Name: Için Basitleştirilmiş Tekniği Yerinde eksizyonu (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-12T13:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 58 s
Description: Öğrenin, kadavra bağışçılarından kornea ve retina dokularını çıkarmak için basitleştirilmiş bir teknik. Bu yöntem, doku bütünlüğünü koruyarak nakil ve araştırma amaçlı yüksek kaliteli örnekler sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Regione Veneto (Ricerca Sanitaria Finalizzata n.292/2008 ve Ricerca Sanitaria Finalizzata 2009) hibe yoluyla kısmen desteklenmiştir. Yazarlar, insan oküler küreler kullanımı 2009/2010 özet verileri için, Dr C. Griffoni teşekkür ederim.

1. Kornea in situ olarak eksizyonu Oküler Küre gelen <ol><li> Yaklaşık 15 dakika kullanmadan önce laminar hava akımı kabini açın. % 70 izopropil alkol kullanarak laminar akım temizleyin. Bu tür cerrahi kap ve maske gibi kişisel koruyucu giysiler giyin. El ve ön kol fırçalayın ve steril bir havlu ile kurulayın. Aseptik teknik kullanarak steril eldiven ve önlük veya kollu giyin. </li><li> Aseptik olarak steril bir alet tepsisine yerleştirerek steril alan ayarlayın. Aletler steril olduğundan emin olun. Steril alet paketi açın ve herhangi bir kontaminasyon kaçınarak steril bölgeye çevirin. </li><li> Bu kullanım kolaylığı için steril alanın kenarına bitişik olacak şekilde göz küreleri içeren şişelerde (göz kavanoz) ile birlikte tüm steril malzeme ve aletler (Tablo 2) yerleştirin. </li><li> Tablo 3&#39;te belirtildiği gibi önceden hazırlanmış koruma / saklama ortamı ile şişeleri etiketlemek ve koyunI-PVP ile birlikte laminar hava akışı kapağı (iyot-polivinilpirrolidon), sodyum tiosülfat ve bir steril salin çözelti yüzeyinde m PBS (fosfat tamponlu tuzlu su). </li><li> Onlar 4 ° C&#39;de buzdolabı korunur gibi oküler doku ve çözümleri normal oda sıcaklığına ulaşmasını sağlayın Tekrar ısınma / soğutma çevrimleri kaçının. Çözüm kapakları ve iç yüzü gözü kavanoz kavanoz kendi yanında bakacak tutun. </li><li> Steril forseps kullanarak göz kavanoz tüller ve süngerleri çıkarın. Oküler küreler dekontamine için 2 dakika süreyle steril I-PVP% 0.5 &#39;lik dünya daldırın. Steril alanın dışında, steril tepsinin kapağındaki iki forseps yerleştirin. Steril forseps başka bir çift kullanarak 1 dakika boyunca sodyum tiyosülfat% 0.1 &#39;dünya aktarın. Aynı forseps kullanarak, steril serum fizyolojik (PBS) içeren şişe için dünya transfer onu işletilmektedir kadar terk. T diğer oküler dünya için aynı işlemi tekrarlayıno Aynı donör. </li><li> Laminer hava akımı motor kapağının altında çalışarak, ortaya korneadan steril kornea bırakarak gazlı bez (bandaj) ve yaklaşık 5 mm sklera kullanarak dünyanın sarın. Göz ampul sadece yeterli basıncı muhafaza elinde olabilir. Doku tamamını cerrahisi sırasında nemli tutulmalıdır. </li><li> Forseps konjonktivanın tüm nihai kalıntıları çıkarmak için makas ile birlikte kullanılır. Diğer araçlardan ayrı yukarıdaki işlemi için kullanılan aletler tutun. Limbus bölgede 3-4 mm skleral kesi gerçekleştirmek için bir neşter bıçak kullanın, sonra altta yatan uveal dokuyu perfore kaçınarak, 360 ° kesi uzatmak veya korneanın normal eğrilik deformasyona neden. Vitreus vücut salgısı kaçınarak dört küçük boşluklar bırakarak dört büyük kesiler kesin. Dört boşluklar başka doku hiçbir kaldırma sağlamak kesilir. </li><li> Küçük skleral plakların varlığı kesme engel olabilir, bu nedenle comp emin olunmikrocerrahi makas ile skleral eksizyonu Lete. Bu işlem koroid, retina ve vitreus zarar vermeden yapılmalıdır. </li><li> Bu tamamlanmasını sağlamak üzere kesi inceleyin. Insizyon sadece kornea ile yazışmalarda noktada siliyer organlarına doğru corneo-skleral rim yapışır yapıldıysa. </li><li> Steril alanın merkezine yakın sarılı oküler dünyanın aşağı ayarlayın. Aşağı ve uzak corneo-skleral düğmesini siliyer cisim-koroid çekmek için eksizyon için kullanılan skleral jant sabit ve elini tutmak için forseps kullanılarak kornea kaldırılması. </li><li> Yavaşça corneo-skleral düğmesinden kalan yapışıklıklar ayırın. Ne çapraz kornea gerginliğe neden ne de ön kamara üzerine aşağı gerilemek olanak verebilecek bir şekilde corneo-skleral rim çekin. </li><li> Kornea endotel hücre yoğunluğu bir tryp kullanarak bir hipotonik çözüm ve hücre ölümleri kontrol edilir kullanılarak kontrol ediliryaklaşık 1 dakika ile hücreleri için bir mavi boyama daha sonra bir optik mikroskop altında sayıldı ve hücre / mm 2 olarak ölçülür. Posterior Petri plakanın alt bakmalıdır ise ön kamara kapağını bakmalıdır. Endotel hücre yoğunluğu 100X büyütme altında objektif bir ızgara kullanarak manuel sayılabilir. İtalya&#39;da transplantasyonu için asgari kabul sayımı 2200 endotel hücre / mm 2 &#39;dir. </li><li> Tablo 3&#39;te gösterildiği RT (oda sıcaklığında) muhafaza önceden hazırlanmış kornea depolama ortamına bir kornea tırnak kullanarak corneo-skleral rim aktarın. </li><li> Doğal kristalin lens için arka kamara inceleyin. Sklera hazırlanmış ise, dünyanın tüm uvea kalıntıları ve vitreus çıkarın. Dikkatle kakışıyor ve aseptik teknik kullanılarak, ilgili gözünü kavanoza kalan arka segment dönmek. Yeni enstrümanlar kullanarak diğer dünya için prosedürü tekrarlayın. Kornea zekâ Fixh kornea pençe ve 31 medya depolama (organ kültürü) altında muhafaza ° C Şekil 1a&#39;da gösterilen çıkarıldı kornea, daha sonra keratoplasti ya araştırmalar için kullanılabilir. </li><li> Uygun çöp bidonları içine gereksiz malzeme ve biyo-tehlikeli atık bertaraf edin. Iş% 70 izopropil alkol sprey kullanarak bittikten sonra çalışma alanı temizleyin. </li><li> 28 gün sonra korneanın tüm değerlendirme parametreleri tutar, varsa [böyle morfolojisi gibi, hücre sayımı, şeffaflık, kalınlık ve mikrobiyoloji testleri - bakteriyel ve BACTEC 9240 cihaz (Becton Dickinson, Milan, İtalya) kullanarak mantar], daha sonra sevk edilebilir Tablo 4&#39;te gösterildiği gibi, taşıyıcı kullanılarak hastanelerde. Kornea kaldırıldı laminar hava akımı kabin altında orta taşıma depolama konulmalıdır. </li><li> Olarak, depolama sırasında, kornea nakli için gerekli her zamanki boyutundan daha kalın olur, göz bankaları kalınlığı azaltmak için de şişme maddeler kullanmayın. Bizulaşım ortamda normal boyutuna geri kornea almak için% 6 dekstran T500 kullanın. % 4-8 dekstran T500 kullanılabilir rağmen,% 6 bizim için iyi hizmet etmiştir. Bu daha kolay cerrahlar hemen onu alırsınız gibi kornea nakli için yapar. </li></ol> 2. Kornea eksizyon Oküler Küre gelen Retina Eviserasyon <ol><li> Çıkarılması takiben, kornea morfolojisi ve endotelyal hücre yoğunluğuna bağlı nakli ya araştırmalar için seçilir ve 31 depolama veya korunması orta yerleştirilir ° C. Oküler dünyanın kalan, ardından cerrahi amaçlı gibi sklera izolasyon gibi daha sonra kullanmak için işlenmiş araştırma için retinanın vb edilir </li><li> Retina eksizyonu öncesinde, oküler dünyanın bozulmamış ve kaldırılır sklera bir parçası sadece korneanın olduğundan emin olun. Jelatinimsi vitreus dışarı salgılayan ise bir retina doku kaldırmak için zor olur. </li><li> Donör aşağıda 65 yaş ise, sklera olduğunuserolojik testler sonrasında cerrahi amaçlı steril PBS altında korunmuş. Bu durumda, sklera, kesilmemiş sadece camsı gövdesi kaldırılır ve tüm sklerasına korunur. </li><li> Retina eksizyon için, steril forseps ve makas kullanılarak optik sinir doğru hareket sklera kornea tarafı küçük bir kesik veya kesi ile başlar. Forseps kullanarak skleranın parçası tutun ve düz vitreus vücuda zarar kaçınarak parçası kısmen kesme optik sinir doğru makasla kesti. </li><li> Birlikte sıkışmış olarak Koroid plaklar sklera ayrılmalıdır. Koroid dokusu ortaya çıkarmak için tüm sklera kesin. Sklera tamamen kesilir sonra, optik sinir yakınında keserek vitreus vücudun geri kalan ile sklera ayırın. Şekil 2a&#39;da gösterildiği gibi koroidin kaplı camsı gövdenin tamamını bilya görülebilir. </li><li> İki steril forseps kullanma