RESEARCH
Peer reviewed scientific video journal
Video encyclopedia of advanced research methods
Visualizing science through experiment videos
EDUCATION
Video textbooks for undergraduate courses
Visual demonstrations of key scientific experiments
BUSINESS
Video textbooks for business education
OTHERS
Interactive video based quizzes for formative assessments
Products
RESEARCH
JoVE Journal
Peer reviewed scientific video journal
JoVE Encyclopedia of Experiments
Video encyclopedia of advanced research methods
EDUCATION
JoVE Core
Video textbooks for undergraduates
JoVE Science Education
Visual demonstrations of key scientific experiments
JoVE Lab Manual
Videos of experiments for undergraduate lab courses
BUSINESS
JoVE Business
Video textbooks for business education
Solutions
Language
tr_TR
Menu
Menu
Menu
Menu
DOI: 10.3791/3894-v
Toni G. Patton1, Gabrielle Dietrich2, Kevin Brandt1, Marc C. Dolan2, Joseph Piesman2, Robert D. Gilmore Jr.1
1Microbiology and Pathogenesis Activity, Bacterial Diseases Branch, Division of Vector-Borne Diseases, National Center for Emerging and Zoonotic Infectious Diseases,Centers for Disease Control and Prevention, 2Tick-Borne Diseases Activity, Bacterial Diseases Branch, Division of Vector-Borne Diseases, National Center for Emerging and Zoonotic Infectious Diseases,Centers for Disease Control and Prevention
Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.
Keneler hemolimf, tükrük bezleri ve tükürük toplama patojenler hastalıklara nasıl neden kene kaynaklı incelemek önemlidir. Bu protokolü biz beslenmesini hemolimf ve tükrük bezleri toplamak nasıl gösterilmektedir
Bu prosedürün genel amacı, eski ODI skapularis kenelerini aktif olarak beslemekten kene, hemo, lenf tükürük bezleri ve tükürük toplamaktır. Bu, hemo topallamayı dışarı atmak için önce kenenin bacağının distal eklemde kesilmesiyle gerçekleştirilir. Daha sonra tükürük bezleri, kenenin fosfat tamponlu salin içinde diseke edilmesi, tükürük bezlerinin yerinin belirlenmesi ve temiz bir PBS havuzuna aktarılmasıyla toplanır.
Tükürük, mikro pipetin kene do dorsumuna pilokarpin uygulanarak, kenenin bir kısmını havuzlanmış bir kılcal tüpe sokarak ve kenenin tüpe tükürük salgılamasına izin vererek toplanır. Sonuçta, immünofloresan veya protein yoluyla hemo lenf veya tükürük bezlerinde bulunan mikroorganizmaları gösteren sonuçlar elde edilebilir. Diğer sonuçların yanı sıra tükürük proteinleri ile protein etkileşimleri.
Genel olarak, hemo lenf toplamaya yeni başlayan kişiler, orta bağırsağı yırtmadan keneyi hareketsiz hale getirmek ve böylece hemo lenfini kontamine etmek zor olduğu için mücadele edeceklerdir. Genel olarak, bireyler tükürük toplama ile mücadele edebilir, çünkü tüm keneler tükürük salgılamaz. Bu nedenle, tükenme noktasında veya bitmek üzere olan kenelerden tükürük toplamaya çalışmak önemlidir.
Genel olarak, tükürük bezi toplamaya yeni başlayan kişiler, tükürük bezlerinin kene kalıntıları arasında bulunması zor olduğu için mücadele edecektir. Ve bir kez yerleştirildikten sonra, bu tükürük bezleri yıkama adımları sırasında kolayca yırtılır ve kaybolur. Aktif olarak beslenen keneleri bir hayvan konakçısından nazikçe çıkardıktan sonra, bunları beş dakika boyunca% 3 topikal hidrojen peroksit içine yerleştirin.
Keneleri yüzeye çıkarmak için 10 dakika boyunca% 70 etanole aktarın, sterilize edin. Keneleri% 70 etanolden pap kalemle safra kağıdına dökerek çıkarın. Aklı başında kaplanmış bir mikroskoba bir daire çizin.
Bir diseksiyon mikroskobu altında pat kalem dairesinin içine kaydırın ve bir kene yerleştirin. Kenenin sırtını hafifçe aşağı itmek için forseps kullanın. Kenenin bacaklarını gösterin ve hareketsiz hale getirin.
Daha sonra ince bir nokta ile tek kullanımlık neşter kenenin bacağını veya bacaklarını distal eklemde ampute edin. Bacak veya bacaklar kesildikten sonra, hema lenflerinin bacaklardan dışarı salgılanması için kenenin sırtına baskı uygulamaya devam edin. Slaytın üzerine.
Tükürük bezlerini bir kene noktasından çıkarmak için hema lenfini yaymak için keneyi slayt üzerinde yavaşça hareket ettirin. Birkaç 25 mikrolitrelik fosfat tamponlu salin mikroskop üzerine çekilir. Diseksiyon mikroskobu altında PBS havuzlarından birine kaydırın ve bir kene yerleştirin.
