Name: Kanser gen Fonksiyon Eğitim için DNA vektör tabanlı RNA Girişim (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-06-04T13:00:00.000+00:00
Duration: 13 min 10 s
Description: Öğrenin DNA vektör tabanlı RNA girişim yöntemiyle kanser gen fonksiyonlarını in vivo ortamda uzun süreli susturma tekniklerini. Bu yöntem lentivirüs iletimi ve stabil hücre hatları oluşturarak tümör oluşumu çalışmalarına katkı sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Araştırmacı Amerikan Kanser Derneği Hibeler (116.403-RSG-09-082-01-MGO) ve GS Wake Forest Üniversitesi Sağlık Bilimleri intramural fonları kısmen desteklenmiştir. DBS NCI eğitim bursu 5T32CA079448 tarafından desteklenmiştir.

1. ShRNA Oluşumlar üretimi <ol><li> Daha önce yayınlanan kriterlere 6 veya Ambion ve GenScript gelen &quot;siRNA Hedef Bulucu&quot; olarak web tabanlı bir algoritma sunucu kullanmak dayalı bir siRNA hedef dizisi (20-23 nükleotid) tanımlayın. </li><li> Tablo 1, Şekil 1 ve Örnek dizilerinin tasarımına bağlı oligonükleotidler sentezlenir. Oligonükleotidler P1 ve P2 (30 at 94 denatürasyon döngüleri ° C&#39;de 30 saniye süreyle, 60 ° tavlama 30 sn için C ve 30 saniye için 72 ° C&#39;da uzatılması) ve U6 veya H1 taşıyan plazmid kullanılarak PCR yapılması Bir şablon olarak promotör. Bir PCR saflaştırma kolonu kullanılarak PCR ürünü saflaştırmak. BamHI ve HindIII bunu sindirmek ve bir PCR saflaştırma kolonu kullanılarak sindirilir DNA arındırmak. Oligonükleotidler P3 ve P4 (2,5 50 mM Tris 100 ul içinde pmol / ul her birinin • HCI, pH 8.0) 5 dakika ve oda sıcaklığına kadar yavaşça serin için kaynatılarak. Tavlama Bir lentiviral vec sindirmekBöyle BamHI ve EcoRI ile, Şekil 2A açıklanan ve jel saflaştırma gerçekleştirmek biri olarak tor,. </li><li> Bir 01:10:10 molar oranlarında BamHI / EcoRI-sindirilmiş vektör, bir BamHI / HindIII-sindirilmiş PCR parçası ve tavlanmış oligonükleotidler bir çift (HindIII ve iki ucunda EcoRI siteleri oluşturan) ile bir 3-fragmanı ligasyon yürütmek (Şekil 1). </li><li> Yüksek verimli yetkili E. Transform bağlanan ürünle kullanarak coli DH5α hücreleri. Oligonükleotidler P5 (vektör içinde) ve P6 (H1 veya U6 yükselticisinde). 7 ile koloniler taranması </li><li> Ticari kit ile pozitif kolonilerden plazmid DNA hazırlayın ve BamHI / EcoRI sindirim ve DNA agaroz elektroforezi ucun varlığını doğrulamaktadır. Oligonükleotid P5 kullanarak organizatörü ve shRNA içeren Sıra bölge. </li><li> ShRNA ifadesi taşıyan lentivirüs DNA hazırlamak için plazmid DNA Midi-veya Maxi-hazırlık setleri (endotoksin ücretsiz tercih edilir) kullanınkaset. 260 nm&#39;de absorpsiyon olarak ölçülmesiyle DNA konsantrasyonunun belirlenmesi. 260 nm/280 nm oranı kullanılarak DNA&#39;nın saflık kontrol edin ve 1,8-2,0 aralığında düşüyor emin olun. Agaroz jel elektroforez ile lentivirüs plazmid bütünlüğünü kontrol edin. Transfeksiyon için DNA süper sarılmış olmalıdır. </li></ol> 2. Lentivirüs Transfeksiyon Önlemler: lentiviral vektörler (HIV-1) genomu ve replikasyonu beceriksiz virüs-1 insan bağışıklık elde edilmektedir. Bunlar yaygın hücre bölünmesi ve non-bölünmesi hem bulaştırmaktan özelliği nedeniyle gen aktarımının kullanılmıştır. Bununla birlikte, iki ana riskleri lentivirüs kullanılarak çalışmalarda bulunmaktadır. Replikasyon-yetkin lentivirüs üretilmesi için (1) potansiyel. Üçüncü nesil lentiviral sistemi kullanılması halinde, bu riskini büyük ölçüde azaltılabilir. Onkojenezi için (2) potansiyel. Yapılan ekler onkojenik ya da tümör bastırıcılarının bastırmak, bu riski daha da şiddetlenir.HIV tabanlı lentivirüs katılan araştırma faaliyetleri NIH (ve &quot;lentiviral Vektörler ile Araştırma Biyogüvenlik Önlemleri&quot; takip etmelidir <a href="http://oba.od.nih.gov/rdna_rac/rac_guidance_lentivirus.html" target="_blank">http://oba.od.nih.gov/rdna_rac/rac_guidance_lentivirus.html</a> ) ve Biyogüvenlik Komitesi bir onay gerektiren Bir araştırmacının kurumu. Lentiviral vektörleri kullanıldığı takdirde, genellikle, geliştirilmiş Biyogüvenlik seviyesi-2 (BSL-2) çevreleme laboratuar ayarı için gereklidir. <ol><li> Levha 4 x 10 cm tabaklar ve bir gece kültüre tam eden DMEM ortamı (DMEM% 10 fetal bovin serumu (FBS), 2 mM L-glutamin, 100 U / ml penisilin, 100 ug / ml streptomisin ile birlikte) ile birlikte 10 6 HEK 293T hücreleri 37 azından% 5 CO2 inkübatöründe ° C. I Serum Media (Invitrogen) İndirgenmiş önceden ısıtılmış Opti-MEM 5 ml ortamı yerini alır. </li><li> ShRNA içeren lentiviral vektör 10 mg, 5 mg üçüncü homo her: Çözüm A hazırlayıntirme lentivirüs ambalaj plazmid (yüksek saflıkta ile hazırlanan; üç ambalaj plazmid VSV-G şunlardır: rev için ve pMDLg / pRRE: bir zarf proteini, pRSV-Rev gag / lentivirüs paketleme için gerekli olan, pol için), 36 2M CaCI2 ve steril su ile 300 ul&#39;lik ul. </li><li> Salin Tamponlu 2 × 300 ul Hepes (281 mM NaCl, 100 mM HEPES, 1,5 mM Na 2 HPO 4, 0.5 N NaOH ile 7.12 &#39;e ayarlanır ve 0.22 um bir filtreden ile sterilize pH): Çözelti B hazırlayın. </li><li> Bir pipetle Çözüm B ile hava kabardığını yavas Bir Çözüm B içine Çözüm bırakın. 30 dk çevre sıcaklığında tüpü bırakın. </li><li> Yavaşça adım 2,1 hazırlanan HEK 293T hücre kültürü çanağı içine karıştırılmış çözümler A / B açılan ve 4-6 saat boyunca bir% 5 CO2 inkübatöründe 37 ° C&#39;de inkübe edilir. </li><li> Komple DMEM ortam 7 ml ortamı yerini alır. 24 saat sonra, tam DMEM ortamı ek bir 5 ml ilave edilir. Orta devam hasatkültür başka bir 24 saat sonra lentivirüs aining. </li><li> 10 dk için 1500 rpm, ortam sıcaklığında, orta dönerler. Bir 0.45 um bir filtreden kullanılarak Süpernatan filtre ve akış boyunca dönmeye 25.000 rpm&#39;de ultra-santrifüj ile lentivirüs içeren ortam (a SW28 rotor sallanan kova ile 125,000 x g eşittir Beckman ultrasantrifüjdeki XL-90), 4 ° C&#39;de 90 dakika süreyle. % 5 ağartıcı (nihai konsantrasyon) ile bir kap için supernatant boşaltacaktır. </li><li> Soğuk PBS 0.5-1.0 ml lentivirüs pelletini ve tüp başına 50-100 ul içine lentivirüs alikotları olun. -80 Onları saklayın ° C </li><li> Lentivirüs ve titresi bir real-time PCR protokolü 8 ile ticari kitler (örneğin Hücre Biolabs gelen QuickTiter lentivirüs kantitasyonu Takımı, Inc gibi) veya floresan mikroskobu veya akım sitometri kullanılarak eş-ifade floresan işaretleyici belirleyerek tespit edilebilir . Tipik olarak, bir 10 cm kültür çanak 0.5-1.0 hakkında üretebilir × 10 8 enfeksiyontious birim (IU). </li></ol> 3. Enfekte Hücre Enfeksiyon ve Karakterizasyonu <ol><li> Tohum hücreleri% 30-40 konfluent (yaklaşık 5-8 x 10 5 hücreler, hücre boyutuna bağlı olarak) bir 6-kuyulu plakalı içinde tam medyum 2 ml enfekte edilmesi. 