biri ile toplayıp yavaşça koroid tabakasının uzaklaştırılmasıforseps çifti ve diğer çıkarmadan. Alternatif olarak, koroid tabakası makas kullanılarak kaldırılabilir ancak retinaya zarar verebilir, bu ideal kaçınılmalıdır. Kısmen koroid tabakası çıkarın ve kaldırma kolaylaştırmak için kesti. </li><li> Koroid tabakası kaldırıldıktan sonra, retina şeffaf bir tabaka açık olarak Şekil 2b&#39;de gösterilmektedir görülecektir. Koroid tabakası da kaldırılmış olabilir bir iç Bruch membranı vardır ama bir göz ile tespit etmek zordur. </li><li> Benzer şekilde, Şekil 2 c &#39;de gösterildiği gibi retinal tabakası kaldırma için iki forseps kullanabilir. Bu optik sinir yakınında eksize eğer retinada yüksek miktarda izole etmek kolaydır. Şekil 2B&#39;de gösterildiği gibi, gözün tüm tabakalar artık görülebilir. </li><li> Retina dokusu kaldırıldıktan sonra, farklı amaçlar için kullanılabileceğini ve korunması için kullanılan bu nedenle sonraki adımları ve koşulları buna göre değişebilir. Örneğin,retina dokusunun RNA stabilizasyonu reaktifleri (RNAlater gibi) veya lizis tamponu (RNA ya da DNA izolasyonu için), dispase / tripsin (hücre izolasyonu için), sabitleme çözümleri (önceden için parafin veya OCT dokuların embed içeren tüpler yerleştirilebilir immünhistokimya). </li><li> Tüm çalışma alanı temizleyin ve% 70 izopropil alkol sprey kullanarak temizleyin. </li></ol> 3. Temsilcisi Sonuçlar Şekil 1a da görüldüğü gibi corneo-skleral rim skleral jant ve endotel morfolojisi, genellikle penetran keratoplasti için kullanılan kornea bu tür gerekli miktarı ile doğru şekilde eksize kornea olduğunu. Eksize korneanın ön stromada donukluk varlığı ile bozuksa, korneanın endotel keratoplasti / arka lameller keratoplasti (stroma bir parçası olan endotel) için kullanılabilir. Endotel tabakasının zarar görmüş veya endotel hücre yoğunluğu &lt;2200 hücre / mm 2 ise (Bu takdirde, Oysaalian standart), kornea ön lameller keratoplasti (anterior stromada bir parçası olan epitel) için kullanılabilir. Endotel hücre sayımı gerekli az ise kornea tamamen bozuksa Şekil 1b, 3b ve 3c veya atılır gösterildiği gibi, bu araştırma için kullanılır olabilir, oysa, korneanın anterior lameller keratoplasti veya araştırma için kullanılabilir. Hasar doku ilgilenmedikleri bir nedeni olabilir, stromal ya Descemet endotel izleri yol önce katarakt ameliyatları, hastanın yaşam vb sırasında fiziksel yaralanma gelişimi nedenle, bunun için optik mikroskop altında yarık lambası ve sonra her doku kontrol etmek için gerekli olur ince izleri / kıvrımlar / müfrezeleri. Kornea genellikle organ kültürü (yaklaşık 31 ° C), genellikle Avrupa ülkeleri ya hipotermik koşulları kullanılmıştır (yaklaşık 4 ° C), genellikle kullanılan ABD. Olarak iki farklı koşullar altında muhafaza edilir Bu baraj yenilenmesine yardımcı olarak biz organ kültürü kullanınyaşlı epitel hücreleri, yüksek bir post mortem zaman yeniden canlandırmak endotel hücre kontrol etmek, bir cerrahi planlama için yeterli bir pencere sağlar 4 haftalık bir depolama süresi, vb kornea mikrobiyolojik (bakteriyel ve fungal) ve serolojik test için yeterli zaman verir de 7 gün boyunca taşıma ortamı muhafaza edilebilir. Sklera tüm koroidal plaklar nazik kaldırılması sağlanması parçası kısmen kesilmiş olabilir. Şekil 4 &#39;de gösterildiği gibi, optik sinir, koroid veya retina keskin kesilirken camsı sıvı ifraz olabilir. RNA analiz için eksize eğer retina kısa sürede dokular eksize gibi RNAlater muhafaza edilmelidir. Genellikle ° taze Eppendorf tüpleri (güvenli kilit boruları, 2 ml) C ye kadar kullanılan veya sevk kuru ile koroid ve retina tabakasının 1X1 cm eksize edilir ve 4 az 24 saat süreyle RNAlater içinde tutmak sonra -80 ° C altında korunur buz. Retina dokusunun uzak iris gelen optik sinir yakınında iki forseps kullanılarak eksize edilmelidirretina alınırken veya diğer pigmentli yapıları ile kirlenmesini önlemek için ve RNA gibi hemen koruyarak konteyner aktarılması gerekiyor siliyer marjı kararsız alır. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig1.jpg" alt="Şekil 1" /> Şekil 1 bir iyi bir de kötü kalite kornea arasında karşılaştırma: a.) Düzgün eksize korneanın. Böyle bir kornea genellikle 4 hafta süreyle organ kültürü altında muhafaza edilir. Mikrobiyolojik (BACTEC 9240 cihaz kullanarak) ve morfolojik (hücre ölüm tespiti için tripan mavisi ile boyanan hücrelerin ve 100X büyütme ile mikroskop altında hücreleri inceleyerek) muayene hastane (Şekil 3a) taşındığında önce gerçekleştirilir; b) bükük kornea , bunlar da yüksek Descemet kıvrımları ve yarık lamba mikroskopta incelenir yüksek endotel hücre hasarına bağlı greft reddedilmesine yol açmaktadır. Böyle bir kornea genellikle res için kullanılırrama veya atılır. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig2.jpg" alt="Şekil 2" /> Şekil 2. Retina dokusunun doğru bir eksizyonu sağlamak için kullanılan yöntem. A) 95 mm kavisli veya künt ucu steril makas ve 0.70 mm diş steril forseps ile yönetilen 100 mm 11X2 ile 24mm bıçak kullanarak oküler Dünya&#39;dan sklera Dissecting. Sklera forseps makas kullanırken optik sinir doğru düz bir şekilde kesilmesi ile bir tarafı tutarak kesilmelidir. Koroid tabakası artık kolaylıkla görülecektir; b) 0.70 mm diş steril forseps tarafından yönetilen iki adet 100 mm 11X2 kullanarak, koroid yatan şeffaf retina tabakasının ortaya bir apart yırtmadan tarafından kaldırılır; c) Şeffaf retina tabakası çok dikkatli yakın eksize edilir Aynı forseps kullanılarak vitreus sıvı atılımı olmadan optik sinir. Forseps Her iki retinanın her tarafında tutmak gerekir ve doku hafifçe başlıyorum çıkarılmalıdırg optik sinir yakınında retina dokusunun iyi bir miktar elde etmek için, kornea doğru hareket. Doku farklı boyutlarda halinde kesilmiş ve analiz deneyler için kullanılan olabilir; d) kornea çıkarılmasını takiben gözün Farklı katmanlar bu şekilde görülebilir. Koroid vücut gözün diğer bölümlerine zarar vermeden retina tarafından ilk takip kaldırılır. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig3.jpg" alt="Şekil 3" /> Şekil 3. Bir optik mikroskobun 100x büyütme altında incelendi hücre yoğunluğu ve morfolojisi farklı karşılaştırılması. A) İyi endotel hücre yoğunluğu (&gt; 2200 hücre / mm 2) ve morfolojisi (az polimorfizm, düşük dejenerasyon, hiçbir distrofi ve% 0 nakli için uygun olan bir korneada ölüm); b) Zayıf endotel hücre yoğunluğu (yaklaşık 1.200-1.400 hücre / mm 2) ve morfoloji (çok yüksek polimorfizm ve Degenyaklaşık% 30-40 mortalite ile birlikte hücrelerin tüketmekte) Tripan mavisi sonra gözlenir; oküler Dünya&#39;dan kornea alınırken c) endotelyal hücrelerin bir kısmı, endotel tabakasının ayrılması nedeniyle zarar görmektedir. Bu tripan mavisi ile bölgede boyanmış hücrelerin ölüm gözlenmesi ile teyit edilir, d) Descemet kıvrımları, bükme çapraz kornea gerginlik yaratma, eksizyon sırasında yoğun vb araçları kullanarak nedeniyle kornea kötü kullanımından oluşur. Şekil korneanın çevresi ve optik bölge arasında bulunan kalın gelişmiş iatrojenik kıvrımlar gösterir. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig4.jpg" alt="Şekil 4" /> Koroid ve retinal dokulara Şekil 4. Hasarlar zamanla korneanın eksize ederken vitreus sıvısının vücuttan atılır. Retina zor kaliteli bir doku wi tüketim yapma vitreus karışmış olurkontaminasyon thout. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765table1.jpg" alt="Tablo 1" /> Tablo 1. Fondazione Banca de 2009 ve 2010 sırasında insan göz küreleri kullanılarak yapılan faaliyetler çeşitli özeti Occhi (Venezia, İtalya) Degli. Dokuların yaklaşık% 60 ve böylece bilimsel ve tıbbi araştırmalar için (yaklaşık% 40) oküler küreler yüksek bir sayı bırakarak nakli için kullanıldı. <img src="/files/ftp_upload/3765/3765fig1sup.jpg" alt="Ek Şekil 1" /> Ek Şekil 1. Insan gözü 5 anatomisi. Insan gözü farklı yerlerinde dokuların yerini kesin olarak takip için kullanılır, bu şekilde belirtilir.

