Belirlenmesi Toprak bulaşan Helmint Enfeksiyon Durum ve Okul Çağındaki Çocuklarda Fiziksel Uygunluk

Aşağıdaki metodolojilerin amacı, bu şekilde bulaşan helmint enfeksiyon durumunun değerlendirilmesi ve bu şekilde bulaşan helmint enfeksiyonlarının okul çağındaki çocukların fiziksel zindeliği üzerinde bir etkisinin olup olmadığını belirleme girişimlerini kolaylaştırmak ve standart hale getirmektir. Bu, yaygın toprak kaynaklı helmint enfeksiyonlarını, yani Ascaris Lumoid TUS Tria ile kancalı kurtlar ve CLIs stoma Duo Denali ve NTO ERUs'u teşhis etmek için Cato Katz tekniği kullanılarak gerçekleştirilir. İkinci bir adım olarak, Strully Stir Corrales teşhisinde en yaygın kullanılan yöntem olan Erman tekniği uygulanır.

Ardından, çocukların fiziksel uygunluklarını değerlendirmek için 20 metrelik mekik koşusu testi uygulanır. Yukarıda belirtilen metodolojilere dayanarak, Helminth enfeksiyonu olan ve olmayan çocuklar arasındaki fiziksel uygunluk seviyeleri farklılıklarını gösteren sonuçlar elde edilir. Bu yöntemlerin bir kombinasyonu, toprakla bulaşan helminth enfeksiyonlarının enfekte bireylerin fiziksel uygunluğu üzerinde bir etkisi olup olmadığı ve bu tür enfeksiyonların gerçek yükünün ne olduğu gibi temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.

Cato-Catz tekniği, enfekte konakçıların dışkılarıyla attıkları parazit yumurtalarının tespitini kolaylaştırmak için kullanılır. Eldiven giymiş halde, standart bir Cato-CATT şablonunu bir mikroskop lamının merkezine yerleştirerek başlayın. Şablon, ortasında 41,7 mg dışkı tutmak için bir deliğe sahiptir.

Taze bir dışkı örneğinden iki ila üç gramı bir gazete kağıdı veya alüminyum folyo üzerine alın. Ardından, örneği elemek için dışkının üzerine tel veya plastik bir elek parçası bastırın. Küçük plastik bir spatula kullanarak, elekten geçen materyali sıyırın ve Cato Kat şablonundaki punch deliğini bu materyalle tamamen doldurun.

Fazla dışkı materyalini uzaklaştırmak için deliğin içeriğini spatula ile düzeltin. Ardından, mikroskop lamına yapışmış olan dışkı materyalini bozmadan şablonu dikey olarak çıkarın. Şablon ve spatula, deterjan ve su ile temizlendikten sonra yeniden kullanılabilir.

Ardından, en az 24 saat boyunca gliserinli malakit yeşili solüsyonu içinde bekletilmiş bir selofan parçasını mikroskop lamı üzerindeki dışkı örneğinin üzerine yerleştirin. Dışkıyı kalın bir yayma haline getirmek için, temiz bir mikroskop lamını dışkı örneğinin bulunduğu lama karşı nazikçe bastırın ve materyali, mikroskop lamının genişliğinden biraz daha küçük bir çaplı daire içinde eşit şekilde dağıtın. Şimdi lamı doğrudan güneş ışığından uzak tutun ve 30 ila 60 dakika boyunca berraklaşması için bekleyin.

30 ila 60 dakika sonra lamı geri alın ve kalın yaymayı bir ışık mikroskobunda 40 ila 100 kat büyütmede sistematik olarak inceleyin. Yumurta sayısını sayın ve bunları türlerine göre sınıflandırın. Ardından, geleneksel olarak gram dışkı başına yumurta sayısı veya EPG olarak ifade edilen standart bir enfeksiyon tahmini elde etmek için yumurta sayısını 24 ile çarpın.

Erman tekniğini gerçekleştirmek için öncelikle cam huni tutabilecek bir düzenek kurun. Cam huniyi alın ve sapına bir parça kauçuk hortum takın. Hortumu bir klemple veya yaylı klipsle kapatın ve ardından huniyi düzeneğe yerleştirerek sabitleyin.

Ardından, huniye koni şeklinde bir elek veya tel ekran yerleştirin. Bu ekranın üzerine tıbbi gazlı bezden bir katman ekleyin. Daha sonra huni musluk suyu ile doldurun ve eldiven giyerek düzeneğin sızdırmadığından emin olun.

Taze dışkıdan 20 ila 30 gramı tıbbi gazın ortasına alın ve tamamen suyun altında kaldığından emin olun, gerekirse daha fazla su ekleyin. Ardından tıbbi gazı numunenin üzerine katlayın. Sonrasında, huniye alttan iki saat boyunca yapay ışık tutun.

Bunun nedeni, Baermann tekniğinin, Strongyloides larvae'lerinin fototaktik olduğu ve bu nedenle aydınlatılmış dışkı örneğinden dışarı göç edeceği prensibine dayanmasıdır. İki saat sonra, kauçuk hortumdaki klipsi nazikçe serbest bırakın ve hunideki suyun en alt kısmından 50 milliliters suyunu bir santrifüj tüpüne boşaltın. Ardından, toplanan suyu beş dakika boyunca 600 ×g hızında santrifüjleyin.