37 &#39;de bir gece kültüre hücreleri% 5 CO2 inkübatöründe ° C. </li><li> Taze aracı madde 1 ml 8 polybrene arasında ug / ml (Sigma, Katalog # H9268) ya da 5 mg / ml protamin (Sigma, Katalog # P4020) içeren ortam yerini alır. </li><li> Enfeksiyonu (İçişleri Bakanlığı) floresan işaretleyici ile lentivirüs kullanarak belirli bir hücre hattı için aralık 9 uygun bir çokluğu belirleyin. Hesaplamak ve ampirik olarak hücre hattı enfekte etme kullanılmak üzere lentivirüs miktarını belirler. Yavaşça plakasına lentivirüs bırakın ve yavaşça 10 saniye boyunca sallayın. </li><li> 6 saat boyunca bir% 5 CO2 inkübatöründe 37 ° C&#39;de inkübe edilir ve daha sonra plaka normal bir tam medyum ile orta yerini alır. </li><li> En az iki dekarys enfeksiyondan sonra, floresan işaretleri ve / ifade lentivirüs için floresan mikroskobu kullanarak hücrelerin kontrol ve antibiyotik direnç genleri ifade lentiviral vektörler için orta ilgili antibiyotik ekleyin. Bir vektör indüklenebilen için, böyle bir sistemin Tet-on (Şekil 2), kültür ortamı içinde hücreleri tetrasiklin serbest FBS ile hazırlanır. Hücreleri 2-3 gün, enfeksiyondan sonraki ayrıldı. ≥ 2 gün süre ile 1,5 mg / ml doksisiklin (Dox) ve olmadan temin ortamda kültüre onlar tarafından indüklenen geni test etmek için portatif bir hücre kısmı alır. </li><li> ≥ 2 gün Dox eklenmesinden sonra Western Blot, Real-Time PCR veya immun ≥ 2 gün sonra enfeksiyon, antibiyotik seçimine 2 gün sonra, veya (Tet-On indüklenebilir sistemi için) tarafından gen devirme kontrol edin. </li><li> Hedef gen kn etkilerini belirlemek için farklı yaklaşımlar (örn. hücre çoğalması deneyleri, yumuşak agar kültür çalışmaları, göç deneyleri, istila testleri ve tümör oluşumu çalışmaları gibi) yararlanınhücrelerin Malignitede ockdown. </li></ol> 4. Xenograftlarında Fare Model Çalışması <ol><li> Fare anesthetization ve farelerin enfeksiyonu önlemek için% 70 etanol enjeksiyonu için tüm yüzeyleri temizleyin. % 2 ile izofluran önce hücre aşılama için bir anestezi indüksiyonu odasında 10 dakika oksijen ile karıştırılır. Atimik çıplak farelerde (NCI-Frederick) uyuştur Bir burun konisi ile oksijen karışık izofluran% 1 ile anestezi koruyun. Mükemmel havalandırma ile bir odada bu adımı gerçekleştirin ve indüksiyon odasına izofluran tutucu filtreleri takın. </li><li> ShRNAs taşıyan hücreler yayar. Indüklenebilir vektörler Tet-On için tetrasiklin içermeyen aracı kullanın. Hücreler Trypsinize ve% 50 Matrigel içeren tam bir ortam içinde yeniden süspanse bunların. Bir ısıtma yüzeyi üzerine çıplak farelerin (30 ° C) konumlandırmak ve fare başına 1-2 enjeksiyon yerleri ile farelere hücrelerinin 200 ul (1-10 x 10 6, kanser hücrelerinin bağlı olarak) enjekte edilir. 25 ile şırınga kullanın.Subkutan enjeksiyonlar ve ortotopik enjeksiyonlar için 28-30 insülin iğnesi için 5 insülin iğnesi. </li><li> Kurucu shRNA vektörler için, hedef genin shRNA ve bir karıştırılmış shRNA eksprese eden hücrelerle enjekte farelerin 2 grupları kullanmaktadır. Tet-on indüklenebilen shRNA vektörler, hedef genin shRNA ve bir karıştırılmış shRNA, normal su ile sağlanan ve Dox (1.5 mg / ml), su (2 x 2 shRNAs tedaviler = 4 grubu) içeren taşıyan hücrelerin enjekte farelerin 4 gruplar için kullanır . Haftada iki kez Dox içeren su değiştirin. </li><li> Dijital kumpas, kumpas, haftalık veya iki haftada bir tümörlerin uzunluk ve genişlik izleyin ve formülü V = 1/2 (uzunluk x genişlik 2) 10 ile tümör hacim (V) hesaplar. Tümör hacmi kurumsal ACUC ana hatlarını (örneğin vücut ağırlığının% 10 gibi) aşmamaktadır olun. Bu kapsamlı ülserasyon veya nekroz, bariz infectio belirtisi gösterirse kurumsal ACUC tarafından onaylanmış bir protokol kullanarak herhangi bir fare Euthanizen, kontrolsüz kanama veya son evre hastalık. </li><li> Tümör büyümesi ve metastazı gibi Firefly lusiferaz gibi bir biyolüminesens işaretleyici 11, ifade inoküle tümör hücreleri için izlenebilir. Fare anesthetization ve farelerin enfeksiyonu önlemek için% 70 etanol ile görüntüleme için tüm yüzeyleri temizleyin. Adım 4,1 açıklandığı gibi fare uyuşturmak. Lusiferin (150 mg / kg) intraperitoneal olarak enjekte edilir. Böyle bir IVIS Görüntüleme Sistemi (kaliper Life Sciences, Inc) gibi ticari bir görüntüleme sistemi, bir dezenfekte görüntüleme haznesine farelere yerleştirin. Oksijen ile karıştırılır izofluran% 1 anestezi korumak için anestezi kolu açın. Mükemmel havalandırma ile bir odada bu adımı gerçekleştirin. </li><li> 5 dakika teşhir ederek ilk görüntü alın ve sinyal yoğunluğu kontrol edin. Arka plan karşı en iyi sinyal ile görüntüler elde etmek için pozlama süresini ayarlayın. Ampirik görüntüleme zamanı belirleyin, hangi genellikle subkutan tümörler için 1-5 dk. </li><li> Onaylanmış bir protokol ile fareler EuthanizeTümör boyutları yaklaşık 1.000 mm 3, ya da ACUC rehberlerinde belirtilen ulaşmak kurumsal ACUC tarafından. Tüketim xenograft tümörler, onları tartmak ve fotoğraf çekmek. Gen test etmek için tümör hücre morfolojisi belirlemek için patolojik analizleri gibi farklı çalışmalar için tümör örnekleri ve Western blot ve Real-Time PCR çalışmaları işleyin. </li></ol> 5.. Temsilcisi Sonuçlar Atimik çıplak farelerde; Bu protokol Firefly lusiferaz eksprese MDA-MB-231 hücreler (Kaliper Yaşam Bilimleri insan meme