Name: Ağaç Dokuların içinde eklembacaklı ve Mikrobiyal Toplulukları incelenmesi için Tekniği (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-11-16T14:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 30 s
Description: Öğrenin ağaç floemindeki eklembacaklı ve mikrobiyal toplulukları incelemek için floem sandviçi yöntemini. Bu teknik, kabuk böcekleri, akarlar ve mantarların davranışlarını gözlemlemek için kullanılır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yardımları için Eli Jensen, Stefano Padilla ve Kasey Yturralde'ye, Karen London'a ve el yazmasının isimsiz eleştirmenlerine teşekkür ederiz. Video görüntüleri için Jake Baker ve Karla Torres'e teşekkür ederiz. NAU Ormancılık Okulu ve NAU Teknoloji ve Araştırma Girişim Fonu (TRIF) tarafından RWH'ye finansman sağlandı.

1. Phleom Seçimi ve Ağacından Kaldırma <ol><li> Belirli özelliklere sahip bir ağaç seçin. Çam dan Phleom toplayın (yani, cinsi Pinus ağaçlar) onlar birkaç milimetre kalınlığında farklı bir floem tabakası. 18,27 bir ağaç tespit edildikten sonra örneğin böcek saldırıları gibi başka herhangi bir kusurları olmadığını kontrol edin, birkaç alt dalları vardır var gibi ve / veya bir patojen görülmüyordu. Alternatif olarak, bu floem sandviç ladin ağaçlarına gibi kozalaklı ağaçlardan floem kullanımı. 9. diğer ağaç türleri gibi sert ağaç gibi floem çıkarılması için uygun olabilir. NOT: Büyük kronlar ile iğne yapraklı ağaçlar genellikle kalın floem dokusu var. Floem miktarını maksimize etmek için, bu gövde (bole) üzerine birkaç kusurları ve şubeleri var ağaçları kesmek en iyisidir. En iyi öz-budama çalışması olan çam türleri. Floem, tipik olarak, büyüme mevsimi boyunca kalın ve yere yakın gövdelerinde daha yukarı kalındır. Phleom remov bazen zordursonbahar ya da kış mevsiminde ağaçlardan e. </li><li> Aşağı bir ağaç kesmek veya floem dokusu elde etmek için yeni kesilmiş günlükleri kullanın. Ağaca zarar yanı sıra yakındaki ağaçları minimize edecek bir düşme yönünü seçin. Gövde kapalı kesim şube floem çıkarılması sırasında kabuğu materyallere daha kolay erişimi için. </li><li> Bir ağaç kesildiğinde (kesilen, yere düştü) keskin bir beraberlik bıçak (. Şekil 1A) ile gövde kapalı kabuğu kazıma başlar. Floem tabakası ulaşana kadar kapalı kabuğu bir alanı kazıyın. NOT: dış kabuğu rengi (. Şekil 1B) kuru ve koyu ise floem tabakası, tipik renk (örneğin, krem rengi) ve nemli hafiftir. Floeme kazımak için değil özel özen gösterin. Kabuklardan alan gereklidir floem birim (ler) büyüklüğüne bağlıdır kazındı. </li><li> Kabuğu kaldırıldıktan sonra, keskin bir bıçakla floem parçasının bir taslak kesti. Bıçak tüm yol ksilem (Şekil. 2A) keser emin olun. </li><li> Floem kaldırmak için dikkatlice floeme geri soymak için parmaklarınızı kullanarak floem parçasının bir köşesinde başlar. Ksilem kapalı floem kazıma yardımcı olmak için bir bıçak kullanın. Tüm parça kaldırılıncaya kadar floeme çekerek devam edin. NOT: Phleom genellikle yaz aylarında kolay ağacın soyulmaktadir. Kaldırmak son derece zordur floeme için bir spatula şeklinde aracı çaba yardımcı olabilir. </li><li> Steril bir torbaya hemen floem parça yerleştirin. En iyi sonuçlar için, vakum ziploc çanta kullanıyorsanız, çanta tüm havayı kaldırmak, çanta (Şekil. 2B) mühür veya. Bu, floem ömrünü artırmaktadır. İsteğe bağlı olarak, bir torba içinde floem çoklu parçalar yerleştirin. Biraz tazeliğini korumak için (1 ve 10C arasında) donma yukarıdaki hava sızdırmaz torbalarda saklayın floem. </li></ol> 2. Phleom Sandwich oluşturma <ol><li> Berrak akrilik, polikarbonat veya benzeri sert, saydam bir malzeme (örneğin, cam) biraz büyük iki eşit parçaya kesilirfloem birim (Şek. 2C) daha r. Akrilik yuvarlak kenarları Parafilm mührü kopmasını köşeleri önlemek için. Bu protokol. Kalınlığında şeffaf akrilik bir 1/8 kullanır. Not: kesilmiş parçaların boyutu konusu organizmanın ihtiyaç ve çalışma uzunluğuna bağlıdır. Örneğin, kabuk böceklerinin bir çifti aylık dönemde floem 4 dm 2 kullanır, ancak çalışma birkaç gün içinde yer