<ol><li>Fay, A. Diseases of the visual system. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aFay%2C+A+%22Cecil+Medicine%22">Cecil Medicine</a>. Goldman, L., Ausiello, D. , 23rd ed, Saunders Elsevier. Philadelphia, Pa. (2007).</li>
<li>Parekh, M., Megaw, R., Ray-Chaudhuri, A., Ahmad, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Patents+in+Limbal+Stem+Cell+Biology%5BTitle%5D)+AND+%22Recent+patents+on+Regenerative+Medicine%22%5BJournal%5D)">Patents in Limbal Stem Cell Biology.</a> Recent patents on Regenerative Medicine. 1, 207-212 (2011).</li>
<li>Pharm, U. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Eye%3A+The+physiology+of+human+perception%5BTitle%5D)+AND+%22Britannica+educational+publishing%22%5BJournal%5D)">The Eye: The physiology of human perception.</a> Britannica educational publishing. 36, 19-27 (2011).</li>
<li>Lang, G. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLang%2C+G+%22Ophthalmology%3A+A+pocket+textbook+atlas%22">Ophthalmology: A pocket textbook atlas</a>. , 2nd Edition, 115-117 Forthcoming.</li>
<li>Liesbeth, P. els <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Organ+Culture%3A+The+method+of+choice+for+preservation+of+human+donor+corneas%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Ophthalmol%22%5BJournal%5D)">Organ Culture: The method of choice for preservation of human donor corneas.</a> Br. J. Ophthalmol. 81, 523-525 (1997).</li>
<li>Meyer, J. S., Howden, S. E., Wallace, K. A., Verhoeven, A. D., Wright, L. S., Capowski, E. E., Pinilla, I., Martin, J. M., Tian, S., Stewart, R., Pattnaik, B., Thomson, J., Gamm, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optic+vesicle-like+structures+derived+from+human+pluripotent+stem+cells+facilitate+a+customized+approach+to+retinal+disease+treatment%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Optic vesicle-like structures derived from human pluripotent stem cells facilitate a customized approach to retinal disease treatment.</a> Stem Cells. , (2011).</li>
<li>Trifunovic, D., Karali, M., Camposampiero, D., Ponzin, D., Banfi, S., Marigo, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+high-resolution+RNA+expression+atlas+of+retinitis+pigmentosa+genes+in+human+and+mouse+retinas%5BTitle%5D)+AND+%22Invest.+Ophthalmol.+Vis.+Sci%22%5BJournal%5D)">A high-resolution RNA expression atlas of retinitis pigmentosa genes in human and mouse retinas.</a> Invest. Ophthalmol. Vis. Sci. 49, 2330-2336 (2008).</li>
<li>Mora, P., Montanini, L., Ferrari, S. Retina. 30, 1555(2010).</li>
<li>Claybon, A., Bishop, A. J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+of+a+Mouse+Eye+for+a+Whole+Mount+of+the+Retinal+Pigment+Epithelium%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Dissection of a Mouse Eye for a Whole Mount of the Retinal Pigment Epithelium.</a> J. Vis. Exp. (48), e2563(2011).</li>
<li>Skeie, J. M., Tsang, S. H., Mahajan, V. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evisceration+of+Mouse+Vitreous+and+Retina+for+Proteomic+Analyses%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Evisceration of Mouse Vitreous and Retina for Proteomic Analyses.</a> J. Vis. Exp. (50), e2795(2011).</li>
</ol>

