Name: Dıştan Uygulanan Doğru Akım Elektrik Alanında Nöral Prekürsör Hücre Göç Kinetik Analizi için galvanotaksis Assay (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-10-13T14:00:00.000+00:00
Duration: 11 min
Description: Öğrenin, doğru akım elektrik alanında yetişkin fare beyininden izole edilen nöral prekürsör hücrelerinin galvanotaksis göçünü zaman atlamalı görüntüleme ile analiz etme yöntemini. Bu teknik nöro onarım mekanizmalarını anlamak için değerlidir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Doğa Bilimleri ve Kanada&#39;nın Mühendislik Araştırma Kurumu (hibe # 249669 ve # 482986) ve Kalp ve Kanada İnme Vakfı (hibe # 485508) tarafından finanse edilmektedir. Yazarlar deney protokolleri geliştirmek onların yardım için Youssef El-Hayek ve Dr Qi Wan ederim.

Hayvan taşıma içeren tüm prosedürler kurumsal düzenlemeler (protokol no. 20009387) uyarınca Toronto Hayvan Bakım Komitesince Üniversitesi tarafından onaylanmıştır. Aşağıdaki yöntemler uygulanabilir durumlarda bir laminer akış kaputu, steril alet ve teknikler kullanılarak yapılmalıdır. Aşağıdaki protokol metninde, ifade &quot;EFH-SFM&quot; epidermal büyüme faktörü, temel fibroblast büyüme faktörü ve heparin ile takviye serum serbest medya anlamına gelir. Bu mitojenler kendi ayrışmamış devlet 4 YZK&#39;lar korumak için farklılaşmamış NPCs galvanotaksis araştırılırken EFH-SFM kullanılır. Olgun hücre tipleri farklılaşması için indüklenebilir NPCs galvanotaksis araştırırken, &quot;FBS-SFM&quot;% 1 fetal sığır serumu serum serbest medya anlamına gelir. FBS olgun nöral fenotipleri 5 içine NPCs farklılaşma teşvik etmektedir. 1. Sinir Öncüleri izolasyonu ve Kültür (Değil) Videoda gösterilen <ol><li> Servikal dislokasyon yoluyla isofluorane ve özveri ile bir CD1 fare (6-8 haftalık) Anesteziyoloji. </li><li> % 70 etanol içinde baş söndürün ve keskin disseksiyon makas ile hayvan başını kesmek. </li><li> Cerrahi forseps ile kafa tutarken, kafatası maruz dorsal yüzeyi üzerinde cilt kaldırmak. </li><li> Bir neşter ve hiçbir kullanma. 11 bıçak, mediyolateral eksen boyunca ön sinüs de kafatası puan, ve aynı zamanda rostro yönde dikiş boyunca sagital. </li><li> Uzakta olmayan baş parietal kemikler Peel. 7 kavisli bir forseps, delmek için beyin dokusu umursamadı alıyor. </li><li> Beyincik altından başlayarak ve olfaktor doğru ilerleyen beyin altında ince bir spatula yerleştirin. Forseps ile yerde kafatası tutarken, yavaşça kafatası beyin çekin ve hemen buz yapay beyin omurilik sıvısı (aşağıda tarifleri bakınız) yerleştirin. </li><li> Bir diseksiyon mikroskobu altında, steril kullanarakDiseksiyon makas ve forseps orta hat boyunca yarım beyin kesti. Medial (kesim) yüzey yukarı bakacak şekilde her hemisferin döndürün. </li><li> Bir hemisfer seçin ve medial yüzeyi yukarı bakacak şekilde, korpus kallozum (KK posterior bölgesi) splenium bulun. </li><li> Korteks yüzeyinden dorsoventral ekseni boyunca korpus kallozum spleniumda bir kesi olun. </li><li> Lateral ventrikül medial ve lateral duvarları açığa koku ampul doğru kazılı korteks Peel. </li><li> Dorsal yüzeyi yukarı bakacak şekilde yarımkürede döndürün ve NPC&#39;ler 6 ikamet periventriküler bölge içerir maruz medial ve lateral duvarlar, kesip toplamak için kavisli microscissors kullanın. </li><li> Tekrar diğer yarımkürede için 1,8-1,11 adımları. </li><li> Bir 15 cc tüp içinde tripsin solüsyonu (aşağıda tarif bakınız) 7 ml içine izole edilmiş doku pipet, ve 37 ° C de bir rocker tüp yerleştirmek25 dakika inkübatör. </li><li> 5 dakika boyunca 1,500 rpm&#39;de santrifüje tüp, süpernatan aspire, ve (aşağıda tarif bakınız) tripsin inhibitörü çözelti 2 ml doku tekrar süspansiyon. </li><li> Yavaşça hava kabarcıkları önlemek için dikkatli bir küçük kuyu Pasteur pipeti 30-50 kez doku çiğnemek. </li><li> 5 dakika boyunca 1,500 rpm&#39;de santrifüje tüp, süpernatan aspire ve pelet 3-5 kez triturating ile SFM 1-2 ml (aşağıda tarif bakınız) içinde tekrar süspansiyon haline getirin. </li><li> 3 dakika 1.500 rpm&#39;de tüp santrifüjleyin, SFM + EFH arasında bölgesindeki süpernatant ve tekrar süspansiyon 1 ml aspire. </li><li> SFM + EFH içinde başına 10 ul hücre yoğunluğunda bir T25 kültürü şişesi içinde bir haemocytometer ve plaka hücreler ile hücre yoğunluğu, canlı sayın. </li><li> Kültür NPC oluşan serbest yüzen birincil neurospheres verim örselenmemiş 7 gün büyümeye izin verin. </li></ol> 2. Galvanotaksis Odası Hazırlama <ol><li> Hayır 3 kare cam yerleştirin. 1 kapak camları (22 x 22 x 0.17 mm) iGecede 6N hidroklorik asit na şişe. </li><li> Ertesi gün, kare hiçbir gelen cam 6 dikdörtgen şeritler (22 x 5 x 0.17 mm) kesmek için bir elmas uçlu cam kesici kullanın. 