Name: Mikro Kan akış hızı Profil ölçümleri için mikro-parçacık imaj velosimetri (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-04-25T12:00:00.000+00:00
Duration: 7 min 53 s
Description: Öğrenin mikro-parçacık görüntü hız ölçümü ile mikrokanallardaki kan akışı hız profillerini nasıl ölçeceğinizi. Bu yöntem, kayma hızı ve maksimum hız gibi akış özelliklerini belirlemeye yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar ilk çalışır, ona yardım için fon, Catherine Pagiatikis için NSERC (Doğa Bilimleri ve Kanada&#39;nın Mühendislik Konseyi) teşekkür etmek istiyorum Sura Abu-Mallouh ve protokol, LaVision Richard Prevost, teknik destek için Inc, test etmek için Frederick Fahim ve Dalsa yüksek hızlı kamera kredi için Montréal Üniversitesi Guy Cloutier.

1. Microchip Fabrikasyon İlk adım Mikrokanallı oluşturmak veya satın almaktır. Mikroçip malzeme için birçok seçenek vardır. Seçilen en yaygın malzemelerden biri (PDMS) (dimetilsiloksan) poli. Yumuşak litografi 16,17,18 ile PDMS üretim için yönde birçok yayın bulunmaktadır. PDMS kanal imal edildiğinde, çeşitli yüzey işlemleri, doğal hidrofob tersine çevirmek için mevcut bulunmaktadır. Oksijenli plazma tedavi ortak bir seçenektir. Zhou, Ellis ve Voelcker (2009) yüzey işlemleri bir eleştiri vermek ve PDMS nasıl etkilediğini. Bu sonuçlar, ancak su, ve kan farklı özelliklere sahiptir. Bu yüzey işleme kan için ne anlama geldiği konusunda bir çalışma Pitts ve ark. (2012A) tarafından yapılmıştır. Sonuçları burada sunulan için, mikroçip yüzeyler ve cam slaytlar onlar45 saniye için oksijenli plazmaya maruz kalan ve daha sonra sıkı bir kalıcı bir bağ ile sonuçlanan, her ikisi de bir arada basılı bağlanmıştır. 2. Kan Hazırlık <ol><li> Akredite bir tesis kan örnekleri toplayın. Örneğin domuz kan bir pıhtılaşma önleyici olarak etilendiamintetraasetik asit (EDTA) ile birlikte kullanılabilir. Su 4 ml &#39;si ile 1 gr EDTA ekleyin ve yavaşça karıştırılarak 10x, tam kan, 1 L çözeltisi ekleyin. </li></ol> Kan örnekleri kaldırmak istediğinizde, onları RT yavaş yavaş soğumasını bekleyin. Kan örnekleri taze ve ideal onlar kan reolojik özelliklerini korumak için toplanır gün kullanılan gerekir. Örnekler oda sıcaklığında bir kez buzdolabında olabilir; antikoagülan olmadan ancak tam kan soğutma sonra kullanılamaz hale gelecektir. Antikoagülan bağlı olarak, en fazla 42 gün için eritrositler buzdolabında tutulabilir, ve tam kan 35 gün boyunca buzdolabında muhafaza edilebilir, ancak kirlenme olmayan bir m mümkün olacaktıredical tesisi 21. Ayrıca, sığır veya domuz örnekleri ile toplama yöntemi dikkatli olun ve kemik iliği tarafından kirlenmesini önlemek. <ol start="2"><li> 10 dakika her zaman için 3.000 rpm&#39;de 3x kan örnekleri santrifüj. İlk Santrifüj sonra, plazma ve buffy coat çıkarın atın. İlk plazma kaldırmak için genellikle en kolay, ve daha sonra tek başına buffy coat kaldırmak için daha sonra, atmak veya ileride kullanılmak üzere tutun. </li></ol> Kana geri buffy coat karıştırmayın şekilde, yavaşça pipet tanıtmak. Buffy coat çıkardıktan sonra, fosfat yaklaşık 20 ml (PBS) tamponlu tuzlu su ve hafifçe recentrifuge karıştırın. Son adımı yineleyin. Üçüncü Santrifüj sonra, PBS ve kalan buffy coat çıkarın atın. Bu kan toplayarak özelliklerini tutmak istiyorsanız yerine PBS yerli plazma kullanmak da mümkündür. Herhangi bir buffy coat veya beyaz karıştırmayın emin olunplazma içine kan hücreleri. <ol start="3"><li> Temizlenmiş kırmızı kan hücreleri (eritrositler) alın ve istenen konsantrasyonları (hematokrit) PBS veya plazma askıya. Bir mikrosantrifüj (CritSpin FisherSci, ABD) ile hematokrit kontrol edin. </li></ol> 10 ila 20% hematokrit kan 40 ya da% 50 (fizyolojik hematokrit) daha görselleştirmek için kolay olmalıdır. Mikro, kan genellikle makro sirkülasyon yarısı hematokrit, bu nedenle H = 20 15 yeterlidir. <ol start="4"><li> Kan numuneleri istenen konsantrasyonda izleme parçacıklar floresanlama ekleyin. Genel bir kural olarak önceden hesaplanabilir bir ilişki pencerede 10 parçacıklar sahip olmaktır. </li></ol> Örneğin, partiküllerin 30 ul video tasvir ayarlama için kan solüsyonu, 1 ml ilave edilir. Alternatif olarak, kırmızı kan hücreleri kendilerini floresan etiketli olabilir. <ol start="5"><li> Ayrıca, su ve grip ile bir kalibrasyon çözüm yapmakparçacıklar orescing. Bu, bir Newton çözeltisi ile kalibre sistem için gerekli olacaktır. </li></ol> Örneğin, 100 mikron ölçekte bir kanalı olan 10X objektif kullanarak, uygun bir konsantrasyon damıtılmış su, 15 ml ile karıştırılır parçacıkların 300 ul. Başka bir seçenek, kan makro viskozitesi daha yakın olan 3Cp, bir viskoziteye kadar damıtılmış su ile seyreltildi gliserol kullanmaktır. 