Name: Standart Mürekkep Püskürtmeli Yazıcı Kullanımı Geçici Hücre Zarı Gözenekler oluşturma (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-03-16T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 7 s
Description: Öğrenin, standart bir mürekkep püskürtmeli yazıcıyı biyoyazıcıya dönüştürerek hücre zarlarında geçici gözenekler oluşturmayı. Bu yöntem, yüksek hücre canlılığı ile genetik ve doku mühendisliği çalışmalarına uygulanabilir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar hücre baskı için HP DeskJet yazıcılar kullanma fikri Dr Thomas Boland kabul etmek istiyorum. NSF RII-EPS 0903795 ve NIH K25 HL0922280 bu proje için fon.

1. HP Deskjet 500 dönüştürme Bu tekniğin bir çok ticari olarak mürekkep püskürtmeli yazıcılarla çalışmak gerektiğine dikkat edilmelidir. Ancak, yaşlı yazıcılar, onların kolayca yapışmasına neden olmayan daha büyük çaplı nozul ile mürekkep kartuşları, kullanmak daha iyi çalışma eğilimindeler. Ayrıca, eski yazıcıları atlamak için daha kolay olan mekanik kağıt besleme sensörleri kullanma eğiliminde. Optik sensörler ile Yazıcılar kandırdın ama her döngüsü sırasında yazıcının uzak kenarında küçük bir kağıt şerit kullanarak, ancak &quot;hile&quot; için mekanik sistem biraz daha zor olabilir. En iyisi şu anda piyasada bulunan yazıcılar düşük çözünürlük (DPI) var. Yüksek çözünürlüklü yazıcılar daha kolay tıkanmasına eğilimindedir. HP Deskjet 500 çözünürlük 300 DPI olduğunu. 600 DPI çözünürlüğe sahip birçok ticari yazıcılar (HP Deskjet serisi ve diğerleri) vardır. Bu tip yazıcının nozul içinde sadece küçük bir artış ile birlikte kullanılabilirler(bölüm 3) dikkatli temizlik kullanılarak kontrol altına alınabilir sorunları tıkanma. <ol><li> Yazıcının alt taban birkaç plastik klipleri Anahtarcı ve yavaş yavaş üst kapalı kaldırarak yazıcının üst plastik kasa çıkarın. </li><li> Yazıcının üst sökün düğmesi / ekran ışığı paneli, yazıcı anakartı bağlı bırakarak. </li><li> , Mürekkep kartuşu dayanır ve baskı oluşur, özellikle alanların Yazıcının içini temizleyin. </li><li> Kağıt besleme mekanizmaları güç sağlayan kablolar bulun ve anakart onları çıkarın. <ol><li> HP Deskjet 500, bu sadece ön sol tarafına kağıt tepsisi aşağıda verilmiştir. </li></ol></li><li> Kağıt algılama mekanizması bulun. Bir dize veya manuel çekme kolu olarak hizmet tel döngü yapıştırılması tarafından mekanizması devre dışı bırakın. <ol><li> HP Deskjet 500, kağıt algılama mekanizması baskı / kağıt besleme mekanizmasının üstünde ve arkasında bulunan bir gri plastik kolu olduğunu. </li></ol></li><li> Sadece kartuş yazıcı kafası altındaki bir seviyede istenen baskı slaytlar getirmek için kağıt besleme mekanizması (kağıt beslenen ve tevdi edilmesi yer) önünde bir sahne oluşturmak. <ol><li> Bizim deneyler için, 15 ml santrifüj tüpleri için köpük sevkiyat sahibi istenilen yüksekliğe slaytların son seviyeye getirmek için baskı bölgede yer bantlanmış birkaç mikroskop kullanıldı. </li></ol></li><li> Aseptik teknik korumak için, yazıcının standart bir biohazard dolap veya masa laminer akış davlumbaz içine yerleştirilebilir. </li><li> Bu bir ticari ink-jet yazıcı değiştirerek genellikle yazıcının üretici garantisi unutmayın önemlidir. </li></ol> 2. Dönüştürme Stok HP Mürekkep Kartuşları (HP 26 Siyah mürekkep kartuşu) <ol><li> Şu an için yazıcı temas ve baskı kafası kaplayan koruyucu bant bırakarak, ambalajından kartuşunu çıkarın. </li><li> Vücut stabilizeherhangi bir engel yeşil üst açık bırakarak, bir kelepçe veya mengene (sadece sıkıca genellikle iyi olarak çalıştı elle kartuş kavrama) ile ya kartuş (siyah kısım). </li><li> Pense veya ayarlanabilir bir anahtar kullanarak, kartuşun yeşil üst kavramak ve serbest kalıncaya kadar geri ve ileri birkaç kez çevirin. <ol><li> Bu kadar kuvvet almamalıdır, ancak üst artık gerekli değildir, bu yüzden çıkarırken Eğer tatili bu tamam. </li></ol></li><li> Tornavida kullanarak, şimdi maruz şeffaf plastik parça kapalı gözetlemek. <ol><li> Yine, bu kadar güç almamalıdır, ama ihtiyaç olmayacaktır, bu yüzden çıkarılması sırasında bozulursa o tamam. </li></ol></li><li> Herhangi bir rezervuar kalan boşaltın. </li><li> Yazıcı temas ve baskı kafası kaplayan plastik koruyucu bandı çıkartın. </li><li> Iyice su rezervuarları yıkayın. <ol><li> Kanallar yoluyla su itmek için bir pipet veya şırınga kullanın. </li><li> Su olasılıkla sırasında baskı kafası gelen sızıntı yaparBu süreç, bu kabul edilemez ve kartuş işlevselliğini herhangi bir zarar vermez. </li></ol></li><li> Su temiz çalıştığında, kartuş kurumasını bekleyin. </li></ol> 3. Kartuş Temizleme <ol><li> Temiz bir baskı ortamda muhafaza etmek amacıyla, mürekkep kartuşları kullanımdan önce ve sonra temizlenir. <ol><li> Bu aynı zamanda tuzlar ve tıkanmalara neden olabilir kartuşta başka biyolojik madde kristalizasyon kaçınarak yardımcı olur. </li></ol></li><li> Tamamen daldırın de-iyonize su dolu bir cam kapta kartuş, baskı öncesi ve sonrası 15 dakika ses dalgalarına maruz. </li><li> Sonication sonra, su kartuşu çıkarın ve fazla suyu silkeleyin. </li><li> Daha aseptik ortam yaratmak için kartuş içine Sprey% 70 etanol. <ol><li> Etanol bioink baskı çözümü eklemeden önce kuruduğundan emin. </li></ol></li></ol> 4. Hücre Süspansiyon yapma - &quot;Biomürekkep &quot; <ol><li> Geçit Kültür hücreleri kadar hazır. <ol><li> 3T3 fibroblastlann:% 10 fetal bovin serumu (FBS) ile yaklaşık 4 1.3x10 hücre / Dulbeco Modified Eagles Orta (DMEM) cm 2 de T-75 şişe üzerine Tohum hücreleri. 37 küvözde iki gün boyunca Kültür hücreleri ° C ve% 5 CO 2. </li></ol></li><li> Konsantrasyonda floresan g-aktin stok solüsyonu olun 50 mikrogram / Fosfat Tampon Çözeltisi (PBS) ml. </li><li> Passage hücreler. <ol><li> 3T3 fibroblast için: şişesi medyayı çıkartın ve PBS ile iki kez yıkayın. 