Name: Bir Tam Kan fenotipleme Testi Kullanarak Çok Merkezli Klinik Araştırmalar için Binbaşı Periferik Kan Lökosit Populasyonlarının Numaralama (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-09-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 14 min 45 s
Description: Öğrenin, çok merkezli klinik araştırmalar için akış sitometri kullanarak taze tam kan örneklerinde ana periferik kan lökosit popülasyonlarını sayma yöntemini. Bu standart prosedür, bağışıklık yanıtlarının zaman içinde izlenmesini sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu yöntem, el yazması ve video gelişiminde onların yardım için Jessica Jones, Erica Clark, Constance Ducar, Donna Smith, Roy Lewis, Lily Apedaile, Joanne Wiesner, Devin Adams, Corey McBain ve Stephen Voght ederim. Bu çalışma Bill ve Melinda Gates Vakfı CAVD hibe 38645 (MJM) ve Sağlık hibe Ulusal Sağlık Enstitüleri UM1 AI068618 ve U01 AI069481 (MJM) tarafından desteklenmiştir. EA-N. NIH Grant T32 AI007140 tarafından desteklenmektedir. Biz onların cömert donanım bağışı için James B. Pendleton Charitable Trust ederim.

Not: ışıktan fluorofor konjuge antikorlar korumak için, ışığı bir biyo-güvenlik kabini tüm adımları gerçekleştirin. 1. Antikor Boyama Paneli Hazırlama <ol><li> Antikor boyama pano Tablo 1 &#39;de bulunabilir. Antikor konsantrasyonu bütün kan ile titrasyon ile belirlenen ve aynı akış sitometrisi ekipman ve lekeli fenotipleme numuneleri elde etmek için kullanılacak olan prosedürler kullanılarak verilmelidir. </li><li> Uygun boyama titreleri belirlendikten sonra, bir kilit kapaklı tüp içinde tek bir karışımın içine tüm antikorlar birleştirir. 100 ul toplam hacim getirmek için akış yıkama tamponu (% 2 ısı inaktive edilmiş fetal bovin serumu ile Dulbecco PBS) ekleyin. Lekeli olan numune sayısı için karışım Scale. Bu karışım, sekiz hafta boyunca 4 ° C&#39;de muhafaza edilebilir. </li></ol> 2. Lekelenme <ol><li> Toplanan kan reklam da başka amaçlar için kullanılması isteniyorsadaha fazla zaman duyarlı prosedürleri kalan kan gerçekleştirilirken bu testte hiç Buna ilave, kenara bir kısım ayarlayın. Alikot önemli hücre kaybı olmadan Damara sonra 4 saat için oda sıcaklığında kadar saklanabilir. </li><li> Sağlam bir boncuk topak Trucount tüp ve etiket örnek boyanmış olan belirlemek için tüpün alt tabaka olduğundan emin olun. HVTN klinik çalışmalarda, Laboratuvar Bilgi Yönetim Sistemi (Sınır Bilim ve Teknoloji Araştırma Vakfı; Amherst, NY) lekeli örnekleri etiketlemek ve izlemek için kullanılır. </li><li> Lot numaraları ve tüm reaktiflerin son kullanma tarihlerini kaydedin. Tüplerin çanta üreticisi tarafından sağlanan Trucount tüp boncuk saymak numarasını kaydedin; çanta üzerinde çok sayıda tüp üzerinde parti numarası aynı olduğundan emin olun. </li><li> Doğru sadece metal tespit yukarıda Trucount tüpe kan 100 ul Pipeti için pipetleme tersine kullanın. Tüp tarafı aşağı bulaşması kan kaçının. </li><li&gt; Trucount tüpüne düzenli (ileri) pipetleme tekniği, karışık antikor boyama paneli pipet 100 ul (Bakınız Tablo 1) kullanarak. Yaklaşık 15 sn karıştırmak için düşük hızda tüp ve vorteks kapak takın. Görsel olarak boncuk topak tamamen eriyene sağlamak için boru kontrol edin. </li><li> Karanlıkta oda sıcaklığında (15-30 ° C) 15 dakika boyunca Trucount tüp inkübe edin. </li><li> Gerekirse, dih 2 O. kullanarak 1X 10 bir kısım × FACS Lysing çözeltinin 900 ul 1 × tüp FACS Lysing çözüm ekleyin. </li><li> Karıştırmak için yaklaşık 15 saniye düşük hızda iyice tüp ve vorteks kapak takın. Laboratuar film ile boru ve conta konumunu kilitleme sıkıca kapağını aşağı doğru itin. </li><li> -65 De tüp Mağaza ° C -95 ° C Numunenin merkez analiz laboratuvarına sevk veya evde analiz için hazır olana kadar. Numuneler en az dört hafta için bu aşamada stabildir. Derhal nakliye veya assaying varsagörmesini sağlayın, bu adım atlanabilir. </li></ol> 3. Nakliye Not: Aşağıdaki talimatlar özellikle Uluslararası Hava ve Taşımacılığı Birliği (IATA) yönetmeliklerine göre nakliye kategori B muaf biyolojik maddeler için tasarlanmış Saf-T-Pak, Inc bir yalıtımlı nakliye sistemi kullanmaktadır. Boyama oluştu aynı yerde örnekleri analiz, bölüm 4&#39;e gidin. <ol><li> Örnekler hemen boyandıktan sonra sevk edilebilir veya bir kez onlar -65 tek dondurulur ° C -95 ° C Lekeli örnek kutusunda folyo ve yerde tamamen her tüp sarın. Emici malzeme ile sızdırmaz bir poli-çantada lekeli numune kutusu yerleştirin. </li><li> Çanta mümkün olduğunca az hava gibi bir Tyvek çantası ve mühür içine sızdırmaz poli-çanta ve içerikleri yerleştirin. </li><li> Iç kahverengi kutu içindeki numune paketi (ikincil ambalaj içine numune) yerleştirin. </li><li> Iç kahverengi b yerleştirinStrafor göğüs içindeki öküz, değişen önlemek için girinti içine güvence. </li><li> Kuru buz (yaklaşık 8 kg) ile strafor göğüs doldurun ve göğüs üzerinde, kapağı iyice yerleştirin. </li><li> Güvenli bant nakliye kutusunu ve gemi Biyolojik Madde gibi, düzgün Kuru Buz (UN1845) işaretleri ile Kategori B (UN3373); IATA PI-650 yönergeleri izleyin. </li><li> Aldıktan sonra, numuneler -65 saklanır ° C -95 ° C de analiz kadar. </li></ol> 4. Çözülme ve Akış Sitometri Analizi <ol><li> Akış sitometresinde toplama önce karanlıkta oda sıcaklığında çözülmesini dondurucu lekeli örnek çıkarın. Birden fazla numune üzerinde veri toplama ise, tüp 1 saatten daha uzun her biri için oda sıcaklığında oturma değildir, böylece çözülme şaşırtıcı tüm borular için işlem standartlaştırmak. </li><li> Numuneler gibi BD LSR uygun filtreler ile donatılmış dört lazer akış sitometresinin kullanarak elde edilmelidirII. Veri toplama 4 için standart sitometresinin kalibrasyon ve floresans kompanzasyon yöntemleri kullanın. </li></ol> Not: toplama 5 sırasında forward scatter ve yan dağılım eşikleri ayarlamak etmeyin. Trucount boncuk boncuk bir alt grup analizi esnasında hesaba değil neden bu parametreler için mümkün olan en düşük eşik ayarı altına düşebilir. Bir eşik belirlemek için cihaz tarafından Gerekiyorsa, mümkün olan en düşük Am Camgöbeği kanallı eşik ayarlayın. Paneli ile boyandı CD45 + lökositleri Camgöbeği olumlu Am edilecek ve Trucount boncuklar da Am Camgöbeği kanalda floresan Çünkü, bu uygun tahsil edilecek tüm ilgili veriler için izin vermelidir. <ol start="3"><li> Akış sitometresinde yüklemeden önce 5 saniye vorteksleyin numune tüpü. Trucount boncuk birçok kanal son derece floresan. PE Cy5 ve APC (iki Colo için son derece çift pozitif nüfus bularak Kapısı toplama sırasında boncuklarEn kolay hücrelerden ayırt boncuklar rs) araçları bağlı olarak değişebilir. En az 20.000 boncuk edinilen kadar durdurma kapısı olarak boncuk kapı seçin ve kayıt verileri. </li><li> Böyle FlowJo (Treestar; Ashland, OR) gibi uygun bir yazılım kullanarak verileri analiz edin. Şekil 1 bir temsilci kontrol kan beraberlik farklı lökosit popülasyonlarının analizi için kullanılan yolluk planını göstermektedir. </li></ol> 5. Trucount Hesaplamalar <ol><li> Her Trucount tüp floresan boncuk liyofilize pelet içerir. Tüp ile sıvı ekleme ve vorteks sonra boncuklar eşit olarak numune içinde dağılmış hale gelmelidir. Pelet boncuk sayısı lot sayısına göre biraz değişir ve tüpleri için saklama çantası bulunabilir. </li><li> Kapı Trucount boncuklar ve hücre popülasyonu her bir nüfus için olay sayımları belirlemek için Şekil 1 &#39;de gösterildiği gibi. Olayların sayısının karşılaştırılması iN tüp içinde orijinal olarak boncuk toplam sayısı ile boncuk kapı daha sonra her bir nüfus için mutlak konsantrasyonu (yani, hücre / ul) belirlemek için kullanılan örnek toplanan oranı belirlemek için izin verir. Hücre yoğunluğu (# hücre / ul kan) = [/ # nüfus etkinlik (# boncuk etkinlik / # pelet içinde toplam boncuk)] / 100 ul: Aşağıdaki denklem bu amaç için kullanılabilir. </li></ol> 6. Temsilcisi Sonuçlar <img src="/files/ftp_upload/4302/4302fig1.jpg" alt="Şekil 1" fo:content-width="5.5in" fo:src="/files/ftp_upload/4302/4302fig1highres.jpg" /> Şekil 1. Yolluk düzeni sağlıklı gönüllüden temsilcisi verileri gösteren önemli lökosit popülasyonlarının analizi için kullanılmıştır. A) Trucount boncuk (i) Geçitli ve hücreler dışlanmıştır. Granülositler (ii) tarif edilmektedir ve lympohcytes ve monositler 3 popluations ayrılır: CD14negatif lenfositler (iii) tüm CD14 negatif hücrelerde, (iv) ve non-lenfositler (v). B) CD14 negatif lenfositler CD4 + T hücreleri (vi), CD8 + T hücreleri (vii), B hücreleri (viii), CD56 parlak NK hücreleri, (ix), CD56 loş NK hücreleri, (X), ve CD56 negatif NK hücreleri ayırmak için kapı vardır (xi). C) Her CD14 negatif hücrelerde miyeloid (xii) ve plazmasitoid (xiii) dendritik hücreleri ayırmak için kapı vardır. D) Sigara lympocytes klasik olmayan (xiv), orta (xv) ve klasik (xvi) monositler ayırt kapı vardır. <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/4302/4302fig1large.jpg" target="_blank">büyük bir rakam görmek için buraya tıklayın</a> . Şekil 1 (örn., NKT hücreleri veya nötrofiller) gösterilmeyen Daha spesifik hücre alt aynı zamanda mevcut paneli kullanılarak ayırt edilebilir, ve gating düzeni genişletilmiş veya belirli çalışma ihtiyaçlarını karşılamak üzere modifiye edilebilir. Gösterilen bazı yolluk adımları bu yöntem özeldir. Özellikle dikkat, içerme kapısı vedışlama kapısı Trucount boncuk etrafında çizilmiş ve birbirinin üstüne yerleştirilir, sayım için kapı boncuk, diğeri hücresel analizi (Şekil 1A) gelen boncuklar dışlamak için vardır. Onlar CD45 ekspresyonu ve yan dağılım (Şekil 1A) genellikle gereklidir kullanarak ileri saçılım ve yana saçılım, yolluk bu hücreler periferik kan mononükleer hücrelerinde olduğu gibi Ayrıca, çünkü lenfositler, monositler ve granülositler gibi kolayca tam kanda ayırt edilmezler. CD45 ve yan dağılım kullanılarak lenfositler ve monositler ayrılmış olamazdı kirleticiler granülositler (daire içinde) yüksek CD16 ekspresyonu (Şekil 1C ve Şekil 1D) tarafından bazı komplolara ayırt edilebilir. Kontamine granülosit sayısı genelde azdır ve onlar monosit ve NK hücre yolluk ile karışmaz.