1 kapak fişleri. </li><li> Bir laminer akış kaputun içine asitle yıkanmış kare fişleri ve dikdörtgen fişleri aktarın. Doku kültürü dereceli otoklava su ile, sonra% 70 etanol ile ilk dikdörtgen ve kare şeritler yıkayın ve silin bir Kim üzerinde kurumasına izin (ilave sterilite, cam hava kuru izin verilebilir). </li><li> Kare cam slaytlar bir yüzeyi çevre vakum gres sürün ve 60 mm plastik Petri kaplarının tabanına onları mühür. </li><li> Dikdörtgen cam şeritleri bir yüzeyi uzun ekseni boyunca vakum uygula yağ, ve bir merkezi oluk oluşturmak için kare cam slaytların zıt kenarları (birbirlerine paralel olduğu gibi) ile geri kapatın. </li><li> Laminer akış kaputu en az 15 dakika süreyle odaları UV sterilize. </li><li> Poli-L-lysi pipetle 250-300 ul2 saat oda sıcaklığında inkübe odaları ve merkezi oluk üzerine ne. </li><li> İnkübasyon süresinin sonunda önce yaklaşık 15 dakika, (aşağıda tarif bakınız) Matrigel solüsyon hazırlanır. </li><li> , Poli-L-lizin aspire otoklavlanmış 1 mL su, ve merkezi oluklar üzerine Matrigel solüsyonu bir pipet 250-300 ul ile merkezi çukurların yıkayın. </li><li> 1 saat boyunca 37 ° C&#39;de inkübe odaları. </li><li> Matrigel çözüm aspire ve yavaşça SFM 1-2 ml merkezi çukurların yıkayın. </li><li> Pipet 100 merkez çukurların üzerine EFH-SFM veya FBS-SFM ul ve sayma mikroskop sahneye galvanotaksis odaları aktarın. </li><li> Pipet 3-4 60 mm Petri kabı içine neurosphere içeren kültür ml ve sayma mikroskop aşamasına Petri kabı aktarın. </li><li> 5x görüntüleme amacı, her galvanotaksis merkezi çukur üzerine 5-8 bütün neurospheres (dört bir defada) aktarmak için bir P10 pipet kullanınOnları dissociating ve dikkatle Matrigel substrat aksatmadan merkez çukur etrafında neurospheres yayılmış olmadan oda. </li><li> Merkez oluklar üzerine EFH-SFM veya FBS-SFM ek 150-200 ul ekleyin. </li><li> 37 ° C,% 5 CO2, 17-20 saat süreyle% 100 nemlendirilmiş kuluçka makinesi içine galvanotaksis odaları aktarın (eğer farklılaşmamış analiz NPC) Şekil 1 &#39;de gösterildiği gibi neurospheres Matrigel substrata yapışır ve tek hücre halinde ayrıştırmak için izin vermek için . Farklılaşmış NPC analiz ise, kuluçka süresi, hücrelerin farklılaşması izin vermek için 69-72 saat için genişletilmelidir. </li></ol> 3. Hücre Time-Lapse Görüntüleme Canlı <ol><li> Canlı hücre görüntüleme sistemi 37, denge sağlaması için izin ° C,% 5 lik önce geçen zaman kaydının başlatılması için 30 dakika arasında, en az CO2. </li><li> Bir ucundan 1 mm çaplı gümüş tel, bobin ikisi 12 cm parçalar koparıp ve Clorox b koyunleach 20 dakika için Ag / AgCI elektrotlar oluşturur. </li><li> Bir sayma mikroskop sahneye galvanotaksis odaları aktarın ve aşağıdaki kriterlere göre canlı hücre görüntüleme göçü analiz için kullanılacak olan kamara seçin: i) neurospheres hücreleri sahip olmalıdır) tek hücreler ve ii içine neredeyse tamamen ayrılmış olmalıdır az-hayır süreçleri yuvarlak morfolojileri hücre gövdeleri uzanan. </li><li> Ayrı bir kare hayır birlikte, bir laminer akış kaputun içine seçilen galvanotaksis odasına aktarın. 1 cam kapak kayma ve vakum gres. </li><li> Kapak otoklavlanmış su ile, sonra% 70 etanol ile ilk kayma ve Kapak kayma iki paralel kenarlarında vakum gres bir şerit uygulayın yıkayın. </li><li> , Odasının merkezi çukur gelen kültür ortamı aspire sonra hızlı bir şekilde, iki paralel dikdörtgen cam şerit üzerinde kalan yağ şeritler, etkili bir çatı yaratılması da bu tür oda üzerine kapak slipi (yağ-yüzü aşağı bakacak şekilde) yerleştirmekodasına. </li><li> Kapiller eylem yoluyla merkezi çukur içine taze EFH-SFM veya FBS-SFM Pipet 100 ul. </li><li> Şekil 2&#39;de gösterildiği gibi, merkezi oluk her bir ucunda, kültür besiyeri havuzları için sınırlarını oluşturmak için vakum yağ kullanır. </li><li> PVC boru, iki 15 cm parçalar koparıp ve dikkatle hiçbir kabarcıklar tüpler oluşmaya sağlanması, boru içine agaroz enjekte çözüm için bir 18 gauge iğne ile 10 cc şırınga kullanmak ve jel 5 dakika boyunca katılaşmaya izin. </li><li> Agaroz jel tüpler, Ag / AgCI elektrodları, ve kültür ortamı rezervuar olarak kullanılmak üzere boş 60 mm Petri kapları bir çift ile birlikte, bir canlı hücre görüntüleme sistemi için galvanotaksis oda aktarın ve Ag / AgCI elektrot içerir. Galvanotaksis odası 37 içinde dinlenmek için izin ° C, 20-30 dakika süreyle% 5 CO 2 ortamında. </li><li> Bu süre zarfında, sondaj delikleri ile 2 boş Petri kaplarının kapakları ve galvanotaksis odasının en Petri kabı kapağı hazırlamakbunların Şekil 3 &#39;de gösterildiği gibi bir Dremel ya da benzer araç ile içine. </li><li> Pipet her boş Petri kabına merkez çukur iki yüzüne EFH-SFM veya FBS-SFM 1-1.5 ml ve SFM 7-8 ml. Her yemeğin içine galvanotaksis odasının merkezi çukur ve yerde bir Ag / AgCl elektrot her tarafında il birini Petri. Şekil 4&#39;te gösterildiği gibi agaroz jel köprüleri ile elektriksel süreklilik kurmak için galvanotaksis haznesi ve Petri kutularına arasındaki boşluğu. </li><li> Elektrik akımı ölçmek için seri bir ampermetre ile, harici bir güç kaynağına Ag / AgCl elektrot bağlayın ve güç kaynağını açın. Doğrudan merkezi çukur boyunca elektrik alanın gücünü ölçmek için bir voltmetre kullanın ve istenen elektrik alan şiddeti (Bu laboratuarda yapılan deneyler ile 250 mV / mm dcEF gücü kullanmak elde edilene kadar güç kaynağının çıkış ayarlayabilirsiniz 1 ve 1.5 mA arasında elektrik akımı). </li><li> Inisiyatifite time-lapse canlı hücre görüntüleme sistemi üzerinde modül ve deney süresi istenilen miktarda için çalışmasına izin. Tahlil tamamlanmasından sonra, standart bir immun analiz için% 4 paraformaldehit içinde hücreler düzeltmek. </li></ol>