5 dakika için 5 ml% 0.25 tripsin + EDTA ve inkübe hücreler örtün. </li><li> Taze aracı madde 5 ml ilave edilir ve 5 dakika boyunca 1000 rpm&#39;de, 15 ml konik bir santrifüj tüpüne ve santrifüj içine hücre süspansiyonu Pipeti. Aspirat orta geçirdi. </li></ol></li><li> Bioink oluşturmak için flüoresan g-aktin stok solüsyonu ile PBS içinde yeniden süspanse hücreleri. <ol><li> Bioink 10 ug / ml ve bir hücre co-aktin g arasında bir nihai konsantrasyona sahip olmalıdır1x10 5 hücre / ml ncentration. Bu yoğunlaşma yazıcı kafa damla ve tıkanma başına hücre miktarını sınırlamak için optimize edilmiştir. 8 </li><li> Bioink 250 ul Şekil 2&#39;de gösterildiği gibi kalıp ile üç kapak slipleri basar dikkat ediniz. </li></ol></li></ol> 5.. Bioprinting <ol><li> Güç ve yazıcı ısınmasına izin verin. </li><li> Yer adım 1.6 hazırlanmış sahnenin üzerine (burada, biz 22 mm x 22 mm lamelleri kullanın) baskı yüzeyi istenen. </li><li> Bir baskı desen dosyası oluşturun. <ol><li> Açık Microsoft Word (veya başka bir çizim yazılımı) ve istenilen desen çizin. </li><li> Premade dosyasında hücre baskı için istenen bir baskı desen seçin. </li></ol></li><li> Istenilen hücre süspansiyonu ile hazırlanmış kartuş yükleyin. <ol><li> Iyi kartuş yuvasının altındaki küçük dairesel pipetleyin süspansiyon. Çözüm yaklaşık 100-120 ul kullanın. Baskılı damla boyutu 130 civarındadırpikolitre. 8 </li></ol></li><li> HP Deskjet 500 Yazıcı ile dosyayı yazdırın. <ol><li> En iyi sonuçlar için, kelime işlemci programında istenen kopya miktarını değiştirerek, küçük desenleri birkaç kez (5) yazdırın. </li></ol></li><li> Yazıcı yine coşturacak, sonra kartuş &quot;hazır&quot; konumuna hareket edecektir. </li><li> Kartuş hazır pozisyonu (biraz çok altında mürekkep damla solunda ve orada kalır) taşındığında, kağıt besleme mekanizması tel üzerinde yukarı çekin ve baskı başlamalıdır. <ol><li> Baskı birden fazla kopyası için, kağıt besleme mekanizması her döngüde veya sayfa yazdırılıyor sonra serbest gerekecektir. Kartuş sonra &quot;hazır&quot; konumuna geri döner ve kağıt besleme mekanizması tel tekrar yükseltilmelidir. </li></ol></li><li> Yazıcı (bkz. Şekil 2) adım 5.2 baskı Sahnenin ortasına yerleştirilen coverslip üzerine basacaktır. </li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar &lt;/ P&gt; Standart, off-the-raf HP Deskjet 500 Tüm dönüşüm sürecinin temsilcisi sonuçları, standart HP 26 serisi kartuşları önce de belirtildiği gibi, analiz birçok türleri için hücre baskı çözümleri yeteneği ile bir yazıcı oluşturur. Dönüşüm sonra tamamlanmış yazıcı üzerine mikroskop kapak kayma yerleştirmek için bir baskı aşaması ile, Şekil 3 &#39;de gösterilmiştir. Yazıcı da dahil olmak üzere, birçok alanda analiz yararlı olduğu ancak bunlarla sınırlı değil: tek hücre mekaniği, doku mühendisliği, gen transfeksiyon, biyosensör micropatterning ve doğrudan hücre tedavileri 1-10, 16-22. Bu örnekte, bir HP Deskjet 500 Yazıcı serisi ve HP 26 mürekkep kartuşları bioprinting için modifiye edilmiştir. Bir g-aktin monomer çözeltisi içinde fibroblast hücre süspansiyonu oluşan bir bioink bu yazıcı kurulumu kullanarak, hücreleri cam mikroskop lamelleri üzerine basıldı. Şekil 1 temsilcisi res göstermektedir<html> dahil floresan aktin monomerlerin göstermek basılı fibroblast hücrelerinin ults. Sonuçlar hücreleri özelleştirilebilir kalıpları içine baskılı edildiği kontrollü bir ortamda aseptik olarak elde edildi. Bu örnekte kullanılan desen Microsoft Word (Şekil 2) oluşturuldu. Bu kalıp mikroskop sürgünün çoğunluğu boyunca baskı çözeltisi kesintisiz bir hat hazırlandı. Şekil 4 bioink ve hücreler karşılıklı tevdi edildiği düz çizgi gösterir. Bu hücreler asılı olduğu bioink çözeltisi, serbest aşırı flüoresan aktin monomerler içerdiğinden hemen baskıdan sonra, arka floresans bir artış olduğunu belirtmek gerekir. Bu arka floresans önemli ölçüde substrat aşırı monomer yıkayan hücreleri (Şekil 1), üzerinde büyüme ortamının eklenmesinden sonra azalır. <html> ad/3681/3681fig1.jpg &quot;/&gt; Şekil 1. 3 saat değiştirilmiş inkjet yazıcı kullanarak baskı sonrası 3T3 fibroblast Temsilcisi görüntüler. Hücre içi dahil floresan etiketli aktin monomerler göstermektedir. Ölçek çubukları 50 um temsil eder. <img alt="Şekil 2." src="/files/ftp_upload/3681/3681fig2.jpg" /> Şekil 2. Bioink yazdırmak için kullanılan tasarım. <img alt="Şekil 3." src="/files/ftp_upload/3681/3681fig3.jpg" /> Şekil 3. Strafor evre dönüşüm sonra Yazıcı. Ortasında turuncu tel kağıt besleme kolu sensörü atlar. <img alt="Şekil 4." src="/files/ftp_upload/3681/3681fig4.jpg" /> Şekil 4. Yerelleştirilmiş bir baskı bölgesi basılmış 3T3 fibroblast Temsilcisi görüntü. Mikroskopi görüntü 20x büyütmede yazdırdıktan sonra 5 dakika alınır. / Files/ftp_upload/3681/3681fig5.jpg &quot;/&gt; Şekil 5. 3 saat içselleştirilmiş floresan aktin monomerler ile fibroblast gösteren baskı sonrası alınan Floresans görüntüsü (40x büyütme). Ölçek çubuğu 50 um temsil eder. <img alt="6 Şekil." src="/files/ftp_upload/3681/3681fig6.jpg" /> Şekil 6. 15 dakika baskı sonrası alınan bir hücrenin Floresan mikroskobu (20x büyütme). Görüntü hem de g-aktin (yeşil) ve çekirdek (mavi) gösterir. Soldan sağa: g-aktin Alexa Fluor 488 ile, nükleus DAPI, hem de bir kaplamaya sahip. <img alt="Şekil 7." src="/files/ftp_upload/3681/3681fig7.jpg" /> Şekil 7. 3 saat baskıdan sonra bir çizgi desen iki fibroblastlar gösteren Floresan mikroskopi. Soldaki Resim hücrelerin içinde floresan ile işaretlenmiş aktin monomerlerin gösterir. Sağdaki resim göstermek için arka plan görüntüsü ile floresan kanalın bir yerleşim olmasına rağmen buSlayt (sol alt köşe) bazı enkaz olabilir, bu floresan değil. Boyutu sağ floresan etiketli monomerler ile 3 saat süreyle inkübe basılı olmayan bir hücre Kontrol grubu olduğunu belirtti değilse Ölçeği barlar 50 um temsil eder. Bu kontrol monomerler hücre baskı ile membran geçirgenliği olmayan hücre zarı nüfuz edemediği göstermektir.