3. μPIV Ölçümler <ol><li> Lazer güvenlik: sıcaklık ve nem kontrol edin. Uygun lazer güvenlik gözlükleri takın. Lazer perde kapatmak veya laboratuvar kapı maruz korunmaz engellemek için üzerine lazer işareti açın. </li><li> Davis yazılımı ile Prosedür video gösterilir. Belirli bir sistemin kullanım kılavuzuna bakın daha fazla bilgi için. </li><li> Veri çekmeden önce, kamera ölçekli bir mikrometre kullanılarak kalibre edilmesi gerekmektedir. </li><li> Sistemin uygun azaltmak için, boru, en kısa sürede bir kullanımıD bir 15 ya da 50 ul Hamilton Gaz geçirmez şırınga gibi, mümkün olan en küçük katı şırınga. Sistem içine kan ya da hava emme sızmasını azaltmak için, şırınga ve çipe boru mühür. Bu tutkal, PDMS veya vazelin (kan kontamine için dikkatli olmak) ile yapılabilir. </li></ol> Mikro şırınga hacmi genellikle doldurmak için hacimden çok daha az olduğu için, izleyici parçacıkları ile bezenmiş su ile mikro şırınga doldurmak için geri akış yöntemi. Bizim akış yöntem, bir ikincil plastik şırınga kullanılarak kanalın çıkışı ile birlikte mikro şırınga ve kanalı doldurmak için oluşur. Tüm mikro kabarcıklar mikro şırınga, tüp ya da dışarı kadar bunun için, ilk olarak mikro şırınga piston kaldırmak, daha sonra kanalın çıkışına bağlı klasik plastik şırınga kullanılarak sıvı itme, mikro şırınga üzerinden sıvı akışı sağlar çip, son olarak piston geri koymak ve plastik şırınga çıkarın. O varlığımikro kabarcık r yokluğu bir mikroskop ile kontrol edilebilir. <ol start="5"><li> Yatay boru elde etmek için şırınga pompası Seviye. Istenen debi için şırınga pompası programlayın. </li></ol> Rijit sistemi veya gerçek akış hızı değiştirmek sistemin uyum için &quot;darboğaz etkisi&quot;, gibi olası geçici etkileri, farkında olun. Bir sistemin karakteristik zamanlar, sistemin malzeme ve boyutlarda bir fonksiyonu olarak tahmin edilebilir. (Bölüm 2, s 77-81, Tabeling, 2005) <ol start="6"><li> Mikroskop sahnede mikroçip yerleştirin ve pompa başlar. Orta hız profili için sistem kalibre ve dT (darbeli görüntüler arasındaki zaman) kalibre etmek için parçacıkları ile su kullanın. </li></ol> Parçacıklar 11 için iyi bir korelasyon çerçeveler arasında 5 ila 10 piksel hareket etmelidir. Kalibre ederken, kanalın ortasında ölçmek için dikkatli olun. Ortasında odak düzlemi en yüksek olanhızı 8. Yuvarlak bir kanal kullanıyorsanız, etkileri gölgeleme dikkatli olun. Örnek bir görüntü En iyi görüntü ilk sinyalin ve alt görüntü ikinci darbe ise, darbeli bir kamera kullanılarak, Şekil 2 &#39;de gösterilmiştir. Bu parlak noktaları (floresan parçacıkların)-odak en olduğu şekilde görülebilir. <ol start="7"><li> İSTEĞE BAĞLI: farklı yüksekliklerde veri alarak bir 3D hız profili tek bir görüntü içine farklı vektörleri ekleyerek yeniden inşa edilebilir. Video sürecinin otomasyonu için geliştirilen bir rutin sunulur. </li><li> Kan ile veri çekerken, su ile aynı yöntemle kan istenilen miktarda şırınga doldurun. Istenen debi için şırınga pompası programı ve istenen verileri almak. Elde edilen ham görüntüleri bir örnek Şekil 2&#39;de gösterilmiştir. De RBC sedimantasyon dikkatli olun. Şırınga doldurma her çalıştırma veya herdiğer çalışma eritrosit yerleşim azaltacaktır. </li><li> Görüntüleri aldıktan sonra, çapraz korelasyon görüntüler arasında hız vektör alanları elde etmek için görüntü çiftleri üzerinde gerçekleştirilir. İyi bir ilişki için iyi görüntü olması önemlidir. Ilişkilendirerek önce, ön işleme arka plan gürültü kaldırmak için yapılabilir. </li></ol> Çapraz korelasyon boyutu ve korelasyon etkileme şekli değiştirilebilir bitişik görsel pencereler arasında yapılır. Çapraz korelasyon sonra, görüntü işleme hatalı vektörler veya aykırı kaldırmak için yapılabilir. Farklı seçenekler ve doğrulukları ayrıntılı bir açıklama Pitts ve ark bulunabilir. (2012b), kan için en iyi işleme pencere uzunluğunda uzatılmış ile &quot;görüntü örtüşen&quot; yöntemi bulundu ve akışı ile uyumlu nerede . Bu işlemler MATLAB gibi, ya da sistemi ile yazılım paketi içinde bir programda elle yapılabilir.<html> yazılım önemli değil, işlemleri arkasında matematik daha önemlidir ve her işlem son hız profili doğruluğunu etkileyebilir. Ortaya çıkan vektörleri ortalama, temsilcisi hız profili elde etmek için anlık hız profilleri elde, ve zaman içerisinde yeniden ortalama için kanal boyunca uzayda ortalama olabilir. Kloosterman ve arkadaşları. (2011) alan derinliğini büyük μPIV ölçümlerde hata bir açıklama. Burada sunulan veri işleme hata üzerine tartışmalar yüksek hızlı ölçümler için darbeli ölçümleri ve Chayer ve ark. (2012) için Pitts ve ark. (2012b) bulunabilir. Hız profilleri örnekleri, Şekiller 3 ve 4&#39;te gösterilmektedir. Şekil 3H de RBC 10 ul / saat akış merkez için tek bir hız profili, bir 140 mikron genişliğinde kanal = 10 sunulur. çadır &quot;&gt; Bu tek bir profil bir hız profili almak için kanal boyunca ilişkili vektörleri ortalama elde, ve sonra bir temsilci ölçüm almak için zaman içinde ortalama olarak. Bu durumda, 100 çift görüş alanı genelinde sürede ortalaması alınmıştır. 30 ul / sa &#39;lik bir akış hızı ile programlanmış bir 100 mikron kare kanallı bir su akışı için kalibrasyon alınan 3D yeniden profilinin bir örneği Şekil 4&#39; de bulunur. Şekil 4&#39;te, profiller 1 mikron aralıklarla ölçülür. <ol start="10"><li> İSTEĞE BAĞLI: set-up tasvir yüksek hızlı görüntülerde geçiş kameralar (ve veri toplama sistemleri) ile aynı koşullar alınabilir. Bu kanal hücre içermeyen katman görselleştirmek için ve toplama miktarının belirlenmesi için yararlı olabilir. Veri analizi (Chayer ve ark., 2012) biraz daha farklıdır. </li></ol> Ve RBC toplama olmadan beyaz ışık görüntü örnekleri prese olanH = 20, Şekil 5 nted. Üst görüntüleri agrega için eritrosit yeteneğini kaldırır PBS, H = 20 1 ul / saat de gösterir. Alt görüntü 0.5 ul / saat de yerli plazma H = 20&#39;dir. Alt resimde, toplama görülebilir. <ol start="11"><li> Ölçümleri tamamlanmış zaman güvenli bir şekilde sistemini kapatın. Lazer güç kaynağı tamamen kapatılacak kadar uygun lazer güvenlik prosedürleri kullanın. </li></ol>