kanseri hücresi) xenograft tümör oluşumu YY1 Knockdown etkilerini incelemek için kullanılmıştır. İnsan YY1 of shRNA hedef dizisi &quot;AGC AGA AGC AGG TGC AGA T GGG&quot; edilir. Bir şifreli dizisi &quot;GGG ACT ACT KTHY TTA CGT CAT T&quot; bir de kontrol bilinen herhangi bir transkript önemli bir benzerlik yoktu (devam) shRNA için oluşturuldu. Bir örnek olarak YY1 ile indüklenebilen shRNA yapıları Tet-on yapmak için kullanılan oligonükleotidler,, Tablo 1 &#39;de gösterilmiştir. Sonuç olarak, iki lentiviral vektörler, PLU-Puro-Indu-YY1 shRNA ve PLU-Puro-Indu-devam shRNA, imal edilmiş ve Lentivirüs üretmek için kullanıldı. Bu tek tek tetrasiklin regülatörü (tetr) ve hem de ifade Firefly lusiferaz iki MDA-MB-231 hücre klonu (klon 1 ve 3) enfekte etme bu Lentivirüs kullanılır. Poliklonal hücre popülasyonlarının puromycin seçimden sonra elde edildi. Şekil 3A PLU-Puro-Indu-YY1 shRNA lentivirüs bulaşmış bu MDA-MB-231 hücrelerinde Dox bağlı YY1 devirme gösterir. Daha sonra bu indüklenebilir YY1 shRNA ve devam shRNA Lentivirüs tarafından ayrı ayrı ve enfekte YY1 tükenmesi MDA-MB-231 hücreler (Şekil 3B) invaziv düştüğü görülmüştür klon 3 poliklonal hücreler kullanılmaktadır. Indu-cont shRNA içeren hücreleri (Şekil 3C) bu etki görülmemiştir ise Western blot analizleri, indu-YY1 shRNA ile MDA-MB-231 hücrelerinde Dox bağlı YY1 susturulması doğruladı. Daha sonra kullanılan<html> xenograft fare modeli çalışması için bu hücreleri. Kontrol grupları ile karşılaştırıldığında, indu-YY1 shRNA ile MDA-MB-231 hücreler tarafından implante ve Dox içeren su ile birlikte farelerin (Şekil 4B biyolüminesans (Şekil 4A) tarafından görüntülenmiştir zaman, azaltılmış tümör oluşumunu gösterdi ve tümör ağırlıkları belirlenir ). Bu xenograft tümörlerde YY1 susturulması Şekil 4C gösterilen Western Blot çalışmaları ile doğrulandı. <img alt="Şekil 1" src="/files/ftp_upload/4129/4129fig1.jpg" /> Şekil 1.. Bir shRNA yapı ve shRNA transkripsiyon nesil için şematik diyagramı. Primerler P1 P6 için (örneğin dizileri için bkz. Tablo 1) gösterilmiştir. Pol III: RNA polimeraz III (d):. Sindirilmiş sonu. Çizim ölçekli değildir. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4129/4129fig1large.jpg" target="_blank">büyük resim görmek için buraya tıklayın</a> . 2 &quot;src =&quot; / files/ftp_upload/4129/4129fig2.jpg &quot;/&gt; Şekil 2. (A) &#39;a lentiviral vektör ve (B) mekanizması Tet-on gen suskunluğu için kullanılan promotör indüklenebilen H1. Şematik diyagramı Lentiviral vektör pLL3.7 14 dayanan yeniden inşa edildi. H1-Pr: H1 organizatörü; UBC-Pr: İnsan ubikuitin C promoter; Puro: puromycin; TRE: Tetrasiklin duyarlı elementi; Dox: doksisiklin. Tetr: tetrasiklin regülatörü. 5&#39;LTR, 3&#39;SIN-LTR ve WRE bir lentiviral vektör 14 temel bileşenleridir. <img alt="Şekil 3" src="/files/ftp_upload/4129/4129fig3.jpg" /> Şekil 3. Dox bağlı YY1 suskunluğu ve MDA-MB-231 hücrelerin invaziv üzerindeki etkisi. Elde edilen iki poliklonal hücre popülasyonlarının A. YY1 seviyeleri tetr-ifade PLU-Puro-Indu-YY1 shRNA lentivirüs bulaşmış ve Dox yokluğunda ve varlığında kültüre klonlar 1 ve 3. Indüklenebilir shRNAs ile MDA-MB-231 hücre B. Boyden odası testi. (* P &lt;0Diğer üç gruba karşı .05). Bu dört hücre popülasyonlarında YY1 ifade C. Temsilcisi Western blot. <img alt="Şekil 4" src="/files/ftp_upload/4129/4129fig4.jpg" /> Şekil 4. MDA-MB-231 hücreler tarafından xenograft tümör oluşumuna neden olduğu YY1 susturulması Etkileri. Hücre implantasyonu (solda) ve 4 hafta (sağ) yazılan hücre aşılama az IVIS Görüntüleme Sistemi tarafından yakalanan temsilcisi bioluminescent görüntüleri A. şematik. 4 hafta B. Xenograftlarında tümör ağırlıkları. * P ≤ 0.05. C. Batı YY1 ve lekeler ve Dox yokluğunda ve varlığında indu-YY1 shRNA ile MDA-MB-231 hücre xenogreftler içinde β-aktin ifade. Üstüne Etiketler bireysel farelerin isimleridir. <table border="1"><tbody><tr><td> Oligonükleotid </td><td> Dizisi (5 &#39;- 3&#39;) </td><td> Kullanım ve konumu </td></tr><tr><td> P1 (Tet-On H1) </td><td> cagt GGATCC CGA ACG CTG ACG TCA TCA ACC C </td><td> PCR; H1 arttırıcının 5&#39;-ucunda </td></tr><tr><td> P1 (U6) </td><td> cagt GGATCC GAC GCC GCC ATC TCT AGG </td><td> PCR; U6 arttırıcının 5&#39;-ucunda </td></tr><tr><td> P2 (YY1 için H1 Tet-On ile) </td><td> cagc AAGCTT GAA ATC tgc acc tgc ttc tgc tcc c GGG ATC TCT ATC ACT GAT AGG GAA C </td><td> PCR; Tet-on indüklenebilen H1 arttırıcının 3&#39;-ucunda </td></tr><tr><td> P2 (U6 ile YY1 için) </td><td> cagc AAGCTT GAA ATC tgc acc tgc ttc tgc tcc c aaa caa GGC ttt TCT cca agg gat bir </td><td> PCR; U6 arttırıcının 3&#39;-ucunda </td></tr><tr><td> P3 (YY1 için) </td><td> AGC tt ATC tgc acc tgc ttc tgc tcc c ttttt g </td><td> P4 ile tavlanmış edilecek </td></tr><tr><td> P4 (YY1 için) </td><td> aattc aaaaa <strong&gt; ggg AGC aga AGC agg tgc aga ta </td><td> P3 tavlanmış edilecek </td></tr><tr><td> P5 (pLL3.7 için) </td><td> ggg tac AGT DHA ggg gaa aga ata g </td><td> PCR taranması için, P6 ile birlikte kullanılır </td></tr><tr><td> P6 (H1 Tet-On için) </td><td> GAT TTC CCA GAA CAC ATA KHK AC </td><td> P5 ile kullanılan PCR taraması için, </td></tr><tr><td> P6 (U6 için) </td><td> AGG GTG AGT TTC CTT TTG TGC TG </td><td> P5 ile kullanılan PCR taraması için, </td></tr></tbody></table> Tablo 1. ShRNA yapıları oluşturmak için kullanılan sentezlenmiş oligonükleotidler. P1 ve fare U6 ve Tet-On indüklenebilir insan H1 sahipleri için P6 dizileri sağlanmaktadır. İnsan YY1 GGG AGC AGA AGC AGG TGC AGA T. YY1 özgü dizileri vurgulanır bir shRNA hedef sırası ile bir örnek olarak kullanılır. YY1 iki P2 sekansları, sırasıyla iki arttırıcılar için tasarlanmıştır. Bünye U6 / YTet-On H1/YY1 Bu protokolde kullanılan iken Y1 shRNA, daha önce 15 tanımlanmıştır. P5 vektör spesifik ve pLL3.7 için 14 gösterilmektedir sekansıdır. Restriksiyon enzim dizileri dizileri PCR amplifikasyon sırasında sahiplerine tavlama için ise, altı çizili italik edilir.