<ol><li>Borgens, R. B., Shi, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Uncoupling+histogenesis+from+morphogenesis+in+the+vertebrate+embryo+by+collapse+of+the+transneural+tube+potential%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Dyn%22%5BJournal%5D)">Uncoupling histogenesis from morphogenesis in the vertebrate embryo by collapse of the transneural tube potential.</a> Dev. Dyn. 203, 456-467 (1995).</li>
<li>Song, B., Zhao, M., Forrester, J. V., McCaig, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrical+cues+regulate+the+orientation+and+frequency+of+cell+division+and+the+rate+of+wound+healing+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Electrical cues regulate the orientation and frequency of cell division and the rate of wound healing in vivo.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 99, 13577-13582 (2002).</li>
<li>Song, B., Zhao, M., Forrester, J., McCaig, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nerve+regeneration+and+wound+healing+are+stimulated+and+directed+by+an+endogenous+electrical+field+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Cell+Science%22%5BJournal%5D)">Nerve regeneration and wound healing are stimulated and directed by an endogenous electrical field in vivo.</a> Journal of Cell Science. 117, 4681-4690 (2004).</li>
<li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Generation+of+neurons+and+astrocytes+from+isolated+cells+of+the+adult+mammalian+central+nervous+system%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Generation of neurons and astrocytes from isolated cells of the adult mammalian central nervous system.</a> Science. 255, 1707-1710 (1992).</li>
<li>Reynolds, B. A., Weiss, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clonal+and+population+analyses+demonstrate+that+an+EGF-responsive+mammalian+embryonic+CNS+precursor+is+a+stem+cell%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Clonal and population analyses demonstrate that an EGF-responsive mammalian embryonic CNS precursor is a stem cell.</a> Dev. Biol. 175, 1-13 (1996).</li>
<li>Chiasson, B. J., Tropepe, V., Morshead, C. M., vander Kooy, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+mammalian+forebrain+ependymal+and+subependymal+cells+demonstrate+proliferative+potential%2C+but+only+subependymal+cells+have+neural+stem+cell+characteristics%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Adult mammalian forebrain ependymal and subependymal cells demonstrate proliferative potential, but only subependymal cells have neural stem cell characteristics.</a> J. Neurosci. 19, 4462-4471 (1999).</li>
<li>Erickson, C. A., Nuccitelli, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Embryonic+fibroblast+motility+and+orientation+can+be+influenced+by+physiological+electric+fields%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Embryonic fibroblast motility and orientation can be influenced by physiological electric fields.</a> J. Cell Biol. 98, 296-307 (1984).</li>
<li>Zhao, M., Agius-Fernandez, A., Forrester, J. V., McCaig, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Orientation+and+directed+migration+of+cultured+corneal+epithelial+cells+in+small+electric+fields+are+serum+dependent%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Orientation and directed migration of cultured corneal epithelial cells in small electric fields are serum dependent.</a> J. Cell Sci. 109, 1405-1414 (1996).</li>
<li>Li, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct-Current+Electrical+Field+Guides+Neuronal+Stem%2FProgenitor+Cell+Migration%5BTitle%5D)+AND+%22Stem+Cells%22%5BJournal%5D)">Direct-Current Electrical Field Guides Neuronal Stem/Progenitor Cell Migration.</a> Stem Cells. 26, 2193-2200 (2008).</li>
<li>Song, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Application+of+direct+current+electric+fields+to+cells+and+tissues+in+vitro+and+modulation+of+wound+electric+field+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Application of direct current electric fields to cells and tissues in vitro and modulation of wound electric field in vivo.</a> Nat. Protoc. 2, 1479-1489 (2007).</li>
<li>Huang, C. -W., Cheng, J. -Y., Yen, M. -H., Young, T. -H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electrotaxis+of+lung+cancer+cells+in+a+multiple-electric-field+chip%5BTitle%5D)+AND+%22Biosen+Bioelectron%22%5BJournal%5D)">Electrotaxis of lung cancer cells in a multiple-electric-field chip.</a> Biosen Bioelectron. 24, 3510-3516 (2009).</li>
<li>SATO, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Input-output+relationship+in+galvanotactic+response+of+Dictyostelium+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Biosystems%22%5BJournal%5D)">Input-output relationship in galvanotactic response of Dictyostelium cells.</a> Biosystems. 88, 261-272 (2007).</li>
<li>Meng, X. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((PI3K+mediated+electrotaxis+of+embryonic+and+adult+neural+progenitor+cells+in+the+presence+of+growth+factors%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Neurol%22%5BJournal%5D)">PI3K mediated electrotaxis of embryonic and adult neural progenitor cells in the presence of growth factors.</a> Exp. Neurol. 227, 210-217 (2011).</li>
<li>Zhao, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+lipids%2C+EGF+receptors%2C+and+intracellular+signals+colocalize+and+are+polarized+in+epithelial+cells+moving+directionally+in+a+physiological+electric+field%5BTitle%5D)+AND+%22The+FASEB+Journal%22%5BJournal%5D)">Membrane lipids, EGF receptors, and intracellular signals colocalize and are polarized in epithelial cells moving directionally in a physiological electric field.</a> The FASEB Journal. , (2002).</li>
<li>Fang, K., Ionides, E., Oster, G., Nuccitelli, R., Isseroff, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Epidermal+growth+factor+receptor+relocalization+and+kinase+activity+are+necessary+for+directional+migration+of+keratinocytes+in+DC+electric+fields%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Epidermal growth factor receptor relocalization and kinase activity are necessary for directional migration of keratinocytes in DC electric fields.</a> J. Cell Sci. 112, 1967-1976 (1999).</li>
<li>McCaig, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Controlling+Cell+Behavior+Electrically%3A+Current+Views+and+Future+Potential%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Controlling Cell Behavior Electrically: Current Views and Future Potential.</a> Physiol. Rev. 85, 943-978 (2005).</li>
<li>Morshead, C. M., Benveniste, P., Iscove, N. N., vander Kooy, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hematopoietic+competence+is+a+rare+property+of+neural+stem+cells+that+may+depend+on+genetic+and+epigenetic+alterations%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Med%22%5BJournal%5D)">Hematopoietic competence is a rare property of neural stem cells that may depend on genetic and epigenetic alterations.</a> Nat. Med. 8, 268-273 (2002).</li>
<li>Babona-Pilipos, R., Droujinine, I. A., Popovic, M. R., Morshead, C. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adult+Subependymal+Neural+Precursors%2C+but+Not+Differentiated+Cells%2C+Undergo+Rapid+Cathodal+Migration+in+the+Presence+of+Direct+Current+Electric+Fields%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+ONE%22%5BJournal%5D)">Adult Subependymal Neural Precursors, but Not Differentiated Cells, Undergo Rapid Cathodal Migration in the Presence of Direct Current Electric Fields.</a> PLoS ONE. 6, e23808(2011).</li>
<li>Deuschl, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+Randomized+Trial+of+Deep-Brain+Stimulation+for+Parkinson%27s+Disease%5BTitle%5D)+AND+%22N.+Engl.+J.+Med%22%5BJournal%5D)">A Randomized Trial of Deep-Brain Stimulation for Parkinson's Disease.</a> N. Engl. J. Med. 355, 896-908 (2006).</li>
<li>Stone, S. S. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stimulation+of+Entorhinal+Cortex+Promotes+Adult+Neurogenesis+and+Facilitates+Spatial+Memory%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Stimulation of Entorhinal Cortex Promotes Adult Neurogenesis and Facilitates Spatial Memory.</a> J. Neurosci. 31, 13469-13484 (2011).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Bu protokol, önceki çalışmalarda 7-9 köklü yöntemler adapte edilmiştir. Galvanotactic odaları hücre ekimi kısıtlanmasının veya merkez çukur 10,11 mikroimalat için CO2 lazer ablasyonu kullanmak için de ayrı bir cam yapım dahil olmak üzere farklı teknikler kullanarak çeşitli inşa edilebilir. Bazı teknikler diğerlerinden daha zahmetli ve masraflı olabilir. Biz genellikle çoğu hücre biyoloji laboratuvarlarında bulunan malzemeler kullanılarak bir NPC galvanotaksis odası oluşturmak için basit ...