<ol><li>Calvert, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Materials+science.+Printing+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Materials science. Printing cells.</a> Science. 318, 208-209 (2007).</li>
<li>Mironov, V., Reis,, Derby, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Review%3A+Bioprinting%3A+A+beginning%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Review: Bioprinting: A beginning.</a> Tissue Eng. 12, 631-634 (2006).</li>
<li>Pepper, M. E., Parzel, C. A., Burg, T., Boland, T., Burg, K. J. L., Groff, R. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+Implementation+of+a+two-dimensional+inkjet+bioprinter%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+IEEE+Eng.+Med.+Biol.+Soc%22%5BJournal%5D)">Design and Implementation of a two-dimensional inkjet bioprinter.</a> Proc. IEEE Eng. Med. Biol. Soc. 3-6, 6001-6005 (2009).</li>
<li>Campbell, P., Weiss, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+engineering+with+the+aid+of+inkjet+printers%5BTitle%5D)+AND+%22Expert+Opin.+Biol.+Th%22%5BJournal%5D)">Tissue engineering with the aid of inkjet printers.</a> Expert Opin. Biol. Th. 7, 1123-1127 (2007).</li>
<li>Boland, T., Xu, T., Damon, B., Cui, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+inkjet+printing+to+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+J%22%5BJournal%5D)">Application of inkjet printing to tissue engineering.</a> Biotechnol. J. 1, 910-917 (2006).</li>
<li>Mironov, V., Prestwich, G., Forgacs, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprinting+Living+Structures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mater.+Chem%22%5BJournal%5D)">Bioprinting Living Structures.</a> J. Mater. Chem. 17, 2054-2060 (2007).</li>
<li>Xu, T., Rohozinski, J., Zhao, W., Moorefield, E. C., Atala, A., Yoo, J. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inkjet-mediated+gene+transfection+into+living+cells+combined+with+targeted+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Inkjet-mediated gene transfection into living cells combined with targeted delivery.</a> Tissue Eng. Part A. 15, 95-101 (2009).</li>
<li>Cui, X., Dean, D., Ruggeri, Z., Boland, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+Damage+Evaluation+of+Thermal+Inkjet+Printed+Chinese+Hamster+Ovary+Cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+Bioeng%22%5BJournal%5D)">Cell Damage Evaluation of Thermal Inkjet Printed Chinese Hamster Ovary Cells.</a> Biotechnol. Bioeng. 106, 963-969 (2010).</li>
<li>Hamm, A., Krott, N., Breibach, I., Blindt, R., Bosserhoff, A. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+transfection+method+for+primary+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Efficient transfection method for primary cells.</a> Tissue Eng. 8, 235-245 (2002).</li>
<li>Saunders, R., Derby, B. B. ioprinting Inkjet Deposition. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSaunders%2C+R+%22Encyclopedia+of+Industrial+Biotechnology%3A+Bioprocess%2C+Bioseparation%2C+and+Cell+Technology%22">Encyclopedia of Industrial Biotechnology: Bioprocess, Bioseparation, and Cell Technology</a>. 15, John Wiley & Sons. (2010).</li>
<li>Prabha, S., Zhou, W., Panyam, J., Labhasetwar, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Size-dependency+of+nanoparticle+mediated+gene+transfection%3A+studies+with+fractioned+nanoparticles%5BTitle%5D)+AND+%22Int.+J.+Pharm%22%5BJournal%5D)">Size-dependency of nanoparticle mediated gene transfection: studies with fractioned nanoparticles.</a> Int. J. Pharm. 244, 105-115 (2002).</li>
<li>Derby, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprinting%3A+inkjet+printing+proteins+and+hybrid+cell-containing+materials+and+structures%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Mater.+Chem%22%5BJournal%5D)">Bioprinting: inkjet printing proteins and hybrid cell-containing materials and structures.</a> J. Mater. Chem. 18, 5717-5721 (2008).</li>
<li>Apodaca, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endocytic+Traffic+in+Polarized+Epithelial+Cells%3A+Role+of+Actin+and+microtubule+Cytoskeleton%5BTitle%5D)+AND+%22Traffic%22%5BJournal%5D)">Endocytic Traffic in Polarized Epithelial Cells: Role of Actin and microtubule Cytoskeleton.</a> Traffic. 2, 149-159 (2001).</li>
<li>Hotulainen, P., Llano, O., Smirnov, S., Tanhuanpää, K., Faix, G., Rivera, C., Lappalainen, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+mechanisms+of+actin+polymerization+and+depolymerization+during+dendritic+spine+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Defining mechanisms of actin polymerization and depolymerization during dendritic spine morphogenesis.</a> J. Cell Biol. 185, 323-339 (2009).</li>
<li>Allen, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Actin+filament+uncapping+localizes+to+ruffling+lamellaw+and+rocketing+vesicles%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Actin filament uncapping localizes to ruffling lamellaw and rocketing vesicles.</a> Nat Cell Biol. 5, 972-979 (2003).</li>
<li>Cooper, G. M., Miller, E. D., Desesare, G. E., Usas, A., Lensie, E. L., Bykowski, M. R., Huard, J., Weiss, L. E., Losee, J. E., Campbell, P. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inkjet-based+biopatterning+of+bone+morphogenetic+protein-2+to+spatially+control+calvarial+bone+formation%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Inkjet-based biopatterning of bone morphogenetic protein-2 to spatially control calvarial bone formation.</a> Tissue Eng. Part A. 16, 1749-1759 (2010).</li>
<li>Deitch, S., Kunkle, C., Cui, X., Boland, T., Dean, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagen+matrix+alignment+using+inkjet+printer+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+1094+%28DD%22%5BJournal%5D)">Collagen matrix alignment using inkjet printer technology.</a> Proc. 1094 (DD. , 7-16 (2008).</li>
<li>Ilkhanizadeh, S., Teixeira, A., Hermanson, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inkjet+printing+of+macromolecules+on+hydrogels+to+steer+neural+stem+cell+differentiation%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Inkjet printing of macromolecules on hydrogels to steer neural stem cell differentiation.</a> Biomaterials. 28, 3936-3943 (2007).</li>
<li>Ringeisen, B. R., Orthon, C. M., Barron, J. A., Young, D., Sparago, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Jet-based+methods+to+print+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biotechnol.+J%22%5BJournal%5D)">Jet-based methods to print living cells.</a> Biotechnol. J. 1, 930-948 (2006).</li>
<li>Cui, X., Boland, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Human+microvasculature+fabrication+using+thermal+inkjet+printing+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Human microvasculature fabrication using thermal inkjet printing technology.</a> Biomaterials. 30, 6221-6227 (2009).</li>
<li>Langer, R., Vacanti, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Tissue engineering.</a> Science. 260, 920-926 (1993).</li>
<li>Okamoto, T., Suzuki, T., Yamamoto, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microarray+fabrication+with+covalent+attatchment+of+DNA+using+Bubble+Jet+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Microarray fabrication with covalent attatchment of DNA using Bubble Jet technology.</a> Nature Biotechnol. 18, 438-441 (2000).</li>
</ol>