<ol><li>Taylor, M. J., London, N. J., Thirdborough, S. M., Lake, S. P., James, R. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+cryobiology+of+rat+and+human+dendritic+cells%3A+preservation+and+destruction+of+membrane+integrity+by+freezing%5BTitle%5D)+AND+%22Cryobiology%22%5BJournal%5D)">The cryobiology of rat and human dendritic cells: preservation and destruction of membrane integrity by freezing.</a> Cryobiology. 27, 269-278 (1990).</li>
<li>Reimann, K. A., Chernoff, M., Wilkening, C. L., Nickerson, C. E., Landay, A. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preservation+of+lymphocyte+immunophenotype+and+proliferative+responses+in+cryopreserved+peripheral+blood+mononuclear+cells+from+human+immunodeficiency+virus+type+1-infected+donors%3A+implications+for+multicenter+clinical+trials.+The+ACTG+Immunology+Advanced+Technology+Laboratories%5BTitle%5D)+AND+%22Clin+Diagn+Lab+Immunol%22%5BJournal%5D)">Preservation of lymphocyte immunophenotype and proliferative responses in cryopreserved peripheral blood mononuclear cells from human immunodeficiency virus type 1-infected donors: implications for multicenter clinical trials. The ACTG Immunology Advanced Technology Laboratories.</a> Clin Diagn Lab Immunol. 7, 352-359 (2000).</li>
<li>Boonlayangoor, P., Telischi, M., Boonlayangoor, S., Sinclair, T. F., Millhouse, E. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryopreservation+of+human+granulocytes%3A+study+of+granulocyte+function+and+ultrastructure%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">Cryopreservation of human granulocytes: study of granulocyte function and ultrastructure.</a> Blood. 56, 237-245 (1980).</li>
<li>Perfetto, S. P., Ambrozak, D., Nguyen, R., Chattopadhyay, P., Roederer, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quality+assurance+for+polychromatic+flow+cytometry%5BTitle%5D)+AND+%22Nat+Protoc%22%5BJournal%5D)">Quality assurance for polychromatic flow cytometry.</a> Nat Protoc. 1, 1522-1530 (2006).</li>
<li>Brando, B., Barnett, D., Janossy, G., Mandy, F., Autran, B., Rothe, G., Scarpati, B., D'Avanzo, G., D'Hautcourt, J. L., Lenkei, R., Schmitz, G., Kunkl, A., Chianese, R., Papa, S., Gratama, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cytofluorometric+methods+for+assessing+absolute+numbers+of+cell+subsets+in+blood.+European+Working+Group+on+Clinical+Cell+Analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry%22%5BJournal%5D)">Cytofluorometric methods for assessing absolute numbers of cell subsets in blood. European Working Group on Clinical Cell Analysis.</a> Cytometry. 42, 327-346 (2000).</li>
<li>Bull, M., Lee, D., Stucky, J., Chiu, Y. L., Rubin, A., Horton, H., McElrath, M. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defining+blood+processing+parameters+for+optimal+detection+of+cryopreserved+antigen-specific+responses+for+HIV+vaccine+trials%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">Defining blood processing parameters for optimal detection of cryopreserved antigen-specific responses for HIV vaccine trials.</a> J. Immunol Methods. 322, 57-69 (2007).</li>
<li>Kantor, A. B., Roederer, M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aKantor%2C+AB+%22The+handbook+of+Experimental+Immunology%22">The handbook of Experimental Immunology</a>. Herzenberg, L., Blackwell, C., Weir, D. 43, 1-49 (1996).</li>
<li>Hulspas, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometry+and+the+stability+of+phycoerythrin-tandem+dye+conjugates%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Flow cytometry and the stability of phycoerythrin-tandem dye conjugates.</a> Cytometry A. 75, 966-972 (2009).</li>
<li>Le Roy, C., Varin-Blank, N., Ajchenbaum-Cymbalista, F., Letestu, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+cytometry+APC-tandem+dyes+are+degraded+through+a+cell-dependent+mechanism%5BTitle%5D)+AND+%22Cytometry+A%22%5BJournal%5D)">Flow cytometry APC-tandem dyes are degraded through a cell-dependent mechanism.</a> Cytometry A. 75, 882-890 (2009).</li>
<li>Mandy, F., Brando, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enumeration+of+absolute+cell+counts+using+immunophenotypic+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Protoc.+Cytom%22%5BJournal%5D)">Enumeration of absolute cell counts using immunophenotypic techniques.</a> Curr. Protoc. Cytom. Chapter 6, Unit 6(2001).</li>
<li>Vuckovic, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Monitoring+dendritic+cells+in+clinical+practice+using+a+new+whole+blood+single-platform+TruCOUNT+assay%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol+Methods%22%5BJournal%5D)">Monitoring dendritic cells in clinical practice using a new whole blood single-platform TruCOUNT assay.</a> J. Immunol Methods. 284, 73-87 (2004).</li>
<li>Lichtner, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Circulating+dendritic+cells+and+interferon-alpha+production+in+patients+with+tuberculosis%3A+correlation+with+clinical+outcome+and+treatment+response%5BTitle%5D)+AND+%22Clin.+Exp.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Circulating dendritic cells and interferon-alpha production in patients with tuberculosis: correlation with clinical outcome and treatment response.</a> Clin. Exp. Immunol. 143, 329-337 (2006).</li>
<li>Hosmalin, A., Lichtner, M., Louis, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+analysis+of+dendritic+cell+subsets%3A+the+dendritogram%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Clinical analysis of dendritic cell subsets: the dendritogram.</a> Methods Mol. Biol. 415, 273-290 (2008).</li>
</ol>

Çıkar çatışması ilan etti.

