Name: Deri ve Kol ve bacak kemikleri innerve Fare Duyusal Sinir Lif doku hazırlanması ve immün (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-01-26T12:00:00.000+00:00
Duration: 10 min 25 s
Description: Öğrenin, fare deri ve uzun kemiklerindeki duyusal sinir liflerinin immünositokimyasal analizi için doku hazırlama ve boyama yöntemlerini. Bu teknik, periferik sinir sisteminin organizasyonunu ve protein ekspresyonunu incelemeye olanak tanır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Ona sürekli yardım ve bu işe yapıcı eleştiri ve Dr. Donna L. Hammond; konfokal mikroskopi / fare plantar punch biyopsi immün görüntüleme ilk standardizasyon yardımlarından dolayı Dr. Yuriy M. Usachev teşekkür ederiz. Bu çalışma NINDS / NIH (NS069898) hibe ve DPM, Savunma Prostat Kanseri Araştırma Programı Bakanlığı (DoD-PCRP-101.096) Fikir Kalkınma Hibe Ödülü tarafından finanse edildi

1. Hayvan Perfüzyon Bu çalışmada gerçekleştirilen tüm hayvan prosedürleri Iowa Üniversitesi Kurumsal Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi tarafından onaylanmış ve araştırma hayvanların kullanımı için NIH yönergeleri izleyin. <ol><li> Perfüzyon bir gün önce, 4 ° C'de 1 L fosfat tamponu (0.2 M PB çift distile H 2 O, pH 7.4), ve mağaza hazırlamak Bu perfüzyon ve fiksasyonu sonrası süreçler için kullanılır. </li><li> : 30 saniye için 200 ml cam beher GKD 2 O mikrodalga perfüzyon gününde, (PFA, pH 7.4)% 4.0 paraformaldehid 0.1M PB fiksatif çözüm 2 farelerin perfüzyon için yeterli bir hacmi 500 ml hazırlamak veya kaynar yaklaşımlar kadar. Davlumbaz altında sürekli karıştırılarak beher 20 g granül paraformaldehid (PFA) ekleyin. 5 N NaOH 5 ml damla bilge ve çözüm netleşene kadar karıştırın. PFA tamamen çözülür, oda sıcaklığında (RT) soğutulur. Slowly 0.2 M PB 250 ml sürekli karıştırarak ekleyin. Giderek zayıflar HCl çözümleri (6 N 1 K 0.1 N) kullanarak, pH 7.4 'e ayarlayın. Son hacim 500 ml ve buz üzerinde soğuk ayarlayın. Ayrıca buz üzerinde chill 2 O ve GKD 1:1 seyreltilmesi ile 0,1 M PB 400 ml 0.2 M stok hazırlamak. </li><li> Intraperitonial aşırı dozda anestezi (27G bir iğne ile uygulanan pentobarbital sodyum, 80 mg / kg) enjeksiyonu fare anestezisi. </li><li> Perfüzyon sırasında, 0.1 M PB (GKD 2 O ile seyreltilmiş 0.2 M PB stok 1:1) ve PFA 150 ml, 50 ml fare dolaşıma sırayla geçmiş olacak. PB ile tüp dolum ve bir ucunda 23 1 / 2 G kelebek iğne sabitleme peristaltik pompa ayarlayın. 0,1 M PB içeren behere Hortumun diğer ucunu bırakın. Ile 10 ml / dak peristaltik pompa ve pompa hızı, çözümün bir tüpün içinde hiçbir hava kabarcığı olmadığından emin olmak için yeterli miktarda ayarlayın. </li><li> A kadar bekleyin.nesthetized fare artık ayak / kuyruk tutam ve göz kırpma refleksi olarak herhangi bir refleks aktivite gösterir. Bir davlumbaz içinde bir diseksiyon tepsi ventral tarafta hayvan Lay ve bant ile pençeleri güvenli. % 70 etanol ile kürk Sprey. Göğüs kafesi ve karın duvarı açığa çıkarmak için üst çeyrek, orta hat boyunca deri yoluyla bir kesi olun. Daha sonra, göğüs kafesi tabanı karın duvarı kesti. Bu kesi yaptıktan sonra, diyafram ve sternum alt ucunda görünür olmalıdır. Dikkatli bir şekilde akciğerlere zarar vermemeye özen diyafram marjı ile soldan sağa doğru ve sternumun tüm uzunluğu boyunca kesilmiş. Bu aşamada sternum Bazı küçük kanama normaldir ve perfüzyon taviz olmaz. Bir kez sternum boyunca kesi yapılmış ve diyafram kesilmiş, kalp maruz kaldığı gibi göğüs kafesi yukarı ve dışa doğru, her bir yarısı kaldırmak mümkün olmalıdır. Gerekirse akciğerlerde bir kenara taşıyın. Göğüs kafesinin her iki yarısıhemostatik kelepçeler kullanımı ile bu pozisyonda yapılacaktır. Hayvan uzun eksenine paralel, sol ventrikül içine peristaltik pompa 3-4 mm bağlı kelebek iğne (23 1 / 2 G), takın . Bu yerleşim iğne yerinden olma riskini en aza indirir. Dönüş dolaşımı, kalp dışarı akmasına izin sağ atriyuma küçük bir kesi olun. </li><li> 0.1 M PB ile 4-5 dk 10 ml / dak perfüzyon başlayın. Eğer hala bu noktada sağ atrium kaynaklanan önemli miktarda kan akışını temizlenene kadar devam etmektedir. </li><li> PB akışını durdurun ve% 4 PFA çözüm için peristaltik pompa giriş anahtarı. 5 ml / dak akış hızı düşürün ve 20-25 dakika süreyle PFA çözüm pompalama devam. PFA dolaşıma girerken, birkaç dakika sonra kasların spazmı içine gidin ve hayvan anlamıyla konumunda "sabit" olmalıdır. Bu katılık, hayvan taşımak için özen hindpaws karşı hafifçe iterek test edilebilirnd kanül yerinden. İyi perfüzyon yanıt olarak esneme ekstremite önleyecektir. PFA perfüzyon tamamlandıktan sonra, kanül ve hemostatik kelepçeler kesilir ve kadavra doku diseksiyonu için hazırlanmış olabilir. Diseksiyonu yaklaşım kullanılan özel doku bağlıdır. </li><li> % 4 /% 5 (v / v) PFA pikrik asit (PA) sadece plantar yumruk toplama ve post fiksasyon için% 4 PFA için doymuş pikrik asit çözeltisi ekleyerek hazırlayın. PA Eklenmesi nöronal periferik dokularda 1 antijen seçilebilirliği önemli ölçüde artırır </li><li> % 0.07 gliserol ve% 15 sakaroz ile 0.1 M PB% 10 EDTA - kemik / kıkırdak doku kireç önleyici / dölveriminin çözüm hazırlayın. EDTA-tabanlı çözümler epitoplar 2 muhafaza ederken doku kirecini. </li><li> 0.1 M PB% 30 sakaroz - dölveriminin çözüm hazırlayın. </li></ol> 2. Doku Diseksiyon / Kaldırma, Post-fiksasyon ve Kesit <ol><li> Plantar Punch Perfu yerleştirin.aşağı bir kesim mat veya diğer sağlam bir yüzey sed hayvan ventral tarafta. Ortasına ayak, ayak plantar yüzey-up, punch biyopsi aleti (Harris mikro-yumruk, Ted Pella A.