Ağız kısımlarını veya kenenin arkasını tutarak keneyi stabilize etmek için ince uçlu forseps kullanın. İnce uçlu forsepsleri kenenin arkasına yerleştirin ve organları ortaya çıkarmak için kenenin sırtını kesin. Kenenin bacaklarının yanında bilateral olarak bulunan tükürük bezi çiftini bulun.
Bezler kene kalıntıları arasında görünmüyorsa, ince uçlu forsepslerle tükürük bezlerinin bozulmasını ve kaybını azaltmak için bezleri içeren ana kene kısmını yeni bir PBS havuzuna taşıyın. Tükürük bezlerini keneden çıkarın ve taze bir PBS havuzuna yerleştirin. Bezleri başka bir temiz 25 mikrolitrelik PBS havuzuna aktarın ve bu yıkamayı nazikçe tekrarlayın.
Herhangi bir dış mikroorganizmayı çıkarmak ve kalıntıları işaretlemek için üç ila dört kez daha adım atın. Bezleri, aklı başında kaplı bir slayt üzerinde temiz bir PBS havuzuna yerleştirin. Bir hayvan konakçısından neredeyse tıkanmış bir keneyi çıkardıktan sonra, bir cam mikroskop lamının bir ucuna bantlayın.
Bant, yolun yaklaşık dörtte üçü yukarı doğru yerleştirilmelidir. Kenenin sırtı başa doğru, bandın kenenin dorsal yüzeyinin ön kenarı ile buluştuğu yerde kenenin ağız kısımlarını açıkta bırakarak beş mikrolitre pilokarpin çözeltisi pipetleyin. Pilokarpinin kenenin ağız kısımlarıyla temas etmesine izin vermeden bandın pilokarpini kenenin sırtı üzerinden geçirmesine izin verin.
Mikroskobun üzerine bir parça toksik olmayan modelleme kili yerleştirin. İnce uçlu forseps kullanarak kenenin ağız kısımlarından yaklaşık bir inç kaydırın. Çekilmiş bir kılcal borunun ucunu istenen çapta kırın.
Daha sonra keneyi diseksiyon mikroskobu altında görüntülerken, kenenin hiper taşını kılcal boruya nazikçe yerleştirin ve maksiller hamurların kılcal borunun dışında kalmasına izin verin. Kılcal boruyu yerinde tutmak için kılcal borunun diğer ucunu modelleme kiline bastırın. Daha sonra, monte edilmiş tükürük salgılayan keneyi yüksek nemli karanlık bir odaya yerleştirin.
Sürgüyü, hiper taş kabın dibine bakacak şekilde eğin ve yerçekiminin tükürük toplanmasına yardımcı olmasına izin verin. Kabı oda sıcaklığına getirin ve ilk bir saat boyunca tükürük salgılayan keneleri yakından izleyin. Kılcal boruyu kene hiper taşından çıkarın ve tükürüğü oluştuğu gibi toplayın.
Bir makarna pipeti ampulünü kılcal borulardan dışarı atarak kullanmak. Kılcal boruyu hiper taşın üzerine yerleştirin ve en az dört saat boyunca her saat başı birikimi kontrol edin ve tükürüğü oluştuğunda toplamaya devam edin. Keneler tükürük salgılamıyorsa veya daha fazla tükürük gerekiyorsa.
Hiper taşa masaj yapmak için kılcal boruyu kullanarak tükürük salgısını indükleyin. Son olarak, tükürüğe 0.1 hacim proteaz inhibitör kokteyli ekleyin ve ihtiyaç duyulana kadar eksi 80 santigrat derecede saklayın. Bu şekil, kontamine olmamış hemo lenflerin bir örneğini göstermektedir.
Bacaklar kesildikten sonra berrak bir sıvı salgılanır. Orta bağırsak yırtılırsa, hemo lenf bulanık görünür ve burada gösterildiği gibi kontamine olarak kabul edilir. Burada, mililitre başına 10 mikrogram ile Borrelia burgdorferi için boyanmış tükürük bezlerinin immünofloresan konfokal bir görüntüsü gösterilmektedir.
Floresan izonat konjuge tavşan antib burgdorferi okları tükürük bezlerinde beberg Dre'yi gösterir. Bu videoyu izledikten sonra, tükürük bezleri için tıkalı bir kenenin nasıl inceleneceğini ve hema lenflerinin nasıl toplanacağını iyi anlayacaksınız. Ayrıca bir exo scapularis yetişkin dişisinden tükürüğün nasıl toplanacağını da anlayacaksınız.
Related Videos
08:23
Related Videos
13.4K Views
06:00
Related Videos
12.3K Views
10:59
Related Videos
7.1K Views
07:05
Related Videos
6.8K Views
08:03
Related Videos
2.8K Views
08:53
Related Videos
3.7K Views
03:39
Related Videos
2.2K Views
04:47
Related Videos
864 Views
09:06
Related Videos
18.3K Views
10:58
Related Videos
16.8K Views