Bu yazıda, flow sitometri ile taze tam kan lökosit popülasyonlarının numaralandırma için bir boncuk-tabanlı bir yöntem sunmak ve merkezi numune analizi ile çok merkezli bir klinik çalışmada kullanılması için gerekli parametreleri kapsamaktadır. Bu yöntem üzerine kurulmuş ve BD Trucount protokolü optimize eder ve çok merkezli klinik ortamda güvenilir kullanım sağlar. Boyama testi basit ve uygulanabilir kan işleme laboratuar teknisyenleri bunu gerçekleştirmek için ve analiz için merkezi bir tahlil laboratuvarına örnekleri...

<table border="1"><tbody><tr><td> Reaktif Adı </td><td> Şirket </td><td> Katalog numarası </td></tr><tr><td> Mutlak Sayım Tüpler Trucount </td><td> BD Biosciences </td><td> 340334 </td></tr><tr><td> 10X FACS Çözüm Lysing </td><td> BD Biosciences </td><td> 349202 </td></tr><tr><td> İzoleli Kategori B &amp; Muaf Nakliye Sistemi, </td><td> Saf-T-Pak </td><td> STP-320 </td></tr><tr><td> AmCyan CD45 monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 339192 </td></tr><tr><td> FITC CD3 monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 349201 </td></tr><tr><td> CD8 PerCp-Cy 5.5 monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 341051 </td></tr><tr><td> CD4 Alexa Fluor 700 monoklonal antikorlardy </td><td> BD Biosciences </td><td> 557922 </td></tr><tr><td> HLA-DR ECD monoklonal antikoru </td><td> Beckman Coulter </td><td> IM3636 </td></tr><tr><td> V450 CD14 monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 560349 </td></tr><tr><td> PE CD19 monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 555413 </td></tr><tr><td> CD16 APC-H7 monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 560195 </td></tr><tr><td> CD56-PE Cy7 monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 335791 </td></tr><tr><td> CD11c APC monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 559877 </td></tr><tr><td> CD123 PE-Cy5 monoklonal antikor </td><td> BD Biosciences </td><td> 551065 </td></tr></tbody></table>

bir tam kan fenotipleme testi kullanarak Çok merkezli klinik araştırmalar için binbaşı periferik kan lökosit populasyonlarının numaralama

Enumeration of Major Peripheral Blood Leukocyte Populations for Multicenter Clinical Trials Using a Whole Blood Phenotyping Assay

Periferik kan lökositleri Kriyoprezervasyon yaygın klinik çalışmalarda bağışıklık yanıtı değerlendirme için hücreleri korumak için kullanılan ve immünolojik değerlendirme kolaylığı ve standardizasyon için birçok avantaj sunmaktadır, ancak bu sürecin olumsuz etkileri, granülosit gibi bazı hücre alt, B hücreleri üzerinde gözlenmiştir edilir , 1-3 ve dendritik hücreler. Taze lökositleri assaying hücrelerinin in vivo durumda daha doğru bir görüntü verir, ancak sık sık büyük klinik çalışmalarda bağlamında gerçekleştirmek zordur. Taze hücresi tayinlerinde zaman alıcı varsa, bunların uygulama nedeniyle laboratuvar personelinin gerekli çalışma saatleri için pratik olabilir, gönüllü taahhütler ve zamanlamalar bağlıdır ve. Buna ek olarak, çalışmalar birden fazla merkezde yürütülen zaman, testleri gerçekleştirmek için gerekli kaynakları ve eğitim laboratuvarları klinik siteleri için yeterli yakınında yer olmayabilir. Bu sorunları çözmek için, var develBöyle bir gibi testlere göre daha güçlü bir hücre tipinde belirli bir bilgi elde edilmesinde, fenotip için ve periferik kan içinde büyük lökosit popülasyonları numaralandırmasına; Trucount tüpler (San Jose, CA Becton Dickinson) ile birlikte kullanılabilecek bir 11 renkli antikor boyama paneli intravazasyonunda tam kan sayımı (CBC) veya sadece birkaç hücre tipleri için leke Trucount tüpler için tasarlanmış piyasada bulunan paneller ile ölçülür. Boyama işlemi basittir, taze tam kan sadece 100 ul gerektirir ve uygulanabilir standart kan işleme laboratuarları gerçekleştirmek için yapım, yaklaşık 45 dakika sürer. Bu BD Trucount tüp teknik föy (uyarlanmıştır <a href="http://www.bdbiosciences.com/external_files/is/doc/tds/Package_Inserts_CE/live/web_enabled/23-3483-06_PI_Trucount tubes_CE_EN.pdf" target="_blank">sürüm 8/2010</a> ). Boyama antikor kokteyli merkezi bir tahlil laboratuvarından toplu olarak önceden hazırlanan ve site işleme laboratuarları sevk edilebilir. Vitray tüpler sabit olabilirve renkli akım sitometri analizi için merkezi tahlil laboratuvarından gönderilmek için dondurulmuş. Bu boyama panelinden üretilen veri müdahale ile ilgili olarak zaman içinde lökosit konsantrasyonlarda değişiklikleri izlemek için ve kolay bir şekilde daha fazla ilgi belirli hücre tipleri aktivasyonu durumları değerlendirmek için geliştirilmiş olabilir kullanılabilir. Bu yazıda, taze tam kan ve çok merkezli klinik araştırma merkezi bir destek tahlil laboratuvarında bu lekeli numunelerin analiz adımları boyama gerçekleştirmek için kan işleme laboratuvar teknisyenleri tarafından kullanılan yordam göstermek. Video ayrıntılar bu HIV aşısı Denemeler Ağı (HVTN) içinde bir klinik deneme kan alımından bağlamında yapılır gibi işlem.

Bu raporda, biz büyük doğal ve adaptif lökosit popülasyonlarının numaralandırmak için taze tam kan üzerinde gerçekleştirilen bir feno testinin boyama ve analiz adımları göstermektedir. Biz çok merkezli klinik çalışma kapsamında bu işlemler gerçekleştirmek için konuları vurgulamaktadır.