Biz ifşa hiçbir şey yok.

Bioprinting için standart bir mürekkep püskürtmeli yazıcı masaüstü dönüştürme işlemi oldukça zor değildir. En zorlu adım kullanılan yazıcının marka ve modeline bağlıdır kağıt besleme mekanizmasını atlatmak, nasıl belirliyor. Burada tarif edildiği gibi kağıt besleme sensörü mekanik olduğunda Bununla birlikte, bu oldukça basittir. Optik sensörler yem modellerde, diğer teknikleri de kağıt kullanıyor düşünce içine Yazıcı kandırmak için istihdam gerekebilir; bu mikroskop lamı üzerine baskılar ise örneğin, bir yazıcı ile küçük bir kağıt parçası çalıştırabilirsiniz. Kağıt besleme mekanizması atlayarak farklı yazıcı modelleri bu işlemleri uygulayarak en zor adım olması muhtemeldir. Baskı için lamelleri tutmak için bir sahne inşa zaman, düzgün hizalama ve yükseklik sağlamak önemlidir. Aşaması baskı alanı ortasında yerleştirilmesini coverslip olanak vermelidir. Buna ek olarak, pl gerektiğiyeterli bir yükseklikte as coverslip yazıcı kartuşu için boşluk o bozmadan slayt üzerinden geçmesine izin vermek için. Sahnenin tam yüksekliği yazıcı modeline bağlı olacaktır. Basılı hücreleri yıkanmasını alamadım sağlamak için, slaytlar hemen ek hücre büyüme ortamı eklendi önce hücre eki için izin vermek için yaklaşık 30 dakika boyunca baskı sonrası bir kuluçka yerleştirildi. Hücreler PBS büyük miktarda hücrelerin kurumasına ve canlı kaldı içeren bir çözüm basıldı çünkü. Hücreler, hücre (5-7, Şekil 1,) içindeki etiketli g-aktin monomerlerin dağılımı görselleştirme floresans mikroskobu kullanılarak görüntülenmiştir. 3T3 fibroblastlar ile baskı zaman, Şekil 5 aktin floresan için hücre daha neden, fakat yüksek parlaklıktaki çizgiler ile sergileyen, temsili bir sonucunu göstermektedir. Floresan hücre iskeletinin içine g-aktin etiketlenen birleşme olduğunusitoskeletal dinamikleri ve hücresel mekaniğinin çalışması için faydalıdır. 12-15 Bu tekniğin bir sınırlaması yaklaşık 10 nm den daha küçük çaplara sahip moleküller ve proteinlerin sadece uygulanabilir olmasıdır. Bu hücreler, aslında dönüştürülür yazıcı tarafından işlenen edildi sağlamak için, DAPI (PBS içinde 1:5000) saf PBS hacminin yarısına yerine bioink ilave edildi. Flüoresan leke DAPI çekirdek içinde bulunan DNA amino asit zengin porsiyonlar bağlanır. Bu nedenle DAPI baskılı hücrelerin floresan görüntüleme çekirdekler yararlı bir leke olduğunu. Şekil 6 Alexa Fluor 488 (aktin) ve hem de bir bindirme görüntü ile DAPI (nükleus) floresans hem de gösteren bir hücre temsilcisi görüntüsünü gösterir. Şekil 7 de verilmektedir Örnek içine tevdi edilmiş, biyolojik olmayan materyal, çünkü absenc bir floresan olmayacak ederken hücreleri g-aktin monomerler dahil edilmiştir kez floresan olacaktırg-aktin monomerlerin e. Bioprinting için önemli bir göz bioink için kullanılan sulu bir ortamdır. Bu serum ile standart hücre büyüme ortamını kullanarak tutarsız sonuçlar vermiştir bulunmuştur. Bu büyük olasılıkla serum proteinlerinin tarafından baskı kafası memelerin tıkanmasına bağlıdır. PBS kullanımı baskılı desenler tutarlılığı artmış ve hücre sayısı yatırılır. PBS kullanarak bir dezavantajı hücrelerin uzun süre için askıya bırakılmamalıdır olmasıdır. Ancak, bu örneklerin fibroblastların hücre canlılığını hiçbir değişiklik ile en az bir saat bioink koşullarına tahammül başardık. Bu termal mürekkep püskürtmeli mekanizmalar üzerinden basılan hücreler yüksek canlılık oranına sahip olduğu gösterilmiştir rapor, önceki birkaç bulguları ile tutarlıdır. 2-8 Bu modifiye yazıcı kurulum hücre baskı dışındaki uygulamalar için de kullanılabilir. Gibi kolajen ya fibrone olarak 16-22 matris proteinlerine,ctin, kolaylıkla hücre desenlendirme için yararlı olabilir bu teknik ile yüzeyler üzerine basılabilir. Örneğin, kolajen tip I hattı kalıpları içine büyüme faktörleri gibi matris proteinlerine, diğer moleküllerin, ek olarak in vitro hücre kültürü çalışmalarda. 17 için kullanılabilir hizalanmış kollajen yüzeyler ile sonuçlanacaktır baskılı, güvenilir bir hücre çalışmaları için yüzeyler üzerinde lokalize edilebilir ve potansiyel terapötik uygulamalar. 18 Yukarıdaki adımları açıklanan tasarım önemli bir kısıtlaması, bu yazıcının birden fazla boyutta baskı yeteneğine sahip olmadığıdır. Bu tür iskelesi baskı gibi desenli uygulamalarda kullanım için potansiyel sınırlar. 3D baskı için izin vermek için, özel bir aşamada kullanılmak üzere ihtiyaç duyar. Sahne bioink tabaka-by-katman birikimi için artan yükseklik ayarlı olması gerekir. Bioprinting doku mühendisliği için verimli ve maliyet etkin bir yöntem olarak söz göstermiştir, Gen transfeksiyon, micropatterning ve mikroarray fabrikasyon 1-12, 16-22 cihaz bu tip gelecekteki uygulamalar da dahil olmak üzere, çok fazladır. Iskeleler üzerine kontrol ve desenli mikro hücresel, hücre sitoplazmaya makromoleküllerin birleşme ve hücrelerin birikimi oluşturulması ve doğal ya da verimli bir şekilde meydana gelmez yapılar.

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> HP Deskjet 500 </td><td> Hewlett-Packard </td><td> C2106A </td><td> Üreticinin Durduruldu. Yenilenmiş Aralık Trader satın aldı. </td></tr><tr><td> HP 26 Siyah Mürekkep Kartuşu </td><td> Hewlett-Packard </td><td> 51626A </td><td></td></tr><tr><td> Tavşan kas aktin, Alexa Fluor 488 konjuge, 200 mikrogram </td><td> Invitrogen </td><td> A12373 </td><td></td></tr><tr><td> Fosfat Salin (PBS) Tamponlanmış </td><td> MP Biomedicals </td><td> ICN1860454 </td><td></td></tr><tr><td> Dulbeco Modified Eagles Medium (DMEM) </td><td> Thermo Scientific </td><td> SH3002201 </td><td></td></tr><tr><td> Sığır fetüs serumu </td><td&gt; Sigma-Aldrich </td><td> F4135 </td><td></td></tr><tr><td> Amfoterisin B </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A2942 </td><td> Hücre kültür ortamında% 0,5 ikinci </td></tr><tr><td> Penisilin-Streptomisin </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> P4333 </td><td> Hücre kültür ortamında% 0,5 ikinci </td></tr><tr><td> Tek Yönlü Akış Temiz Tezgah </td><td> Envirco </td><td> VLF 797 </td><td> Yazıcı aseptik tutmak için opsiyonel konut </td></tr></tbody></table>

standart mürekkep püskürtmeli yazıcı kullanımı geçici hücre zarı gözenekler oluşturma

