Name: Yetişkin Zebra balığı Biyokimyasal Analiz için Kan Alma (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-05-26T14:00:00.000+00:00
Duration: 3 min 11 s
Description: Öğrenin, yetişkin zebra balığından dorsal aortadan kan alma tekniğini. Bu yöntem, kolesterol ve trigliserid testleri için serum elde ederek metabolik çalışmalarda kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

FIPE / HCPA - Fundo de Incentivo bir Pesquisa e Eventos Pelerin - <a href="http://www.capes.gov.br/">Coordenação de Aperfeiçoamento de pessoal de Nivel Üstün</a>

1. Protokol Metni <ol><li> Zebrafish kan toplama önce, anestezi su hazırlamak için gereklidir. 500 ml kapasiteli bir konteyner içine akvaryum su ~ 200 ml dökün. Buz yongaları ~ 200 g ekleyin. 4 ° C sıcaklıkta yaklaşık olmalıdır Buz yongaları eriyik gibi, 4 ° C civarındaki sabit bir sıcaklıkta muhafaza etmek daha buz yongaları eklemek için gerekli olacaktır </li><li> Anestezi su hazır olduğunda, kan toplama için gerekli malzemeleri hazırlar. Bir P20 pipet düşük tutma ucu koyun ve kolayca erişilebilir pipet bırakın. Pipet bulaşma kaynakları temasa izin vermeyin. </li><li> Kuru gazlı bez parçası ile Petri örtün. Bir çelik bıçak ve gazlı bez başka bir parça kolay erişilebilen bir yere konulmalıdır. </li><li> Plastik borular için uyarlanmış bir santrifüj gerekli olacaktır. </li><li> Söz konusu malzeme hazırlandığı zaman, anestetize wit olarak birinci zebrafish yakalamakha balık ağı ve anestezi için hazırlanmış olan suya bırakın. Zebrafish soğutulmuş su içinde 3-6 s balık bağlı olarak anestezi uygulanmış olması gerekir. Artık dış uyaranlara yanıt verene kadar soğuk suda balık tutun. </li><li> Balık ağı kullanarak, tül kuyruk dışı bırakarak, gazlı bez hazırlanmış bir parçası üzerinde anestezi balığı yerleştirin. Sadece kuyruğunu dışarıda bırakarak balığın baş ve vücut üzerinde gazlı bez katlayın. Petri tabağına gazlı bez ile kaplı balık koyun. </li><li> Sadece anal yüzgeç ve kuyruk yüzgeci arasında çapraz bir kesi yapmak için çelik bıçak kullanın. Kan dışarı çıkmaya başlayacaktır. Bu noktada, hızlı bir şekilde çalışması için gereklidir. </li><li> Yavaşça P20 pipet (düşük tutma ucu ile ön yüklü) ile çıkan kanın talip. Toplanabilir kan miktarı balık boyutuna ve ne doğru anestetize olduğu ölçüde değişir. Bu, genellikle 5 ile 20 ul kadar değişir. Kan c dururdışarı oming, yavaşça bir tüp içine aspire kan aktarın. </li><li> Hemoliz önlemek için, bunun santrifüj yerleştirilir kadar kan ile tüp herhangi bir sert hareketler yapmadan, çok dikkatle ele alınması önemlidir. </li><li> Hemoliz önlemek için, kan örneği kan toplama 10 dakika içinde santrifüj temin edilmesi de önemlidir. </li><li> Eğer gerekirse, bunun bir havuz verme, birden fazla hayvandan kan birleştirmek mümkündür. Pooled örnekleri ilk balık ve santrifüj kan toplama arasındaki gecikme 10 dakika aşmadığı sürece iyi çalışır. </li><li> Kan toplama yapıldığında, 0.5 g (Eppendorf Santrifüj 5415D) 10 dakika boyunca kan santrifüjlenir. </li><li> Santrifüjleme takiben, serum borusunun üst tabaka yer almaktadır. Bir pipet ile, her iki katmana da bölünmüştür ve istikrarlı tutarken sadece serum almak için emin, serum aspire. </li><li> Yeni bir mikrotüp içine serum transferi ve bubiyokimyasal analizlerde kullanılmak