<table border="1"><tbody><tr><td height="44"> Öğenin ismi </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td><td> Yorumlar </td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Sinir Prekürsör Hücre İzolasyonu </td></tr><tr><td> 2M NaCl </td><td> Sigma </td><td> S5886 </td><td> 11.688 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü </td></tr><tr><td> 1M KCl </td><td> Sigma </td><td> P5405 </td><td> 7.456 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü </td></tr><tr><td> 1M MgCl2 </td><td> Sigma </td><td> M2393 </td><td> 20.33 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü </td></tr><tr><td> 155 mM NaHCO 3 </td><td> Sigma </td><td> S5761 </td><td> 1.302 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü </td></tr><tr><td> 0.5M Glikoz </td><td> Sigma </td><td> G6152 </td><td> 9.01 g 100 içinde çözülmüşml dH 2 O </td></tr><tr><td> 108 mM CaCl2 </td><td> Sigma </td><td> C7902 </td><td> 1.59 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü </td></tr><tr><td> Penisilin-streptomisin </td><td> Gibco </td><td> 15070 </td><td></td></tr><tr><td> Sığır pankreasın tripsin </td><td> Sigma </td><td> T1005 </td><td></td></tr><tr><td> Koyun hyaluronidaz testisler </td><td> Sigma </td><td> H6254 </td><td></td></tr><tr><td> Kynurenic asit </td><td> Sigma </td><td> K3375 </td><td></td></tr><tr><td> Ovomucoid tripsin inhibitörü </td><td> Worthington </td><td> LS003086 </td><td></td></tr><tr><td> DMEM </td><td> Invitrogen </td><td> 12100046 </td><td></td></tr><tr><td> F12 </td><td> Invitrogen </td><td> 21700075 </td><td></td></tr><tr><td> % 30 Glikoz </td><td> Sigma </td><td> G6152 </td><td></td></tr><tr><td> % 7.5 NaHCO3 </td><td> Sigma </td><td> S5761 </td><td></td></tr><tr><td> 1M Hepes </td><td> Sigma </td><td> H3375 </td><td> 23.83 g 100 ml dH 2 O içerisinde çözündürüldü </td></tr><tr><td> L-glutamin </td><td> Gibco </td><td> 25030 </td><td></td></tr><tr><td> EGF </td><td> Invitrogen </td><td> PMG8041 </td><td> 20 ul birimler halinde hormon karışımı ve kısım 1 ml sulandırın. </td></tr><tr><td> FGF </td><td> Invitrogen </td><td> PHG0226 </td><td> 20 ul birimler halinde hormon karışımı ve kısım 0.5 ml sulandırın. </td></tr><tr><td> Heparin </td><td> Sigma </td><td> H3149 </td><td></td></tr><tr><td> Apo-transferrin </td><td> R &amp; D Systems </td><td> 3188-AT </td><td> 0.1 g 4 ml dH 2 0 içine çözünmüş </td></tr><tr><td> Putressin </td><td> Sigma </td><td> P7505 </td><td> Apo-transferrin içine 9,61 mg böylece çözülürgeçirdikleri evrim </td></tr><tr><td> Ensülin </td><td> Sigma </td><td> I5500 </td><td> 0.1N HCl 0.5 ml içine 25 mg çözülür ve dH 2 0 3.5 ml ekleyin </td></tr><tr><td> Selenyum </td><td> Sigma </td><td> S9133 </td><td></td></tr><tr><td> Progesteron </td><td> Sigma </td><td> P6149 </td><td></td></tr><tr><td> Standart Diseksiyon araçları </td><td> Güzel Bilim Araçları </td><td></td><td></td></tr><tr><td> Diseksiyon mikroskobu </td><td> Zeiss </td><td> Stemi 2000 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Galvanotaksis Odası Hazırlama </td></tr><tr><td> Kare cam kapak slaytlar </td><td> VWR </td><td> 16004 </td><td></td></tr><tr><td> 6N hidroklorik asit </td><td> VWR </td><td> BDH3204-1 </td><td></td></tr><tr><td> Yüksek vakum gres </td><td> Dow Corning </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 60 mm Petri kapları </td><td> Fisher Scientific </td><td> 0875713A </td><td></td></tr><tr><td> Poli-L-lisin </td><td> Sigma </td><td> P4707 </td><td></td></tr><tr><td> Matrigel </td><td> BD Biosciences </td><td> 354234 </td><td> 150 ul birimler halinde çözülme ve kısım </td></tr><tr><td> FBS </td><td> Invitrogen </td><td> 10082139 </td><td> NPC farklılaşma inducing Yalnızca kullanınız aksi SFM kullanımı + EFH kültür ortamı yukarıda da belirtildiği gibi </td></tr><tr><td> Mikroskop Sayma </td><td> Olimpos </td><td> CKX41 </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Hücre Time-Lapse Görüntüleme Canlı </td></tr><tr><td> Gümüş tel </td><td> Alfa Aesar </td><td> 11434 </td><td></td></tr><tr><td> Ultrapure Agaroz </td><td> Invitrogen </td><td> 15510-027 </td><td></td></tr><tr><td> Isı Inactivated FBS </td><td> Sigma </td><td> 