alırsa sadece 1 dm2 gerekir. </li><li> Çalışma organizma (lar) girişine izin akrilik parçalarından biri bir delik delin. Deliklerin büyüklüğü ve sayısı, hedefler (Şek. 2D) bağlıdır. </li><li> Akrilik parçaları arasındaki floeme yerleştirmeden önce, akrilik yüzey (&gt;% 70 etanol) sterilize veya yeni akrilik kullanıyorsanız, folyoyu çıkarın. </li><li> Steril akrilik parçaları arasındaki floem taze parça yerleştirin. Floem iç veya dış yanı üzerindeki delik (ler), Orient akrilik parçası whichever gereklidir. Tipik olarak, giriş ağzına doğru floem (üzerinde kabuğu vardı taraf) dış yan yüz. </li></ol> 3. Phleom Sandwich Sızdırmazlık <ol><li> Floem sandviç etrafında geçici bir mühür oluşturmak için, içinde 2 kullanın. Floem sandviç (Res. 2C) kenarlarında çekti geniş Parafilm şeritler. Alternatif olarak, kenarları sızdırmazlık için bir poliviniliden klorür kaydırmak. 6. Daha sonra, floem için akrilik sıkılması için sandviç her bir tarafında bir kelepçe yerleştirin. Tüm yüzeyi akrilik ve floem (Şekil 2C) arasında hava boşluğu önlemek için aşağı kenetlenmiş olduğundan emin olun. Düzgün kenetlenmiş değil, örnekler akrilik ve floem arasında hareket edebilir. </li><li> Yarı-kalıcı mühür floem etrafında olmayan bir yapıştırma epoksi veya vazelin eklemek oluşturmak için. Materyal tamamen floeme çevreleyen emin olun. Sonra, cıvata ile kelepçeleri veya vidaları kullanın floem sıkı akrilik tutmak için (vaktinden delmenizi gerekebilir).Sandviç, yalnızca en fazla bir ya da iki ay için geçerli kalır. </li><li> Çalışma organizmaların oksijen ihtiyaçlarına bağlı olarak, sandviç bir veya daha fazla tarafında bir hava filtresi ekleyin. Bu hava floem sandviç içine girmek ancak floem su kaybını sınırlamak için izin verecektir. Biz de mantar ve bakteriyel kontaminasyon riskini azaltmak basit kömür filtreleri kullanın. </li><li> Irade giriş ve çıkış gerektiren çalışma örneklerinde, bir böcek içine delik odun veya benzeri malzeme ile akrilik parçalarından birini değiştirin. Larva devlet floem tabakası tamamlanmış bu ahşap deliciler gözlem için özellikle önemlidir, çünkü sonra, daha sonra ksilem içine taşıyordu. </li><li> Giriş delikleri çıkmadan test denekleri önlemek için, delikleri üzerinde küçük petri yemekler (veya diğer nesneleri, bant), engelleme kaçış yerleştirin. Bu mekanlarda ikamet organizmalar düşük ışık seviyelerinde alıştırmak olduğundan, karanlık bir odada veya kutu veya yer o da sandviç yerleştirmek için gerekli olabilirüstüne paque malzeme ışığı engellemek için. </li></ol> Phleom Sandwich 4. Gözlem organizmalar <ol><li> Floem sandviç (Şekil. 2B) girişi deliğe çalışma örneklerini tanıtmak. Kırmızı ışık veya düşük ayarda (Res. 2E) ayarlanmış beyaz ışık altında bir diseksiyon mikroskobu kullanılarak örneklerini görmek. </li><li> Floem Sandviç içinde örneklerin faaliyetleri veya büyüme kaydetmek için mikroskop bir kamera veya video kamera takın. Mikroskop merceğine (Res. 2E &amp; F) özel video kameralar takın. Kene, nematod ve Yalancı gibi çok küçük organizmalar için, mikroskop bağlı bir yüksek çözünürlüklü video kamera kullanın. </li><li> Sesleri kaydetmek için, floem sandviç giriş deliğine veya floem sandviç tarafında aracılığıyla mikrofonları yerleştirin. Giriş deliği küçük olduğundan, böyle bir dielektrik kondansatör mikrofon gibi küçük bir mikrofon kullanın. </li><li> Yan yüzeyden ve kaydetmek içinfloem sandviç bir piezo elemanı (Şekil. 3B) kullanın. Sesi oynatmak için, aynı piezo elemanı kullanın veya akrilik üst veya alt yüzeyine bir dokunsal transdüser (excitor) ekleyin. </li></ol>

<ol><li>Aukema, B. H., Raffa, K. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavior+of+adult+and+larval+Platysoma+cylindrical.+%28Coleoptera%3A+Histeridae%29+and+larval+Medetera+bistriata.+%28Diptera%3A+Dolichopodidae%29+during+subcortical+predation+of+Ips+pini+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Insect+Behav%22%5BJournal%5D)">Behavior of adult and larval Platysoma cylindrical. (Coleoptera: Histeridae) and larval Medetera bistriata. (Diptera: Dolichopodidae) during subcortical predation of Ips pini (Coleoptera: Scolytidae).</a> J Insect Behav. 17, 115-128 (2004).</li>