üzere hazırdır. Bu biyokimyasal analizler başlamak için beklerken serum buz saklanabilir. </li><li> Serum hemen kullanılmayacak ise, yaklaşık 3 ay -18 ° C kadar dondurulabilir. </li></ol> 2. Temsilcisi Sonuçlar Daha önce açıklanan teknikler (Tablo 2) bile 4 kat daha fazla kan neyi temsil ettiğini her balıktan tam kan 5 ila 20 ul toplamak mümkün olmuştur. Total kolesterol, HDL-kolesterol, LDL-kolesterol ve trigliserid biyokimyasal analizler bu tekniği kullanarak kan alımından sonra yapıldı. Kan toplama gıda alımı girişimi önlemek için önce her iki cinsiyette balık iki grup 24 saat aç bırakıldı. Analizleri total kolesterol ve trigliserid analizleri için küçük ölçekli kolorimetrik testler (Labtest Diagnostica SA, Brezilya) ile yapıldı, serum 3 ul kullanılmıştır. LDL-kolesterol ve HDL-kolesterol içinanalizi, 4 ul ve 10 ul serum sırasıyla kullanılmıştır. Bu analizler, örnek başına 10 zebrabalıkları havuzlanmış örnekleri üzerinde yapılmıştır. Serum lipidik düzeyleri kendi yumurta ve bir alt kapalı akvaryum, 2 haftalık bir deneme süresi için kendi yumurtalarını erişimi olmadığını, bu erişilebilir balıklar arasında karşılaştırıldı. Serum analizleri, serum total kolesterol düzeyleri (yumurta 362 ± 42 mg / dL ve yumurta 357 olmadan ± 13 mg / dL), HDL-kolesterol (yumurta 91,22 ± 1.79 mg / dL ve yumurta 72.14 olmadan ± 2.89 mg / dL) ve (yumurta 55,68 ± 10.88 mg / dL ve yumurta 44.18 ± 9.84 mg / dL olmadan) LDL-kolesterol gruplar arasında anlamlı farklılık yoktu. Ancak, trigliserid düzeyleri (p = 0.03 yumurta 457 ± 25 mg / dL) ile kontrol grubuna göre (yumurta 292 ± 64 mg / dL olmadan) deney grubunda anlamlı olarak daha düşüktü. <table border="1" ><tbody><tr><td> &amp; Nbsp; </td><td> Yumurta erişim </td><td> Yumurta erişimi olmayan </td></tr><tr><td> Total Kolesterol (mg / dL) </td><td> 362,82 ± 73,11 </td><td> 357,69 ± 23.08 </td></tr><tr><td> LDL - kolesterol (mg / dL) </td><td> 55,69 ± 18,84 </td><td> 44.19 ± 17.05 </td></tr><tr><td> HDL - kolesterol (mg / dL) </td><td> 91,23 ± 3.11 </td><td> 72.14 ± 5.01 </td></tr><tr><td> Trigliserid (mg / dL) </td><td> 457,64 ± 43.78 * </td><td> 292,36 ± 111,28 </td></tr></tbody></table> Tablo 1. Her iki çalışma grupları için kolesterol ve trigliserid düzeyleri Seric (yumurta erişimi olan ve yumurta erişim olmadan) ortalama ± standart sapma olarak ifade edilmiştir. * Istatistiksel olarak anlamlı (p = 0.03). Student t testi. <table border="1"><tbody><tr><td> Aut<html> hors </td><td> Kesi yeri </td><td> Hasat yöntemi </td><td> Anestezi </td><td> Toplanan kan miktarı </td></tr><tr><td> Jagadeeswaran et. ark., 1999 Murtha ve ark., 2003 </td><td> Dorsal yüzgeç Micro diseksiyon posterior </td><td> Mikropipet </td><td> Bahsedilmeyen Soğuk su içinde% 3 MS222 </td><td> 1, bir 5 ul 5, 10 ul </td></tr><tr><td> Eames ve ark., 2010 </td><td> Işten çıkarma </td><td> Mikro kılcal tüp </td><td> MS222% 0,02 28 ° C su </td><td> 5, 10 ul </td></tr><tr><td> Mevcut Çalışma </td><td> Anal yüzgeç ve kuyruk yüzgeci arasında Kesi </td><td> Mikropipet ve düşük tutma ipuçları </td><td> Su ve buz yongaları </td><td> 5, 20 ul </td></tr></tbody></table>daha önce açıklanan kan toplama teknikleri ve bu çalışmada adresinde açıklanan biri arasında e_content &quot;&gt; Tablo 2. karşılaştırılması.