Ş. 3 mm çapında) sıkıca bastırın Holding. Biyopsi aracı arka pençe tamamını kesti onaylamak için biyopsi aracı 180 derece ileri ve geri çevirin. Ayak yavaşça biyopsi aracı kaldırmak ve doku çıkarma kapaklı steril 2 ml tüpe 1 ml% 4 PFA /% 5 PA çözüm içeren. </li><li> Ekstremite Kemik (örneğin, femur) , Hem de arka bacaklarda boyunca devam pelvis düzeyinde hayvanın arka boyunca yatay bir kesi yapmak. Pelvis ve femur proksimal femur başkanı zedelemeden iken pelvis ayrı çevreleyen kas içine Kes. Tibia / fibula distal kafa dokunmadığınızdan oyulmuş, kemik mil çevresindeki kas / periost kaldırılıyor. Femur% 4 PFA / 1 ml 2 ml içeren bir tüp içine yerleştirin% 5 PA çözüm. </li><li> 16-18 saat süreyle bir rocker nazik karıştırma ile 4,% 4 PFA /% 5 PA çözüm doku örnekleri Post-fix ° C </li><li> Aşağıdaki gibi doku kirecini: plantar yumruk (küçük ayak kemikleri kirecini) için 2 ml tüp içinde steril bir kap ile doku yumruk,% 0.07 gliserol ve 15 ile% 10 EDTA çözeltisi 0,1 M PB 1,5 ml içeren % sakaroz. 16-18 saat süren hafif karıştırma ile 4 ° C bacak kemikleri% 0.07 gliserol,% 10 EDTA çözeltisi 0,1 M PB 1,5 ml içeren 2 ml tüp içinde steril bir kap ile doku yerde bir rocker tüp yerleştirin. ve% 15 sakaroz. 6-7 gün, 4 ° C için hafif karıştırma ile bir rocker tüp yerleştirin. 24 saat ve bir çift forseps katılık kaybı için izlenen doku her decalcification çözümü değiştirilmesi gerekir. </li><li> 2 ml steril bir tüpe 1,5 ml (0,1 M PB% 30 sakaroz) dölveriminin çözüm kap doku transferi ve bir rocker w tüp yerii. hafif karıştırma 16-18 saat 4 ° C </li><li> Kesit için doku hazırlayın: bir yatak optimal kesim sıcaklığının hacmi (OCT) bileşik bir Kriyostat doku montaj bloğu (Sakura Finetek USA Inc) ve (tipik olarak -20 ° C'de muhafaza) Kriyostat odasında dondurmak için izin. Kriyojenik aerosol (Sito-freeze, Kontrol Co ABD) dondurma işlemi hızlandırmak için OCT püskürtülür. Place doku OCT bu yatak örnek ve OCT ek bir ince tabaka ile kaplayın. Sertleşti ve doku içinde donmuş kadar yavaşça bu Ekim kriyojenik aerosol sprey. Place Kriyostat odasında kesme kafası üzerine numune ve doku örneği blok kesme sıcaklığına gelmesini sağlayınız - en az 1 saat. Gömme bileşik hala kırılgan bölümleri ve doku hasarı çok soğuk sonuçlar bölümüne çalışıyorum. </li><li> Doku kez optimum kesim sıcaklığına ulaştığında, numune kesme başlayacak ve 40 mikron bölümleri oluşturmak. </li><li>plantar yumruk içeren 10 mM sodyum azid ile 0,1 M PB 12 iyi doku kültürü plakaları cryosections toplamak. 4 ° C'de bu çözüm bölümleri sular altında kalmasını emin olun. Bölüm immün amaçlar için 4-6 ay bu şekilde saklanabilir. Alternatif olarak, serbest bölümler -20 ° C (500 ml 0.1 M PBS, pH 7.2, 30 g sukroz, 10 g PVP40, 300 ml etilen glikol) dölveriminin çözüm süresiz olarak saklanabilir. 3.) saf su ile son ses seviyesini ayarlama 1L bacak kemikleri, jelatin kaplı öncesi slaytlar (veya SuperFrost üzerine cryosections doğrudan toplamak için Plus slaytlar, Fisher Scientific) ve -20 ° C'de saklamadan önce, 1 saat süreyle kurumaya izin Kemik bölümlerinde bu şekilde saklanan slaytlar üzerinde 2-3 ay içinde amaçlar immün için kullanılabilir. </li></ol> 3. Duyusal sinir lifleri Doku Bölümler immün 3.1. Plantar yumrukbölümleri yüzer bölüm boyama <ol><li> Bir tıraş bıçağı kullanarak, 1 ml mikropipet ucunun sonunda 6-7 mm kesti. Ön koşul (uç duvarlara doku bölümleri yapışmasını engeller) 0,1 M PB birkaç kez% 1 fetal sığır serumu (FBS) aspire ucu içinde. 24 iyi doku kültürü plakası lekeli olması plantar yumruk bölümleri aktarın. Normalde 8-10 bölümlerde çeşitli yüksek kaliteli bölümleri immün başına oluşturulur sağlamak için de her boyanmış olmalıdır. </li><li> 500 ul başına dinç RT bir rocker karıştırma ile 5 dakika, 0.1 M PB plantar yumruk bölümleri ile yıkayın. 2 kez daha tekrarlayın. </li><li> Yıkama solüsyonu atın ve 1 saat süre ile bir rocker nazik karıştırma ile,% 10 keçi serum ve 0.3% 0.1 Triton X-100 M PB (ortalama iyi bir çözüm engelleme 500 ul) oluşan, çözüm engelleme plantar yumruk bölümleri inkübasyon 4 ° C </li><li> Engelleme çözümü birincil antibo atın ve doku kesitlerinde inkübe4 nazik bir rocker karıştırma ile 18-24 saat için 250 ul engelleme çözümü seyreltilmiş dy / antikorlar ° C Araştırmacı deneysel gereksinimleri, tek immunolabeling (belirli bir protein ya da sinir lifi işaretleyici karşı bir birincil antikor ile) veya çift immunolabeling (iki protein veya sinir lifi işaretleri karşı iki primer antikorları ile) dayanarak, aynı bölümde yapılabilir. Çift immunolabeling yerine getirirken farklı immünoglobulin G (IgG) isotypes (örneğin monoklonal antikorlar saflaştırılmış, alternatif olarak kullanılan iki birincil antikorlar farklı konak türleri (örneğin bir fare ve tavşanlarda gündeme yükseltilmiş) yükseltilmiş olduğunu doğrulamak için önemli olan, ya da bir IgG1 ve bir IgG2a) kullanılabilir. Aşırı buharlaşma önlemek için bir gecede inkubasyon Parafilm plaka sızdırmazlık için tavsiye edilir. Periferik duyusal sinir lifleri leke için, birkaç spesifik antikorların kullanılabilir. 200 protein nörofilaman karşı antikorlar (NF200, Sigma) etiket large-çapı elyaf, kalsitonin gen-ilişkili peptid (CGRP Sigma) ise ve geçici reseptör potansiyeli vanilloid 1 (TRPV1, Neuromics) etiket peptiderjik, küçük çaplı periferik duyusal lifler. Tüm periferik sinir lifleri de β3-tubulin karşı antikor ile boyandı. Ciltte kollajen IV (Abcam) epidermis, dermis ayıran bazal membran tanımlamak için kullanılır. Genel bir kural olarak, antikorlar genellikle 5-10 mg / ml konsantrasyonda hücre tabanlı kültürlü immünofloresan deneyleri için daha konsantre 5-10 kat olması gerekir. </li><li> Doku kesitlerinde engelleme çözümünün 500 ul başına (Triton X-100) ve RT bir rocker üzerinde güçlü karıştırma ile 5 dakika yıkayınız. 