Bir Tam Kan fenotipleme Testi Kullanarak Çok Merkezli Klinik Araştırmalar için Binbaşı Periferik Kan Lökosit Populasyonlarının Numaralama

Periferik kan lökositlerinin kriyoprezervasyonu, klinik çalışmalardaki immün yanıt değerlendirmeleri için hücreleri korumak amacıyla yaygın olarak kullanılmaktadır ve birçok...

Bu video, merkezi bir laboratuvar tarafından analiz edilmek üzere, çok merkezli klinik çalışmalarda taze tam kanın boyanması için Fred Hutchinson Kanser Araştırma Merkezi'ndeki HIV Aşı Denemeleri Ağının geliştirdiği prosedürü açıklamaktadır. Prosedürde, her biri örnek hazırlama sırasında çözünerek bilinen sayıda floresan boncuk salan liyofilize bir pelet içeren, Becton Dickenson biosciences tarafından üretilen tru count tüpleri kullanılmaktadır. Farklı hücre popülasyonlarına özgü yüzey belirteçlerini boyamak için floresan antikorlar kullanılır.Akış sitometrisi analizi sırasında, bu farklı popülasyonlardaki hücre sayısı floresan boncukların sayısıyla karşılaştırılabilir ve tam kandaki farklı lökosit popülasyonlarının mutlak konsantrasyonları müdahale ile ilişkili olarak zaman içinde takip edilebilir. Merhaba, benim adım Erica Anderson Nissan ve HIV Vaccine Trials Network'te uzman bilim insanıyım. İzlemek üzere olduğunuz prosedür, çok merkezli klinik çalışmalarımızda kullanmak üzere geliştirdiğimiz bir yöntemdir.Bu çalışmalarda, kan işleme laboratuvar teknisyenleri taze tam kan örnekleri alır, bunları floresan işaretli antikorlarla boyar ve ardından örnekleri akış sitometresi ile analiz edebilecek merkezi bir laboratuvara gönderirler. Taze tam kan, maliyet ve fizibilite sorunları nedeniyle klinik araştırma ortamlarında genellikle analiz edilmez; ancak periferik kandaki ana lökosit popülasyonlarını tanımlayabilen tekli bir antikor boyama paneli geliştirdik ve bu popülasyonların boyanması 45 dakikanın altında sürdüğü için klinik araştırmalarda kullanımı fizibildir. HVTN bünyesinde, aday HIV aşıları ile yapılan aşılamadan sonra meydana gelen erken olayları anlamak için bu paneli kullanıyoruz, ancak bu PI paneli, bireysel araştırmacının ilgilendiği hücre tiplerine odaklanacak şekilde daha fazla modifiye edilebilir. İzlediğiniz için çok teşekkür ederiz ve bunun gelecekte size faydalı olacağını umuyoruz.Tablo Bir, periferik kandaki ana lökosit popülasyonlarını fenotiplemek ve saymak için geliştirilmiş 11 renkli bir antikor boyama panelini göstermektedir. Sahalar arasındaki tutarlılığı sağlamak ve kokteyllerin deneme örneklerini boyamak için kullanılmadan önce bir kontrol kan alımı üzerinde test edilmesine olanak tanımak amacıyla antikor kokteyli merkezi analiz laboratuvarı tarafından hazırlanır ve işlem laboratuvarlarına gönderilir. Her bir floresan konjuge antikor ayrı ayrı titre edilir ve ardından uygun titrasyonlar kullanılarak antikorlar, %2 ısıtılmış ve aktive edilmiş fetal sığır serumlu delcos PBS içeren akış yıkama tamponu ile tek bir karışımda birleştirilir.Antikor kokteyli, bir parti numarası ve son kullanma tarihi ile etiketlenir ve merkezi analiz laboratuvarından işlem laboratuvarlarına, sevkiyat sırasında dört derece santigrat sıcaklığı koruyan bir paketleme sistemi kullanılarak gönderilir. Teslim alındıktan sonra, antikor boyama paneli karanlıkta dört derece santigrat sıcaklıkta sekiz haftaya kadar saklanabilir. Boyama işleminden sonra, lökositleri korurken eritrositleri parçalamak ve antikor boyalarını sabitlemek için BD fax slicing solüsyonu kullanılır.Çözelti, üreticiden 10 x konsantrasyonda alınır ve merkezi analiz laboratuvarı tarafından deiyonize su ile 1'e 10 oranında seyreltilir. Seyreltilen çözelti daha sonra bir lot numarası ve son kullanma tarihi ile etiketlenir ve alındıktan sonra ortam sıcaklığında işleme laboratuvarlarına gönderilir. Gerçek sayım boyaması için kan örneği alınmadan önce faks bağlama çözeltisi, 15 ile 30 santigrat derece arasındaki oda sıcaklığında saklanır.İşleme laboratuvarı, gerekli tüm reaktiflerin merkezi analiz laboratuvarından temin edildiğinden emin olmalıdır. Bunlar arasında BD TRU count tüpleri, kombine antikor boyama paneli ve bir adet fax lisanslama çözeltisi yer almaktadır. HVTN, her bir örnek için ilgili tüm bilgileri kaydetmek amacıyla bir laboratuvar veri yönetim sistemi kullanmaktadır.Gerçek sayım tüpünün üzerine yerleştirilen bir etikete benzersiz bir tanımlama kodu yazılır. Boyanan örneği takip edebilmek için, örneği tanımlayan bir kriyoviyal etiketleyin. Bu etiket genellikle bir hasta veya gönüllü tanımlayıcısı, bir ziyaret tanımlayıcısı ve kan toplama tarihini içerecektir; aseptik teknik kullanarak gerekli miktardaki kanı etiketli kriyoviyale aktarın.Boyama için kullanılan kan miktarı kullanılan boyama paneline bağlıdır, ancak genellikle panel başına 50 veya 100 µL'dir. Kriyotüp, boyamadan önce oda sıcaklığında dört saate kadar bekletilebilir. Kalan kan üzerinde zamana daha duyarlı olan prosedürler gerçekleştirilir.Tüpün dibinde sağlam bir boncuk peleti olduğundan emin olun ve tru count tüpünü etiketleyin. İlgili