<li>Bedard, W. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+number+of+larval+instars+and+the+appropriate+length+of+the+larval+stadia+of+Dendroctonus+pseudotsugae.+Hopk.%2C+with+a+method+for+their+determination+in+relation+to+other+bark+beetle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Econ+Entomol%22%5BJournal%5D)">The number of larval instars and the appropriate length of the larval stadia of Dendroctonus pseudotsugae. Hopk., with a method for their determination in relation to other bark beetle.</a> J Econ Entomol. 26, 128-134 (1933).</li>
<li>Bridges, J. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nitrogen-fixing+bacteria+associated+with+bark+beetles%5BTitle%5D)+AND+%22Microb+Ecol%22%5BJournal%5D)">Nitrogen-fixing bacteria associated with bark beetles.</a> Microb Ecol. 7, 131-137 (1981).</li>
<li>Cardoza, Y. J., Klepzig, K. D., Raffa, K. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bacteria+in+oral+secretions+of+an+endophytic+insect+inhibit+antagonistic+fungi%5BTitle%5D)+AND+%22Ecol+Entomol%22%5BJournal%5D)">Bacteria in oral secretions of an endophytic insect inhibit antagonistic fungi.</a> Ecol Entomol. 31, 636-635 (2006).</li>
<li>Cardoza, Y. J., Moser, J. C., Klepzig, K. D., Raffa, K. F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multipartite+symbioses+among+fungi%2C+mites%2C+nematodes%2C+and+the+spruce+beetle%2C+Dendroctonus+rufipennis%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Entomol%22%5BJournal%5D)">Multipartite symbioses among fungi, mites, nematodes, and the spruce beetle, Dendroctonus rufipennis.</a> Environ Entomol. 37, 956-963 (2008).</li>
<li>Chen, H. -F., Salcedo, C., Sun, J. -H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Male+mate+choice+by+chemical+cues+leads+to+higher+reproductive+success+in+a+bark+beetle%5BTitle%5D)+AND+%22Animal+Behavior%22%5BJournal%5D)">Male mate choice by chemical cues leads to higher reproductive success in a bark beetle.</a> Animal Behavior. 83, 421-427 (2012).</li>
<li>Dodds, K. J., Graber, C., Stephen, F. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Facultative+intra+guild+predation+by+larval+Cerambycidae+%28Coleoptera%29+on+bark+beetle+larvae+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environmental+Entomology%22%5BJournal%5D)">Facultative intra guild predation by larval Cerambycidae (Coleoptera) on bark beetle larvae (Coleoptera: Scolytidae).</a> Environmental Entomology. 30, 17-22 (2001).</li>
<li>Franklin, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+technique+for+studying+the+insect+parasites+of+Dendroctonus+frontalis.+and+other+bark+beetles+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Georgia+Entomology+Society%22%5BJournal%5D)">A technique for studying the insect parasites of Dendroctonus frontalis. and other bark beetles (Coleoptera: Scolytidae).</a> Journal of Georgia Entomology Society. 2, 43-44 (1967).</li>
<li>Gries, G., Pierce, H. D. Jr, Lindgren, B. S., Borden, J. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((New+techniques+for+capturing+and+analyzing+semiochemicals+for+Scolytid+beetles+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22J+Econ+Entomol%22%5BJournal%5D)">New techniques for capturing and analyzing semiochemicals for Scolytid beetles (Coleoptera: Scolytidae).</a> J Econ Entomol. 81, 1715-1720 (1988).</li>
<li>Hofstetter, R. W., Moser, J. C., McGuire, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Observations+of+the+mite+Schizosthetus+lyriformis.+%28Acari%3A+Parasitidae%29+preying+on+bark+beetle+eggs+and+larvae%5BTitle%5D)+AND+%22Entomology.+News%22%5BJournal%5D)">Observations of the mite Schizosthetus lyriformis. (Acari: Parasitidae) preying on bark beetle eggs and larvae.</a> Entomology. News. 120, 397-400 (2009).</li>