<ol><li>Elbashir, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Duplexes+of+21-nucleotide+RNAs+mediate+RNA+interference+in+cultured+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Duplexes of 21-nucleotide RNAs mediate RNA interference in cultured mammalian cells.</a> Nature. 411, 494-498 (2001).</li>
<li>Sui, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+DNA+vector-based+RNAi+technology+to+suppress+gene+expression+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">A DNA vector-based RNAi technology to suppress gene expression in mammalian cells.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 5515-5520 (2002).</li>
<li>Brummelkamp, T. R., Bernards, R., Agami, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+system+for+stable+expression+of+short+interfering+RNAs+in+mammalian+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A system for stable expression of short interfering RNAs in mammalian cells.</a> Science. 296, 550-553 (2002).</li>
<li>Zhang, Q., Stovall, D. B., Inoue, K., Sui, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+oncogenic+role+of+Yin+Yang+1%5BTitle%5D)+AND+%22Crit.+Rev.+Oncog%22%5BJournal%5D)">The oncogenic role of Yin Yang 1.</a> Crit. Rev. Oncog. 16, 163-197 (2011).</li>
<li>Wan, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yin+Yang+1+plays+an+essential+role+in+breast+cancer+and+negatively+regulates+p27%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Yin Yang 1 plays an essential role in breast cancer and negatively regulates p27.</a> Am. J. Pathol. , Forthcoming (2012).</li>
<li>Sui, G., Shi, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+silencing+by+a+DNA+vector-based+RNAi+technology%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Gene silencing by a DNA vector-based RNAi technology.</a> Methods in Molecular Biology. 309, 205-218 (2005).</li>
<li>Trower, M. K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+rapid+PCR-based+colony+screening+protocol+for+cloned+inserts%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">A rapid PCR-based colony screening protocol for cloned inserts.</a> Methods Mol. Biol. 58, 329-333 (1996).</li>
<li>Lizee, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Real-time+quantitative+reverse+transcriptase-polymerase+chain+reaction+as+a+method+for+determining+lentiviral+vector+titers+and+measuring+transgene+expression%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Real-time quantitative reverse transcriptase-polymerase chain reaction as a method for determining lentiviral vector titers and measuring transgene expression.</a> Hum. Gene Ther. 14, 497-507 (2003).</li>
<li>Zhang, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+significance+of+controlled+conditions+in+lentiviral+vector+titration+and+in+the+use+of+multiplicity+of+infection+%28MOI%29+for+predicting+gene+transfer+events%5BTitle%5D)+AND+%22Genet+Vaccines+Ther%22%5BJournal%5D)">The significance of controlled conditions in lentiviral vector titration and in the use of multiplicity of infection (MOI) for predicting gene transfer events.</a> Genet Vaccines Ther. 2, 6(2004).</li>
<li>Geran, R. I., Greenberg, N. H., MacDonald, M. M., Schumacher, A. M., Abbott, B. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Protocols+for+screening+chemical+agents+and+natural+products+against+animal+tumors+and+other+biological+systems%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Chemother.+Rep%22%5BJournal%5D)">Protocols for screening chemical agents and natural products against animal tumors and other biological systems.</a> Cancer Chemother. Rep. 3, 1-103 (1972).</li>
<li>Massoud, T. F., Gambhir, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+imaging+in+living+subjects%3A+seeing+fundamental+biological+processes+in+a+new+light%5BTitle%5D)+AND+%22Genes+Dev%22%5BJournal%5D)">Molecular imaging in living subjects: seeing fundamental biological processes in a new light.</a> Genes Dev. 17, 545-580 (2003).</li>
<li>Inoue, H., Nojima, H., Okayama, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+efficiency+transformation+of+Escherichia+coli+with+plasmids%5BTitle%5D)+AND+%22Gene%22%5BJournal%5D)">High efficiency transformation of Escherichia coli with plasmids.</a> Gene. 96, 23-28 (1990).</li>
<li>Toledo, J. R., Prieto, Y., Oramas, N., Sanchez, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Polyethylenimine-based+transfection+method+as+a+simple+and+effective+way+to+produce+recombinant+lentiviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Appl.+Biochem.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Polyethylenimine-based transfection method as a simple and effective way to produce recombinant lentiviral vectors.</a> Appl. Biochem. Biotechnol. 157, 538-544 (2009).</li>
<li>Rubinson, D. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+lentivirus-based+system+to+functionally+silence+genes+in+primary+mammalian+cells%2C+stem+cells+and+transgenic+mice+by+RNA+interference%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Genet%22%5BJournal%5D)">A lentivirus-based system to functionally silence genes in primary mammalian cells, stem cells and transgenic mice by RNA interference.</a> Nat Genet. 33, 401-406 (2003).</li>
<li>Sui, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Yin+Yang+1+is+a+negative+regulator+of+p53%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Yin Yang 1 is a negative regulator of p53.</a> Cell. 117, 859-872 (2004).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Bu protokol kullanılarak bir gen shRNA sökülebilen ve in vivo olarak tümör hücresi büyümesinin bioluminescent görüntüleme kullanılarak biyolojik etkisini canlandırmak için bir yöntem açıklanmaktadır. Bir shRNA hedef sitesi (BamHI, HindIII ve EcoRI) kullanılan üç sınırlandırma bölgeleri herhangi bir içermemelidir on klonlama sonrasında için. Nadir bir senaryo bu siteleri arasında herhangi bir mevcut olduğu zaman, ilave bir kısıtlama enzimiyle yapı üreten yerini almak üzere kullanılır. <p class="jove...