numune bilgileriyle birlikte tüm reaktiflerin lot numaralarını ve son kullanma tarihlerini kaydedin. Çalışma sayfaları, bu bilgilerin bir klinik araştırma boyunca takip edilmesi için kullanışlıdır.Tru count tüp boncuk sayısı ve lot numarası, tru count tüplerinin bulunduğu torbanın ön yüzünde yer alır. Tru Count boyama işlemine başlamaya hazır olduğunuzda, biyolojik güvenlik kabininde tüm malzemelerin ve reaktiflerin kullanıma hazır olduğundan emin olun. Bunlar arasında; tru count tüpü olarak etiketlenmiş kan alikotu, kombine antikor boyama paneli tüpü, 1x fax solüsyonu, 200 µL ve 1000 µL mikropipetler ve pipet uçları, folyo beyazlatıcı, laboratuvar filmi ve boyama sonrası için bir zamanlayıcı bulunur.Ayrıca boyanmış numune kutusuna da ihtiyacınız olacak, ancak bunun çeker ocak içinde olmasına gerek yoktur. Kullanılacak kan ve antikor miktarı, panel tarafından hangi hücrelerin ayırt edildiğine ve uygun analiz için kaç hücreye ihtiyaç duyulduğuna bağlı olarak değişir. Boyama için optimal kan miktarını belirlemek amacıyla her panel kontrol numuneleri üzerinde test edilir ve kullanılan antikor miktarı, bu videoda gösterilen panel için kullanılan kan miktarına eşittir.Pipetleme işleminden önce 100 µL kan ve 100 µL antikor kullanılacaktır. Tüpü birkaç kez hafifçe ters çevirerek kanı karıştırın ve kanın iyice karıştığından daha fazla emin olmak için hafifçe birkaç kez pipetle yukarı aşağı çekin.Ardından, alikottaki tam kanı, metal tutucunun hemen üzerine gelecek şekilde tru count tüpüne hassas bir şekilde aktarmak için ters pipetleme yöntemini kullanın. Kanın tüpün yan duvarlarına bulaşmasını önleyin. Her tru count tüpü arasında pipet ucunu değiştirin.Şimdi, pipetleme işleminden önce kanı antikor boyama paneli ile boyama zamanıdır. Boyama panelini, birkaç kez nazikçe aşağı yukarı pipetleyerek karıştırın. True count tüpündeki kana 100 µL antikor karışımı ekleyin.Değerli reaktiflerin israf olmaması için bu adımda ters pipetleme yapmayın. Tüpü kapatın ve karıştırmak için yaklaşık 15 saniye boyunca düşük hızda vortekslayın. Boncuk peletinin tamamen çözündüğünden emin olun.Tüpü folyoyla kapatın ve kanı 15 dakika boyunca boyamak için bir zamanlayıcı ayarlayın. Gereken 1x fax slicing çözeltisi miktarı, analizde kullanılan kan miktarının dokuz katıdır; bu nedenle, bu örnekte 900 µL 1x fax slicing çözeltisi kullanılmıştır. 15 dakikalık inkübasyonun ardından, boyayı sabitlemek ve eritrositleri liz etmek için boyalı kana 900 µL 1x fax slicing çözeltisi ekleyin.Bu adımda ters pipetlemeye gerek yoktur. Tüpün kapağını kapatın ve karıştırmak için yaklaşık 15 saniye boyunca düşük hızda vorteksleyin. Kapağı kilitleme konumuna gelecek şekilde sıkıca bastırın ve mühürleyin.Laboratuvar filmi ile. Tüpleri, merkezi analiz laboratuvarına gönderilene kadar karanlık bir kutuda veya tamamen folyoya sarılı olarak -65 ile -95 °C arasında saklayın. Bugüne kadar yapılan testler, örneklerin bu sıcaklıkta dört haftaya kadar stabil olduğunu göstermiştir; boyanmış örnekler, Uluslararası Hava Taşımacılığı Birliği (IATA) kurallarına uygun olarak Kategori B biyolojik maddeler şeklinde gönderilmelidir.HVTN düzenlemeleri uyarınca örnekler, işlem laboratuvarlarından merkezi analiz laboratuvarına, bu gereksinimleri karşılamak üzere özel olarak tasarlanmış safety pack ink marka yalıtımlı bir taşıma sistemi kullanılarak haftalık olarak gönderilir. Bu sistem kullanılırken, içteki kahverengi kutu strafor sandığın içine yerleştirilmeli ve kaymayı önlemek için girintiye sabitlenmelidir. Sandık tamamen kuru buzla doldurulmalı ve kutunun soğuması için beş ila 10 dakika beklenmelidir.Numuneleri gönderime hazırlamak için, her tüpü ve folyoyu tamamen sarın ve boyanmış numune kutusuna yerleştirin. Sızdırmaz bir polietilen torba içerisine emici malzeme ile birlikte boyanmış numune kutusunu yerleştirin. Torbadaki fazla havayı boşaltın ve sıkıca kapatın.Sızdırmaz polietilen torbayı bir Tyvek torbanın içine yerleştirin. Kapatmadan önce torbadaki tüm havayı tekrar boşaltın. Numune paketini içteki kahverengi kutuya yerleştirin ve strafor sandığın kapağını sıkıca kapatın.Nakliye kutusunu güvenli bir şekilde bantlayın ve uygun kuru buz işaretlemeleriyle biyolojik madde kategori B olarak gönderin. Çok merkezli klinik çalışmalarda IATA PI 650 talimatlarını izleyin. Örneklerin kısa süreli saklama, nakliye ve uzun süreli saklama aşamaları boyunca takip edilmesi önemlidir.HVTN tarafından kullanılan veri yönetim sistemi, numunelerin saklanacağı ve analiz edileceği merkezi analiz laboratuvarındaki numune veri tabanına aktarılabilecek bir sevkiyat manifestosunun oluşturulmasına olanak tanır. Bu işlem; numunelerin ne zaman gönderildiği ve alındığı, nerede nihai olarak saklandığı ve ne zaman çıkarıldığına dair bir kayıt oluşturur. Analiz için, boyalı numuneyi dondurucudan çıkarıp karanlık bir kutu içerisinde oda sıcaklığında çözünmeye bırakın.Akış sitometresinde veri toplama işleminden en fazla bir saat önce hazırlayın. Birden fazla örnekle