Creating Transient Cell Membrane Pores Using a Standard Inkjet Printer

Bioprinting doku mühendisliği, doğrudan hücre uygulama terapileri, biyosensör mikroimalat içeren uygulamalar ve önemi geniş bir yelpazede, vardır. Son zamanlarda 1-10, termal mürekkep püskürtmeli baskı Ayrıca gen transfeksiyon için kullanılmaktadır. 8,9 termal mürekkep püskürtmeli baskı işlemi gösterildi geçici hücre canlılığı etkilemeden hücre zarlarını bozabilir. Membranında geçici gözenekler aksi hücre sitoplazmaya, membran geçmesi için çok büyük moleküllere olacaktır. 8,9,11 tanıtmak üzere kullanılabilecek Burada gösterildiği edilen uygulama hücrelerine floresan etiketli g-aktin monomerlerin birleştirmek için termal mürekkep püskürtmeli baskı kullanılmasıdır. Hücrelere moleküller enjekte etmek için termal ink-jet baskı kullanmanın avantajı tekniği hücreleri için nispeten iyi huylu olmasıdır. Baskıdan sonra 8, 12 Hücre canlılığı, standart hücre PLA benzer olduğu gösterilmiştirting yöntemleri 1,8. Ayrıca, inkjet baskı manuel mikroenjeksiyon çok daha hızlı olan, birkaç dakika içinde hücrelerin binlerce işleyebilir. Baskı tarafından oluşturulan gözenekler yaklaşık iki saat içinde kapatmak için gösterilmiştir. Bununla birlikte, küçük bir protein ve / veya partikülleri hücreler enjekte etmek tekniği sınırlar Bu baskı tekniği ile (~ 10 nm) hazırlandı gözenek büyüklüğü bir sınırlama yoktur. 8,9,11 Standart bir HP Deskjet 500 Yazıcı kaldırıldı 8 yazıcının kapağı, 3, 5. Hücre baskı sağlamak için değiştirilmiş ve kağıt besleme mekanizması mekanik bir kolu kullanılarak bypass oldu. Bir aşamada doğrudan baskı kafası altında mikroskop ve lamelleri yerleştirilmesi için izin vermek için oluşturuldu. Mürekkep kartuşları, açılmıştır mürekkep çıkarıldı ve hücreler ile kullanımdan önce temizlenmiştir. Baskı desen sonra basit bir yazıcı komutu ile yazıcının kontrol standart çizim yazılımı kullanılarak hazırlandı. 3T3 fibropatlamalar, izdiham büyüdü tripsinize ve sonra fosfat süspanse çözünür floresan etiketli g-aktin monomerler ile tamponlu tuzlu edildi. Hücre süspansiyonu mürekkep kartuşu pipetlendi ve hücre hatları cam mikroskop kapak slipleri üzerine basıldı. Canlı hücreler floresan mikroskobu kullanılarak görüntülendi ve aktin sitoplazma boyunca bulundu. Hücreye flüoresan aktin birleştirilmesi kısa zamanlı sitoskeletal dinamiklerinin görüntüleme için olanak sağlar ve geniş bir uygulama alanı için yararlıdır. 13-15

Bir bioprinter içine bir HP Deskjet 500 Yazıcı dönüştürmek için kullanılan yöntemlerin açıklaması. Yazıcı membran geçici gözenekler neden canlı hücreler, işleme kapasitesine sahiptir. Bu gözenekler baskılı hücrelerine flüoresan G-aktin dahil olmak üzere küçük moleküller, dahil etmek için kullanılabilir.

Standart Mürekkep Püskürtmeli Yazıcı Kullanımı Geçici Hücre Zarı Gözenekler oluşturma

Biyobasım; doku mühendisliği, doğrudan hücre uygulama tedavileri ve biyosensörler dahil olmak üzere geniş bir uygulama alanına ve öneme sahiptir...