Yazarlar çıkar çatışma var.

Doğru eksizyon ve kornea kalınlığı ve retina dokularında uygun korunması, gerekse bu endotel hasarı veya Descemet kıvrım sayısı yüksek gibi küçük kusurları greft sıcaklık değişimlerinin ise korneanın hatası veya yanlış ele retina dokuların bütünlüğünü tehlikeye atabilir yol açabilir gibi kritik öneme sahiptir. Bu yazının amacı, kornea kalınlığı ve retina dokularında transplantasyon veya araştırma amaçlı kullanım tehlikeye hasar veya tadilat neden olmadan, en iyi şekilde izole edilebilir nasıl göstermektir. Gerekli minim...

Kornea ve retinanın eksizyonu için malzemeler. <table border="1"><tbody><tr><td> Ürün tanımı </td><td> Boyutlar </td><td> Firma / Kurum </td></tr><tr><td> Güvenlikli neşter atılabilir </td><td> Blade boyutu 15 </td><td> Swann-Morton </td></tr><tr><td> Steril bandajlar </td><td> 5 cm X 5 cm, 8 katlı, 5 adet </td><td> Artsana </td></tr><tr><td> Steril tek kullanımlık tıbbi havlu </td><td> 35 X 50 cm </td><td> U.Jet </td></tr><tr><td> Steril makas </td><td> Bıçakları 24 mm / toplam uzunluk. Künt, 95 mm kavisli </td><td> e.janach </td></tr><tr><td> Steril forseps </td><td> Paslanmaz çelik -100 mm 11 X 2 0.70 mm diş tarafından yönetildi </td><td> e.janach </td></tr><tr><td> Kornea pençe - Tek kullanımlık tıbbi cihaz </td><td></td><td> NIIOS (Hippocratech) </td></tr&gt; <tr><td></td><td> Hazırlıklar </td><td></td></tr><tr><td> PBS </td><td> [10x] 900 ml d / w (saf su) 100 ml PBS </td><td> Sigma-Aldrich </td></tr><tr><td> Na-tiyosülfat </td><td> PBS [1x] 1 litre 1 gr Na-tiyosülfat </td><td> Sigma-Aldrich </td></tr><tr><td> I-PVP </td><td> 1 litre d / w 5 gm I-PVP </td><td> Sigma-Aldrich </td></tr></tbody></table> Tablo 2. Tablosu kornea ve retina çıkarılması ve bunların alınan şirket için kullanılan malzemeler açıklanmaktadır. Depolama ortamı için malzeme (2000 mL). <table border="1"><tbody><tr><td> Bileşenleri </td><td> Satıcı </td><td> Katalog numarası </td><td> Konsantrasyon </td><td> Miktar </td></tr><tr><td> MEM(1X) sıvı </td><td> Invitrogen </td><td> 32360-034 </td><td></td><td> 1900 ml&#39;lik </td></tr><tr><td> Sodyum piruvat </td><td> Invitrogen </td><td> 11360-039 </td><td> 1mM (10ml / l) </td><td> 20 ml </td></tr><tr><td> L-glutamin </td><td> Invitrogen </td><td> 25030-032 </td><td> 2mm (10ml / l) </td><td> 20 ml </td></tr><tr><td> Antimikotik / Antibiyotik </td><td> Sigma-Aldrich </td><td> A5955-20ML </td><td> 10 ml / l </td><td> 20 ml </td></tr><tr><td> Yeni doğan buzağı serumu </td><td> Invitrogen </td><td> 26010-74 </td><td> 2 (% 20 ml / l) </td><td> 40 ml </td></tr></tbody></table> Tablo 3. Depolama ortamı için malzemeler. Depolama ortamı hazırlanması Bir kavanozun içinde yukarıda verildiği gibi belirli konsantrasyonları kullanılarak tüm malzemeyi ekleyin ve iyice karıştırın. Onları filtrelemeperistaltik bir pompa yardımı ile 0.2 mikron filtre gözenek büyüklüğüne (Millipore, Milan, İtalya) kullanarak. Oda sıcaklığında şişe içinde orta muhafaza. Taşıma ortamı için malzeme (2000 mL). <table border="1"><tbody><tr><td> Bileşenleri </td><td> Satıcı </td><td> Katalog numarası </td><td> Konsantrasyon </td><td> Miktar </td></tr><tr><td> MEM (1X) sıvı </td><td> Invitrogen </td><td> 32360-034 </td><td></td><td> 1800 ml&#39;lik </td></tr><tr><td> Sodyum piruvat </td><td> Invitrogen </td><td> 11360-039 </td><td> 1mM (10 ml / l) </td><td> 20ml </td></tr><tr><td> L-glutamin </td><td> Invitrogen </td><td> 25030-032 </td><td> 2mm (10 ml / l) </td><td> 20ml </td></tr><tr><td> Yeni doğan buzağı serumu </td><td> Invitrogen </td><td> 26010-74 </td><td> 2 (% 20 ml / l) </td&gt; <td> 40 ml </td></tr><tr><td> Dekstran T500 </td><td> Pharmacosmos </td><td> 551005004007 </td><td> % 6 (60 g / L) </td><td> 120 g / l </td></tr></tbody></table> Tablo 4. Taşıma ortamı için malzeme. Taşıma ortamı hazırlanması MEM ~ 1.5 litre Dekstran% 6 ekleyin ve gece boyunca bekletin. Medyada geri kalan malzemeleri ekleyin ve bir vakum pompası ile 0.2 mikron filtre (Millipore, Milan, İtalya) kullanarak filtre. Oda sıcaklığında şişe içinde orta muhafaza.