<li>Hofstetter, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chapter+11%3A+Mutualists+and+Phoronts+of+the+Southern+Pine+Beetle%5BTitle%5D)+AND+%22United+States+Dept.+of+Agriculture+Forest+Service%2C+Southern+Research+Station+General+Technical+Report+SRS-140%22%5BJournal%5D)">Chapter 11: Mutualists and Phoronts of the Southern Pine Beetle.</a> United States Dept. of Agriculture Forest Service, Southern Research Station General Technical Report SRS-140. Klepzig, K. D., Coulson, R. , 161-181 (2011).</li>
<li>Hofstetter, R. W., Dunn, D. D., McGuire, R., Potter, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Using+acoustic+technology+to+reduce+bark+beetle+reproduction%29%5BTitle%5D)+AND+%22Pest+Manag+Sci%22%5BJournal%5D)">Using acoustic technology to reduce bark beetle reproduction).</a> Pest Manag Sci. 70, 24-27 (2014).</li>
<li>Hopping, G. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Techniques+for+rearing+Ips%5BTitle%5D)+AND+%22De+Geer+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29.+Can+Entomol%22%5BJournal%5D)">Techniques for rearing Ips.</a> De Geer (Coleoptera: Scolytidae). Can Entomol. 93, 1050-1063 (1961).</li>
<li>Hougardy, E., Gregoire, J. -C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cleptoparasitism+increases+the+host+finding+ability+of+a+polyphagous+parasitoid+species%2C+Rhopalicus+tutela+%28Hymenoptera%3A+Pteromalidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Ecol+Sociobiol%22%5BJournal%5D)">Cleptoparasitism increases the host finding ability of a polyphagous parasitoid species, Rhopalicus tutela (Hymenoptera: Pteromalidae).</a> Behav Ecol Sociobiol. 55, 184-189 (2003).</li>
<li>Kaston, B. J., Riggs, D. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+the+larvae+of+the+native+elm+bark+beetle%5BTitle%5D)+AND+%22J+Econ+Entomol%22%5BJournal%5D)">Studies on the larvae of the native elm bark beetle.</a> J Econ Entomol. 30, 98-108 (1937).</li>
<li>Kinn, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Life+cycle+of+Dendrolaelaps+neodisetus.+%28Mesostigmata%3A+Digamasellidae%29%2C+a+nematophagous+mite+associated+with+pine+bark+beetles+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Environ+Entomol%22%5BJournal%5D)">Life cycle of Dendrolaelaps neodisetus. (Mesostigmata: Digamasellidae), a nematophagous mite associated with pine bark beetles (Coleoptera: Scolytidae).</a> Environ Entomol. 13, 1141-1144 (1984).</li>
<li>Kinn, D. N., Miller, M. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+phloem+sandwich+unit+for+observing+bark+beetles%2C+associated+predators%2C+and+parasites%5BTitle%5D)+AND+%22USDA+FS+Res.+Notes+SO-269%22%5BJournal%5D)">A phloem sandwich unit for observing bark beetles, associated predators, and parasites.</a> USDA FS Res. Notes SO-269. , 3(1981).</li>
<li>Lieutier, F., Day, K. R., Battisti, A., Gregoire, J. -C., Evans, H. F. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aLieutier%2C+F+%22Bark+and+wood+boring+insects+in+living+trees+in+Europe%2C+a+synthesis%22">Bark and wood boring insects in living trees in Europe, a synthesis</a>. , Kluwer Academic Publishers. Boston, USA. 569(2004).</li>
<li>Massey, C. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+influence+of+nematode+parasites+and+associates+on+bark+beetles+in+the+United+States%5BTitle%5D)+AND+%22Bulletin+of+the+Entomology+Society+of+America%22%5BJournal%5D)">The influence of nematode parasites and associates on bark beetles in the United States.</a> Bulletin of the Entomology Society of America. 12, 384-386 (1966).</li>
<li>Moser, J. C., Roton, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mites+associated+with+southern+pine+bark+beetles+in%5BTitle%5D)+AND+%22Allen+Parish%2C+Louisiana.+Can+Entomol%22%5BJournal%5D)">Mites associated with southern pine bark beetles in.</a> Allen Parish, Louisiana. Can Entomol. 103, 1775-1798 (1971).</li>