16140071 </td><td></td></tr><tr><td> PVC boru </td><td> Fisher Scientific </td><td> 80000006 </td><td> 3/32 &quot;ID x 5/32&quot; OD </td></tr><tr><td> Beyazlatıcı </td><td> Clorox </td><td></td><td></td></tr><tr><td> 10 cc şırınga </td><td> BD </td><td> 309604 </td><td></td></tr><tr><td> 18 gauge iğne </td><td> BD </td><td> 305195 </td><td></td></tr><tr><td> Dremel matkap </td><td> Dremel </td><td> Model 750 </td><td></td></tr><tr><td> Ters mikroskop nemlendirilmiş, İnkübe odası ile donatılmıştır </td><td> Zeiss </td><td> Axiovert-200M </td><td></td></tr><tr><td></td><td></td><td></td><td> Tarifler <table border="1"><tbody><tr><td> Madde </td><td> Hacim </td></tr><tr><td> 2M NaCl </td><td> 6.2 ml </td></tr><tr><td>1M KCl </td><td> 0.5 ml </td></tr><tr><td> 1M MgCl2 </td><td> 0.32 mi </td></tr><tr><td> 155mm NaHCO 3 </td><td> 16.9 ml </td></tr><tr><td> 1M Glikoz </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> 108 mM CaCl2 </td><td> 0,09256 mL </td></tr><tr><td> Penisilin-streptomisin </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> Otoklavlanmış su </td><td> 74 mL </td></tr></tbody></table> Yapay beyin omurilik sıvısı <table border="1"><tbody><tr><td> Madde </td><td> Hacim veya Yığın </td></tr><tr><td> Yapay beyin omurilik sıvısı </td><td> 30 ml </td></tr><tr><td> Sığır pankreasın tripsin </td><td> 40 mg </td></tr><tr><td> Koyun hyaluronidaz testisler </td><td> 22.8 mg </td></tr><tr><td> Kynurenic asit </td><td> 5 mg </td></tr></tbody></table> &lt;strong&gt; Tripsin Çözüm <table border="1"><tbody><tr><td> Madde </td><td> Hacim veya Yığın </td></tr><tr><td> SFM </td><td> 15 ml </td></tr><tr><td> Ovomucoid tripsin inhibitörü </td><td> 10 mg </td></tr></tbody></table> Tripsin İnhibitör Çözüm <table border="1"><tbody><tr><td> Madde </td><td> Hacim </td></tr><tr><td> Otoklavlanmış su </td><td> 37 ml </td></tr><tr><td> 10X DMEM/F12 </td><td> 10 mL </td></tr><tr><td> % 30 Glikoz </td><td> 2 ml </td></tr><tr><td> % 7.5 NaHCO3 </td><td> 1.5 ml&#39;lik </td></tr><tr><td> 1M Hepes </td><td> 0.5 ml </td></tr><tr><td> Transferrin, putressin çözümü </td><td> 4 mL </td></tr><tr><td> 25 mg ensülin çözelti </td><td> 4 mL </td></tr><tr><td> Selenyum </td><td> 100 &amp; Mu; L </td></tr><tr><td> Progesteron </td><td> 100 ul </td></tr></tbody></table> Hormon Mix (-20 ° C&#39;de 100 ml toplam mağaza) <table border="1"><tbody><tr><td> Madde </td><td> Hacim </td></tr><tr><td> Otoklavlanmış su </td><td> 37.5 ml </td></tr><tr><td> 10X DMEM/F12 (3:1) </td><td> 5 ml </td></tr><tr><td> % 30 Glikoz </td><td> 1 mL </td></tr><tr><td> % 7.5 NaHCO3 </td><td> 0.75 ml </td></tr><tr><td> 1M Hepes </td><td> 0.25 ml&#39;lik </td></tr><tr><td> Hormon mix </td><td> 5 ml </td></tr><tr><td> L-glutamin </td><td> 0.5 ml </td></tr><tr><td> Penisilin-streptomisin </td><td> 0.5 ml </td></tr></tbody></table> Serum Ücretsiz Media EFH-SFM: EGF 10 ul, FGF 10 ul ve Heparin FBS-SFM 3.66 ul ekleyin: 0.5 ml FBS ekleyin <table border = &quot;1&quot;&gt; <tbody><tr><td> Madde </td><td> Hacim </td></tr><tr><td> Matrigel </td><td> 150 ul </td></tr><tr><td> SFM </td><td> 3.6 ml </td></tr></tbody></table> Matrigel Çözüm Matrigel kısım bir buz kutusuna yerleştirilir ve SFM ile karıştırılmadan önce viskoz bir sıvı oluşturmak için 4-5 saat içinde yavaş yavaş çözülme izin verilmelidir. Bu alt tabaka Matrigel düzgün bir tabaka oluşumunu temin edecektir. Yavaş yavaş çözülmüş değil, elde edilen substrat muhtemelen hücre göçü engelleyen, Matrigel kümeleri ihtiva edecektir. <table border="1"><tbody><tr><td> Madde </td><td> Hacim veya Yığın </td></tr><tr><td> Ultrapure Agaroz </td><td> 10 ml GKD 2 0 içinde 300 mg </td></tr><tr><td> SFM Isı İnaktive FBS </td><td> 8 ml 2 ml </td></tr></tbody></table> MatrigelÇözelti bir 15 cc şahin tüp içinde 2 ml ısı ile aktifliği giderilmiş FBS SFM 8 ml karıştırılır. Mix 10 ml GKD bir Erlenmeyer şişesinde 2 0 ile agaroz ve 10 sn aralıklarla 30 saniye mikrodalga ısı, her 10 sn aradan sonra mikrodalga çözüm kaldırmak ve iyice karışması sağlanır. Son 10 sn mikrodalga döneminin ardından, 57 ° C su banyosunda SFM / FBS çözüm ve mağaza ile agaroz çözüm karıştırmak. </td></tr></tbody></table>