Bu prosedürün genel amacı, mürekkep püskürtmeli yazdırma yöntemiyle hücre membranlarında geçici porlar oluşturmaktır. Bu işlem, öncelikle standart bir mürekkep püskürtmeli yazıcının modifiye edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım ise, biyomürekkebin yerleştirilmesine olanak sağlamak için standart bir yazıcı mürekkep kartuşunun boşaltılması ve temizlenmesidir.Ardından, biyomürekkep çözeltisini oluşturmak için incelenen hücreler, floresan işaretli aktin monomerleri ve PBS içeren bir çözeltide süspanse edilir. Son adım, modifiye edilmiş yazıcı ve kartuş kullanılarak biyomürekkebin mikroskop lamları üzerine basılmasıdır. Nihayetinde, Fluor four konjuge G aktin monomerlerinin, geçici membran gözenekleri aracılığıyla basılan hücreler tarafından içselleştirildiğini göstermek için floresan mikroskopi kullanılabilir.Bu tekniğin standart transfeksiyon ve hücre mikroenjeksiyon tekniklerine göre temel avantajı, bu yazdırma tekniğinin kullanımının kolay olması ve yüksek hücre canlılığı sağlamasıdır. Bu teknik genetikte içgörü sağlayabildiği gibi, hücre biyofiziği ve doku mühendisliği gibi diğer çalışma alanlarına da uygulanabilir. Bu teknik, hücre göçü sırasında bir hücrenin hücre iskeletini kolayca gözlemlemek için kullanılabilir.Bu yöntem için ilk fikri, hücrelere uygulanan kuvvetler nedeniyle sitoskelet düzenlemesinde meydana gelen değişiklikleri görselleştirmek istediğimizde geliştirdik. Yazıcının alt tabanındaki plastik klipslerin kilidini açarak başlayın ve ardından üst plastik kasayı yavaşça kaldırın. Daha sonra, düğme ekran ışık panelini yazıcının anakartına bağlı bırakarak yazıcının üst kısmından ayırın.Kim mendilleri ve etanol kullanarak yazıcının iç kısmını, özellikle mürekkep kartuşunun yerleştiği ve yazdırma işleminin gerçekleştiği alanları temizleyin. Ardından, HP desk Jet 500'ün kağıt besleme mekanizmalarına güç sağlayan kabloyu bulun.Bunlar, ön tarafın solunda, kağıt tepsisinin hemen altındadır; kabloları anakarttan çıkarın. Şimdi kağıt algılama mekanizmasını bulun ve manuel bir tutamak görevi görmesi için yazdırma kağıdı besleme mekanizmasının üstünde ve arkasında bulunan gri plastik mandala bir tel halka sabitleyin, buraya bir tabla yerleştirin. 15 santrifüj tüpü için kullanılan köpük taşıma tutucusu, istenen yazdırma lamlarını kartuş yazıcı kafasının hemen altındaki bir seviyeye getirmek amacıyla, kağıt besleme mekanizmasının önündeki yazdırma bölgesine bantla sabitlenmiş birkaç mikroskop lamı ile birlikte kullanılır.Son olarak, aseptik tekniği korumak için yazıcıyı laminer akışlı kabin içerisine yerleştirin. Yazıcı kontaklarını ve baskı kafasını örten koruyucu bantları bırakarak, kartuşu paketinden çıkararak başlayın. El tipi döner kesme aleti kullanarak, kartuşun yeşil üst kısmını herhangi bir engelden uzak tutacak şekilde gövdesini bir kelepçe ile sabitleyin.Kartuşun yeşil üst kısmını kesin, haznedeki kalan tüm mürekkebi boşaltın ve ardından yazıcı temas noktaları ile yazıcı kafasını örten plastik koruyucu bandı çıkarın. Bu işlem sırasında yazıcı kafasından muhtemelen su sızacaktır ancak bu durum kartuşa herhangi bir zarar vermez. Su berrak akmaya başladığında kartuşun kurumasına izin verin.Temiz bir baskı ortamı sağlamak için, işleme kartuşu deiyonize suyla dolu bir behere tamamen daldırarak başlayın ve ardından kartuşu 15 dakika boyunca sonikasyon işlemine tabi tutun. Sonikasyondan sonra kartuşu çıkarın ve fazla suyu silkeleyerek uzaklaştırın. Daha aseptik bir ortam oluşturmak için kartuşun içine %70 etanol püskürtün.