<ol><li>Schneider, A. C. R., dos Santo, J. L., Porawski, M., Schaefer, P. G., Maurer, R. L., Matte, U., da Silveira, T. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Implementa%C3%A7%C3%A3o+de+um+novo+modelo+de+experimenta%C3%A7%C3%A3o+animal+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Rev.+HCPA%22%5BJournal%5D)">Implementação de um novo modelo de experimentação animal Zebrafish.</a> Rev. HCPA. 29, 100-103 (2009).</li>
<li>Briggs, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+zebrafish%3A+a+new+model+organism+for+integrative+physiology%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Physiol.+Regulatory+Integrative+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The zebrafish: a new model organism for integrative physiology.</a> Am. J. Physiol. Regulatory Integrative Comp. Physiol. 282, 3-9 (2002).</li>
<li>Menke, A. L., Sptsbergen, J. M., Wolterbeek, A. P. M., Woutersen, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+anatomy+and+histology+of+adult+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Toxicologic+Pathology%22%5BJournal%5D)">Normal anatomy and histology of adult Zebrafish.</a> Toxicologic Pathology. 000, 1-16 (2011).</li>
<li>Murtha, J. M., Qi, W., Keller, E. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematologic+and+serum+biochemical+values+for+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Comp.+Med%22%5BJournal%5D)">Hematologic and serum biochemical values for Zebrafish.</a> Comp. Med. 53, 37-41 (2003).</li>
<li>Jagadeeswaran, P., Sheehan, J. P., Craig, F. E., Troyer, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+and+characterization+of+zebrafish+thrombocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Haematol%22%5BJournal%5D)">Identification and characterization of zebrafish thrombocytes.</a> Br. J. Haematol. 107, 731-738 (1999).</li>
<li>Jagadeeswaran, P., Sheehan, J. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+blood+coagulation+in+the+zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22Blood+Cells+Mol.+Dis%22%5BJournal%5D)">Analysis of blood coagulation in the zebrafish.</a> Blood Cells Mol. Dis. 25, 239-249 (1999).</li>
<li>Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E., Kinkel, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blood+sugar+measurement+in+zebrafish+reveals+dynamics+of+glucose+homeostasis%5BTitle%5D)+AND+%22Zebrafish%22%5BJournal%5D)">Blood sugar measurement in zebrafish reveals dynamics of glucose homeostasis.</a> Zebrafish. 7, 205-213 (2010).</li>
<li>Kilpatrick, E. S., Rumley, A. G., Rumley, C. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+haemolysis+on+blood+glucose+meter+measurement%5BTitle%5D)+AND+%22Diabet.+Med%22%5BJournal%5D)">The effect of haemolysis on blood glucose meter measurement.</a> Diabet. Med. 12, 341-343 (1995).</li>
<li>Gupta, T., Mullins, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dissection+of+Organs+from+the+Adult+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Dissection of Organs from the Adult Zebrafish.</a> J. Vis. Exp. (37), e1717(2010).</li>
<li>Kinkel, M. D., Eames, S. C., Philipson, L. H., Prince, V. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Intraperitoneal+Injection+into+Adult+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Intraperitoneal Injection into Adult Zebrafish.</a> J. Vis. Exp. (42), e2126(2010).</li>
<li>Pugach, E. K., Li, P., White, R., Zon, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Retro-orbital+Injection+in+Adult+Zebrafish%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Retro-orbital Injection in Adult Zebrafish.</a> J. Vis. Exp. (34), e1645(2009).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Bu kağıt zebrabalıkları deneylerde daha fazla kan ve serum analiz sağlayan basit bir teknik sunuyor. Bu teknik, kan parametre veri gerektiren gelecekte zebrabalıkları hematolojik çalışmalara katkıda bulunma potansiyeline sahiptir. Ayrıca, bir deneysel model olarak zebrafish daha fazla uygulamalar için izin vermek gerekir. Bu teknik, özel bir beceri ya da kesin bir tekniğin uygulanmasını gerektirmez. Dahası, bu sayede, biyolojik malzemenin gerekli miktarda elde etmek için daha az balık kullan...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td> Düşük tutma ipuçları </td><td> Applied Biosystems </td><td> 022493020 </td><td></td></tr><tr><td> Eppendorf Centrifuge 5415D </td><td> Eppendorf </td><td> Durduruldu </td><td></td></tr></tbody></table>