dıştan uygulanan doğru akım elektrik alanında nöral prekürsör hücre göç kinetik analizi için galvanotaksis assay

A Galvanotaxis Assay for Analysis of Neural Precursor Cell Migration Kinetics in an Externally Applied Direct Current Electric Field

Nöral kök ve erişkin memeli beynindeki progenitor hücreler (toplu olarak adlandırılır sinir öncü hücreleri) (NPC) keşfedilmesi neuroregenerative stratejilerin geliştirilmesi için bu hücrelerin multipotent ve proliferatif özellikler kullanılarak yönelik araştırmalar bir gövde yol açmıştır. Bu tür stratejilerin başarısı için kritik bir adım eksojen Transplantasyon sonrası lezyon yerinde doğru veya MSS periventriküler bölgede bulunan endojen öncüleri yanıtı arttırmak için NPCs harekete geçirilmesidir. Buna göre, teşvik rehberlik ve NPC göç geliştirmek mekanizmaları anlamak için önemlidir. Galvanotaksis olarak bilinen bir olgu - Bizim iş tanıtmak için doğru akım elektrik alanların kullanımı (dcEFs) ve doğrudan NPC göç üzerinde duruluyor. Endojen fizyolojik elektrik alanları normal gelişimi ve yara onarımı sırasında hücre göçü için kritik ipuçları olarak işlev görür. Farmakolojik bozulmasıAxolotl embriyolar trans-nöral tüp potansiyeli ciddi gelişimsel malformasyonlar 1 neden olur. Yara iyileştirme bağlamında, yaralı, kornea tamir oranı doğrudan bu dcEF 2-3 farmakolojik olarak artırma ya da bozulma ile gösterildiği gibi, yaralanma sonrası ortaya çıkan epitel yara potansiyel büyüklüğü ile ilişkilidir. Biz bir şekilde dıştan uygulanan dcEF maruz kaldığında yetişkin subepandimal YZK&#39;lar in vitro hızlı ve yönetmenliğini cathodal göç tabi olduğunu göstermiştir. Bu protokolü biz yüksek çözünürlüklü, bir tek hücre düzeyinde yönettiği hücre gövdesi translokasyon (göç) uzun vadeli gözlem için basit ve etkili bir galvanotaksis tahlil oluşturmak için laboratuvar tekniklerini açıklar. Bu tahlil, transgenik veya nakavt fareleri kısa müdahale RNA, ya da özel bir reseptör agonistleri / antagonistleri kullanımı yoluyla hücre hareketliliği içine dcEF transdüksiyon düzenleyen mekanizma araştırılması için uygun olacaktır.

Kinematik analizi bir 250 mV / mm dcEF varlığında, farklılaşmamış NPC katot karşı yönlendirilmiş ve çok hızlı galvanotaksis (Şekil 5A, Film 1) gösterdiğini ortaya koymaktadır. Bir dcEF yokluğunda, hücrelerin rasgele hareketi (Şekil 5B, Film 2) görülmektedir. Bu alan gücü az, farklılaşmamış NPCs&gt;% 98&#39;i yansıması olduğu için tüm 6-8 saat boyunca göç ve ölü hücreleri göç etmezler çünkü bu bir dcEF yokluğunda veya varlığında bu dönemde canlı kalır düşündürmektedir. <p class="jove...

Bu protokolü biz galvanotaksis sırasında nöral prekürsör hücre translokasyon edilen erişkin beyninin time-lapse görüntüleme sağlamak için bir doğru akım elektrik alanın uygulanmasına izin özel odaları oluşturmak nasıl gösterilmektedir.

Dıştan Uygulanan Doğru Akım Elektrik Alanında Nöral Prekürsör Hücre Göç Kinetik Analizi için galvanotaksis Assay

The discovery of neural stem and progenitor  cells (collectively termed neural precursor cells) (NPCs) in the adult  mammalian brain has led to a body of ...