için basitleştirilmiş tekniği<em&gt; yerinde</emİnsan oküler globe gelen kornea ve retina doku eviserasyon of&gt; eksizyonu

A Simplified Technique for In situ Excision of Cornea and Evisceration of Retinal Tissue from Human Ocular Globe

Enükleasyon dünyanın geri kalanı rahat bırakmak, bir kadavra donörden oküler dünyanın alma işlemidir. Eksizyon oküler dünya onu ayrı keserek, oküler dokularda, özellikle kornea alma anlamına gelir. Eviserasyon retina gibi burada sözü edilen iç organlarının çıkarılması işlemidir. Oküler dünya kornea, sklera, vitreus, lens, iris, retina, koroid, kaslar vb (Ek Şekil 1) oluşur. Bir hasta kornea hasarı sorunum olduğunda, kornea kaldırılması gerekiyor ve sağlıklı bir keratoplastic ameliyatları tarafından nakledilen gerekir. Genetik bozukluklar veya retinal fonksiyon kusurları görme bozabilir. İnsan göz küreleri göz gibi bankacılık, insan kornea veya sklera nakli ve oküler dokular üzerinde araştırma gibi çeşitli cerrahi işlemler için kullanılabilir. Ancak, insan kornea kalınlığı ve retina eksizyon pek fazla bilgi Muhtemelen, l nedeni varinsan dokularına imited erişilebilirlik. Benzer prosedürler açıklayan çalışmaların çoğu hayvan modelleri üzerinde gerçekleştirilir. Araştırma bilim adamları, insan göz gelişimi, homeostasis ve işlevine bilgilerini genişletmek için uygun bir şekilde diseke ve iyi korunmuş oküler dokuların durumu güveniyor. Biz bunların yaklaşık% 40 (Tablo 1) araştırma amaçlı kullanılan vardır out oküler küreler yüksek miktarda aldıkça, tüketim teknikleri tanımlayarak, bu dokular üzerindeki deneylerin büyük miktarda gerçekleştirmek ve bunları düzenli olarak muhafaza edebiliyoruz. Kornea retina üzerine ışık iletimi sağlar ve bu amaçla her zaman şeffaflık iyi derecede tutmalıdır avasküler bir dokudur. Kornea içinde, kök hücrelerin bir rezervuar olduğu limbus bölgede, epitel hücrelerinin yeniden yardımcı olur ve kornea şeffaflık ve açıklık korumak konjonktiva aşırı kısıtlar. Boyutu ve th<html> bunlardan birini değişiklikler dalıp, belirsiz vizyon yol açabileceği gibi korneanın ickness, net görüş için önemlidir. Kornea 5 katmandan oluşur; endotelyum a) epitel, b) Bowman tabakası, c) stroma, d) Descemet membran ve E). Tüm katmanları net bir vizyon 4,5,6 sağlamak için düzgün çalışması gerekir. Koroid Bruch membranı ile iç sınırlanmış sklera ve retina arasındaki ara tunik, ve gözün kan akışından sorumludur. Koroidin da retinanın 5,6 dış tabakaları için sıcaklık ve malzeme besleme düzenleyen yardımcı olur. Bir photoreceptive parçası olmayan bir alıcı parçası: retinanın oküler küre (Ek Şekil 1) arka kapsar ve iki bölümden oluşur sinir dokusunun bir katmandır. Retina, kornea ve lens gelen ışığı almak için yardımcı olur ve sonunda optik sinir 5,6 yardımı ile beyne iletilir kimyasal enerjiye dönüştürür. bu doku amaçlayan araştırma amaçlı vazgeçilmez olarak ove_content &quot;&gt; Bu yazının amacı, insan oküler küreler gelen kornea kalınlığı ve retina dokuların diseksiyonu için bir protokol sağlamaktır. komşu dokuları ile çapraz bulaşmayı önleme ve RNA bütünlüğünün korunması temel bir öneme sahiptir (i) oküler dokuların transcriptome, (ii) karakterize rejeneratif tıp projeleri için kök hücre izolasyonu, ve (iii) etkilenen / Normal bireylerden dokular arasındaki histolojik farklılıkları değerlendirmek. Bu yazıda tekniği tarif şu anda kaldırmak için kullanabileceğiniz kornea, bir göz Dünya&#39;dan koroid ve retina dokularında. Burada insan göz küresi ve kornea kalınlığı ve retina dokularının eksize diseksiyonu için ayrıntılı bir protokol sağlar. beraberindeki Video araştırmacılar alımı için uygun bir tekniği öğrenmek için yardımcı olacak düzenli bulması zor değerli insan dokularının.