RNA ve protein analizler ve hücre kültürü için kullanılan genel laboratuar ekipmanı ek olarak, aşağıdaki malzemeleri ve ayraçlar, bu protokolü için gereklidir. <table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td></tr><tr><td> Biyogüvenlik Seviyesi 2 çevreleme için uygun Biyogüvenlik Kabini </td></tr><tr><td> PCR PCR </td></tr><tr><td> Ultrasantrifüjdeki </td></tr><tr><td> Izofluran temizleyiciler ile anestezi indüksiyonu odası </td></tr><tr><td> Dijital kumpas </td></tr><tr><td> IVIS görüntüleme sistemi </td></tr><tr><td> Son derece yetkin DH5a E. coli </td></tr><tr><td> EcoRI, BamHI, ve HindIII sınırlama enzimleri </td></tr><tr><td> T4 DNA ligaz </td></tr><tr><td> Üçüncü nesil lentivirüs ambalaj plazmidler VSV-G, pRSV-Rev ve pMDLg / pRRE </td></tr></tbody></table> Malzeme Listesi

kanser gen fonksiyon eğitim için dna vektör tabanlı rna girişim

DNA Vector-based RNA Interference to Study Gene Function in Cancer

RNA müdahalesi (RNAi) özellikle aşağılayıcı hedef mRNA tarafından gen ekspresyonunu inhibe. Gen suskunluğu 1 çift zincirli küçük parazit RNA (siRNA) keşfinden beri, RNAi gen fonksiyonu çalışmalarında güçlü bir araştırma aracı haline gelmiştir. Genetik delesyon ile karşılaştırıldığında, RNAi-aracılı gen suskunluğu gibi bu gerçekleştirildiği ile kolaylıkla ve en hücre serileri için uygunluğu gibi birçok avantajı, sahiptir. Çoklu çalışmalar kanser araştırma RNAi teknolojinin uygulamaları göstermiştir. Özellikle, U6 veya H1 promotör tarafından tahrik küçük firkete RNA (shRNA) üretmek için DNA vektörü tabanlı teknolojinin geliştirilmesi mümkün 2,3 susturulmasında uzun vadeli gen ve indüklenebilir yapmıştır. Böyle lentivirüs gibi genetiği viral vektörlerin, birlikte kullanımı stabil shRNA ifade için genomik DNA&#39;ya shRNA teslimat ve / veya entegrasyon yüksek verimlilik kolaylaştırır. Bir detaile tarifd prosedürü shRNA, lentivirüs üretimi, hücre enfeksiyonu, ve bir fare xenograft modeli kullanılarak fonksiyonel çalışmalar ifade vektörlerinin lentiviral inşaat dahil geni fonksiyonu, belirlemek için DNA vektörü bazlı RNAi teknolojisi kullanılarak. Çeşitli stratejiler shRNA yapıları oluşturmak bildirilmiştir. Protokol PCR büyütmesi ve bir 3-fragmanı ligasyon kullanıldığı doğrudan ve verimli bir şekilde üretmek için kullanılabilir burada açıklanan shRNA-içeren bir shRNA kodlama sekansı için herhangi bir ek nükleotid bitişik çıkmadan lentiviral yapıları. Bu stratejinin yarattığı shRNA ifade kasetleri restriksiyon enzimleri tarafından kesilebilir olduğundan, bunlar kolaylıkla farklı floresan veya antibiyotik işaretleri ile diğer vektörlere taşınmış olabilir. En çok ticari transfeksiyon reaktifler lentivirüs üretiminde kullanılabilir. Ancak, bu raporda, biz% 90 transfeksiyon verim üzerinde elde edebilirsiniz kalsiyum fosfat kullanarak ekonomik bir yöntem sağlamak293T hücreler. Bünye shRNA ifade vektörlerinin karşılaştırıldığında, indüklenebilir shRNA sistemi hücre çoğalması için gerekli bir gen aşağı vurma özellikle uygundur. Biz Yin Yang 1 (YY1), meme kanseri 4,5 potansiyel bir onkogeninin gen susturulması göstermek, bir Tet-On indüklenebilir shRNA sistemi ve tümör oluşumu üzerindeki etkileri. Lentivirüs kullanarak Araştırma İnceleme ve bir araştırmacının kurumu Biyogüvenlik Komitesi tarafından bir biyogüvenlik protokolü onayı gerektirir. Hayvan modelleri kullanılarak Araştırma İnceleme ve bir araştırmacının kurumu Hayvan Bakımı ve Kullanımı Komitesi (ACUC) tarafından bir hayvan protokolünün onaylanması gerekiyor.