Bu prosedürün genel amacı, bir doğru akım elektrik alanı varlığında yetişkin kaynaklı nöral öncül hücrelerin göçünü görselleştirmektir. Bu işlem, öncelikle yetişkin fareden subependimal nöral öncül hücrelerin izole edilmesi ve kültüre edilmesiyle gerçekleştirilir. Bir sonraki adım, Galvan Axxis odacıklarının hazırlanması ve nöral öncül hücrelerin bu odacıklara aktarılmasıdır.Son adım, Galvan Axxis haznesi boyunca bir doğru akım elektrik alanı uygulamak ve nöro öncül hücrelerin göçünü gözlemlemek için zaman ayarlı görüntüleme yapmaktır. Nihayetinde, zaman ayarlı görüntüleme mikroskopisi, nöro öncül hücrelerin farklılaşmış ve farklılaşmamış durumlarındaki galvan taktiktik özelliklerini yakalar. Bu yöntem nöro öncül hücre galvanotaksisi hakkında bilgi sağlayabilse de, nöro onarımı artırmak amacıyla nöro öncül hücrelerin lezyon bölgelerine çekildiği bir fare inme modeli gibi diğer sistemlere de uygulanabilir.Prosedürü, laboratuvarımdan lisansüstü öğrencisi Rob Pilley Post uygulamalı olarak gösterecektir. Bu prosedüre başlandığında, serbest yüzen primer nörosferlerin hasada hazır olması için NPC'ler yedi gündür kültürde olmalıdır. Gerektiğinde, üç adet kare cam yerleştirerek üç Galvan Axxis odasını hazırlamaya başlayın.Birinci adımda, lamelleri bir şişe 6 N hidroklorik asit içerisinde gece boyunca bekletin. Ertesi gün sabah erken saatlerde, Matrigel'in buz üzerinde yavaşça çözünmesini sağlayın. Dört saat sonra, Matrigel odağı oluşturmak için kullanıma hazır hale gelecektir.İlk olarak, yeni bir kareden altı adet dikdörtgen cam şerit kesmek için elmas uçlu bir cam kesici kullanın. Bir numara, lameller. Asitle yıkanmış kare lamelleri ve dikdörtgen lamelleri laminar akışlı kabine aktarın.Cam şeritleri önce %70 etanol ile, ardından doku kültürü kalitesinde otoklavlanmış su ile yıkayın. Havada kurumaya bırakın veya tüy bırakmayan kağıt üzerinde kurulayın. Ardından, her bir kare cam lamın bir yüzeyinin çevresine vakum gresi uygulayın ve bunları 60 milimetrelik plastiğin tabanına mühürleyin.Petri kapları. Dikdörtgen cam şeritlerin bir tarafına vakum gresi sürün ve bunları karenin karşıt kenarlarına sabitleyin. Her kabın merkezinde orta kanallı kareler oluşturmak için lamlar kullanın.Bu modifiye edilmiş cam kareleri veya odacıkları bir çeker ocak içerisinde en az 15 dakika boyunca UV ile sterilize edin. Ardından, odacıkların orta haznesine 250 ila 300 microliters polyol lysine pipetleyin. Daha sonra odacıkları oda sıcaklığında iki saat boyunca inkübe edin, inkübasyonun bitiminden yaklaşık 15 dakika önce işlemi tamamlayın.İki saat sonra Matrigel çözeltisini hazırlayın, polilizin'i aspire edin ve orta kanalları bir mililitre otoklavlanmış su ile yıkayın. Ardından, orta kanallara 250 ila 300 mikrolitre Matrigel çözeltisi pipetleyin ve odacıkları 37 °C'de bir saat inkübe edin. İnkübasyonun ardından Matrigel çözeltisini aspire edin.Ardından merkezi olukları bir ila iki mililitre SFM ile nazikçe yıkayın. Şimdi, kültüre edilmiş hücrelere hazırlık amacıyla merkezi olukların üzerine 100 µL E-F-H-S-F-M veya F-B-S-S-F-M pipetleyin. Sonra, nörosfer içeren kültürden dört ila beş mililitreyi yeni bir 60 mm Petri kabına pipetleyin.Ardından Petri kabını, sayım mikroskobunun sahnesine 5x görüntüleme objektifinin altına yerleştirin. Her bir bölmenin merkez haznesine beş ila sekiz adet bütün nörosfer transfer etmek için bir P 10 pipet kullanın. En fazla dört.Nörosferler tek seferde aktarılabilir, ancak merkez oluklarındaki nörosferlerle birleşmelerine izin vermeyin. Matrigel alt tabakasına zarar vermeden dikkatlice çevreye yayın. Ardından merkez olukların üzerine ek olarak 150 µL E-F-H-S-F-M veya F-B-S-S-F-M ekleyin.Şimdi hücreleri nemlendirilmiş bir inkübatörde kültüre edin. 17 ila 20 saatlik kültürleme sonrası, 69 ila 72 saat sonra farklılaşmamış NPC'ler elde edilecektir. Kültürleme sonucunda farklılaşmış NPC'ler hazır olacaktır.Sayım mikroskobu altında, canlı hücre görüntüleme migrasyon analizi için en uygun hücrelerin bulunduğu hazneyi seçin. Hücreler yuvarlak olmalı, nörosferlerinden neredeyse tamamen ayrılmış olmalı ve henüz uzantılar oluşturmamış veya bir kaput içinde uzantılar oluşturmaya yeni başlamış olmalıdır. Bir hazne kapağı hazırlayın.Kare bir cam lamı önce %70 etanolle, ardından otoklavlanmış suyla yıkayın ve iki paralel kenara bir şerit vakum gresi uygulayın. Şimdi hazneyi kapatın. Önce merkezi oluktan kültür ortamını aspire edin ve ardından lamı, bir çatı gibi dikdörtgen duvarların üzerine hızla yerleştirerek mühürleyin.Ardından, kılcal hareket kullanarak merkezi oluğa 100 microliters taze besiyeri yükleyin. Şimdi, kültür besiyeri havuzları için vakum gresi ile sınırlar oluşturun. Canlı hücre görüntüleme sistemindeki merkezi oluğun her iki ucunda; hazırlanmış agaroz jel tüpleri, gümüş, gümüş klorür elektrotlar ve kullanılmak üzere iki adet 60 millimeter petri kabı bulundurun.Kültür ortamı rezervuarları olarak, odacıkların 37 °C %5 karbondioksit ortamında 20 ila 30 dakika boyunca dinlenmesine izin verin. Bu süre zarfında, iki boş Petri kabının kapaklarını ve Galvan Axxis odacıkları Petri kabının kapağını bir Dremel veya pipet aletiyle delerek hazırlayın; merkezi oluğun her iki yanına 1,5 ila 2 mL ortam ekleyin ve her bir boş Petri kabına 7 ila 8 mL SFM ekleyin. Her bir Petri kabını odacığın merkezi oluğunun bir yanına yerleştirin ve her bir kaba bir elektrot yerleştirin.Elektriksel sürekliliği sağlamak için hazne ile Petri kapları arasındaki boşluğu doldurun. Agros jel köprülerini kullanarak elektrotları, elektrik akımını ölçmek için seri bağlı bir M metre içeren harici bir güç kaynağına bağlayın ve güç kaynağını açın. Merkezi oluğun hemen karşısındaki elektrik alan şiddetini ölçmek için bir vol metre kullanın.Güç kaynağının çıkışını gerektiği gibi ayarlayın. Şimdi görüntüleme sistemindeki zaman atlamalı (time-lapse) modülü başlatın. Axio vision yazılımında çok boyutlu kazanımı (multidimensional acquisition) seçin ve "see" butonuna tıklayın.Kanallar için altıncı kanalı seçin ve zaman atlamalı çekim için T'ye tıklayın. Zaman atlamalı çekim aralığı ayarlarını bir dakika olarak belirleyin, süre ayarlarını "önce" (before) ve "sonra" (after) zaman noktası alanlarında sekiz saat olarak ayarlayın, ardından önceki ve sonraki zaman noktasını seçin. Şimdi başlat'a tıklayın ve deneyin istenilen süre boyunca çalışmasına izin verin; analiz tamamlandıktan sonra IHC analizine geçin.Kinematik analiz, 250 milivolt/milimetre DCEF varlığında, farklılaşmamış NPC'lerin bu alan şiddetinde katoda doğru oldukça yönlü ve hızlı bir galvanaksis sergilediğini ortaya koymuştur; farklılaşmamış NPC'lerin %98'inden fazlası, görüntülendikleri altı ila sekiz saatlik sürenin tamamı boyunca göç etmiştir. A-D-C-E-F yokluğunda ise hücrelerin rastgele hareket ettiği gözlemlenmiştir.Ölü hücreler göç etmediği için, bu durum onların bu süre boyunca canlı kaldıklarını göstermektedir. A-D-C-E-F'nin yokluğunda veya varlığında, diferansiye hücrelerin A-D-C-E-F alt kümelerinin hem varlığında hem de yokluğunda, diferansiye fenotipler ihmal edilebilir düzeyde göç göstermiştir. DCEF yönüne dik olarak hizalanma eğiliminde olan uzatılmış çıkımlar görülmüş, ancak belirgin bir hücre gövdesi translokasyonu gözlemlenmemiştir.İmmünboyama, NPC'lerin altı saatlik DC EF maruziyetinden sonra nöral öncül belirteci nestin'in pozitif ekspresyonunu koruduğunu doğrulamıştır. Olgun fenotiplere farklılaşmaya teşvik edilen NPC'lerin dahil olduğu analizlerde, hücrelerin çoğunluğu altı saatlik DCEF maruziyetinden sonra olgun astrosit belirteci glial fibriler asidik protein veya GFAP eksprese etmektedir. Bu prosedürün ardından, genetik nakavt modelleri kullanılarak doğru akım elektrik alanının hücre hareketliliğine dönüştürülmesinde yer alan hücresel mekanizmalara dair bilgiler edinilebilir.Veya efendim, örneğin.