Kağıt kadavra donör oküler Dünya&#39;dan retina dokuları içini temizlemek için basitleştirilmiş bir tüketim kornea tekniği ve açıklar. Tekniği oküler dünyanın diğer dokulara zarar vermeden nakli, cerrahi veya araştırma amaçlı kullanılmak üzere özel tüketim kaliteli dokular için yardımcı olacaktır Burada anlatılan.

Için Basitleştirilmiş Tekniği<em&gt; Yerinde</emİnsan Oküler Globe gelen Kornea ve Retina Doku Eviserasyon of&gt; eksizyonu

Enükleasyon, göz küresinin geri kalan kısımlarına dokunmadan kadavra donörden çıkarılması işlemidir. Eksizyon ise ...

Bugün, kadavradan alınan insan oküler globundan kornea ve retinal doku çıkarma işlemini gerçekleştiren basitleştirilmiş bir tekniği tanıtıyoruz. Burada anlatılan teknik, oküler globun diğer dokularına zarar vermeden transplantasyon, cerrahi ve oral araştırma amaçlarıyla kullanılacak yüksek kaliteli dokuların elde edilmesine yardımcı olacaktır. 18 yıllık uzmanlığımız ve her yıl gerçekleştirdiğimiz kornea transplantasyonları ile, yeni teknikler geliştirerek ve becerilerimizi her gün artırarak çalışmalarımızda yüksek bir standart sürdürdük.Bunu başarmak için, önce korneayı, ardından retina evizini çıkarırız. Kornea, ışığın retinaya iletilmesini sağlayan avasküler bir dokudur ve bu amaçla her zaman iyi derecede şeffaflık korumalıdır. Kornea; epitel, Bowman tabakası, stroma, Descemet membranı ve endotelyum olmak üzere beş tabakadan oluşur.Kornea hasar görmüşse, uygun bir donör korneanın yardımıyla değiştirilebilir. Koroid, sklera ile retina arasındaki ara tabakadır, içten Bruch membranı ile sınırlanmıştır ve gözdeki kan akışından sorumludur. Koroidin uygun şekilde evisere edilmesi, retinanın çıkarılması kadar önemlidir.Retina, kornea ve lensten gelen ışığın alınmasına yardımcı olur ve bunu nihayetinde beyne iletilen kimyasal enerjiye dönüştürür. Şeffaf ve hassas olan optik sinirin yardımıyla, kaliteli bir doku elde etmek için sistematik bir şekilde evisserasyon yapılmalıdır. Laminer hava akışlı kabini çalıştırın.Laminar akış kabinini %70 izopropil alkol kullanarak temizleyin. Cerrahi bone, steril eldiven ve koruyucu kolluklar gibi kişisel koruyucu kıyafetleri giyin. Aseptik teknik kullanarak, steril bir örtü ve önceden sterilize edilmiş bir enstrüman tepsisi yerleştirerek steril alanı hazırlayın.Steril alet paketini aseptik olarak açın ve herhangi bir kontaminasyondan kaçınarak steril alana ters çevirin. Tüm steril malzemeleri ve aletleri steril alana yerleştirin ve göz kürelerini içeren göz kavanozlarını steril alanın kenarına yakın olacak şekilde konumlandırın. Kullanım kolaylığı için şişeleri önceden hazırlanmış saklama ortamı ile etiketleyin; iyot poliol pirol kapağını sodyum th sülfat ve steril fosfat tamponlu tuzlu su çözeltisinin üzerine yerleştirin.Steril besiyerinin dışında, buzdolabında dört derece Celsius'ta saklanan oküler dokuların ve solüsyonların normal oda sıcaklığına ulaşmasını bekleyin. Tekrarlanan ısıtma veya soğutma döngülerinden kaçının. Göz kavanozundaki gazlı bezleri ve süngerleri steril pensler kullanarak çıkarın.Oküler küreyi kapağın üzerine yerleştirin ve ek bandajları çıkarın. Oküler küreyi optik sinirle birlikte dikkatlice alın ve küreyi steril IPVP içine daldırın. Oküler küreleri iki dakika boyunca steril IPVP ile dekontamine edin.Küreyi bir dakika boyunca steril sodyum tiyosülfata aktarın. Küreleri steril fosfat tamponlu hücre hattı solüsyonuna aktarın ve işlem sırası gelene kadar bekletin. Laminar hava akışlı kabin altında çalışarak, oküler küreyi PBS ile yıkayıp çıkarın ve steril alanın altına yerleştirin.Korneayı ve korneadan yaklaşık beş milimetrelik sklera bölgesini açıkta bırakacak şekilde göz küresini steril bir bezle sarın; göz küresi basitçe el ile tutulabilir. Steril makas kullanarak uygun basıncı koruyun. Korneaya zarar vermeden konjunktivanın tüm olası kalıntılarını temizleyin.Limbus bölgesinden üç ila dört milimetrelik bir skleral insizyon gerçekleştirmek için tek kullanımlık bir bistüri ucu kullanın. Ardından, alttaki uveal dokuyu perfore etmemeye veya korneanın normal kurvaturunda herhangi bir deformasyona neden olmamaya dikkat ederek insizyonu 360 derece genişletin. Vitreus cisminin sızmasını önleyecek şekilde, dört küçük boşluk bırakarak dört büyük insizyon yapın.Diğer herhangi bir dokunun çıkarılmadığından emin olarak dört boşluğun tamamı kesilir. Küçük skleral plakların varlığı kesme işlemini zorlaştırabilir, bu nedenle skleral eksizyonun mikrocerrahi makasla tamamlandığından emin olun. Bu işlem, koroid retina ve vitreus gövdesine zarar vermeden gerçekleştirilmelidir.İnsizyonun tamamlandığından emin olmak için kontrol edin. İnsizyon doğru şekilde gerçekleştirildiyse, korneal skleral kenar siliyer gövdeye yalnızca korneye karşılık gelen noktada yapışır; oküler globu steril alanın merkezine yakın bir yere yerleştirin. Kornea çıkarma işlemini steril pensler kullanarak tamamlayın.Sklera kenarını sabit tutun ve kornea sklera kenarını oküler ışımdan uzaklaştıracak şekilde kesin. Kalan tüm komşu dokuları korno sklera butonundan nazikçe ayırın. Kornea sklera kenarını, korneada çapraz gerginliğe yol açabilecek şekilde asla çekmeyin ve ön kamara üzerine geri düşmesine izin vermeyin.Korneanın endotel hücre yoğunluğu hipotonik solüsyon kullanılarak, hücre mortalitesi ise yaklaşık bir dakika boyunca tripan mavisi boyaması ile kontrol edilir. Tripan mavisi boyası steril bir tel gazlı bezle temizlenir ve kornea steril PBS ile yıkanır. Ardından, sakroz solüsyonu ile doldurulmuş steril bir Petri plakasına aktarılır.Bu solüsyon, hipotonik bir ortam oluşturmaya ve hücrelerin görsel olarak tanımlanmasına yardımcı olur. Hüçreler daha sonra optik mikroskop altında yüz kat büyütme ile sayılır ve milimetrekare başına hücre sayısı olarak ölçülür. Hücreler genellikle hücre yoğunluğu, hücreler arası sınırlar, polimorfizm, dejenerasyon, distrofi ve hücre mortalitesi gibi morfolojik özellikler açısından incelenir.Kornea kalınlığı, eksize edilen korneanın iyi bir şeffaflık oranının yanı sıra transplantasyon için önemli bir