veri toplanıyorsa, tüplerin oda sıcaklığında bir saatten fazla beklememesi için çözme işlemini kademeli olarak gerçekleştirin; her bir örnek, BD LSR II gibi uygun filtrelerle donatılmış dört lazerli bir akış sitometresi kullanılarak analiz edilmelidir. Cihaz tarafından gerekli görülürse, veri toplama için standart sitometre kalibrasyon ve floresan kompanzasyon yöntemlerini uygulayın. Eşik değerini belirlemek için, am cyan kanalındaki mümkün olan en düşük eşik değerini ayarlayın; örneği akış sitometresine yüklemeden önce örnek tüpünü beş saniye boyunca vorteksleyin.Sito-metre tru count boncukları birçok kanalda yüksek düzeyde floresan verir. Toplama sırasında, yüksek düzeyde çift pozitif olan popülasyonu bularak boncukları kapılayın (gate). PE SCI five ve bir PC için, boncukları hücrelerden en kolay şekilde ayırt eden iki rengin kullanılan cihazlara bağlı olarak değişebileceğini unutmayın.Tru count boncuk kapısını durdurma kapısı olarak seçin ve en az 20.000 boncuk elde edilene kadar veri kaydedin. Verileri FlowJo gibi uygun bir yazılım kullanarak analiz edin. Şimdi, temsilci bir kontrol kan örneğinden elde edilen verileri kullanarak ana lökosit popülasyonlarının analizi için kullanılan kapılama şemasını inceleyeceğiz.Bu panel kullanılarak NKT hücreleri veya nötrofiller gibi daha spesifik hücre alt kümeleri de ayırt edilebilir, ancak bunlar bu örnekte gösterilmeyecektir. İlk olarak, tru count boncuklarının etrafına bir kapsama kapısı (inclusion gate) ve bir dışlama kapısı (exclusion gate) çizilir ve bunlar, biri sayım için boncukları almak, diğeri ise hücresel analizden boncukları dışlamak amacıyla üst üste yerleştirilir. Ardından, boncuklar hariç tutulan hücresel veriler, ileri saçılım yüksekliğine karşı ileri saçılım alanı kullanılarak yalnızca tek hücreleri içerecek şekilde kapılanır.Bu kapı aynı zamanda küçük kalıntıları da dışarıda bırakır. Ardından, yan saçılım (side scatter) kullanılarak granülositler, lenfositler ve monositlerden ayrılan CD 45 pozitif hücreler için kapılama yapılır. Daha sonra lenfositler ve monositler, CD 14 ve yan saçılım kullanılarak üç ayrı gruba ayrılır.Bunlar arasında CD 14 negatif lenfositler, tüm CD 14 negatif hücreler ve lenfosit olmayan hücreler yer alır; CD 14 Negatif lenfosit kapısından gelen hücreler önce üç gruba ayrılır: CD 3 pozitif CD 19 negatif, CD 3 negatif CD 19 pozitif ve CD 3 negatif CD 19 negatif. T hücreleri, CD 3 pozitif CD 19 negatif kapısından seçilir. CD 56 pozitif ve CD 16 pozitif hücreler dışlandıktan sonra, CD 4 pozitif ve CD 8 pozitif T hücreleri ayırt edilebilir. B hücreleri, CD 56 pozitif ve CD 16 pozitif hücreler dışlandıktan sonra CD 3 negatif CD 19 pozitif kapısından seçilir ve NK hücreleri ise CD 3 negatif CD 19 negatif kapısından seçilir.CD 11 C ve CD 4 kullanılarak olası kontamine monositler dışlandıktan sonra, NK hücreleri CD 56 brite, CD 56 DM ve CD 56 negatif popülasyonlara ayrılır. Dendritik hücre popülasyonunu ayırt etmek için, CD 3 pozitif, CD 19 pozitif, CD 56 pozitif ve CD 16 pozitif hücreleri dışlamak amacıyla tüm CD 14 negatif hücreler kapılandığına (gating) tabi tutulur. Buradan itibaren, HLA DR pozitif hücreler kapılandır ve miyeloid dendritik hücreler ile plazmasitoid dendritik hücreler, CD 11 C ve CD 1 23 ekspresyonlarına göre ayırt edilebilir.Son olarak, lenfosit olmayan kapıdan (gate), olası kontamine CD 56 pozitif CD 3 pozitif ve CD 19 pozitif hücreler dışlandıktan sonra monosit alt kümeleri kapılanır. Non-klasik, ara ve klasik monositler, CD 16 ve CD 14 ekspresyonlarına göre ayırt edilir. İlgilenilen popülasyonlar kapılandıktan sonra konsantrasyonlar hesaplanabilir.Boncuk kapısındaki olay sayısının tüpte başlangıçta bulunan toplam boncuk sayısı ile karşılaştırılması, toplanan örnek oranını belirlemenizi sağlayacaktır; bu oran daha sonra mutlak konsantrasyonu belirlemek için kullanılabilir. Her popülasyon için mikrolitre başına hücre sayısıdır. Burada gösterilen denklem bu amaçla kullanılabilir.Bu videoda, kan işleme laboratuvar teknisyenlerinin taze tam kana boyama yapmak için kullandıkları prosedürü ve bu boyanmış örneklerin merkezi bir analiz laboratuvarında analiz edilme adımlarını gösterdik. Çok merkezli bir klinik araştırma kapsamında, analizin basit olduğunu ve süresinin nispeten kısa olduğunu, bu durumun kan işleme laboratuvar teknisyenlerinin işlemi gerçekleştirmesini, örnekleri dondurmasını ve analiz için temel analiz laboratuvarına göndermesini mümkün kıldığını kanıtladık. Doğru ve tutarlı sonuçlar elde etmenin anahtarı, protokoldeki kritik adımları dikkatlice standardize etmek ve tespit edilen her türlü anomalinin kaynağına kadar takip edilebilmesini sağlayan, tüm adımları kaydeden bir dokümantasyon sistemi kullanmaktır.Bu boyama panelinden elde edilen veriler, lökosit konsantrasyonlarındaki zamanla meydana gelen değişiklikleri takip etmek için kullanılabilir ve ilgilenilen spesifik hücre tiplerinin aktivasyon durumlarını değerlendirmek amacıyla kolaylıkla geliştirilebilir.