<ol><li>Santiago, J. G., Wereley, S. T., Meinhart, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+particle+image+velocimetry+system+for+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Experiments+in+Fluids%22%5BJournal%5D)">A particle image velocimetry system for microfluidics.</a> Experiments in Fluids. 25, 316-319 (1998).</li>
<li>Evaluation of Velocity Measurement in Micro Tube by Highly Accurate PIV Technique. Sugii, Y., Okamoto, K., Nishio, S., Nakano, A. 4th International Symposium on Particle Image Velocimetry (PIV '01), 17-19 Sept. 2001, , 1-5 (2001).</li>
<li>Park, J. S., Choi, C. K., Kihm, K. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optically+sliced+micro-PIV+using+confocal+laser+scanning+microscopy+%28CLSM%29%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Fluids%22%5BJournal%5D)">Optically sliced micro-PIV using confocal laser scanning microscopy (CLSM).</a> Exp. Fluids. 37 (1), 105-119 (2004).</li>
<li>King, M. R., Bansal, D., Kim, M. B., Sarelius, I. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+effect+of+hematocrit+and+leukocyte+adherence+on+flow+direction+in+the+microcirculation%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+of+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">The effect of hematocrit and leukocyte adherence on flow direction in the microcirculation.</a> Ann. of Biomed. Eng. 32 (6), 803-814 (2004).</li>
<li>Lima, R., Wada, S., Tsubota, K., Yamaguchi, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Confocal+micro-PIV+measurements+of+three-dimensional+profiles+of+cell+suspension+flow+in+a+square+microchannel%5BTitle%5D)+AND+%22Meas.+Sci.+Tech%22%5BJournal%5D)">Confocal micro-PIV measurements of three-dimensional profiles of cell suspension flow in a square microchannel.</a> Meas. Sci. Tech. 17 (4), 797-808 (2006).</li>
<li>Wereley, S. T., Santiago, J. G., Chiu, R., Meinhart, C. D., Adrian, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-resolution+particle+image+velocimetry%5BTitle%5D)+AND+%22Micro-+and+Nanofabricated+Structures+and+Devices+for+Biomedical+Environmental+Applications%22%5BJournal%5D)">Micro-resolution particle image velocimetry.</a> Micro- and Nanofabricated Structures and Devices for Biomedical Environmental Applications. 3258, 122-133 (1998).</li>
<li>Meinhart, C. D., Wereley, S. T., Gray, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Volume+illumination+for+two-dimensional+particle+image+velocimetry%5BTitle%5D)+AND+%22Measurement+Science+and+Technology%22%5BJournal%5D)">Volume illumination for two-dimensional particle image velocimetry.</a> Measurement Science and Technology. 11, 809-814 (2000).</li>
<li>Chayer, B., Pitts, K. L., Cloutier, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Velocity+measurement+accuracy+in+optical+microhemodynamics%3A+experiment+and+simulation%5BTitle%5D)+AND+%22Physiological+Measurement%22%5BJournal%5D)">Velocity measurement accuracy in optical microhemodynamics: experiment and simulation.</a> Physiological Measurement. , In Press (2012).</li>
<li>Tabeling, P. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTabeling%2C+P+%22Introduction+to+Microfluidics%22">Introduction to Microfluidics</a>. , Oxford University Press. Oxford, UK. (2005).</li>
<li>Olson, M. G., Adrian, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Out-of-focus+effects+on+particle+image+visibility+and+correlation+in+microscopic+particle+image+velocimetry%5BTitle%5D)+AND+%22Experiments+in+Fluids%22%5BJournal%5D)">Out-of-focus effects on particle image visibility and correlation in microscopic particle image velocimetry.</a> Experiments in Fluids. 29, S166-S174 (2000).</li>
<li>Wereley, S. T., Meinhart, C. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+advances+in+micro-particle+image+velocimetry+techniques%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Rev.+Fluid+Mech%22%5BJournal%5D)">Recent advances in micro-particle image velocimetry techniques.</a> Ann. Rev. Fluid Mech. 42, 557-576 (2010).</li>
<li>Williams, S. J., Park, C., Wereley, S. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advances+and+applications+on+microfluidic+velocimetry%5BTitle%5D)+AND+%22Microfluid.+Nanofluid%22%5BJournal%5D)">Advances and applications on microfluidic velocimetry.</a> Microfluid. Nanofluid. 8 (6), 709-726 (2010).</li>
<li>Chiu, J. J., Chen, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+disturbed+flow+on+vascular+endothelium%3A+Pathophysiological+basis+and+clinical+perspectives%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol.+Rev%22%5BJournal%5D)">Effects of disturbed flow on vascular endothelium: Pathophysiological basis and clinical perspectives.</a> Physiol. Rev. 91 (1), 327-387 (2011).</li>
<li>Secomb, T. W., Pries, A. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+microcirculation%3A+Physiology+at+the+mesoscale%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol%22%5BJournal%5D)">The microcirculation: Physiology at the mesoscale.</a> J. Physiol. 589 (5), 1047-1052 (2011).</li>
<li>Popel, A. S., Johnson, P. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microcirculation+and+hemorheology%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Fluid+Mechancis%22%5BJournal%5D)">Microcirculation and hemorheology.</a> Annual Review of Fluid Mechancis. 37, 43-69 (2005).</li>
<li>Xia, Y. N., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Soft+Lithography%5BTitle%5D)+AND+%22Angewandte+Chemie+International+Edition+England%22%5BJournal%5D)">Soft Lithography.</a> Angewandte Chemie International Edition England. 37, 551-577 (1998).</li>
<li>Whitesides, G. M., Stroock, A. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flexible+methods+for+microfluidics%5BTitle%5D)+AND+%22Physics+Today%22%5BJournal%5D)">Flexible methods for microfluidics.</a> Physics Today. , 42-48 (2001).</li>
<li>Sia, S. K., Whitesides, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microfluidic+devices+fabricated+of+poly%28dimethylsiloxane%29+for+biological+studies%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Microfluidic devices fabricated of poly(dimethylsiloxane) for biological studies.</a> Electrophoresis. 24, 3563-3576 (2003).</li>
<li>Zhou, J., Ellis, A. V., Voelcker, N. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recent+developments+in+PDMS+surface+modifications+for+microfluidic+devices%5BTitle%5D)+AND+%22Electrophoresis%22%5BJournal%5D)">Recent developments in PDMS surface modifications for microfluidic devices.</a> Electrophoresis. 31, 2-16 (2009).</li>
<li>Pitts, K. L., Abu-Mallouh, S., Fenech, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contact+angle+study+of+blood+dilutions+on+common+microchip+materials%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+the+Mechanical+Behavior+of+Biomedical+Materials%22%5BJournal%5D)">Contact angle study of blood dilutions on common microchip materials.</a> Journal of the Mechanical Behavior of Biomedical Materials. , (2012).</li>
<li>Hovav, T., Yedgar, S., Manny, N., Barshtein, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alteration+of+red+blood+cell+aggregability+and+shape+during+blood+storage%5BTitle%5D)+AND+%22Transfusion%22%5BJournal%5D)">Alteration of red blood cell aggregability and shape during blood storage.</a> Transfusion. 39, 277-281 (1999).</li>
<li>Pitts, K. L., Mehri, R., Mavriplis, C., Fenech, M. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Micro-particle+image+velocimetry+measurement+of+blood+flow%3A+validation+and+analysis+of+data+pre-processing+and+processing+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Measurement+Science+and+Technology%22%5BJournal%5D)">Micro-particle image velocimetry measurement of blood flow: validation and analysis of data pre-processing and processing methods.</a> Measurement Science and Technology. 23, 105302(2012).</li>
<li>Kloosterman, A., Poelma, C., Westerweel, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Flow+rate+estimation+in+large+depth-of-field+micro-PIV%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Fluids%22%5BJournal%5D)">Flow rate estimation in large depth-of-field micro-PIV.</a> Exp. Fluids. 50 (6), 1587-1599 (2011).</li>
<li>Goldsmith, H. L., Skalak, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemodynamics%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Fluid+Mechanics%22%5BJournal%5D)">Hemodynamics.</a> Annual Review of Fluid Mechanics. 7, 213-247 (1975).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Mikro ölçeğinde kan akımı ölçümleri için μPIV kullanarak ilgili, mekanik biyomedikal ve kimya mühendisliği süreçlerinin çok sayıda fikir verebilir. Için hesap için önemli faktörlerden bazıları RBC kendilerini, floresanlama mikro parçacıkların RBC, toplama ya da hareketin toplama ve deforme ve kanallarda eritrosit yerleşim yoğunluğu bulunmaktadır. Tüm bu yukarıda belirtilen genel kurallar takip eğer açıklanabilir. Bu sistemi kullanarak iyi bir ölçüm için akılda tutulması gereken temel bir kontrol listesi vardır. Her şeyd...

