Diğer yöntem, bir floresan mikroskobu altında tek tek HASM hücrelerini gösterir.

Floresan cAMP Fark Dedektörünü Yerinde Kullanarak Canlı Hücrelerde Gerçek Zamanlı cAMP Dinamikleri

Burada, canlı HepG2 hücrelerinde Akt aktivasyonu ve fosforilasyonunun uzay-zamansal dinamiklerini ölçmek için bir protokol sunuyoruz. Förster rezonans enerji transferi (FRET) görüntüleme, kanser hücrelerinde insülin sinyal yolları ve metabolik düzenleme hakkında değerli bilgiler sağlayan güçlü bir araçtır.

HepG2 Hücrelerinde Metabolik Olarak Düzenlenmiş Akt Aktivasyon Dinamiğinin Canlı Hücre Förster Rezonans Enerji Transferi Görüntülemesi

Öğrenin, FRET tabanlı canlı hücre görüntüleme ile hücre döngüsü boyunca kinaz ve fosfataz aktivitelerini izlemeyi. Bu yöntem, U2 OS hücrelerinde fosforilasyon değişikliklerini gerçek zamanlı analiz etmeyi sağlar.

Hücre Döngüsü FRET oranlı metrik sayesinde Kinaz ve Fosfataz Aktiviteleri İzleme

Daha fazla video keşfet