yetişkin zebra balığı biyokimyasal analiz için kan alma

Blood Collection for Biochemical Analysis in Adult Zebrafish

Zebrafish çok insan hastalığı çalışmaları için bir hayvan modeli olarak kullanılmıştır. Bu moleküler olaylar ve tedavi edici stratejilerin çalışmaları yanı sıra bazı patolojiler 1 fizyolojik mekanizmaların değerlendirilmesi için güçlü bir preklinik bir platform olarak hizmet verebilir. Araştırmacılar zebrabalıkları sistemlerinin araştırılması izin vermek için gerekli temel teknikleri 3 eksik olduğu sonucuna yol açabilir organ ve sistemleri 2, yetişkin zebrabalıkları fizyolojisi ile ilgili nispeten az sayıda yayın vardır. Zebra balığı hematolojik biyokimyasal değerler ilk önce 1999 yılında Jagadeeswaran ve arkadaşları tarafından tanımlanan bir kan toplama tekniği istihdam Murtha ve arkadaşları 4 tarafından 2003 yılında bildirilmiştir. Kısaca, kan uzunluğu, yaklaşık 0.3 cm dorsal aorta 5 bölgede, yanal bir kesi mikropipet ucu ile toplanmıştır. Söz dakikalık boyutlar, bu yüzdenBir çok yetenekli uygulayıcısı gerektiren yüksek hassasiyetli bir tekniktir. Aynı teknik aynı yıl 6 başka yayın aynı grup kullanılmıştır. 2010 yılında, Eames ve arkadaşları Zebra balığı 7 tam kan glikoz düzeyleri değerlendirildi. Onlar makasla decapitations performans ve daha sonra göğüs eklem içine bir heparinize microcapillary toplama tüpü takılarak kan erişim kazandı. Onlar iş Kilpatrick ve ark göre uygun bir depolama sıcaklığı ile çözüldü hemoliz zorluklar söz. 8. Laboratuvarımızda Jagadeeswaran tekniğini kullanmaya çalışırken, biz toplama başlamış olabilir önce kaybolmuş kan önemli miktarda izin vermeme gibi kesin doğru yerde kesi yapmak için zor olduğunu bulundu. Son zamanlarda, Gupta ve ark. 9 yetişkin zebrabalıkları organları, Kinkle ark incelemek anlattı. 10 intraperiton nasıl gerçekleştirileceği açıklananeal enjeksiyonları ve Pugach ve ark. 11 retroorbital enjeksiyonları nasıl gerçekleştirileceği açıklanmıştır. Ancak, daha fazla iş daha tam zebrabalıkları araştırma için temel teknikler araştırmaya ihtiyaç vardır. Zebra balığı sayısının küçük bir deneysel model olarak kullanan araştırmacılar için büyük güçlükler. Ayrıca ölçek küçüklüğü, bu verilen, basit teknikleri araştırmacılar zebrabalıkları modelin avantajlarını keşfetmek sağlamak amacıyla geliştirilmiş olması önemlidir.