3 kez daha tekrarlayın. </li><li> 4 bir rocker nazik karıştırma uygun fluorofor-konjuge sekonder antikorlar (genellikle çözüm, 500 ul engelleme 1:1000 sulandırılmış) çamaşır çözüm ve inkübe doku kesitlerinde ° C atın Plaka must fluorophores, photobleaching önlemek için alüminyum folyo ile sarılmış. </li><li> 500 ul engelleme çözümü için iyi RT bir rocker üzerinde güçlü karıştırma ile 10 dakika ile doku bölümleri yıkayın. Daha sonra oda sıcaklığında 10 dakika boyunca kuvvetli karıştırma ile 0,1 M PB 500 ul ile yıkayın. Son olarak, oda sıcaklığında 10 dakika süreyle kuvvetli karıştırma ile 0.05 M PB 500 ul ile yıkayın. </li><li> FBS-tedavi ucu (sonundan itibaren 6-7 mm kesim) ile 1 ml mikropipet kullanarak, doku kültürü ve plakası, transfer SuperFrost üzerine bölümleri aspirat Plus mikroskop slaytlar. Bölümleri düzenlemek ve ince bir fırça ile aşırı yıkama tamponu emer. Uzun süre ışığa maruz kalmaktan kaçınınız. Bölümler slayt (5-30 dk) bölümleri kurutmak için izin vermek amacıyla, RT slaytlar inkübe edin. </li><li> Montaj orta (ProLongGold, Vectashield veya benzeri) birkaç damla uygulayın, yavaş yavaş bölümleri üzerine bir cam lamel yerleştirin. Slaytlar, 5 dakika süreyle karanlıkta oturup, ve daha sonra şeffaf tırnak lamel kenarları mühür izin verparlatın. 15-20 dakika süreyle hava kurutma izin verin. Slaytlar şimdi floresan herhangi önemli bir kayıp olmadan birkaç yıldır görüntülenir ya da -20 ° C'de saklanabilir. </li></ol> 3.2. Ekstremite kemik bölümleri - slayt boyama <ol><li> Slaytları -20 ° C depolama RT dönmek için izin verin. Hidrofobik bir bariyer kalem (Süper Pap Sıvı Engelleme Kalem, Ted Pella Inc.) Kullanarak çözüm cömert bir tabaka ile boyanmış kemik bölümleri içeren slayt bölge çemberle. 10-15 dakika kurumaya bırakın. </li><li> 5 dakika boyunca slayt başına 0,1 M PB 250 ul kemik bölümleri yıkayın ve 2 kez daha tekrarlayın. </li><li> Yıkama solüsyonu atın ve çözümü engelleme,% 10 keçi serum ve 4 1 saat süreyle% 0.3 Triton 0.1 X-100 M PB (slayt başına çözüm engelleme 250 ul) ° C oluşan kemik bölümleri inkübe </li><li> Durumunda, engelleme çözümü atın ve primer antikor (ya da birincil antikor birlikte kemik bölümleri inkübe3.1.4 altında belirtildiği gibi çift immunolabeling), 4 saat süreyle 18-24 250 ul engelleme çözümü ° C seyreltilir Bu, slaytları primer antikor çözüm kurumasını önlemek için, kapalı bir kapak ile nemlendirilmiş bir odasında yerleştirilir gerektiğini not etmek çok önemlidir. Periferik duyusal sinir lifleri leke için, antikor (bkz. bölüm 3.1.4) yukarıda belirtilen benzer çalışma konsantrasyonları ile kullanılabilir. </li><li> 250 slayt başına RT az 15 dakika süreyle bloke çözüm ul (Triton X-100) ile doku bölümleri yıkayın ve 3 kez daha tekrarlamak. </li><li> Yıkama solüsyonu atın ve uygun fluorofor-konjuge sekonder antikorlar (genellikle engelleme çözümü, 250 ul 1:1000 sulandırılmış) kemik bölümleri inkübe 4 ° C Boyama odası fluorophores, photobleaching önlemek için alüminyum folyo ile sarılmış olmalıdır. Kolaylık sağlamak için, koyu renkli boyama odaları (örneğin Slayt kuluçka tepsi / kutu, RPI Corp) kullanılması tavsiye edilir. </li><li> WRT 15 dakika boyunca slayt başına çözüm engelleme 250 ul kül kemik bölümleri. Daha sonra RT az 15 dakika süreyle 0,1 M PB 500 ul ile yıkayın. Son olarak, oda sıcaklığında 15 dakika için 0,05 M PB 500 ul ile yıkayın. GKD 2 O Dip kısaca slaytlar çalkalayın ve kuru hava (5-30 dk) kemik bölümleri izin vermek için RT inkübe. Uzun süre ışığa maruz kalmaktan kaçınınız. </li><li> Montaj orta (ProLongGold veya benzeri) birkaç damla uygulayın ve yavaş bölümleri üzerine bir cam lamel. 5 dakika süreyle karanlıkta slaytlar standı, ve daha sonra şeffaf tırnak cilası ile lamel kenarları mühür edelim. 15-20 dakika kurumasını bekleyin. Slaytlar floresan kaybı olmadan birkaç yıl boyunca -20 ° C'de saklanabilir. </li></ol> 4. Temsilcisi Sonuçlar 4.1. Plantar yumruk bölümleri Plantar yumruk doku bölümleri veya 10X, 40X veya 63X amacı ile konfokal mikroskop altında, Epifloresans mikroskop altında görüntülendi olabilir. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/3485/3485fig1.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Şekil 1"> Şekil 1, epidermal-dermal kavşakta ve kıkırdak ve kas Kollajen IV antikor (yeşil), bazal membran ile boyama AD gösterisi . Sayısız CGRP (AB, kırmızı) ve NF200-pozitif lifler (CD, kırmızı), plantar bölgede fare deri (oklar) boyunca dağıtılır. (; kırmızı F) esas (ok uçları yeşil) CGRP-pozitif küçük çaplı lifler sınırlı boyama TRPV1 ise β3-tubulin, bir pan-nöronal belirteç (E, kırmızı). A ve C 10X objektif (-500 mikron çaplı bar) ile alınan Epifloresans görüntüler, B, D, E ve F 2 mikron artışlarla, 60X objektif (ölçek altında alınmış bir 11-görüntü z-yığını üretilen konfokal görüntü karışımları bar - 50 mikron). 4.2. Ekstremite kemik bölümleri Ekstremite kemik doku bölümleri de Epifloresans mikroskop altında, ya da bir konfokal mikroskop altında görüntülenir.10X, 40X veya 63X amacı ile e. <img alt="Şekil 2" src="/files/ftp_upload/3485/3485fig2.jpg" data-altupdatedat="1788238805000" data-alt="Şekil 2"> , Anti-NF200 (CD, kırmızı; oklar), anti-β3-tubulin (E; kırmızı) ve anti-TRPV1 (F; kırmızı) co-lekeli; Şekil 2 anti-CGRP (oklar AB, kırmızı) ile immün anti-CGRP antikor (yeşil oklar). Bu görüntüler, süngerimsi kafa bölgede fare femur kemik matriks boyunca dağıtılan duyusal sinir lifleri alt tipleri göstermektedir. A ve C 10X objektif (-500 mikron çaplı bar) ile alınan Epifloresans görüntüler, B, D, E ve F 2 mikron artışlarla, 60X objektif (ölçek altında alınmış bir 11-görüntü z-yığını üretilen konfokal görüntü karışımları bar - 50 mikron).