İnsan vücudu kan ve doku arasındaki temel değişim sitesi olan çapları az 50 mikron, ile çok sayıda gemi içerir. Bu damarlarda kan akımı çalışma ölçümlerin ölçek ve kanın sıvı özellikleri hem nedeniyle önemli bir sorun teşkil etmektedir. Basınç farkı, duvara kesme ve arteriol ve venüllerdeki hız profilleri dahil Bu ölçümler, fizyolojik yanıtlar ile bağlantılı önemli faktörlerdir. Bu ölçüm zorlukları çözmek için eşi görülmemiş fırsatlar, mikro çalışma ve bu ölçek sorunu çözmek için mikro ölçekte yeni deneysel teknikler sayesinde artık vardır. Mikro-parçacık görüntü velosimetri (μPIV) çapraz korelasyon ile mikro kan akım hızı profilleri değerlendirmek için kullanılan bir parçacık tabanlı akış görüntüleme tekniğidir. İlk Santiago ve ark. tarafından geliştirilen μPIV, Hemoreoloji ile kullanılmışSugii ve arkadaşları bu yana çalışmaları. 2001 yılında 100 mikron yuvarlak cam tüplerde 1,2 kan akışını ölçmek için tekniği kullanılmıştır. ΜPIV varlığını farklı yaklaşımlar. Yüksek hızlı kameralar kırmızı kan hücrelerinin (RBC) hareketi ilişkilendirmek için kullanılabilir, ve darbeli görüntü izleme partiküllerin hareketi ilişkilendirmek için kullanılabilir. Bu seçeneklerden herhangi birini uygulamaya bağlı olarak, dik ya da ters bir mikroskop ile birleştiğinde olabilir. Her iki durumda da, sonuç 2B hız profilidir. Diğer bir yaklaşım, 2D ve 3D profil elde etmek için bir konfokal mikroskop kullanmaktır. Bu yöntem, kan 3,4,5 uygulanmıştır. Makro PIV ile karşılaştırıldığında mikro ölçekli PIV çeşitli komplikasyonlar vardır. Makro PIV verileri ışık yaprak ile tek bir düzleme sınırlı olabilir, ancak mikro ölçekli ses aydınlatma de gereklidir. Eritrositler kendilerini C ile karşılaştırmalı olarak büyük olduğu gibi Cilt aydınlatma, mikro kan akışı görüntüleme için daha büyük bir sorundurhannels ve izleyici parçacıklar olarak kırmızı kan hücreleri ile önemli ölçüde çapraz-bağıntı sonuçları 6,7,8 doğruluğu azaltabilir korelasyon derinliğe (DOC) yol açar. 1 mikron izleyici parçacık ile DOC 6.7 mikron iken izleyiciler olarak RBC ile 40 mikron boyunda kanal için Wereley et al. (1998) DOC ardından, 8.8 mm. Kanal yüksekliği ve büyütme değiştirirken bu fark daha belirgin hale gelir. Buna ek olarak, RBC opak ve akış eritrositlerde yoğunluğu artan görüntüleme problemlere yol açmaktadır. Mümkün olan en küçük parçacıklar kullanırken ilk Santiago ve ark. (1998) tarafından kullanılan floresanlama izleyici parçacıklar, out-of-odak parçacıkların etkisi azaltmak için bir araç olarak savunulmuştur. 1 mikron çaplı Florasanl kullanarak lazer ile birleştiğinde mikropartiküller mikro kan akımı görüntüleme 10 odak sorunun derinliğini azaltabilir bir yaklaşımdır. ΜPIV tec eyaletinin çeşitli güncel yorum varkan akım çalışmaları 11,12 için μPIV önemini vurgulamaktadır her biri hnology,. Kan μPIV kullanıldığında birkaç önemli hususlar dikkate alınmalıdır. Mikro düzeyde, mikro ölçekte, kan, bir Newton tipi sıvı (plazma) içinde süspansiyon haline esnek kırmızı kan hücrelerinin (RBC), geniş, beyaz kan hücreleri, trombositler ve diğer proteinlerden bir süspansiyon olarak, homojen bir sıvı olarak kabul edilemez . Burada ölçülen hız profilleri mikro kan akımları belirli özelliklerini ölçmek için kullanılabilir. Microhemorheology en önemli faktörler, kan akış hızı, hız profilinin şeklini, ve kabın duvarına kesme stres vardır. Mikro vücutta besin alışverişi için site olduğu için bu bilgiler, klinik etkileri vardır, ve bu değişim kesme bağımlıdır. Mikro araştırma durumuna birkaç mevcut gözden geçirme çalışmaları, hem de 13 vardır14,15. Burada sunulan polidimetilsiloksan (PDMS) mikro kan akımlarının μPIV ölçümleri için bir protokoldür. PDMS kanalları protokol 1. bölümde kaynakları takip içi hazırlandı. Domuz kan örnekleri akredite bir mezbaha elde edilen ve protokol bölümünde 2 sonra temizlendi. Tüm veriler gibi protokol bölüm 3&#39;te tarif LaVision MİTAŞ μPIV sistemi kullanılarak elde edilmiştir. YAG lazer (New Wave Araştırma, ABD) ve CCD kamera (Resim Yoğun, Lavision) programlanabilir bir tetikleme ünitesi, 3 eksende hareket eden bir sahne ile birleştiğinde bir floresan mikroskop ve bir bilgisayar tarafından kontrol,: set-up bir Nd oluşur yüksek hızlı bir kamera (Dalsa 1M150, Hollanda) ek olarak kırmızı kan hücreleri kendileri görselleştirilmesi için ilave edildi. Her iki fotoğraf makinesi, 2 port optik kutusu (Zeiss Özel, Almanya) bağlanır. Kan akımı in vivo ölçümleri tipik olarak, dik bir mikroskop kırmızı kan hücreleri izlemek için kullanılırmselves, in vitro uygulamalarda tipik bir ters bir mikroskop izleyici parçacıkları izlemek için kullanılır ise. Set-up Bu benzersiz çift olarak, optik kutusu hem izleyiciler ters bir mikroskop kullanılarak görüntülü sağlar. Kan bir yüksek hassasiyetli şırınga pompası (Nexus3000, Chemyx Inc, ABD) ile mikroçip girmiştir. Sistemin bir diyagramı Şekil üst kısmı PDMS işlenmiş 40 um dikdörtgen kanallar 140 mikron temsil Şekil 1 &#39;de gösterildiği üzere, ve alt kısmında iki kamera, lazer, şırınga pompası ve bir de dahil olmak üzere tüm sistemi temsil eder mikroskop. Güncel μPIV set-up mevcuttur, genellikle özel yazılım ile, TÜİK, Dantec Dinamiği ve LaVision içerir. Standart çapraz korelasyon algoritmaları MATLAB gibi birçok yazılım seçenekleri, ile elde edilebilir. Yazılım diyalog kutuları matematiksel kullanımı hizmet edecek karşılık anlama, anahtar değilr çok daha iyi. Bu protokol Davis, LaVision tescilli yazılım veya MATLAB kullanılmaktadır. Protokol özel yazılım değil, menü seçenekleri farklı yazılım paketleri farklı yerlerde olabilir.