<li>Mills, N. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+natural+enemies+of+scolytids+infesting+conifer+bark+in+Europe+in+relation+to+the+biological+control+of+Dendroctonus.+spp+in+Canada%5BTitle%5D)+AND+%22Biocontrol+News+Information%22%5BJournal%5D)">The natural enemies of scolytids infesting conifer bark in Europe in relation to the biological control of Dendroctonus. spp in Canada.</a> Biocontrol News Information. 4, 305-328 (1983).</li>
<li>Nagel, W. P., Fitzgerald, T. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Medetera+aldrichii.+larval+feeding+behavior+and+prey+consumption+%5BDipt.%3A+Dolichopodidae%5D%5BTitle%5D)+AND+%22Entomophaga%22%5BJournal%5D)">Medetera aldrichii. larval feeding behavior and prey consumption [Dipt.: Dolichopodidae].</a> Entomophaga. 20, 121-127 (1975).</li>
<li>Paine, T., Raffa, K., Harrington, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Interactions+among+scolytid+bark+beetles%2C+their+associated+fungi%2C+and+live+host+conifers%5BTitle%5D)+AND+%22Annu+Rev+Entomol%22%5BJournal%5D)">Interactions among scolytid bark beetles, their associated fungi, and live host conifers.</a> Annu Rev Entomol. 42, 179-206 (1997).</li>
<li>Reeve, J. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Predators+of+the+southern+pine+beetle%5BTitle%5D)+AND+%22Southern+Pine+Beetle+II%22%5BJournal%5D)">Predators of the southern pine beetle.</a> Southern Pine Beetle II. Coulson, R. N., Klepzig, K. D. , U.S. Department of Agriculture Forest Service, Southern Research Station. Asheville, NC. 153-160 Forthcoming.</li>
<li>Reid, R. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+behavior+of+the+mountain+pine+beetle%2C+Dendroctonus+monticolae.+Hopkins%2C+during+mating%2C+egg+laying+and+gallery+construction%5BTitle%5D)+AND+%22Can+Entomol%22%5BJournal%5D)">The behavior of the mountain pine beetle, Dendroctonus monticolae. Hopkins, during mating, egg laying and gallery construction.</a> Can Entomol. 90, 505-509 (1958).</li>
<li>Taylor, A. D., Hayes, J. L., Roton, L., Moser, J. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+phloem+sandwich+allowing+attack+and+colonization+by+bark+beetles+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29+and+associates%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Entomol.+Soc.+Amer%22%5BJournal%5D)">A phloem sandwich allowing attack and colonization by bark beetles (Coleoptera: Scolytidae) and associates.</a> J. Entomol. Soc. Amer. 27, 101-116 (1992).</li>
<li>Yu, C. C., Tsao, C. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gallery+construction+and+sexual+behavior+in+the+southern+pine+beetle%2C+Dendroctonus+frontalis.+Zimm.+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Georgia+Entomology+Society%22%5BJournal%5D)">Gallery construction and sexual behavior in the southern pine beetle, Dendroctonus frontalis. Zimm. (Coleoptera: Scolytidae).</a> Georgia Entomology Society. 2, 95-98 (1967).</li>
<li>Yturralde, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+Acoustic+Ecology+of+Bark+Beetles+and+Bed+Bugs%5BTitle%5D)+AND+%22PhD.+Dissertation%22%5BJournal%5D)">The Acoustic Ecology of Bark Beetles and Bed Bugs.</a> PhD. Dissertation. , Northern Arizona University. 323 (2013).</li>
<li>Wermelinger, B., Seifert, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+the+temperature+dependent+development+of+the+spruce+bark+beetle+Ips+typographus+%28L.%29+%28Col.%2C+Scolytidae%29%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Applied+Entomology%22%5BJournal%5D)">Analysis of the temperature dependent development of the spruce bark beetle Ips typographus (L.) (Col., Scolytidae).</a> Journal of Applied Entomology. 122, 185-191 (1998).</li>
<li>Whitney, H. S. Relationships between bark beetles and symbiotic organisms. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWhitney%2C+HS+%22Bark+Beetles+in+North+American+Conifers%22">Bark Beetles in North American Conifers</a>. Mitton, J. B., Sturgeon, K. B. , University of Texas Press. Austin, TX. 183-211 (1982).</li>