İlgilenilen hücreler hasat edildikten sonra, hücreleri 15 mililitrelik konik santrifüj tüpü içerisinde beş mililitre taze besiyerinde, oda sıcaklığında 250 ×g'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Ardından, besiyerini aspire edin ve hücreleri yeni hazırlanmış floresan G aktin stok çözeltisi içerisinde 1 × 10⁵ hücre/mililitre konsantrasyonda yeniden süspande edin. Bio-mürekkep hazırlarken, 250 µL bio-mürekkebin burada gösterilen çizgi desenine sahip üç lamelle basım yaptığını unutmayın. Yazıcı açılıp ısındıktan sonra, istenen baskı yüzeyini buraya yerleştirin; önceden monte edilmiş tablasının merkezinde 22 mm × 22 mm boyutlarında lamel kullanılır.Ardından, bir çizim yazılımı programı açın ve istenen deseni seçin. Şimdi, kartuş bölmesinin altındaki küçük dairesel kuyucuğa yaklaşık 100 ila 120 µL hücre süspansiyonu pipetleyin. Yazıcı yeniden ısınırken dosyayı yazdırın, kartuş hazır konumuna gelecektir.Kartuş, mürekkep damlama haznesinin hafifçe soluna hareket edip orada kaldığında; kağıt besleme mekanizmasını ve teli yukarı çekin, ardından yazdırma işlemi başlayacaktır. Yazıcı, G aktin monomer çözeltisi içindeki bir fibroblast hücresi süspansiyonundan oluşan bir biyo mürekkep ve HP desk jet 500 yazıcı kullanarak, yazdırma tablasının merkezine yerleştirilen lamine üzerine baskı yapacaktır.Bir HP 26 serisi içerisinde, mürekkep kartuş hücreleri cam mikroskop lamel üzerine basılmıştır. Bu şekil, floresan aktin monomerlerinin dahil olduğu basılmış fibroblast hücrelerinin temsili bir sonucunu göstermektedir. Bu desen, önceki şekilde mikroskop lamının büyük bir kısmı boyunca baskı çözeltisinden oluşan sürekli bir hat oluşturmak için kullanılmıştır.Bu şekilde, biyomürekkep ve hücrelerin karşılıklı olarak yerleştirildiği düz hat gösterilmiştir. Baskıdan hemen sonra, hücrelerin süspande edildiği biyomürekkep solüsyonunun serbest fazla floresan aktin monomerleri içerdiğinden dolayı arka plan floresansında bir artış olduğu görülmektedir; baskı sonrası hücrelerin yaklaşık 10 dakika boyunca inkübe edilmesi lam üzerine yapışmayı kolaylaştırır ve fazla monomer solüsyonunun taze büyüme medyumları ile substrattan yıkanmasına olanak tanıyarak arka plan floresansını önemli ölçüde azaltır. Burada, yerelleştirilmiş bir baskı bölgesine basılan üç 3T3 fibroblastinin temsili bir görüntüsü yer almaktadır; baskıdan 15 dakika sonra alınan bu hücre floresan mikroskopi mikrografı, G-aktini yeşil, çekirdeği mavi ve hem G-aktininin hem de nükleer boyanın üst üste bindirilmiş görüntüsünü göstermektedir.Sonraki iki görüntü, yazdırmadan üç saat sonra çizgi desenindeki iki fibroblastın floresan mikroskobisini göstermektedir. Bu ilk görüntü, hücrelerin içindeki floresanla işaretlenmiş aktin monomerlerini göstermektedir. Bu ikinci görüntü, sol alt köşedeki lam üzerinde bazı kalıntılar olabilmesine rağmen bunların floresan yaymadığını göstermek için floresan kanalının arka plan görüntüsüyle üst üste bindirilmiş halidir.Son olarak, hücre basımı yoluyla membran permeasyonu gerçekleşmeden monomerlerin hücre membranına nüfuz edemeyeceğini göstermek amacıyla, floresan işaretli monomerlerle üç saat boyunca inkübe edilen basılmamış hücrelerden oluşan bir kontrol grubu burada sunulmuştur. Bu prosedürü uygularken, yazıcı tıkanması tekniği yavaşlatan sorunlardan biri olduğundan, birkaç kartuşun temizlenmiş ve kullanıma hazır olması önemlidir. Bu videoyu izledikten sonra, geçici membran kuvveti oluşturmaya yardımcı olan standart bir masaüstü yazıcının canlı hücreleri basacak şekilde nasıl dönüştürüleceği konusunda iyi bir anlayış kazanmış olmalısınız.

creating-transient-cell-membrane-pores-using-a-standard-inkjet-printer

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Canlı hücre göç çalışmaları için bir mikroskop odasında yapıştırıcı ve çözünür degradelerin montajı için bir yöntem tarif edilmiştir. Mühendislik ortamı çözümü degradelerle antifouling yüzeyleri ve yapıştırıcı parçaları birleştirir ve bu nedenle bir rehberlik ipuçları göreli önemini belirlemek için izin verir.