Bu kağıt Zebra balığı dorsal aortadan kan toplanması için bir teknik sunuyor. Ayrıca bu tür kolesterol ve trigliserid düzeylerini belirlemek için testler gibi biyokimyasal analizlerde kullanılmak üzere serum elde etmek için yönergeler sağlar.

Yetişkin Zebra balığı Biyokimyasal Analiz için Kan Alma

Zebrafish (danio rerio), birçok insan hastalığının incelenmesinde hayvan modeli olarak kullanılmıştır. ... çalışmalarında güçlü bir preklinik platform görevi görebilir.

Bu Videoda, zebra balıklarında kan toplama tekniğini göstermeyi amaçlıyoruz. Bu teknik için anestezi kabı, bir Petri kabı ve bir bistüri, düşük rotasyonlu uçlar ve otomatik mikropipet, P 20 ve mikrotüpler ile bir santrifüj gereklidir. Kan toplamaya başlamadan önce, balığın bir balık ağıyla yakalanıp anestezi altına alınması gerekmektedir.Balık, akvaryum suyu ve buz parçaları içeren bir kaba aktarılır. Anestezi süresi her balığa göre değişiklik gösterir. Genellikle üç ila altı saniye sürer.Balığın anestezi altında olduğu kabul edilir. Sternal uyarana yanıt vermediğinde, balık fazla suyu uzaklaştırmak için anestezi kabından kuru bir gazlı beze nazikçe aktarılmalıdır. Balık anestezi altına alındığında ve fazla su uzaklaştırıldığında, kuyruk kısmına erişim serbest bırakılarak gövde ve başı kapatacak şekilde kuru bir gazlı beze nazikçe sarılır.Bir bistüri ile kuyruğun hemen öncesinden transvers bir insizyon yapılır ve kan akışı başlar. Toplanan kan daha sonra bir mikrotüpe aktarılır. Hemolizi önlemek için tüp nazikçe tutulmalıdır.Kan toplandıktan sonra, serumu elde etmek için santrifüj yapılması gereklidir. İlk kan toplama işlemi ile santrifüj arasındaki süre 10 dakikayı geçmediği sürec

blood-collection-for-biochemical-analysis-in-adult-zebrafish

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Burada yetişkin zebrafish retroorbital enjeksiyon nasıl yapılacağını göstermektedir.

Yetişkin Zebra balığı retro-orbital Enjeksiyon

Birden fazla gelişim evreleri zebrafish kalp diseksiyonu ve izolasyon için açık, standart bir yöntem açıklanmıştır. Annotation ve miktar teknikler de tartışılmaktadır.

Larvaların Kalp Diseksiyon, Çocuk ve Yetişkin Zebra balığı, Danio rerio</em

Bu protokol, floresan olarak işaretlenmiş T hücreli akut lenfoblastik lösemi (T-ALL) tümör hücrelerini yetişkin bir zebra balığından izole etme ve bunları tripan mavisi boya kullanarak ölçme tekniğini açıklar.

Floresan Etiketli T-ALL Hücreleri İzolasyonu: Yetişkin Zebra Balıklarından T-ALL Hücrelerini İzole Etmek İçin Bir Yöntem

Zebra balığı yetişkin böbrek böbrek yenilenmesi ve hastalık çalışmalar için mükemmel bir sistemdir. Böyle bir araştırmanın önemli bir yönü nefron yapısı ve fonksiyonu değerlendirmesidir. Bu protokol nefron borucuk kompozisyonunun ve böbrek geri emiliminin değerlendirilmesi için uygulanabilecek çeşitli yöntemler anlatılmaktadır.