RNA müdahalesi (RNAi) gen nakavt üzerinden pek çok avantajı sahip ve geniş gen işlevsel çalışmalarda bir araç olarak kullanılmıştır. DNA vektör tabanlı RNAi teknolojisi buluşu uzun vadeli ve olası indüklenebilir gen Knockdown yaptı, hem de gen susturulması fizibilite arttı<em&gt; In vivo</em&gt;.

Kanser gen Fonksiyon Eğitim için DNA vektör tabanlı RNA Girişim

RNA interferansı (RNAi), hedef mRNA'ları spesifik olarak yıkayarak gen ekspresyonunu inhibe eder. Çift zincirli küçük interferans RNA'nın keşfinden bu yana...

Bu prosedürün genel amacı, DNA vektör tabanlı RNA interferansı kullanımı yoluyla gen fonksiyonunu belirlemektir. Bu işlem, öncelikle spesifik genleri hedefleyen S-H-R-N-A konstrüktlarının tasarlanması ve üretilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, SH RNA ekspresyon kasetini taşıyan lentivirüs üretmektir.Ardından, hücreler lentivirüs ile enfekte edilerek stabil hücre hatları oluşturulur ve lentivirüsle enfekte edilmiş bu hücreler, ilgilenilen genin susturulmasının etkilerini belirlemek amacıyla çeşitli in vitro ve in vivo analizlerde kullanılır. Nihayetinde, kullanılan analizlere bağlı olarak sonuçlar; in vitro proliferasyon, migrasyon ve invazyon analizlerinin yanı sıra in vivo zenograft oluşum modelleri aracılığıyla, gen nakavtunun bir sonucu olarak hücrelerin tümörjenisitesindeki değişiklikleri gösterebilir. Prosedürü uygulamayı gösterecek kişiler Daniel Stowell ve ma Juan olacaktır; Daniel laboratuvarımda lisansüstü öğrencidir, Ma ise teknisyendir.Chang bir doktora sonrası araştırmacıdır. Bu yöntem, belirli bir genin kanser gelişimi ve ilerlemesinde rol oynayıp oynamadığı ve bu süreçlerin hangi yönleri için önemli olabileceği gibi kanser araştırmaları alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Tasarıma başlamak için, hedef gendeki 20 ila 23 nükleotidlik hedef diziyi içeren iki ters tamamlayıcı oligonükleotidi tanımlanan kriterlere göre tasarlayın ve sipariş edin.İki uçta eco R one ve Hindi three bölgeleri oluşturacaklar. Tavlanmış olduktan sonra, hedef diziye ters tamamlayıcı bir dizi içeren başka bir oligo, bir yukarı akış primerle birlikte H one veya U six promotörünün üç prime ucuna bağlanır.Her iki ucunda BAM H one ve Hindi three bölgeleri bulunan bir fragman oluşturmak için PCR kullanın. Bu sırada lentivirüs vektörünü ve PCR fragmanını sindirin. Ardından vektör, PCR fragmanı ve Anil oligo nükleotidleri arasında üçlü fragman ligasyon reaksiyonunu gerçekleştirin.1:10:10 molar oranında, sonuç vektörü, loop bölgesinde Hindi three dizisine sahip ilgili hRNA'yı üretecektir. Eğer indüklenebilir bir vektör kullanılırsa, hRNA üretimi Tet on sistemi için doksisiklin gibi bir indükleyici molekülün varlığına bağlı olacaktır. Şimdi, ligasyon ürünü ile yüksek verimli, kompetan E. coli DH5α hücrelerini transforme edin ve koloni bazlı PCR taraması kullanarak pozitif vektörleri belirleyin.Vektörü ve indüklenebilir promotör ligasyon bölgesini kapsayan bir ürünü amplifiye edin. Ticari bir kit kullanarak pozitif kolonilerden plazmid DNA'sı hazırlayın. Ardından, insertin varlığını BAM H1 ve ECO R1 sindirimi ve DNA agaroz elektroforezi ile doğrulayın.Ek olarak, promotörü ve S-H-R-N-A'yı içeren bölgeyi LIGA nükleotid P beş kullanarak dizileyin. Endotoksin içermeyen bir MIDI veya maxi prep kiti kullanarak, HRNA ekspresyon kasetini taşıyan lentivirüs DNA'sını hazırlayın. 260 nanometredeki ışık absorbsiyonunu ölçerek DNA konsantrasyonunu belirleyin ve 260'a 280 nanometre ışık absorbsiyon oranının 1,8 ile 2,0 arasında olduğunu kontrol ederek DNA'nın saflığından emin olun.Son olarak, S şeklinde kıvrıldığından emin olmak için lentivirüs plazmidini bir aero jel üzerinde çalıştırın. Transfeksyon öncesinde, bir pipetle çözelti B'den hava kabarcıkları çıkarırken, önce 0,9 mililitre çözelti A'yı 0,9 mililitre çözelti B'nin içine yavaşça damlatarak transfeksiyon hazırlığını yapın. Ardından, karışımı oda sıcaklığında 30 dakika boyunca inkübe edin. Sonrasında, karışımın 0,6 mililitresini HEK 2 93 T hücreleri içeren üç farklı 10 santimetrelik plaka üzerine yavaşça damlatın.Ardından hücreleri dört ila altı saat sonra inkübatöre geri koyun. Besiyerini yedi mililitre komple DMEM besiyeri ile değiştirin. 24 saat sonra beş mililitre daha besiyeri ekleyin ve bir 24 saat daha bekledikten sonra lentivirus içeren besiyerini toplayın.Hasat edilen medyumu oda sıcaklığında 10 dakika boyunca 1500 RPM ile santrifüj edin. Süpernatantı 0,45 mikrometrelik bir filtre kullanarak süzün. Lentivirüs içeren süzüntü medyumu ultra santrifüj ile santrifüj edin.Süpernatantı %5'lik çamaşır suyu içeren bir atık kabına boşaltın. Lentivirüs peletini yarım ila bir mililitre soğuk 1X PBS içinde yeniden süspande edin. Ardından lentivirüs solüsyonunu, -80 °C'de saklamak üzere 50 ila 100 mikrolitrelik alikotlara bölün.Son olarak, güvenilir bir teknik kullanarak lentivirüs titresi belirlenir. Genellikle, hücre enfeksiyonuna geçmeden önce 10 santimetrelik bir kültür kabı 50 ila 100 milyon enfeksiyöz birim üretir. Bu prosedür için bir kit veya R-T-P-C-R kullanarak lentiviral titrenin MOI değeri belirlenir.Dört'ten düşük bir MOI önerilir. Enfekte edilecek hücreleri, altı