Floresan Mikroskobu ile Görüntüleme Hücre Göç Yapıştırıcı ve Çözünür Degradeler oluşturma

Bu 3D mikroakışkan baskı teknolojisi, hücre dizilerini batık yüzeylere yazdırır.  Hücre dizilerinin 3D akış hücrelerinde mikroakışkan olarak batık yüzeylere nasıl iletildiğini açıklıyoruz.  Batık yüzeylere baskı yapılarak, çok sayıda alanda ilaç taraması ve sitotoksisite değerlendirmesine izin veren hücre mikrodizileri üretildi.

Sürekli Akış Microspotter kullanma Modifiye yüzeye hücrelerin Batık Baskı

Bu yazıda anlatılan yöntemleri eşzamanlı UV polimerizasyon ile bir bioprinter içine ticari bir mürekkep püskürtmeli yazıcı dönüştürmek için nasıl gösterir. Yazıcı hücreleri ve biyomalzeme 3D doku yapısı oluşturmak yeteneğine sahiptir. Burada gösterilen çalışma 3D neocartilage inşa.

Üç boyutlu Mürekkep Püskürtmeli Baskı Teknolojisi Kullanımı İnsan Kıkırdak Doku Fabrikasyon

Bir damlacık arayüz lipid ikili tabakasına karşı mikroakışkan jeti zar asimetri, zar proteinlerinin dahil edilmesi, ve malzeme kapsülleme üzerinde kontrol ve veziküllerin üretilmesi için güvenilir bir yöntem sağlar. Bu teknik, bölümlere biyomoleküllerin istenen biyolojik sistemlerin çeşitli çalışma uygulanabilir.

Mikroakışkan jeti kullanarak çift katlı lipid Vesikül Üretimi

Bir Kartezyen biyoyazıcı, hassas, tekrarlanabilir geometrilerde çok malzemeli biriktirmeye izin verirken aynı zamanda çevresel faktörlerin kontrolüne de izin verecek şekilde tasarlanmış ve üretilmiştir. Üç boyutlu biyo-yazıcıyı kullanarak, karmaşık ve uygulanabilir yapılar basılabilir ve kolayca çoğaltılabilir.

Üç Verici Kartezyen Yazıcı Kullanımı Bioprinted Hücresel Yapıların Canlılık

Bu protokol, kazınmış topografik kılavuz ipuçlarını hidrojel biyomürekkebi taşıyan bir hücrenin hassas birikimiyle birleştiren otomatik bir robotik biriktirme sistemi kullanan bir biyo-baskı metodolojisini açıklar. Basılı hücreler doğrudan kazınmış özelliklere iletilir ve onlarla birlikte algılayabilir ve yönlendirebilir.

Hücre Yüzey Rehberlik ve Bioprinting için Otomatik Robotik Dağıtım Tekniği

Bu rapor, biyolojik araştırmalar için mikroakışkan kanalları hücreler ve substratlarla doldurmak için düşük basınçlı vakum kullanan basit, uygulaması kolay bir tekniği açıklamaktadır.

Desenlendirme Proteinlerin ve Hücreleri Çok Yönlü Yöntemi

Burada, yüksek çözünürlüklü iletken desenleri electrohydrodynamic (EHD) jet baskı kullanarak üretmek için bir protokol mevcut. Protokol EHD püskürtmeli baskı iki mod içerir: sürekli yakın alan electrospinning (NFES) ve istek üzerine damla (DOD) EHD nokta tabanlı yazdırma.

Yüksek çözünürlüklü Electrohydrodynamic Jet iki modu kullandıktan biçimlenme: damla talep ve yakın alan Electrospinning

Burada sunulan, hidrojel mikrokaçörlerin yapımını sağlamak için viskoz-atalet kuvvetlerinin alternatifi tarafından tahrik edilen hafif bir 3D baskı tekniğidir. Ev yapımı nozüller esneklik sunarak farklı malzemeler ve çaplar için kolay değişim sağlar. 50-500 μm çapında hücre bağlama mikrokaderleri elde edilebilir ve daha fazla kültleme için toplanabilir.

Alternatif Viskoz-Atalet Kuvveti Jetting ile In Vitro Hydrogel Mikrokaçörlerinin 3D Baskısı

Bu protokol, hücre yüzeyi reseptörlerinin, Kit'in (CD117) ve yüksek benzeşimli IgE reseptörlerinin (FcφRI) hücre canlılığı ve fenotipik ekspresyumu açısından fare kemiğinden türetilmiş mast hücreleri ile kristal nanoselüloz (CNC)/agarose kompozit hidrojel biyomalzeme mürekkebinin biyouyumluluğunu hızla değerlendirmek için bir yöntemi vurgulamaktadır.

Kemik İliği Türevi Mast Hücre Kültürü için Kristal Nanoselüloz Gömülü Agarose Biyomalzeme Mürekkep İmalatı

Bu protokol, nanofibrillenmiş selüloz kağıt üzerinde mikro kanallar üretmek için basit mikro kabartma işlemleri için uygun plastik mikro kalıpları kullanan ve minimum 200 μm genişliğe ulaşan basit bir işlemi açıklar.

Mikro Kabartma: Nanoselüloz Kağıt Bazlı Mikroakışkanlar Üzerinde Mikrokanalların Üretilmesi İçin Uygun Bir İşlem

Öğrenin, standart bir mürekkep püskürtmeli yazıcıyı biyoyazıcıya dönüştürerek hücre zarlarında geçici gözenekler oluşturmayı. Bu yöntem, yüksek hücre canlılığı ile genetik ve doku mühendisliği çalışmalarına uygulanabilir.

Standart Mürekkep Püskürtmeli Yazıcı Kullanımı Geçici Hücre Zarı Gözenekler oluşturma

Daha fazla video keşfet