<table><tbody><tr><td>poli (dimetilsiloksan) (PDMS), yani Sylgard-184</td><td>Dow-Corning</td><td>3097358-1004</td><td></td></tr><tr><td>etilendiamintetraasetik asit (EDTA)</td> <td>Sigma Aldrich</td><td>E9884-100G</td><td></td></tr><tr><td>poshpate tamponlu salin (PBS)</td> <td>Sigma Aldrich</td><td>P5368-10PAK</td><td></td></tr><tr><td>floresan mikro parçacıklar</td><td>Microgenics/FisherSci</td><td>R900</td><td></td></tr><tr><td>gliserol (İSTEĞE BAĞLI)</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G6279-500 ml</td><td></td></tr><tr><td>mikrosantrifüj, yani CritSpin</td><td>FisherSci</td><td>22-269-291</td><td></td></tr><tr><td>şırınga, yani 50 &mu; l Gaz geçirmez</td><td>Hamilton</td><td>80965</td><td></td></tr><tr><td>kamera, yani Görüntüleyici Yoğun, yüksek hızlı</td><td>LaVision, Dalsa</td><td>Görüntüleyici Yoğun</td><td></td></tr><tr><td>mikroskop, i.e. MITAS</td><td>LaVision</td><td>MITAS</td><td></td></tr><tr><td>Nd: YAG lazer</td><td>Yeni Dalga Araştırma</td><td>Solo-II</td><td></td></tr><tr><td>şırınga pompası, i.e. Nexus3000</td><td>Chemyx, Inc.</td><td>Nexus-3000</td><td></td></tr><tr><td>esnek boru, yani Tygon</td><td>FisherSci</td><td>14-169-1A</td><td></td></tr><tr><td>veri işleme yazılımı, i.e. DaVis</td><td>LaVision</td><td>DaVis</td><td></td></tr><tr><td>santrifüj, i.e. Thermo Scientific CL2</td><td>Thermo Scientific</td><td>004260F</td><td></td></tr></tbody></table>