<ol><li>Hoffman, E. M., Schechter, R., Miller, K. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fixative+Composition+Alters+Distributions+of+Immunoreactivity+for+Glutaminase+and+Two+Markers+of+Nociceptive+Neurons%2C+Nav+1.8+and+TRPV1%2C+in+the+Rat+Dorsal+Root+Ganglion%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Histochemistry+%26+Cytochemistry%22%5BJournal%5D)">Fixative Composition Alters Distributions of Immunoreactivity for Glutaminase and Two Markers of Nociceptive Neurons, Nav 1.8 and TRPV1, in the Rat Dorsal Root Ganglion.</a> Journal of Histochemistry & Cytochemistry. 58, 329-344 (2010).</li>
<li>Neves, J. D. S., Omar, N. F., Narvaes, E. A. O., Gomes, J. R., Novaes, P. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+different+decalcifying+agents+on+EGF+and+EGFR+immunostaining%5BTitle%5D)+AND+%22Acta+Histochemica%22%5BJournal%5D)">Influence of different decalcifying agents on EGF and EGFR immunostaining.</a> Acta Histochemica. 113, 484-488 (2011).</li>
<li>Watson, R. E., Wiegand, S. J., Clough, R. W., Hoffman, G. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+cryoprotectant+to+maintain+long-term+peptide+immunoreactivity+and+tissue+morphology%5BTitle%5D)+AND+%22Peptides%22%5BJournal%5D)">Use of cryoprotectant to maintain long-term peptide immunoreactivity and tissue morphology.</a> Peptides. 7, 155-159 (1986).</li>
<li>Yen, L. D., Bennett, G. J., Ribeiro-da-Silva, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sympathetic+sprouting+and+changes+in+nociceptive+sensory+innervation+in+the+glabrous+skin+of+the+rat+hind+paw+following+partial+peripheral+nerve+injury%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Comparative+Neurology%22%5BJournal%5D)">Sympathetic sprouting and changes in nociceptive sensory innervation in the glabrous skin of the rat hind paw following partial peripheral nerve injury.</a> The Journal of Comparative Neurology. 495, 679-690 (2006).</li>
<li>Boyette-Davis, J., Xin, W., Zhang, H., Dougherty, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraepidermal+nerve+fiber+loss+corresponds+to+the+development+of+Taxol-induced+hyperalgesia+and+can+be+prevented+by+treatment+with+minocycline%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Intraepidermal nerve fiber loss corresponds to the development of Taxol-induced hyperalgesia and can be prevented by treatment with minocycline.</a> Pain. 152, 308-313 (2011).</li>
<li>Bloom, A. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Breast+Cancer-Induced+Bone+Remodeling%2C+Skeletal+Pain%2C+and+Sprouting+of+Sensory+Nerve+Fibers%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Pain%22%5BJournal%5D)">Breast Cancer-Induced Bone Remodeling, Skeletal Pain, and Sprouting of Sensory Nerve Fibers.</a> The Journal of Pain. 12, 698-711 (2011).</li>
<li>Constantin, C. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endogenous+Tumor+Necrosis+Factor+%CE%B1+%28TNF%CE%B1%29+Requires+TNF+Receptor+Type+2+to+Generate+Heat+Hyperalgesia+in+a+Mouse+Cancer+Model%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Endogenous Tumor Necrosis Factor α (TNFα) Requires TNF Receptor Type 2 to Generate Heat Hyperalgesia in a Mouse Cancer Model.</a> J. Neurosci. 28, 5072-5081 (2008).</li>
<li>Jankowski, M. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sensitization+of+Cutaneous+Nociceptors+after+Nerve+Transection+and+Regeneration%3A+Possible+Role+of+Target-Derived+Neurotrophic+Factor+Signaling%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Sensitization of Cutaneous Nociceptors after Nerve Transection and Regeneration: Possible Role of Target-Derived Neurotrophic Factor Signaling.</a> The Journal of Neuroscience. 29, 1636-1647 (2009).</li>
<li>Jimenez-Andrade, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pathological+Sprouting+of+Adult+Nociceptors+in+Chronic+Prostate+Cancer-Induced+Bone+Pain%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Pathological Sprouting of Adult Nociceptors in Chronic Prostate Cancer-Induced Bone Pain.</a> J. Neurosci. 30, 14649-14656 (2010).</li>
<li>Persson, A. -K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Sodium-calcium+exchanger+and+multiple+sodium+channel+isoforms+in+intra-epidermal+nerve+terminals%5BTitle%5D)+AND+%22Molecular+Pain%22%5BJournal%5D)">Sodium-calcium exchanger and multiple sodium channel isoforms in intra-epidermal nerve terminals.</a> Molecular Pain. 6, 84-84 (2010).</li>
<li>Ohshima, M., Miyake, M., Takeda, M., Kamijima, M., Sakamoto, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Staphylococcal+Enterotoxin+B+Causes+Proliferation+of+Sensory+C-Fibers+and+Subsequent+Enhancement+of+Neurogenic+Inflammation+in+Rat+Skin%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Infectious+Diseases%22%5BJournal%5D)">Staphylococcal Enterotoxin B Causes Proliferation of Sensory C-Fibers and Subsequent Enhancement of Neurogenic Inflammation in Rat Skin.</a> Journal of Infectious Diseases. 203, 862-869 (2011).</li>
<li>Johnson, M. S., Ryals, J. M., Wright, D. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+loss+of+peptidergic+intraepidermal+nerve+fibers+in+an+STZ-induced+mouse+model+of+insensate+diabetic+neuropathy%5BTitle%5D)+AND+%22Pain%22%5BJournal%5D)">Early loss of peptidergic intraepidermal nerve fibers in an STZ-induced mouse model of insensate diabetic neuropathy.</a> Pain. 140, 35-47 (2008).</li>
</ol>