<li>Wood, S. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+bark+and+ambrosia+beetles+of+North+and+Central+America+%28Coleoptera%3A+Scolytidae%29%2C+a+taxonomic+monograph%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">The bark and ambrosia beetles of North and Central America (Coleoptera: Scolytidae), a taxonomic monograph.</a> , Brigham Young University. Provo, Utah. 1359 (1982).</li>
</ol>

Çıkar çatışması beyan edilmedi

Floem sandviç eklembacaklılar, mikrop ve floem dokuların yaşayan diğer küçük organizmaların giriş ve gözlem için izin verir. Bu teknik, yeni keşifler sonuçlandı 1,7,8,9,17,18 ve davranışları daha iyi bir anlayış, yaşamı tarih özellikleri, gelişimi ve ağaç floem içinde organizmaların etkileşimleri. sandviç protokolü Burada anlatılan 1,5,10 geçmiş tasarımları bir melez olduğunu ve kolayca minimum ekipman ve malzeme ile inşa edilen bir ekonomik sandviç sağlayacaktır. Cam, akrilik veya polikarbonat parçaları yeniden kullanılabilir ve tek tüketim maddeleri Parafilm ve floem bulunmaktadır. Protokoldeki tüm adımlar önemli olmakla birlikte, bazı adımlar başarı yüksek derecede sağlamak için sıkı takip edilmelidir. İlk olarak, bir ağaç dalları, serbest ya da görece serbest dalının bir bölüme sahip olduğu yerleştirilmelidir. Birçok şubesi var Ağaçlar tıraş zor ve y olacakfloeme çıkartırken her dal etrafında kesmek gerekir gibi ield birkaç canlı floem adet. Daha sonra, floem hava maruz kalmasını en aza indirmek için önemlidir. Biz hızlı uzaklaştırılması üzerine bir torba içinde her floem parça yerleştirin. 3-6 adet yok olduktan sonra, bir vakumlu torba içine transfer edilir; Biz alanda bir araç aküsünden kapalı mühürleyen çalıştırmak için bir güç çevirici kullanın. Son bu protokolü yürütülmesi sandviç mantar üremesini azaltacak zaman akrilik parçaları ve genel temizlik hijyen. Bu genişletilmiş gözlemler için özellikle önemlidir. Yukarıda zikredildiği gibi, floem sandviç tertibatının sınırlamalar vardır. Floem katmanlı ince olduğu için, tipik haliyle, floem kalır sadece küçük organizmalar sandviç içine sokulabilir. Odun deliciler gibi büyük böcekler (yani, Buprestid, Cerambycid tür) tanıttı ve onların yaşam döngüsünün erken safhalarında için görülebilir. Bu zaman aralığı, genellikle ikiye sınırlıdırÜç hafta; Bu noktadan sonra larvalar pupa için içine sıkmak ksilem ahşap gerektirir. Buna karşılık, cins Ips özellikle bu kabuk böcekleri için, tam bir yaşam döngüsü görülmektedir dahil edilebilir bir yetişkin böceği içine çiftleşme, yumurtadan çıkan yavrular, beslenme, pupa ve eclosion. Bu noktada sandviçin canlılığı, genellikle desikasyonu ve mantar büyümesi nedeniyle dışarı atılır. 28 Ek olarak, bu cihazın, böcekler açık ve doğal kolonize veya floem sandviç çıkmak için izin vermez. 27 Bizim protokol boyut, şekil ve kullanılan floem türü açısından esnektir. Kısa çalışmalar az floem malzeme gerektiren ve sandviç boyutu buna göre ölçeklendirilebilir. Birçok kozalaklı türler floem sandviç floem vericisi olarak kullanılmaktadır (örneğin, kızılçam çam 12, Douglas-köknar 2, ladin, 29 loblolly çam 27, longleaf çam 27). Sandviç malzemeler de değişmiş olabilir; exgeniş bir cam tabak yerine, akrilik ve epoksi ya da bunun yerine Parafilm bant kullanılabilir. Bu protokolün en zor kısmı floem giderilmesi işlemidir. Birbirlerinin yanında ağaçlar floem kaldırmak ne kadar zor farklılık gösterebilir. Bir ağaç zor floem sahip olduğunda, sabır önemlidir. Bu durumlarda, dikkatli sert ksilem ve süngerimsi floem arasında bir bıçak çalıştırın. Bu işlem ağacını zarını gibi tam anlamıyla hissediyor. Temel sandviç tekniği mastering sonra, protokole değişiklikler uygun özel ihtiyaçlarına yardımcı olabilir. Örneğin, floem bertaraf edilmesi için gereken teknikleri üzerinde durulacaktır göre, daha büyük parçalar uzaklaştırılmıştır ve daha büyük sandviç oluşturmak için de kullanılabilir. Ayrıca, değişiklikler kimyasal emisyonları (Res. 3A), ya da kayıt veya oynatma sesleri (Res. 3B) izlemek için, örneğin özel araçlar, ek delik karşılamak için yapılabilir. Değişiklikler, yarı kalıcı floem korunması ve organının sağlamak için yapılabilirizm, ya da daha sonra ücretsiz izin organizma geçici gözlemleri için.