mikro kan akış hızı profil ölçümleri için mikro-parçacık imaj velosimetri

Micro-particle Image Velocimetry for Velocity Profile Measurements of Micro Blood Flows

Mikro-parçacık görüntü velosimetri (μPIV) kan akımlarında numaralı seribaşı mikro parçacıklar eşleştirilmiş görüntüleri görselleştirmek için kullanılır. Görüntüler doğru bir hız profili vermek için çapraz ilişkili bulunmaktadır. Bir protokol mikro kan akımlarının μPIV ölçümleri için sunulmuştur. Mikro ölçeğinde, kan plazma, Newton tipi bir sıvıda asılı esnek parçacıkların bir süspansiyon olarak, homojen bir sıvı olarak kabul edilemez. Kayma hızı, maksimum hız, hız profili şekil ve akış hızı bu ölçümler elde edilebilir. Bu odak derinliği, partikül konsantrasyon ve sistem uyum gibi çeşitli anahtar parametreleri, çeşitli hematokrit ve akış koşulları için örnekler ve temsilcisi sonuçları ile birlikte doğru, yararlı veriler sağlamak için sunulmuştur.

Tüm rakamlar olarak, akış ham görüntüleri ve hız profilleri yukarı doğru doğru bırakılır. Hematokrit H = 10 10 ml / st &#39;de akan kan ile elde edilen ham verilerin bir örneği, Şekil 2&#39;de gösterilmiştir. Ham veri hız profilleri elde etmek için herhangi bir veri işleme olmadan çapraz korelasyon olabilir. Ön işleme ve veri işleme yöntemlerinin etkisi Pitts, et al., (2012b) tarafından tartışılmıştır. Hematorcrit H, 2 Şekil l&#39;e benzer veriden bir sonuç hız profilinin bir ö...

Mikro-parçacık görüntü velosimetri (μPIV) doğru bir hız profili vermek için çapraz ilişkili olan kan akışındaki numaralı seribaşı mikro parçacıklar eşleştirilmiş görüntüleri görselleştirmek için kullanılır. Klinik uygulama için, her biri kesme hızı, maksimum hız, hız profili şekil ve akış hızı, bu ölçümler elde edilebilir.

Mikro Kan akış hızı Profil ölçümleri için mikro-parçacık imaj velosimetri

Micro-particle image velocimetry (&mu;PIV) is used to visualize paired images of micro particles seeded in blood flows. The images are cross-correlated to ...