özelliktir. Korneayı sklera kenarına sabitlemek için steril kornea CLO kullanılır; sklera kenarının kilitlenmesi için deliğin yeterli genişlikte olduğundan emin olmak adına kornea CLO bükülür ve kornea sklera kenarı, bir kornea karanfil kullanılarak oda sıcaklığında hazırlanmış olan, daha önceden hazırlanmış kornea saklama ortamına aktarılır. Ardından kornea, dört haftalık saklama süresi boyunca 31 derece SIU'larda korunmalıdır.Saklama medyası, B 9 2 4 0 cihazı kullanılarak çeşitli mikrobiyolojik testlere tabi tutulur. Saklama sırasında kornea, transplantasyon için gereken normal boyutundan daha fazla kalınlaşır. Göz bankaları, kalınlığı azaltmak için şişme önleyici ajanlar kullanır; korneayı normal boyutuna döndürmek için %6 Dextron T 500 ve taşıma medyumu kullanılır.Retinal eksizyon öncesinde, RNAsız bir ortam oluşturmak için steril aletleri RNA away ile temizleyin. Steril alanı hazırlayın ve oküler globun bütün olduğundan, sadece korneanın ve skleral kenarın çıkarıldığından emin olun. Eğer vitreus gövdesi dışarı sızıyorsa, retinal dokunun çıkarılması zorlaşır.Donör 65 yaşın altındaysa, serolojik testlerin ardından sklera, cerrahi amaçlarla %70 alkol içinde korunur. Bu gibi durumlarda sklera kesilmez, sadece vitreus cismi çıkarılır ve retinal eksizyon için skleranın tamamı muhafaza edilir. Steril pens ve makas kullanarak, skleranın kornea tarafına yakın bir noktadan küçük bir kesi veya insizyonla başlayıp optik sinire doğru ilerleyin.Sklera kısmını steril pensle tutun ve vitreus yumrusuna zarar vermemeye dikkat ederek, makasla optik sinir yönüne doğru parça parça kesin. Koroid tıkaçlar birbirine yapışmış olduğu için skleradan ayrılmalıdır. Koroid dokusunu açığa çıkarmak için skleranın tamamını kesin. Nedir?Sklera tamamen kesildiğinde, optik sinire yakın bir yerden keserek sklerayı geri kalan dokulardan ayırın; böylece vitreus gövdesini örten koroid tabakasının tamamı görünür hale gelecektir. İki steril pens kullanarak, bu steril RNA'dan arındırılmış eppendorf tüplerini iki ml RL ile doldurun. Bir pensle optik siniri tutup diğeriyle koroidi kaldırarak, koroid tabakasını nazikçe çıkarın.Kısmen ayırın ve çıkarmayı kolaylaştırmak için koroidi kesin. Retinaya zarar vermemeye dikkat ederek makas yardımıyla koroid tabakası kesilebilir. Eksize edilen koroid tabakasını RNA later çözeltisi içine yerleştirin ve 24 saat boyunca dört derece Celsius'da saklayın.Retinal dokuyu açığa çıkarmak için tüm ek koroid tabakasını temizleyin. Tüm koroid tabakası kaldırıldığında, şeffaf bir retina tabakası görülecektir. Belirgin bir şekilde, koroid tabakasının iç kısmında, yine kaldırılabilecek olan bir brush membranı bulunur, ancak bunu çıplak gözle tanımlamak zordur.Benzer şekilde, retinal tabakayı çıkarmak için iki pens kullanın. Optik sinir yakınına eksizyon yapıldığında, yüksek miktarda retina izole etmek kolaydır. Gözün tüm tabakaları artık görülebilir.Eksize retinayı RNA later solüsyonu içine yerleştirin ve 24 saat boyunca dört derece Celsius'ta saklayın. Çalışma alanını %70'lik izopropil alkol kullanarak temizleyin. Trypan blue ile boyanmış endotelyal hücreler, ters bir mikroskobun yüz kat büyütmesi altında incelenebilir.Milimetrekare başına 200'den fazla hücreye sahip uygun bir kornea, genellikle daha sonraki kullanım için saklanır. Bunların orta dereceden mükemmel kaliteye kadar derecelendirilmesi, karşılaştırmalı çalışmalar için yardımcı olacaktır. Genellikle kornea transplantasyon için hazır olduğunda kalınlık ve şeffaflık not edilir ve uygun bir kornea, korneanın tamamının nakledildiği penetran keratoplasti için kullanılır.Hücre mortalitesi, maviye boyanmış hücrelerin gözlemlenmesiyle kontrol edilir ve ölü hücrelerin yüzdesi olarak değerlendirilir. Koruma sırasında %2'den fazla olan genel hücre mortalitesi uygunsuz kabul edilir. Hücre yoğunluğu milimetrekare başına 2200 hücreden düşükse veya mortaliteye bağlı hasar varsa, kornea anterior laminer keratoplasti için kullanılabilir.Anterior travma hasarlıysa ve kornea iyi bir endotelyal hücre yoğunluğuna sahipse, kornea posterior laminer keratoplasti için kullanılabilir. Organ kültürü sırasında kornea kalınlığı genellikle artar. Taşıma medyumu, korneanın normal şeklini ve yapısını yeniden kazanmasına yardımcı olur.Ayrıca, organ kültürü korneanın yeniden epitelizasyonuna yardımcı olur ve uzun saklama süresi sayesinde uygun donör seçimini kolaylaştırır. Mikrobiyolojik ve serolojik testler gerçekleştirilir. Bu yöntem, cerrahi operasyonun organize edilmesi için yeterli zaman sağlar ve yüksek postmortem süre nedeniyle mümkün olmadığı durumlarda endotelyal hücre yoğunluğunun ve morfolojisinin kontrol edilmesine yardımcı olur.Böylece, tarif edilen prosedür takip edildiğinde, kornealar diğer dokulara herhangi bir zarar vermeden eksize edilebilir. Kornea transplantasyon için uygun değilse; yeni besiyerleri ve koruma koşulları geliştirmek, oküler yüzey hastalıklarını incelemek, limbal kök hücreleri izole etmek ve ilaçların kornea üzerindeki etkilerini araştırmak amacıyla araştırma süreçlerinde kullanılabilir. Retina için ise, RNA örneklerinin diğer dokularla çapraz kontaminasyonunu önleyebilir ve temel öneme sahip olan RNA bütünlüğünü koruyabiliriz.Araştırma amaçları için vazgeçilmez olan bu dokular; oküler dokuların transkriptomunun karakterize edilmesi, rejeneratif tıp projeleri için kök hücrelerin izole edilmesi ve normal veya etkilenmiş deneklerden alınan dokular arasındaki histolojik farkların değerlendirilmesini amaçlamaktadır. Retinal doku çıkarıldıktan sonra farklı amaçlar için kullanılabilir ve bu nedenle koruma için kullanılan sonraki adımlar ve koşullar buna göre değişiklik gösterebilir. Örneğin retinal doku; RNA veya DNA ekstraksiyonu için r nator veya thisis tamponu gibi RNA stabilizasyon reaktifleri içeren tüplere veya hücre izolasyonu için displase veya tripsine yerleştirilebilir.İmmünohistokimya için dokuları parafin veya OCT içine gömmeden önce tespit solüsyonları ile sabitleme. Bu videoyu izlediğiniz için teşekkürler, araştırmalarınızda başarılar dileriz.