Kozalaklı floem ve kabuğu dokular organizmaların binlerce ev sahibi vardır. Phloeophagy, iç kabuklarından floem dokularında beslenme, genellikle ağaçlar içinde yaşayan kabuk böceklerinin, woodborers, ve diğer birçok omurgasız ve mikrobiyal takson ile ilişkili bir alışkanlıktır 23 Kabuk böcekleri. (Coleoptera: Curculionidae) geliştirmek ve dışında floem içinde yaşayan yetişkinler yeni ev sahibi ağaçları amaçlayan kısa dönemleri. 31 Kabuk böcekleri yoğun ağaçların 18,19 üzerindeki ekonomik etkileri nedeniyle çalışılmıştır, ancak ağaç malzemelerin içinde böceklerin doğrudan davranışsal gözlemler sınırlı olmuştur. 4 Ayrıca, galerileri kabuk böceklerinin tarafından inşa . türlerin sayısız habitat haline mantarların 30 11 Geniş numaraları, bakteriler 3, akarlar 10,21, ve nematodlar diğer yırtıcı ve parazit eklembacaklılar ile birlikte 16,19 22,24 floem malzemeyi yaşamaktadır. Burada sağlanan tekniklerikabuk böcekleri, akarları ve tipik subkortikal ortamlarda yaşayan ahşap deliciler doğrudan gözlem için izin verir. Protokole hafif değişiklikler mantarlar ve bakteriler çalışma yapılabilir. Ağaç dokular içinde Kabuk böcekleri ve ilişkili organizmalar kullanılarak çalışılmıştır &quot;floem sandviç.&quot; Bu tekniğin erken kullanımı Dendroctunus (arka yüzünde Douglas-köknar böceğinin larva dönemi gözlemlemek için kullanılan 1933, için edebiyat kalma bulunabilir farklı malzemeler kullanılabilir hale olarak pseudotsugae). 2 floem sandviç birçok derivasyon geçti. Başlangıçta, bu cihaz, elastik bantlar ile birbirine bastırıldığı iki cam levha arasına yerleştirilen ve floem bir parça oluşturmaktadır. 2. Daha sonra, kelepçeler, bant, yapıştırıcı, plastik ve diğer malzemeler sandviçin yapımında kullanılmıştır. 13,14 Burada anlatılan 15,17,26,28 protokol geçmiş tasarımları üzerinde bazı iyileştirmeler sunuyor. Örneğin, içindeGeçmişte, test türü cam veya plastik levhaları arasında, sandviç yan alındı. Bu bir yöne galerilerinin yapımını kısıtlı. Üst plakasında giriş deliklerinin kullanımı test türü doğal galeri inşaatı başlatmak için büyük bir özgürlük sağlar. Sunulan protokol diğer bir avantajı kolay bir kaç araç ile imal edilebilir, basitleştirilmiş bir tasarımdır. Floem sandviç kullanımı beslenme davranışı, üreme, gelişme doğrudan gözlem için izin verdi, ve organizmaların etkileşimleri aksi mümkün olmazdı ki. 1,5, 22 Bu yöntem aynı zamanda K-12 eğitim ve bilim için mükemmel bir araçtır programlar ve görüntüler. Dan yorumlamak zor ya da el yazmalarının rapor değil floem sandviç yaratılması birçok incelikleri vardır. Bir floem sandviç üretiminin görsel (örneğin, bir video) tanımı gereklidir ve olacağına inanıyoruzbilim adamları ve phloeophagous organizmaları okuyan ilgilenen eğitimciler için değerli. Bizim protokol eklembacaklılar, mikrop ve floem dokuların yaşayan diğer organizmaları gözlemlemek için basit ve ucuz bir yol sağlar.