Bu prosedürün genel amacı, mikroparçacık görüntü LOC simetrisi kullanarak bir mikrokanaldaki kan çözeltisinin hız profilini ölçmektir. Bu işlem, öncelikle ölçeği belirlemek, görüntüyü ve zamanlamayı ayarlamak ve kanalın merkez düzlemini bulmak için mikrokanalda Newtonyen bir çözelti kullanarak sistemin kalibre edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım ise kan çözeltisinin kanal düzeneğine verilmesi ve mikro kabarcık bulunmadığından emin olunmasıdır.Ardından, darbeli bir kameradan alınan görüntü çiftleri veya yüksek hızlı bir kameradan alınan video kullanılarak, kanaldaki istenen düzlemlerde kan akışının görüntülemesi yapılır. Son adım, kanal içindeki yer değiştirme vektör alanını elde etmek için görüntü çiftleri veya video dizisi arasında çapraz korelasyon uygulamaktır. Nihayetinde, temsili bir hız profili elde etmek için yer değiştirme vektör alanı kanal boyunca ve ölçüm zaman dilimi üzerinden ortalamalanabilir.Bu profil daha detaylı analiz edilebilir veya hesaplamalar için kullanılabilir. Bu yöntem; hız profilinin şekli ve mikro damarların duvarındaki kayma hızı gibi biyomedikal ve biyosıvılar alanındaki temel sorulara yanıt verebilir. Genel olarak, bu yöntemde yeni olan kullanıcılar, kan gibi biyolojik örneklerin kullanımındaki zorluklar ve doğru ölçümler yapmanın beraberinde getirdiği karmaşıklıklar konusunda sorun yaşamaktadırlar.İlk adım, Polimetil SUBOXANE veya PDMS'den bir mikrokanal temin etmektir. Bu deneydeki mikrokanallar yaklaşık 50 mikron derinliğinde ve 150 mikron genişliğindedir. PDMS'nin akışkanla temas eden tarafını ve üzerine yapıştırılacağı cam lamı 45 saniye boyunca oksijenli plazmaya maruz bırakın.Ardından, kalıcı bir bağ oluşturmak için bunları sıkıca birbirine bastırın. Bu deneyde, taze toplanmış porcine kanı kullanılır. Hazırlamak için, iki mililitre suya 0.5 gram EDTA ekleyin.Ardından solüsyonu, 10 kez hafifçe karıştırılmış bir litre ılık tam kana ekleyin ve kan oda sıcaklığındayken oda sıcaklığına soğumaya bırakın. 50 mililitre kan örneğini 3000 RPM'de 10 dakika boyunca santrifüjleyin. Bu işlem tamamlandıktan sonra, plazmayı uzaklaştırmak için bir pipet kullanın.Ardından, buffy coat çıkarıldıktan sonra tekrar kanla karışmaması için, buffy coat'u uzaklaştırmak üzere bir pipeti yavaşça yerleştirin. Yaklaşık 20 mililitre fosfat tamponlu salin veya PBS ekleyip nazikçe karıştırın; santrifüjleme, plazma ve buffy coat'un uzaklaştırılması ile PBS ekleme işlemlerini iki kez daha tekrarlayın. Son santrifüjden sonra, kalan buffy coat ile birlikte PBS'yi uzaklaştırın.Temizlenmiş eritrositleri alın ve istenen konsantrasyonlarda PBS veya plazma içinde süspande edin. Buradaki örnek %10 eritrosit veya 10 hematokrit değerine sahiptir. Ardından, kan örneklerine istenen konsantrasyonda bir mikronluk floresan izleyici partiküller ekleyin; bu sistemde her 1 mL kan için yaklaşık 30 µL eklenir.Ayrıca, bu aşamada, deiyonize su ve floresan partiküller ile bir kalibrasyon çözeltisi hazırlayın. Bu deneyin verileri, darbeli kameraya sahip bir lavis lazer görüntüleme sistemi kullanılarak toplanmaktadır. Bu sistem, bir ND YAG lazer ile eşleştirilmiştir.Verileri toplamadan önce, lazer çalışmaları için gerekli tüm güvenlik önlemlerini alın. Mikroçipi, mümkün olan en küçük şırıngayı (burada 50 µL) ve mümkün olan en kısa hortum miktarını kullanarak şırınga sistemine bağlayarak hazırlayın. Sıvı sızıntısını ve hava girişini azaltmak için hortumu çipteki şırıngaya PDMS yapıştırıcı veya vazelin ile mühürleyin.Sıvının potansiyel kontaminasyonundan kaçınmaya dikkat edin. Sistemi önce kalibre etmek için, mikro şırıngayı doldurmak üzere kalibrasyon solüsyonunu kullanın. İlk olarak, standart bir şırıngayı su ve floresan partikül solüsyonu ile doldurun. Pistonu mikro şırıngadan çıkarın.Kalibrasyon çözeltisini mikrokanal çıkışına enjekte etmek için standart şırıngayı kullanın. Bu işlem, sıvının mikro şırıngayı doldurmasını ve açık ucundan dışarı çıkmasını sağlayacaktır. Mikroçip tüplerinde veya mikro şırıngada hiç mikrokabarcık kalmayana kadar sıvıyı enjekte etmeye devam edin.Mikrokabarcıkların bulunmadığını doğrulamak için mikro şırınga pistonunu geri takın ve sistemi bir mikroskopla inceleyin. Mikrokabarcıklara örnekler burada gösterilmiştir; sistemde mikrokabarcık yoksa, standart şırıngayı çıkarın ve yerine çıkış akışını toplamak için bir şırınga takın. Ardından, kalibrasyon sıvısı içeren mikro şırıngayı şırınga pompasına bağlayın ve pompayı teraziye getirin.Böylece borulama yatay konumdadır. Şırınga pompasını istenen akış hızına programlayın. Mikroçipi ters mikroskop tablasına yerleştirin.Şimdi sistemi kalibre edin. İlk olarak, kanalın merkezindeki hız profilini ölçün. Ayrıca darbeli görüntüler arasındaki süreyi kalibre edin.Parçacıklar, kareler arasında beş ile 10 piksel arasında hareket etmelidir. İyi bir korelasyon için ölçümü kanalın ortasında yapmaya dikkat edin. Kalibrasyon tamamlandığında, mikro şırıngayı, pistonu ve çıkış şırıngasını çıkarın ve sistemi saf su ile durulayın.Ardından, standart bir şırınga kullanarak hazırlanan kanı mikro kanal çıkışından enjekte ederek sistemi doldurun. Mikroskopla doğrulandığında mikro kabarcık kalmayana kadar işleme devam edin. Daha sonra mikro şırınga pistonunu yerine takın.Ardından, kan yüklü mikro şırıngayı şırınga pompasına yerleştirin ve hizalayın. Pompa ayarlarını aynı tutun. Mikroçipi mikroskop tablasına yerleştirin ve pompayı çalıştırın.Alyuvarların şırıngada çökmesini önlemek için veri toplamaya başlayın ve her bir veya iki çalışmadan sonra şırıngayı yeniden doldurun. Tüm veriler toplandıktan sonra, görüntüler burada gösterildiği gibidir. Bunlar, %10 alyuvar konsantrasyonu ve saatte 10 microliters akış hızı için elde edilen ham verilerdir.Üstteki görüntü birincidir. Alttaki görüntü 100 saniye sonra çekilmiştir. Bu görüntüler, ön işleme sonrası arka plan gürültüsünü gidermek için ön işlemden geçirilmiştir.Hız alanlarını elde etmek için görüntüler arasında çapraz korelasyon yapılır. Bu, %10 kırmızı kan hücresi içeren ve saatte 10 microliters akış hızına sahip bir sistemden elde edilen hız profilindeki bir sonuç örneğidir. Dikey eksenin hızı temsil ettiğine dikkat edin.Farklı kameralar ve veri toplama sistemleri kullanılarak yüksek hızlı görüntüler alınabilir. Bu, kanaldaki hücreden arınmış tabakanın görselleştirilmesi ve agregasyonun nicelleştirilmesi için faydalı olabilir. Bu görüntüler, üstteki görüntüde %20 eritrosit içeren örneklere aittir.Akış hızı saatte bir mikrolitre olup kan hücreleri, agregasyon yeteneklerini ortadan kaldıran PBS içerisinde süspande edilmiştir. Alttaki görüntüde akış hızı saatte 0,5 mikrolitredir ve kan hücreleri natif plazma içerisinde süspande edilmiştir.Bu durumda agregasyon görünür hale gelir. Bu prosedürü uygularken, odak noktasında elde edilen net görüntülerin, birbirini takip eden görüntü çiftleri arasında en iyi korelasyonu sağlayacağını hatırlamak önemlidir. Bu videoyu izledikten sonra, kanın bir çalışma akışkanı olarak beraberinde getirdiği zorluklara rağmen, mikropartikül görüntü hızı simetrisinin kan mikro akışlarına nasıl uygulanacağı konusunda daha iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.