Hiçbir çıkar çatışmaları ilan etti.

Burada fare, cilt ve immün ve periferik duyusal sinir lifleri algılama kemik doku kesitlerinde hazırlanması için yöntemler ayrıntılarıyla belirttik. Plantar punch biyopsi üretilen bölümleri hem tüysüz ve saçlı deri içeren protokol, her cilt tipine kullanılabilir anlamına gelir. Bu teknikler aynı zamanda diğer hücre türleri (örneğin lökosit, vasküler endotelin, düz kas diğerlerinin yanı sıra) bu dokuların leke istihdam edilebilirler. Bu yöntemler en iyi ultrastrüktürel korunması arasında mükemmel bir uzlaşma (glutaraldeh...

<table border="1"><tbody><tr><td> Malzeme Adı </td><td> Tip </td><td> Şirket </td><td> Katalog No. </td><td> Yorum </td></tr><tr><td> 3mm Harris Micro-Punch </td><td> Malzeme </td><td> Ted Pella </td><td> 15094 </td><td></td></tr><tr><td> Perfüzyon pompası </td><td> Malzeme </td><td> VWR Uluslararası </td><td> 23609-170 </td><td></td></tr><tr><td> Paraformaldehit </td><td> Reaktif </td><td> Fisher Scientific </td><td> T353 </td><td></td></tr><tr><td> Pikrik asit </td><td> Reaktif </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> 239801 </td><td></td></tr><tr><td> Ekim gömülmesi bileşik </td><td> Reaktif </td><td> Doku-Tek </td><td> 4583 </td><td></td></tr><tr><td> Cyto-Freeze kriyojenik aerosol sprey </td><td>Malzeme </td><td> Kontrol Şirketi </td><td> 3118 </td><td></td></tr><tr><td> Keçi Serumu </td><td> Reaktif </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> G9023 </td><td></td></tr><tr><td> Kuluçka tepsi ve immün kapağı (Large) </td><td> Malzeme </td><td> RPI Corp. </td><td> 248.270 (tepsi) 248.270-A (kapak) </td><td></td></tr><tr><td> ImmEdge hidrofobik bariyer kalem </td><td> Malzeme </td><td> Vektör Laboratuvarları </td><td> H-4000 </td><td></td></tr><tr><td> Camel Saç Fırçaları (# 1 kalınlığı) </td><td> Malzeme </td><td> Ted Pella </td><td> 11859 </td><td></td></tr><tr><td> Pro-Uzun Altın orta Montaj </td><td> Reaktif </td><td> Invitrogen </td><td> P36930 </td><td></td></tr></tbody></table>

deri ve kol ve bacak kemikleri innerve fare duyusal sinir lif doku hazırlanması ve immün

Tissue Preparation and Immunostaining of Mouse Sensory Nerve Fibers Innervating Skin and Limb Bones