Ardından, çökeltiyi rahatsız etmeden süpernatantı dikkatlice dökün. Tüpte kalan son birkaç damlayı muhafaza edin, yeniden süspanse edin ve çözeltiden iki damlayı bir mikroskop lamı üzerine pipetleyin. Lamı bir ışık mikroskobu altında, önce parazit tespiti için 40 kat büyütmede, ardından tür konfirmasyonu için 100 ila 400 kat büyütmede inceleyin.

OID stires'ın birinci evre larvaları canlıdır ve mekik koşu testini kurmak için mikroskop altında aktif olarak hareket edeceklerdir. Öncelikle, 20 metrelik düz bir koşu parkuru ölçün ve mesafeyi konilerle işaretleyin. Test katılımcısının bileğine bir kalp atış hızı monitörü, göğsüne ise ilgili vericiyi yerleştirin.

Bu ekipman, test öncesinde ve sonrasında kalp atım hızını ölçer ve böylece katılımcının maksimum çaba sarf edip etmediğini izler. Monitörleri sabitledikten sonra, çocuktan 20 metrelik turlara karşılık gelen ve önceden kaydedilmiş ses sinyallerinin hızını takip ederek parkurda git gel şeklinde koşmasını isteyin; koşu hızını 8,5 kilometers per hour olarak ayarlayarak başlayın. 20 metrelik aralıkları belirten sinyallerin frekansı, her dakika 0,5 kilometers per hour eşdeğerinde otomatik olarak artar; katılımcının yeni bir 20 metrelik aralığa koşmaya başladığından emin olun.

Sinyal her verildiğinde, bir sonraki sinyal gelmeden önce tamamlanmalıdır. Çocuk, art arda iki 20 metrelik aralık boyunca tempoyu takip edemezse durdurun. Ardından, son aralık için koşu hızını kaydedin.

Katılımcı testi tamamen tamamlamış olup katılımcının yaşı, cinsiyeti ve ulaşılan kalp atış hızı kaydedilmiştir. Testin sonunda, bu kalp atış hızının çocuğun maksimal kalp atış hızı olduğundan emin olun. Maksimal kalp atış hızına ulaşılamamışsa, çocuk maksimal çaba göstermemiş olabilir ve test tekrarlanmalıdır.

Şimdi, katılımcının maksimum aerobik kapasitesini veya VO₂ max değerini şu denklemle tahmin edin. VO₂ max = 31,025 + 3,238 × hız (km/saat) - 3,248 × yaş (yıl) + 0,1536 × hız (km/saat) × yaş (yıl). Sonraki iki görüntü, yaklaşık olarak 45 ila 74 mikron uzunluğunda ve 35 ila 50 mikron genişliğinde olan ve burada döllenmiş bir Ascaris lumbricoides yumurtası olarak gösterilen kalın kabuk duvarlı Ascaris lumbricoides yumurtalarını tasvir etmektedir.

Albumin kılıfın görünümüne dikkat edin; bu kılıf yumurtaya altın kahverengi bir görünüm kazandırır. Buna karşılık, burada döllenmemiş bir alumoid yumurta gösterilmiştir. Dış kılıfın yokluğuna ve yumurtanın döllenmiş yumurtadan biraz daha uzun ve büyük olduğuna dikkat edin.

Genel olarak bu görüntü, tea trico yumurtalarını göstermektedir. Bunlar yaklaşık 50 mikron uzunluğunda ve 22 mikron genişliğindedir; belirgin polar tıkaçları olan uzamış bir yapıdadırlar. Buna karşılık, burada görülen kancalı kurt yumurtaları çok ince bir çepere sahiptir ve yumurtanın merkezindeki yoğun hücre kümesinin etrafında şeffaf bir halka bulunur.

Bu görüntüde S stir Corrales L1 larvaları gösterilmektedir. Yaklaşık 180 ila 380 mikron uzunluğundadırlar ve çok kısa bir bukkal boşluğa sahiptirler. Belirgin bir genital primordyum gözlemlenebilir ve mavi okla vurgulanmıştır.

Kırmızı ok, larvaların sivri uca sahip olan kuyruk kısmını göstermektedir. Fiziksel uygunluğu ölçmek amacıyla 20 metrelik mekiğe koşu testi uygulanmıştır. Mekik koşu testi sonuçlarının yorumlanması çeşitli yollarla gerçekleştirilebilir.

Çocukların fiziksel uygunluk durumları; yaş, cinsiyet, diğer potansiyel ilgili sağlık durumları, sosyoekonomik düzey ve kültürel alışkanlıklar açısından benzer olan enfekte ve enfekte olmayan denekler arasında karşılaştırılabilir. Ayrıca, STH enfeksiyonlarının şiddeti ile fiziksel uygunluk arasındaki olası doz-yanıt ilişkisi belirlenmeye çalışılabilir ve farklı çoklu parazitizm düzeyleri ile fiziksel uygunluk karşılaştırılabilir. Örnek olarak, buradaki grafik, T Tri Coria ile enfekte olan çocuklarda fiziksel uygunluğun, T Tri Coia ile enfekte olmayan çocuklara kıyasla anlamlı düzeyde azaldığını göstermektedir.

Bu videoyu izledikten sonra, cut cuts tekniğinin, bare mount tekniğinin ve 20 metrelik shutter run testinin nasıl uygulanacağı konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Bu yöntemler, soy transmitter kask enfeksiyonlarının okul çağındaki çocukların fiziksel uygunluğu üzerinde bir etkisi olup olmadığını değerlendirmeye yardımcı olacaktır.