enumeration-major-peripheral-blood-leukocyte-populations-for

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Çekirdekli hücre zenginleştirme hücre kaybı olmadan yüksek kaliteli örnek izolasyonu sağlar eritrosit lizis ile periferik kan dolaşımını sağlamak için otomatik bir mikroakışkan cihaz geliştirildi.

Çekirdekli Hücreler Sirkülasyon zenginleştirilmesi için Otomatik mikroakışkan Kan Lizis Protokolü

Source: Xu, C., et al. An Efficient and Simple Method to Establish NK and T Cell Lines from Patients with Chronic Active Epstein-Barr Virus Infection. J. Vis. Exp. (2018).This video demonstrates the phenotyping of EBV-infected T and NK cell lines using flow cytometry, highlighting the preparation, antibody staining, and analysis steps to identify lineage-specific surface markers. It shows how marker profiles confirm distinct T-cell and NK-cell populations.

Phenotyping EBV-Infected Cell Lines Using Flow Cytometry

Bu videoda, insan periferik kan mononükleer hücrelerinde (PBMC'ler) CD4+ ve CD8+ T hücrelerini, γδ T hücrelerini, B hücrelerini, doğal öldürücü (NK) hücreleri ve monositleri tanımlamak için iki florokrom kullanan akış sitometrisi tabanlı bir teknik gösterilmektedir. Hücrelerin yüzey belirteçlerine karşı florokrom konjuge antikorlarla inkübe edilmesinin ardından, hücre alt kümeleri optimal bir akış sitometrik geçit stratejisi kullanılarak tanımlanır.

Periferik Kan Mononükleer Hücrelerinde İmmün Hücre Alt Kümelerini Tanımlamak için Bir Akış Sitometrisi Testi

Tam kan İmmünofenotiplemesi, insan bağışıklık sistemini izlemek için vazgeçilmezdir. Bununla birlikte, gerekli reaktiflerin sayısı ve önceden karıştırılmış kokteyllerdeki spesifik florokromların kararsızlığı, günlük reaktif hazırlığını gerektirir. Burada, boyama antikor kokteylinin yarı otomatik olarak hazırlanmasının, reaktif dağıtımındaki değişkenliği en aza indirerek güvenilir immünofenotipleme oluşturmaya yardımcı olduğunu gösteriyoruz.

İnsan Periferik Kan immünfenotipik Analizi Antikor Kokteyller Hazırlama A Yarı-otomatik Yaklaşım

En küçük veya ölçülebilir rezidüel hastalığı (MRD) tespiti risk değerlendirme rafine ve Relaps Akut Miyeloid Lösemi (AML) içinde tahmin için önemli bir prognostik biyomarker olduğunu. Bu sõnõrlar ve önerileri ile tutarlı ve doğru kimlik ve MRD, tespiti için en iyi yöntemler yardımcı etkili AML tedavi karar verme.

Örnek ve işlem kemik iliği ölçülebilir artık hastalık ve akut Myeloid lösemi lösemik kök hücre ölçmek için kapsamlı iletişim kuralı

Burada bağışıklık fenotipik ve fonksiyonel (hücre içi sitokin indüksiyon) değerlendirmek için bir tek hücreli proteomik yaklaşım tarif değişiklikler periferik tam kan örneklerinde, kitle sitometresi ile analiz.

Tek hücreli Immunophenotype ve sitokin üretimde kitle sitometresi ile periferik tam kan analizi

Burada monosit alt kümeleri tam kan akış sitometresi tarafından karakterize için bir iletişim kuralı mevcut. Bu nasıl alt kümeleri kapı ve onların ifade yüzey işaretlerinin değerlendirmek özetleyen ve M1 (iltihabi) ve M2 işaretleri (anti-inflamatuar) ifadesi değerlendirme bir örnek vererek içerir.

İnsan monosit alt kümeleri tam kan tarafından karakterizasyonu Akış Sitometresi Analizi

Bu protokol, çevirisel biyobelirteç analizi için kullanılabilecek klinik çalışma alanında yüksek kaliteli PBMC ve plazma biyosampllerinin klinik olarak uygulanabilir hazırlanmasını detaylandırır.

Biyobelirteç Analizi için Klinik Çalışma Alanlarında Tek Bir Kan Çekiminden Periferik Kan Mononükleer Hücre Peletleri ve Plazma Hazırlanması

Burada POCT kart tabanlı lökosit analizörü kullanarak periferik kan lökositlerini ölçmek için bir protokol sunulmaktadır. Aynı kan örnekleri, sonuçların tutarlılığını ve doğruluğunu değerlendirmek için iki otomatik hematoloji analizörü tarafından test edildi. Sonuçlar, değerlendirilen analizörün referans sistemi ile iyi bir korelasyona sahip olduğunu göstermiştir.

Periferik Kan Lökositlerini Ölçmek için Bakım Noktası Test Analizörünün Değerlendirilmesi

Kendi arıtma genellikle gerekli bağışıklık hücre popülasyonlarının fonksiyonunu etkili bir şekilde incelenmesi. Kompleman tükenmesi, izolasyonu için yüksek saflıkta bağışıklık hücre popülasyonlarının hızlı ve ucuz bir tekniktir.

Kompleman tükenmesi Özel Hücre Populasyonlarının tükenmesi

Öğrenin, çok merkezli klinik araştırmalar için akış sitometri kullanarak taze tam kan örneklerinde ana periferik kan lökosit popülasyonlarını sayma yöntemini. Bu standart prosedür, bağışıklık yanıtlarının zaman içinde izlenmesini sağlar.

Bir Tam Kan fenotipleme Testi Kullanarak Çok Merkezli Klinik Araştırmalar için Binbaşı Periferik Kan Lökosit Populasyonlarının Numaralama (Video) | JoVE Journal

Bir Tam Kan fenotipleme Testi Kullanarak Çok Merkezli Klinik Araştırmalar için Binbaşı Periferik Kan Lökosit Populasyonlarının Numaralama

Daha fazla video keşfet