Algılama ve periferik duyusal sinir lifleri tarafından fiziksel, kimyasal ve termal duyusal uyaranlar birincil işleme, hayvanlarda ve insanlarda duyu algı anahtar. Bu periferik duyusal sinir lifleri, algılayabilir ve belirli duyusal uyaranlar başlatmak reseptörleri ve iyon kanal proteinlerinin bir bolluk ifade eder. Yöntem aynı zamanda bu liflerin belirli bir iyon kanalı proteinlerin fonksiyonel ifade tanımlamak için kullanılabilir cilt innerve periferik duyusal sinir lifleri, elektriksel özellikleri karakterize etmek için kullanılabilir. Ancak, benzer elektrofizyolojik yöntemler mevcut değildir (ve de geliştirmek için zor), periferik duyusal sinir lifleri, kemik gibi en zorlu dokuların da dahil olmak üzere diğer visseral organları innerve reseptörleri ve iyon kanal proteinlerinin fonksiyonel ifade algılama. Ayrıca, bu gibi elektrofizyolojik yöntemler olmayan Uyarılabilir protein ifade belirlemek için kullanılanperiferik duyusal sinir lifleri var. Bu nedenle, duyusal sinir fivers periferik / visseral doku örnekleri immün Bu sinir lifleri ilgi spesifik proteinlerin ekspresyonunu belirlemek için en iyi şekilde sağlar. Şimdiye kadar, duyusal nöronlarda protein ekspresyonu çalışmaların çoğu bilgi, belirli proteinlerin hücre vücudun belirli türleri ya da duyusal nöronların alt kümelerini ifade sınırlı duyu ganglionlar, prosedürleri immün kullanılmaktadır. Burada, periferik duyusal sinir lifleri immün periferik / visseral doku örneklerinin hazırlanması için ayrıntılı yöntemleri / protokoller raporu. Biz özellikle deri veya plantar punch biyopsi ve kemik (femur), periferik duyusal sinir lifleri immün farelerden elde edilen bölümleri hazırlanması için ayrıntılı yöntemleri. Bu yöntemler sadece periferik duyusal nöronlar protein ekspresyonu kalitatif tayin önemli değildir, aynı zamanda bir kantitatif yöntem sağlamakduyusal liflerin belirli türleri veya altkümelerini protein ekspresyon düzeylerinde değişiklikler tespit yanı sıra, çeşitli patolojik durumları sırasında duyusal liflerin sayısı ve yoğunluğu, morfolojik ve / veya anatomik değişiklikler belirlemek için. Ayrıca, bu yöntemler sadece duyusal sinir liflerinin boyanması sınırlı değildir, aynı zamanda deri, kemik ve diğer visseral doku herhangi bir tür sinir liflerinin boyanması için kullanılabilir.

Periferik duyusal sinir lifi alt tiplerinin İmmünositokimyasal kimlik (ve orada protein ekspresyonu tespit), periferik hissi altında yatan moleküler mekanizmaları anlamak için kilit öneme sahiptir. Burada periferik duyusal sinir lifleri belirli immün için, deri ve bacak kemikleri gibi periferik / visseral doku örnekleri, hazırlama yöntemleri açıklanmaktadır.

Deri ve Kol ve bacak kemikleri innerve Fare Duyusal Sinir Lif doku hazırlanması ve immün

Fiziksel, kimyasal ve termal duyusal uyaranların periferik duyusal sinir lifleri tarafından algılanması ve birincil işlenmesi, ...'daki duyusal algı için temel teşkil eder.