kuyucuklu bir plakada %30 ila %40 konfluense ulaşacak şekilde ekerek başlayın ve gece boyunca kültüre edin. Ertesi gün.Besiyerini, poly brain veya protamin içeren bir mililitre taze besiyeri ile değiştirin. Ardından, floresan veya bir antibiyotik belirteci içeren bir ila 2 milyon iu lentivirüs ekleyin.Karıştırmak için plakayı 10 saniye boyunca yavaşça sallayın ve altı saat boyunca inkübe edin. Altı saatin sonunda, besiyerini normal, tam besiyeri ile değiştirin ve hücreleri iki gün boyunca çoğaltın. Kullanılan lentivirüse bakılmaksızın, iki gün sonraki besiyerleri antibiyotik veya indükleyici içermemelidir.Lentivirüs bir antibiyotik markörü içeriyorsa uygun antibiyotiği ekleyin. Benzer şekilde, lentivirüs indüklenebilir ise kültürlerin yarısına indükleyici ekleyin. Hücreleri antibiyotikler ve indükleyicilerle iki veya üç gün daha kültüre aldıktan sonra, ksenogreft tripsinleme öncesinde hedef genin knockdown durumunu test etmek için western blot analizi gerçekleştirin.Hücreleri büyük hücre kültürü kaplarından alın ve %50 matrigel içeren orijinal besiyerinde yeniden süspanse edin. Kanser hücresi süspansiyonunun, %50 matrigelin ve şırınganın buz üzerinde tutulması esastır. Aksi takdirde, matrigelin katılaşma riski vardır ve enfeksiyon buna göre düzenlenmelidir.Cerrahi bölgeyi %70 ethanol ile iyice temizleyerek hazırlayın ve anesteziyi, mükemmel havalandırma ile indüksiyon haznesine bağlı bir izofluran tutucu filtre eşliğinde gerçekleştirin. Hücre inokülasyonundan üç ila beş dakika önce, timik nude fareyi %1,5 oksijen ile karıştırılmış %2 izofluran kullanarak anestezi altına alın. Ardından, bir burun konisi aracılığıyla oksijen ile karıştırılmış %2 izofluran kullanarak anesteziyi sürdürün.Fareyi 30 °C'ye ayarlanmış bir ısıtma pedinin üzerine yerleştirin. Hücreleri, deri altı enjeksiyonlar için 25,5 gauge veya ortotopik enjeksiyonlar için 28 ila 30 gauge iğneli şırıngalara doldurun. Anestezinin indüksiyonundan beş dakika sonra, bir veya iki bölgeye 200 µL'lik boluslar halinde 1 ila 10 milyon hücre enjekte edin.Hücre sayısı, kanser hücrelerinin malignitesine veya agresifliğine bağlıdır. Konstitütif olarak aktif vektörler için, hedef gen S-H-R-N-A veya vektörler üzerinde scrambled S-H-R-N-A eksprese eden hücrelerin enjekte edildiği iki grup fare kullanın. Aynı iki grubu kullanın ve her birini, sularına indükleyici eklenen veya eklenmeyen alt gruplara ayırın.Suları içeren kapları haftada iki kez değiştirin. Tümör hacmini haftalık veya iki haftada bir kumpas ile izleyin. Tümör hacminin kurumsal veya ACUC limitini aşmadığından emin olun; yaygın ülserasyon, nekroz, belirgin enfeksiyon, kontrol edilemeyen kanama veya son evre hastalık gösteren hayvanları ötanazi ile uyutun. Biyolüminesans bir marker aracılığıyla tümör büyümesini ve metastazı izlemek için çalışma alanını dezenfekte edin ve fareleri gazlı anestezi ile bir görüntüleme odasında anesteziye alın.Öncelikle, iki ila beş dakikalık bir pozlama yapın, sinyal yoğunluğunu kontrol edin ve ardından uygun şekilde ayarlayın. Tümör boyutu 1000 kübik milimetreyi veya kurumun belirlediği boyut sınırını aşarsa, sakrifikasyon sırasında hayvanı ötanize edin, tümör boyutunu belgeleyin ve ileri analizler için tümörleri saklayın. Bu protokol, atimik nude farelere implante edilen lusiferaz ekspres eden insan meme adenokarsinoma hücrelerinin ksenogreft tümör oluşumu üzerinde why Y one nakavtının etkilerini incelemek için kullanılmıştır.İnsan YY1'in S-H-R-N-A hedef dizisi ve bilinen herhangi bir insan transkripti ile önemli bir benzerliği olmayan randomize bir kontrol S-H-R-N-A test edildi. Sonuç olarak, iki lentiviral vektörle oluşturuldu ve iki lentivirüs üretmek için kullanıldı. Her ikisi de iki farklı hücre popülasyonunu enfekte etmek için kullanıldı ve poliklonal hücre popülasyonları elde edildi.Mycin seçimi sonrası yapılan Western blot analizi, enfekte edilmiş bu hücre hatlarında DS ile indüklenen YY one nakavt işlemini doğrulamıştır. Ardından, indüklenebilir YY one S-H-R-N-A ve kontrol S-H-R-N-A ile enfekte edilmiş klon üçün poliklonal hücre popülasyonu kullanılmıştır.YY one eksikliğinin invazyon üzerindeki etkilerini test etmek için LENTIVİRÜSLER kullanılmıştır. YY one eksikliğinin hücrelerin invaziv yeteneğini azalttığını gözlemledik. Western blot analizi, indu YY one S-H-R-N-A ile hücrelerde YY one susturulmasının tetiklendiğini, kontrol içeren hücrelerde ise durumun farklı olduğunu doğrulamıştır.S-H-R-N-A bu etkiyi göstermemiştir. Bu hücreler daha sonra, kontrol gruplarıyla karşılaştırmalı bir zenograft fare modeli çalışmasında kullanılmıştır; dos içeren su ile beslenen S-H-R-N-A implante edilmiş farelerde, biyolüminesans ile görüntüleme yapıldığında ve beklenildiği üzere tümör ağırlıkları ölçüldüğünde, tümör oluşumunun önemli ölçüde azaldığı görülmüştür. Bu zenograft tümörlerde YY bir susturulması, western blot ile kolayca doğrulanmıştır.Çalışmalar: Lentivirüsle çalışmanın, lentiviral vektörlerle yapılan araştırmalar için NIHB güvenlik değerlendirmelerine göre son derece tehlikeli olabileceğini unutmayın; tüm laboratuvar ortamları için geliştirilmiş B güvenlik seviyesi iki muhafaza prosedürleri gereklidir.