a-simplified-technique-for-situ-excision-cornea-evisceration-retinal

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Diseksiyon tekniği high-throughput ekranlarında fenotipleme gerçekleştirmek için doku fiksasyonu fare gözün enükleasyonu göstermektedir.

Uzaktan Yüksek throughput fenotipleme için Fare Göz Enükleasyon

Bu video, bir murin modelinde oküler yüzey iltihabını ve meibomian bezi disfonksiyonunu indüklemek için bir yöntem göstermektedir. Farenin bağışıklık sisteminin bir immünojen kullanılarak uyarılması ve daha sonra aynı immünojen ile yeniden uyarılması, nötrofil tarafından üretilen aggNET'ler yoluyla meibomian bezi salgısının tıkanmasına neden olan oküler yüzey iltihabını teşvik eder ve kuru göz hastalığına yol açar.

Bir Murin Modelinde Oküler Yüzey Iltihabını İndüklemek İçin Bir Yöntem

Ayrıca enüklüeasyon denilen gözlerin kaldırılması, geri dönüşümsüz kısmi (monoküler) veya tam (binoküler) görme kaybına neden olduğundan memeli görme sistemi boyunca görsel, çapraz modal ve gelişimsel plastisite yönlerini incelemek için yararlı bir strateji sağlar. Burada vivo enükleasyonuna gerçekleştirmek için son derece tekrarlanabilir ve basit bir yaklaşım açıklar.

A Çok Reproducible ve Kolay Yöntem gerçekleştir In Vivo Göz Enükleasyon

Bu protokolün amacı, post mortem enükleasyonlu domuz gözlerinden bütün, sağlam vitreus çekirdeği ve korteksi izole etmek için etkili bir teknik göstermektir.

Vitreodynamic Analiz Tüm Vitreus Mizah Diseksiyon

Bu çalışma, eksplant kullanımı sırasında retina bütünlüğünü tehlikeye atmayı önleyen yeni bir insan organotipik retina kültürü (HORC) modeli geliştirmeyi amaçlamaktadır. Bu, retinanın aşırı vitreus ve alttaki retina pigment epitel-koroid (RPE-choroid) ve sklera ile kültleşmesi ile elde edilir.

Yeni bir İnsan Organotipik Retina Kültürü Tekniğinin Karakterizasyonu

Mevcut multielektrot dizisinin veya yama kelepçesi ekipmanının modifikasyonu, ex vivo elektroretinogramı daha yaygın olarak erişilebilir hale getirir. Exvivo ışık yanıtlarını kaydetmek ve sürdürmek için geliştirilmiş yöntemler, sağlıklı retinada, göz hastalıklarının hayvan modellerinde ve insan donör retinalarında fotoreseptör ve ON-bipolar hücre fonksiyonunun incelenmesini kolaylaştırır.

Ex Vivo Elektroretinogramın Küçük ve Büyük Gözlerde Retina Fonksiyonunu İncelemesi için Kurulum ve Koşulların Optimize Edilmesi

Bu protokol, yetişkin bir fareden elde edilen retinal eksplantların izolasyonu, diseksiyonu, kültürlenmesi ve boyanması için adımları sunar ve açıklar. Bu yöntem, diyabetik retinopati gibi farklı retinal nörovasküler hastalıkları incelemek için ex vivo bir model olarak faydalıdır.

Retinal Nörovasküler Hastalıkları İncelemek için Ex Vivo Modeli Olarak Yetişkin Fare Retinasının Retinal Eksplantı

Bu yazıda kemirgenlerde oküler mikrodiseksiyon için bir protokol sunulmaktadır. İşlem, göz küresinin niktitasyon zarı (yani üçüncü göz kapağı) ile birlikte enükleasyonunu içerir. Bunu daha sonra arka ve ön göz kapaklarının ayrılması izler.

Kemirgen Gözün Mikrodiseksiyonu

İnsan gözünde retinal pigment epitelini (RPE) retinadan etkin bir şekilde ayırmak ve RPE'nin histolojik ve morfometrik analizleri için tüm RPE / koroid düzlüklerini üretmek için bir yöntem tanımladık.

Histolojik Analiz için İnsan Gözünden Retinal Pigment Epitel/Koroid Flatmount'larının Verimli ve Tutarlı Üretimi

Burada, genişletilmiş ex vivo deneyler için retinayı fare gözünden izole etmek için ayrıntılı bir metodoloji sunuyoruz. Bu protokol, retinal glia'yı canlı dokuda yerinde tutmanın sağladığı araştırma yollarından yararlanmak isteyen araştırmacılar için bu teknik olarak zorlu yaklaşımı erişilebilir kılmayı vurgulamaktadır.

Fare retinasındaki glial etkileşimleri incelemek için bir ex vivo eksplant modeli

Öğrenin, kadavra bağışçılarından kornea ve retina dokularını çıkarmak için basitleştirilmiş bir teknik. Bu yöntem, doku bütünlüğünü koruyarak nakil ve araştırma amaçlı yüksek kaliteli örnekler sağlar.

Için Basitleştirilmiş Tekniği

Daha fazla video keşfet