Yetişkin Zebra balığı Böbrek Nefron Kompozisyon ve Fonksiyon Analizi

Kardiyovasküler araştırmalar için zebra balığının kullanımı, yetişkin kalpleri üzerinde yapılan araştırmalara doğru genişliyor. Bu uygulamalar için, kalp dokularının hızlı ve basit bir şekilde izole edilmesi, ölüm sonrası değişikliklerden kaçınmak ve yeterli sayıda numune elde etmek için anahtardır. Burada, yetişkin zebra balığı kalplerini incelemek için hızlı ve tekrarlanabilir bir yöntem açıklıyoruz.

Yüksek verim Uygulamaları Yetişkin Zebra Hearts Kurtarma

Hayvan araştırmalarında tekrarlanan kan örneklemesi gerekli ve önemlidir. Yetişkin zebra balıklarından tekrarlanan kan alımı için yeni, öldürücü olmayan ve güvenilir bir yöntem geliştirdik ve bu yöntemi glikoz metabolizması da dahil olmak üzere kan biyokimyası çalışmasına uyguladık.

Yetişkin Zebra balığı Kan Testleri için Tekrarlanan Kan Alma

Bu tahlil, embriyonik zebra balığı geliştirmede hematopoetik hücreleri miktarlandırmak için basit bir yöntemdir. Ayrışmış zebra balıklarından alınan kan hücreleri akış sitometrisi analizine tabi tutulur. Bu, mutant hayvanlarda ve genetik modifikasyondan sonra kan kusurlarının tespit edilmesine izin verir.

Gelişmekte Olan Zebra Balıklarında Değiştirilmiş Kan Oluşumunu Tespit Etmek ve Nicel hale Getirmek için Akış Sitometrisini Kullanma

Bu protokol, karaciğer yenilenmesinin incelenmesini sağlamak için yetişkin zebra balıklarında karaciğerin ventral lobunun çıkarılması prosedürünü açıklar.

Yetişkin Zebra Balıklarında Kısmi Hepatektomi

Bu protokol, elektrofizyolojik çalışmalar için uygun, yetişkin, genç, larval ve embriyonik zebra balıklarından (Danio rerio) canlı kardiyak ve vasküler düz kas hücrelerinin akut izolasyonunu tanımlamaktadır.

Kardiyak ve Vasküler Düz Kas Hücrelerinin Elektrofizyolojik Çalışmalar İçin Yetişkin, Genç, Larva ve Embriyonik Zebra Balıklarından İzolasyonu

Burada, yetişkin zebra balıklarına hücrelerin veya farmakolojik ajanların intravenöz enjeksiyonu için optimize edilmiş ve etkili bir protokol sunuyoruz, bu da hücre aşılamasının artmasına ve tedavi edilen zebra balığının hayatta kalma oranlarının artmasına neden oluyor.

Yetişkin Zebra Balıklarında Optimize Edilmiş İntravenöz Enjeksiyon

Bu protokol, Evan'ın mavi boya bazlı değerlendirmesini kullanarak yetişkin zebra balığı (Danio rerio) modelinde kan-beyin bariyeri (BBB) bütünlüğünü değerlendirmek için güvenilir bir yöntem sunar ve nörovasküler bozulmanın hem kalitatif hem de kantitatif analizini sağlar.

Bekçiyi Görselleştirmek: Evan'ın Yetişkin Zebra Balıklarında Kan-Beyin Bariyeri Geçirgenliğine İlişkin Mavi Boya Bazlı Değerlendirmesi

Öğrenin, yetişkin zebra balığından dorsal aortadan kan alma tekniğini. Bu yöntem, kolesterol ve trigliserid testleri için serum elde ederek metabolik çalışmalarda kullanılır.

Yetişkin Zebra balığı Biyokimyasal Analiz için Kan Alma

Daha fazla video keşfet