dna-vector-based-rna-interference-to-study-gene-function-in-cancer

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Viral enfeksiyon katılan Roman konakçı faktörleri fonksiyonu RNAi tarama hücre tabanlı genom zarara tespit edilebilir.

RNAi Tarama için ilgilendim Ana Faktörler Vaccinia Virüs Enfeksiyonu Drosophila Hücre

RNA girişim gen fonksiyonu analiz etmek için çok etkili olduğu...

DsRNA Enjeksiyon RNAi Girişim içine Drosophila Embriyolar

Burada, laboratuarda bir ara-germ böceği, Dermestes maculatus (D. maculatus) yetiştirme için protokolleri sunuyoruz. Biz de bu türün gen fonksiyonunu incelemek için embriyonik fenotipleri analiz etmek için embriyonik ve ebeveyn RNAi için protokolleri ve yöntemleri paylaşır.

Yetiştirme ve Gizle böcek RNA aracılı gen demonte çift sarmallı, Dermestes maculatus

Biz bir roman somatik gen aktarım sistem RIP-etiket kullanmak göstermek için bir iletişim kuralı mevcut; RIP-tva metastaz genlerinde fonksiyonu çalışmaya fare modeli. Kuş Retrovirüsler gen transferi önceden Malign, invaziv olmayan lezyonlar yetişkin farelerde pankreas β hücrelerinin içine sağlamak için intracardiacally teslim edilir.

Kimlik ve metastatik faktörler gen transferi ile karakterizasyonu roman RIP-etiketinin içine; RIP-tva fare modeli

Burada bir iletişim kuralı açıklamak yüksek üretilen iş RNAi tarama oncolytic virüs tedavisi geliştirmek için manipüle edilebilir ana hedefleri ortaya çıkarmak için istihdam için özellikle rhabodvirus ve vaksinia virüs tedavisi, ama -ebilmek var olmak diğer oncolytic için kolayca adapte virüs platformlar veya virüs çoğaltma genellikle modüle ana bilgisayar genler keşfetmek için.

Tedavi Oncolytic virusu modüle ana faktörleri tanımlamak için genom çapında RNAi tarama

Burada tanımlanan biyolojik sinerjik miRNA'ların modüllerini ve bunların kısa transgenlere dönüştürülmesiiçin bir protokoldür, bu da gen terapisi uygulamaları için eşzamanlı aşırı ekspresyon sağlar.

Glioblastoma'da İşlevsel İlişkili MiRNA'ların Ve Bunların Mühendisliğinin Gen Tedavisi İçin Yapay Kümelere Dönüştürülmesi

Bu protokol, mikroRNA küme ağ analizi için düzenli aralıklarla aralıklı kısa palindromik tekrarlar (CRISPR) gen düzenleme iş akışını tanımlayan yüksek verimli bir kümelenmiş ve tek bir deneyde 35 kb kadar büyük benzersiz miRNA kümesi üyesi delesyon kombinasyonları taşıyan genetiği değiştirilmiş hücre hatlarından oluşan bir panelin hızlı bir şekilde üretilmesini sağlar.

MicroRNA Küme Ağ Analizi için CRISPR Gen Düzenleme Aracı

Birçok yukarı regüle edilmiş gen, tümör hücresi göçünü ve invazyonunu uyararak kötü prognoza yol açar. Hangi genlerin tümör hücresi göçünü ve invazyonunu düzenlediğini belirlemek çok önemlidir. Bu protokol, bir genin artan ekspresyonunun tümör hücrelerinin göçü ve invazyonu üzerindeki etkilerini gerçek zamanlı olarak araştırmak için bir yöntem sunar.

Sentetik mRNA Transfeksiyonunu Takiben Tümör Hücresi Migrasyonu ve İnvazyonunun Gerçek Zamanlı Kantitatif Ölçümü

Bu çalışma, melanom hücrelerinde uzun kodlamayan RNA'ları hedefleyen ikili bir CRISPRi sistemi sunmaktadır. Potansiyel terapötik stratejiler için kansere özgü lncRNA etkileşimlerini belirleyerek kombinatoryal gen yıkımı ve sentetik ölümcül taramayı mümkün kılar.

Kanser Hücrelerinde Kodlamayan RNA'lar Arasındaki Sentetik Ölümcül Etkileşimleri Hedeflemek için Çift CRISPR-Girişim Stratejisi

Biz köpek hindlimb kas gücü ve tekrarlanan eksantrik kasılmalar kas yanıtı ölçmek için bir minimal invaziv ve ağrısız bir yöntem açıklanmaktadır.

Vivo Köpek Kas Fonksiyon Testi

Öğrenin DNA vektör tabanlı RNA girişim yöntemiyle kanser gen fonksiyonlarını in vivo ortamda uzun süreli susturma tekniklerini. Bu yöntem lentivirüs iletimi ve stabil hücre hatları oluşturarak tümör oluşumu çalışmalarına katkı sağlar.

Kanser gen Fonksiyon Eğitim için DNA vektör tabanlı RNA Girişim

Daha fazla video keşfet