Bu prosedürün genel amacı, deri ve kemik gibi dokuları innerve eden periferik sinir liflerindeki spesifik proteinlerin ekspresyon ve lokalizasyon profillerinin yanı sıra anatomik organizasyonuna dair bilgi edinmektir. Bu işlem, önce tüm hayvanın fiksatif ile perfüzyonunun yapılması, ardından ilgili dokunun diseksiyonu veya çıkarılmasıyla gerçekleştirilir. Sonrasında, izole edilen dokular post-fiksasyona tabi tutulur ve kemikler dekalsifiye edilir; bir kriyostat kullanılarak deri ve kemik dokusundan ince kesitler alınır ve bunlar lamlara monte edilir.Prosedürün son adımı, periferik sinir liflerinde spesifik olarak eksprese edilen ve lokalize olan proteinlere karşı antikorlar kullanarak bu doku kesitlerinde tekli veya çoklu etiketli immün boyama gerçekleştirmektir. Nihayetinde, epi-floresan veya konfokal mikroskop kullanılarak yapılan immünofloresan mikroskopi ile, spesifik periferik sinir lifi tiplerinin dağılım paterninin yanı sıra periferik sinir liflerindeki spesifik proteinlerin ekspresyon ve/veya lokalizasyon paterni gösteren sonuçlar elde edilebilir. Bu yaklaşım, deri ve kemik gibi dokulardaki innervasyon paternlerinin neler olduğu gibi, periferik sinir sistemi hakkında temel soruları yanıtlamak için kullanılabilir.Bu yaklaşım visseral organlara ve diğer dokulara genişletilebilir. Ayrıca, duyusal sinir liflerinin bu alt kümeleri içindeki proteinlerin ekspresyonundaki değişiklikler ve bu proteinlerin ekspresyonunda meydana gelebilecek değişimler hakkında da bilgi verebilir. Patolojik veya gelişimsel süreçler sırasında, arka ayaktan doku örnekleri toplamak için %4 PFA ile perfüze edilmiş bir hayvanı kesme matına veya başka bir dayanıklı yüzeye yerleştirin.Ayak tabanı yukarı bakacak şekilde tutun ve ayağın ortasına yerleştirilmiş üç milimetrelik bir punch biyopsi aleti ile kuvvetlice bastırın. Biyopsi aletinin ayağın tamamını kestiğinden emin olmak için aleti 180 derece ileri geri döndürün. Biyopsi aletini nazikçe ayaktan çıkarın ve dokuyu, bu durumda femurdan ekstremite kemiği örnekleri toplamak için, bir mililitre %4 PFA veya %5 PA çözeltisi içeren steril iki mililitrelik bir tüpe aktarın.Hayvanın sırtında, pelvis seviyesinde, her iki arka bacağa doğru uzanan lateral bir insizyon yapın. Femuru pelvisten ayırmak için pelvise ve çevre kaslara kesi yaparken, femur başının proksimal kısmını sağlam bırakın. Ardından, distal başı sağlam bırakacak şekilde tibia veya fibulaya kesi yapın ve kemik şaftındaki çevre kasları ve periostumu temizleyin.Femuru, 1 mL %4 PFA veya %5 PA çözeltisi içeren iki mililitrelik bir tüpe yerleştirin ve ardından her iki örneği de bir rocker üzerinde hafifçe karıştırarak 4 °C'de 16 ila 18 saat boyunca postfiksasyona bırakın. Postfiksasyonun ardından, örnekleri 1,5 mL dekalsifikasyon çözeltisi içeren steril iki mililitrelik tüplere aktararak her iki örneği de dekalsifiye edin. Plantar punch örneğinin 4 °C'de 16 ila 18 saat, femur örneğinin ise altı ila yedi gün boyunca hafifçe sallanmasını sağlayın.Çözeltiyi her 24 saatte bir değiştirin ve dekalsifikasyon sonrası kemik dokusunu bir penset yardımıyla sertlik kaybı açısından kontrol edin. Doku örneklerini, 1,5 mL Kriyokoruyucu çözelti içeren steril iki mililitrelik bir tüpe aktarın ve tüpü dört derece santigrat sıcaklıkta 16 ila 18 saat boyunca hafifçe karıştırmak üzere tekrar sallayıcıya yerleştirin. Dokuyu kesit almaya hazırlamak için, bir kriyostat doku montaj bloğunun üzerine uygun miktarda optimal kesme sıcaklık bileşiği yerleştirin ve eksi 20 derece santigrat sıcaklıktaki kriyostat haznesinde donmaya bırakın.İstenirse, dondurma işlemini hızlandırmak için OCT'ye kriyojenik bir aerosol püskürtün. Plantar punch doku için doku örneğini OCT yatağına yerleştirin. Kemik dokusu için, homojen transvers kesitler elde edilebilecek şekilde örnekleri konumlandırın.Kemik uzunluğuna paralel boylamasına kesitler elde etmek için numuneyi konumlandırın. Her iki numuneyi de ek bir ince OCT tabakasıyla kaplayın. Ardından, doku donana kadar kriyojenik aerosol ile hafifçe püskürtün.Numuneyi kriyostat haznesindeki kesme kafasına yerleştirin ve kırılgan kesitleri önlemek için doku numune bloğunun kesme sıcaklığına dengelenmesi için en az bir saat bekleyin. Doku optimal sıcaklığa ulaştığında, plantar punch dokusu için 40 mikronluk kesitler oluşturmak üzere numuneyi kesmeye başlayın. Kriyokesitleri, 10 milimolar sodyum azid içeren 0.1 molar PB bulunan 12 kuyucuklu doku kültürü plakalarında toplayın.Kesitlerin daldırılmış durumda kaldığından emin olun ve kemik dokusu immün boyamasına hazır olana kadar dört derece Celsius'ta saklayın. Kriyokesitleri doğrudan jelatin kaplı lamlar üzerine toplayın ve ardından eksi 20 derece Celsius'ta saklamadan önce bir saat boyunca havada kurumaya bırakın. Bu şekilde saklanan lamlar üzerindeki kemik kesitleri, iki ila üç ay boyunca immün boyama amacıyla kullanılabilir.Bir jilet kullanarak, 1 mL'lik bir mikropipet ucunun ucundan altı ila yedi milimetreyi kesin; doku kesitlerinin pipet duvarlarına yapışmasını önlemek için ucun içini, 0,1 molar PB içinde %1 fetal bovine serumu birkaç kez aspire ederek ön hazırlığa tabi tutun. Sekiz ila 10 plantar punch kesitini, 24 kuyucuklu bir doku kültürü plakasının her bir kuyucuğuna transfer edin. Ardından, oda sıcaklığında bir rocker üzerinde güçlü karıştırma ile, her kuyucuk için 500 µL 0,1 molar PB kullanarak beş dakika boyunca üç kez yıkayın.Ardından, kesitleri bloklama solüsyonu içerisinde hafifçe karıştırarak bir saat boyunca dört santigrat derecede inkübe edin ve ardından primer ve sekonder antikor inkübasyonları ile devam edin. pb ile yapılan son yıkamanın ardından, kesitleri lamlara aktarmak için FBS ile işlem görmüş taze bir uçlu mikropipet kullanın. Kesitleri bir resim fırçasıyla düzenleyin ve ışığa maruz kalmasını önleyerek fazla nemi emdirin.Kesitlerin yüzeye kuruması için lamları oda sıcaklığında beş ila 30 dakika boyunca bekletin. Kuruduktan sonra, birkaç damla kapatma medyumu uygulayın ve yavaşça yerleştirin. Kesitlerin üzerine bir lam örtüsü yerleştirin.Slaytların beş dakika boyunca karanlıkta bekletilmesine izin verin ve ardından lam kapaklarının kenarlarını şeffaf oje ile mühürleyin. Oda sıcaklığında çözündükten sonra görüntüleme işleminden önce, slayt üzerindeki kemik kesitlerini içeren bölgeyi çevrelemek için hidrofobik bir bariyer kalem kullanın ve ardından 10 ila 15 dakika boyunca havada kurumasını bekleyin. Bir pipet kullanarak, bölgeye 250 µL 0.1 M PB uygulayın ve kemik kesitlerini beş dakika boyunca yıkayın.Lamı eğerek PB'yi boşaltın ve bu işlemi iki kez daha tekrarlayın. Ardından, 250 µL bloklama çözeltisi uygulayın ve kesitleri dört derece Celsius'da bir saat boyunca inkübe edin. Bloklamadan sonra, gecelik inkübasyonlar sırasında lamları nemlendirilmiş bir bölmede tutmaya dikkat ederek primer ve sekonder antikor inkübasyonlarına geçin.Son olarak, 15 dakika boyunca 500 µL 0,05 M PB ile yıkayın. Oda sıcaklığında, lamları durulamak için kısa süreliğine distile deiyonize suya daldırın ve ardından kemik kesitlerinin, ışığa uzun süre maruz kalmasını önleyerek, oda sıcaklığında beş ila 30 dakika boyunca havada kurumasını bekleyin. Lamlar beş dakika boyunca karanlıkta bekletildikten sonra, montaj ortamını uygulayın ve kesitlerin üzerine bir cam kapatma lamı yerleştirin.Epi floresan mikroskopi kullanarak lamel cam kenarlarını oje ile mühürleyin. Burada, plantar bölgedeki epidermal-dermal bileşkedeki bazal membranlar boyunca dağılmış kırmızı alanlar şeklinde çok sayıda CGRP ve NF 200 pozitif lif görülmektedir; bu alanlar yeşil renkte anti-kolajen IV ile boyanmıştır. Plantar bölgedeki hem CGRP hem de NF 200 pozitif lifler, konfokal mikroskopi ile de görülebilmekte olup ok uçlarıyla belirtildiği üzere tekrar kırmızı renkte gösterilmiştir. Pan-nöronal belirteç beta üç tubulin ise plantar bölgede yaygın olarak eksprese edilmektedir.TRPV1 boyaması temel olarak CGRP pozitif olan küçük çaplı liflerle sınırlıdır; hem CGRP hem de NF200 pozitif lifler ekstremite kemik dokusunda da tespit edilebilir ve burada epifloresan ve konfokal mikroskopi kullanılarak fare femurunun süngersi baş bölgesindeki kemik matrisi boyunca kırmızı renkte dağılmış olarak gösterilmiştir. TRPV1 ayrıca ekstremite kemik dokusunda da bulunur; burada konfokal mikroskopi ile kırmızı renkte gösterilmiş olup yeşil renkteki anti-CGRP ile ko-lokalize olmaktadır.Bu videoyu izledikten sonra, deri ve kemik gibi dokulardaki periferik duyusal inovasyonun anatomik özellikleri ile bu duyusal sinir lifleri içindeki çeşitli proteinlerin ekspresyonu ve lokalizasyonu hakkında bilgi edinme yöntemlerini iyi bir şekilde kavramış olmalısınız. Diseksiyondan mikroskobik analize kadar tüm süreç, deri için yaklaşık dört gün, kemik dokusu için ise 11 gün sürmelidir.