micro-particle-image-velocimetry-for-velocity-profile-measurements

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Intravital mikroskopi pial mikrosirkülasyon zamansal ve mekansal hemodinamik ve inflamatuar olayları takip etmek.

Kapalı Kranial Pencere kullanarak Fare Beyin Mikrosirkülasyon intravital Mikroskopi

Optik opak sıvılar veya optik opak geometrileri vasıtasıyla hızının iki boyutlu alanları edinme yeteneğine sahip bir yankı parçacık görüntülemeli hız (EPIV) sistemi tanımlanmakta olup, boru akışı validasyon ölçümleri bildirilmiştir.

Parçacık Hızı Echo

Yüksek çözünürlüklü, yüksek hızlı parçacık görüntü velosimetri (PIV) kullanarak sınırları yakınında geçici akımları incelemek için bir prosedür burada açıklanmıştır. PIV gibi görüntü ve kayıt özellikleri, lazer sac özellikleri ve analiz algoritmaları gibi birçok parametre kısıtlamaları optimize ederek herhangi bir optik erişilebilir akışı için geçerli olmayan bir müdahaleci ölçüm tekniğidir.

Yüzeyler Yakın yüksek hızlı Partikül imaj velosimetri

İntravital mikroskopi, hayvanlarda retina vasküler çaplarını, kan dolaşım hızlarını ve toplam retinal kan akışını görselleştirmek ve ölçmek için kullanılabilir.

Farelerde Retinal Kan Akışının İntravital Video Mikroskobu Ölçümleri

protokol görüntü işleme tekniklerine dayanan, detay kontrollü ve sürekli kayma hızı altında Eritrosit (RBC) agrega ölçmek için deneysel bir prosedür tarif. Bu protokolün amacı, kontrollü bir mikroakışkan bir ortamda gelen kayma oranı RBC agrega boyutları ilişkilendirmek olduğunu.

Kırmızı Kan Hücresi Toplama Dinamik Soruşturma Kontrollü mikroakışkan Çevre

Bu çalışmada ölçüm ve analiz, hızları kan mikrosirkulasyon değerlendirme cihazları tek bir deneyde bir lazer benek kontrast Imager kullanarak alternatif bir roman tekniği tanıttı.

Görüntüleme sistemi hızları kan mikrosirkulasyon değerlendirme alternatif için bir lazer benek kontrast kullanırken hareket artefaktı üstesinden gelmek için yeni bir yaklaşım

Moleküler hidrodinamik oluşum yoğun sıvılar içinde çalışmak için deneysel olarak erişilebilir bir analog yöntem sunulmaktadır. Teknik partikül imaj velosimetri sıkıştırılmış, yüksek-restitüsyon tahıl kazık kullanır ve doğrudan, makroskopik gözlem dinamik süreçlerin bilinen ve güçlü etkileşim, yüksek yoğunluk gaz ve sıvı var tahmin sağlar.

Moleküler hidrodinamik süreçlerinde yoğun gaz ve sıvı için Analog bir makroskopik yüntem

Burada açıklanan teknik parçacık kinematik ve türbülans akar düşük parçacık konsantrasyonları ile eşzamanlı olarak ölçmek için düşük maliyetli ve nispeten basit bir yöntem sunar. Türbülans partikül imaj velosimetri (PIV) ölçülür ve parçacık kinematik bir örtüşen alan bakış açısı yüksek hızlı kamera ile elde edilen görüntüler üzerinden hesaplanır.

Eş zamanlı ölçüm türbülans ve akış görüntüleme teknikleri kullanarak parçacık kinematik

Burada şeffaf nörovasküler hayaletler imalatı ve akışını orada karakterize için Basitleştirilmiş Yöntem mevcut. Biz birkaç önemli parametreler vurgulayın ve alan doğruluk ile ilişkilerini göstermektedir.

Mezo-ölçek Partikül İmaj Velosimetri çalışmaları nörovasküler Vitro akar

Yüksek hızlı kılcal akış görüntü dizilerinden mikrovasküler akışı ölçmek için, PERSONEL (Alan Sala¤›l›K A¤›n›n Mekansal Zamansal Analizi) yaz›l›m› gelifltirildi. Tam görüntü alanı boyunca ve zaman içinde, STAFF akış hızlarını değerlendirir ve nicel analizler için görselleştirme ve tabular çıktı için renk kodlu uzamsal haritalar dizisi oluşturur.

Mikrovaskülüste AlanSal Akışın Mekansal Zamansal Analizi

Bu protokol, transkateter aort kapağının (TAV) in vitro kurulumundan sinüs akışını araştırmak için yapılan partikül görüntü velosimetrisi (PIV) ölçümlerini açıklamaktadır. Hıza dayalı hemodinamik parametreler de belirlenir.

Partikül İmajı Velosimetrisi Aort Fantomu ile Hemodinamiğin İncelenmesi

Öğrenin mikro-parçacık görüntü hız ölçümü ile mikrokanallardaki kan akışı hız profillerini nasıl ölçeceğinizi. Bu yöntem, kayma hızı ve maksimum hız gibi akış özelliklerini belirlemeye yardımcı olur.

Mikro Kan akış hızı Profil ölçümleri için mikro-parçacık imaj velosimetri

Daha fazla video keşfet