a-galvanotaxis-assay-for-analysis-neural-precursor-cell-migration

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Sinirbilim

Biz yeni bir agaroz jel tabanlı mikroakışkan cihaz kullanarak nöral kök hücreler (NSC'lerde) motilite epidermal büyüme faktörü reseptörleri (EGFR) aşırı ifade artırdığını göstermektedir. Bu teknoloji, insan sinir kök hücreleri gibi hücre kaynakları kıt olan diğer memeli hücre sistemleri, kolayca adapte olabilir ve zaman etrafında dönüş kritik öneme sahiptir.

Nöral Kök Hücre Motilite değerlendirilmesi Agaroz Jel tabanlı mikroakışkan Cihaz Kullanımı

Eksplante hücreleri (gövde nöral krest hücreleri) göçü analiz etmek bir yaklaşım tarif edilmiştir. Bu yöntem, pahalı yumuşak, ve bu gibi ana gövde tepe nöral hücre kültürü içinde hücre-hücre etkileşimleri türetilmiş olanlar gibi, göç polarite hem chemokinesis ve diğer etkilerden kemotaksisi ayrım yapabilmektedir.

Bir Modifiye Zigmond Odası Testi kullanılarak Trunk Sinir Crest Hücre Göç Analizi

Bu protokol hücreleri izleyebilirsiniz özel tasarımlı electrotactic odalarında 2D ve 3D ortamlar oluşturmak için kullanılan yöntemler,...

2D ve 3D Ortamlarda Sinir Progenitör Hücreleri Elektrik Alanı kontrollü Yönetmen Göç

Araştırmacılar, solucanların algıladığı ve tepki verdiği bir elektrik alanı uygulayarak C. elegans'ta isteğe bağlı hareketi tetikleyebilir. Bu videoda elektrotaktik davranış tanıtılır ve mikroakışkan bir cihazda yapılan örnek bir protokol gösterilir.

Elektrotaksi Deneyi: C. elegans'ta Hareketi Gözlemlemek İçin Bir Yöntem

Içinde isteğe bağlı hareket ikna etmek için bir yarı-otomatik mikro-elektro-akışkan...

On-talep Kantitatif Analiz için mikroakışkan tabanlı Electrotaxis<em&gt; Caenorhabditis elegans</em&gt; &#39;Locomotion

Özel yapım bir galvanotoksis odasında göç eden, ölümsüzleştirilmiş prostat hücrelerine fizyolojik bir elektrik alanı uygulamak için bir yöntem sunuyoruz. Bu yöntemi kullanarak, 2 sıra tümörjenik olmayan prostat hücresinin sahada farklı derecelerde göç yönlülüğü gösterdiğini gösteriyoruz.

Prostat Hücrelerinin Yönlü Göç Eğitim için özel tasarlanmış galvanotaksis Chambers kullanılması

Elektrotaksi çalışmasında kullanılmak üzere birçok mikroakışkan cihaz geliştirilmiştir. Yine de, bu çiplerin hiçbiri, hücreler üzerindeki eşzamanlı kimyasal ve elektrik alan (EF) etkilerinin verimli bir şekilde incelenmesine izin vermez. Elektrotaksi araştırmalarında kullanılmak üzere daha iyi kontrol edilen bir arada bulunan EF ve kimyasal stimülasyon sunan polimetilmetakrilat bazlı bir cihaz geliştirdik.

Bir Çok Kanallı Çift elektrik alan mikroakışkan Chip kullanarak Akciğer Kanseri Hücreleri Electrotaxis Çalışmaları

Mekanik kuvvetler hücre göçlerini kontrol etmek için önemlidir. Bu protokol, hücre yapısı ve göç değişiklikleri ortaya çıkarmak için yerel bir sertlik gradyan ile hücreleri uyarmak için bir cam mikropipette ve bir mikromanipülatör kullanılarak deforme edilebilir elastik hidrojellerin kullanımını göstermektedir.

Hücresel Hareketin Mekanik Kontrolünün Ve İlgili Sinyal Olaylarının Değerlendirilmesi için Tek Hücreli Durotaksis Tsay

Biz üç basit in vitro tahliller-uzun mesafe göç tahlil, co-kültür göç tahlil ve kemo-attraction tahlil-topluca insan kök hücre perisiyitli endotel hücreleri ve bunların işlevlerini değerlendirmek GABAerjik internöronlar ile etkileşim.

Göç, Kemo-Attraction, ve Co-Kültür Tahliller İnsan Kök Hücre Kaynaklı Endotel Hücreleri ve GABAerjik Nöronlar için

Bu çalışmada, sadece mikroakışkan bir sistemde doğrudan akım (DC) darbe stimülasyonu ile indüklenen nöral kök ve progenitör hücrelerin (NPC' ler) farklılaşması için bir protokol sunuyoruz.

Mikroakışkan Cihazlarda Elektrik Alan Kaynaklı SinirSel Öncül Farklılaşma

Öğrenin, doğru akım elektrik alanında yetişkin fare beyininden izole edilen nöral prekürsör hücrelerinin galvanotaksis göçünü zaman atlamalı görüntüleme ile analiz etme yöntemini. Bu teknik nöro onarım mekanizmalarını anlamak için değerlidir.

Dıştan Uygulanan Doğru Akım Elektrik Alanında Nöral Prekürsör Hücre Göç Kinetik Analizi için galvanotaksis Assay

Daha fazla video keşfet