tissue-preparation-immunostaining-mouse-sensory-nerve-fibers

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Bu video, fare beyninin bölümlerinin Meynert bölgesinin çekirdek bazalisindeki kolinerjik liflerin immünohistokimyasal boyanmasını göstermektedir. Bölümler bloke edilir ve kolin asetiltransferaza karşı primer ile tedavi edilir, ardından biyotinile edilmiş sekonder antikorlar takip edilir. İkincil antikorlara bağlanan avidin-biotin-peroksidaz kompleksleri eklenir, ardından kromojenik substrat gelir. Kesitler daha sonra kurutulur ve mikroskop altında görselleştirmeden önce monte edilir.

Fare Beyninin Meyner Çekirdeği Basalis'teki Sinir Liflerinin İmmünohistokimyasal Boyanması

Kaynak: Boyer, N. P. et. al., Eksize Fare Tibial Sinirinde Nörofilament Taşınmasının Görüntülenmesi ve Analizi. J. Vis. Uzm.  (2020) Bu video, analiz etmek için floresan fotoaktivasyon yöntemini göstermektedir. periferik sinirlerin miyelinli aksonlarında nörofilament taşınımı. Teknik, fotoaktif yeşil florofor etiketli nörofilamentleri izleyerek, nörodejeneratif hastalıklarda aksonal taşıma hakkında bilgi sağlar.

Miyelinli Fare Aksonlarında Nörofilament Taşınmasının Floresan Fotoaktivasyon Görüntülemesi 

Dinamik boyuna görüntüleme ve muhabiri transgenik farelerin sinir uçlarının selektif lazer lezyon için protokol sunulmuştur.

Cilt Tek Sinir Endings Vivo İki-Foton Mikrokopisi

Kas duyusal nöronlar propriyoseptör sinyalizasyon dahil ve aynı zamanda metabolik devlet ve yaralanma ile ilgili olaylar üzerine rapor edilmektedir. Biz streç aktive kas afferentlerde çalışmaları için in vitro kas-sinir hazırlanmasında bir yetişkin fare açıklar.

Bir İn Vitro Yetişkin Fare kas-sinir Hazırlık

Burada, stiril piridinyum boyalarla boyama ve lekelenme sırasında fare kulağı derisi kıl foliküllerini innerve eden palisade uçlarının canlı mızrak şeklinde duyusal terminallerini görüntülemek için yeni bir hazırlığı açıklıyoruz.

Saç Folikül hançer Endings Yaşam Sinir Terminal Etiketleme Optik İzleme<em&gt; Ex Vivo</em&gt; Fare Kulak Cilt

Bu makale, fare derisinin genetik etiketlemesi, cerrahi denervasyon, deri biyopsisi ve tam montajlı β-galaktosidaz boyama ile etiketli epitelin görselleştirilmesi için ayrıntılı protokoller içerir. Bu yöntemler, normal ve patolojik cildin fare modellerinde sinir gereksinimini test etmek için kullanılabilir.

Deri Cerrahi denervasyon: Cilt Hastalıkları Fare modelleri Sinirler için Gereği Test Bir Yöntem

Bu çalışmada deneysel bir model saf küçük fiber nöropati ile resiniferatoxin (RTX) kurar. RTX benzersiz bir doz (50 µg/kg) hasta özellikleri taklit eden bir küçük fiber nöropati modeli geliştirmek için en uygun ve nöropatik ağrı altında yatan nosiseptif moleküler önemini araştırmak yardımcı olabilir.

Saf küçük Fiber nöropati bir fare modeli ile geçici reseptör potansiyel Vanilloid tip 1 Ultrapotent Agonist kurulması

Burada güzel yapıları periferik sinir alma ve 1-2 µm bölümlerle toluidin blue boyama görselleştirmek için bir iletişim kuralı...

Toluidin Blue reçine gömülü bölümlerini periferik sinirleri morfoloji değerlendirme için boyama

Fotoaktive nörofilament proteinini ifade eden transgenik farelerden periferik sinirlerin tek miyelinli aksonları içinde nörofilamentlerin aksonal naklini analiz etmek için floresan fotoaktivasyon yöntemlerini tanımlıyoruz.

Excised Mouse Tibial Nerve Nörofilament Transport Görüntüleme ve Analizi

Doku kesitlerinin kalınlığı deri innervasyonunun morfolojik çalışmasını sınırladı. Mevcut protokol, konfokal mikroskopi altında kalın 300 μm doku kesitlerinde kutanöz sinir liflerini görselleştirmek için benzersiz bir doku temizleme tekniğini tanımlamaktadır.

Çoklu Floresan Boyama ve Doku Temizleme Yaklaşımları Kullanarak Tüylü ve Glabrous Cilt İnnervasyonunu 3D Desende Göstermek

Bu el yazması, postganglionik lomber sempatik nöronların bir fareden cerrahi olarak çıkarılması için bir protokol sunmaktadır. Bu prosedür, distal doku hedeflerinde sempatik innervasyonun rolünü araştırmayı amaçlayan çok sayıda çalışmayı kolaylaştıracaktır.

Farelerde Cerrahi Lomber Sempatektomi

Öğrenin, fare deri ve uzun kemiklerindeki duyusal sinir liflerinin immünositokimyasal analizi için doku hazırlama ve boyama yöntemlerini. Bu teknik, periferik sinir sisteminin organizasyonunu ve protein ekspresyonunu incelemeye olanak tanır.

Deri ve Kol ve bacak kemikleri innerve Fare Duyusal Sinir Lif doku hazırlanması ve immün

Daha fazla video keşfet