<table><tbody><tr><td>Çekme bıçağı</td><td>Big Horn Markası&nbsp;</td><td>20265</td><td>11" bıçak</td></tr><tr><td>Fileto Bıçağı</td><td>Amerikan Fener</td><td>30530</td><td>9" bıçak</td></tr><tr><td>Polikarbonat</td><td>Nexan</td><td>GE-33</td><td>0.093 inç kalınlık</td></tr><tr><td>Parafilm M</td><td>Fisher Scientific</td><td>S37441</td><td>2" geniş</td></tr><tr><td>Kelepçeler</td><td>Midilli Çene Açıklığı</td><td>3201-HT-K</td><td>4" x 1"</td></tr><tr><td>Vakum Mühürleyen&nbsp; ve çantalar</td><td>FoodSaver</td><td>V2840; FSFSBF0742-015</td><td>VacLoc vakum&nbsp; Rulo halinde çantalar</td></tr></tbody></table>

ağaç dokuların içinde eklembacaklı ve mikrobiyal toplulukları incelenmesi için tekniği

Technique for Studying Arthropod and Microbial Communities within Tree Tissues

Çamın floem dokuları binlerce organizmanın yaşam alanıdır. Eklembacaklılar ve mikroplar, eş aramak, yumurta bırakmak, genç yetiştirmek, beslenmek veya doğal düşmanlardan veya ağacın dışındaki sert çevre koşullarından saklanmak için floem ve kambiyum dokularını kullanır. Floem habitatı içinde kalan organizmaların, kabuk altındaki konumları göz önüne alındığında gözlemlenmesi zordur. Bozulmamış floemi korumak ve onu omurgasızlar ve mikroorganizmalarla deney yapmaya hazırlamak için bir teknik sunuyoruz. Aparat 'floem sandviçi' olarak adlandırılır ve eklembacaklıların, mikropların ve diğer organizmaların tanıtılmasına ve gözlemlenmesine izin verir. Bu teknik, ağaç floemi içindeki organizmaların beslenme davranışlarının, yaşam tarihi özelliklerinin, üreme, gelişme ve etkileşimlerinin daha iyi anlaşılmasıyla sonuçlanmıştır. Bu tekniğin güçlü yönleri arasında ucuz malzemelerin kullanımı, sandviç boyutundaki değişkenlik, sandviçi yeniden açma veya delinmiş deliklerden birden fazla organizmayı sokma esnekliği ve floem bütünlüğünün korunması ve sürdürülmesi yer alır. Floem sandviçi, hem K-12 fen derslerinde hem de üniversite araştırma laboratuvarlarında bilimsel keşif için mükemmel bir eğitim aracıdır.

Yukarıda açıklanan protokol, bir ağacın kabuğundan altında şifreli bir ortamda yaşamak organizmaları gözlemlemek için bir araştırmacı sağlayacaktır. Bu deneyde bu tekniği. 12 kullanır bizim laboratuvarından bir temsilci çalışma açıklayan bu tekniğin kullanımını göstermek için, floem sandviç (Şek üreme çıkışı, tünel mesafesi ve kabuk böceklerinin sağkalım üzerine akustik tedavilerin etkilerini gözlemlemek için kullanıldı . Şekiller 2E ve 2F). Floem sandviç kullanımı ile mümkün böcekleri doğrudan gözlem, birkaç ilginç bulgular ortaya çıkarmıştır. İlk olarak, bir işaretleyici her 24 saat ile akrilik böcekleri &#39;yerini işaretleme günlük tünel mesafeleri kaydedildi. Bu süreç floem sandviç olmadan gizli olurdu ses tedavilerde anlamlı farklılıklar ortaya. Sonra, özel bir ses uygulamaları ile yumurta üretiminde bir azalma gözlemlemişlerdir. E izin floem sandviç mobil doğasıgg gözlemler böcekleri bozmadan bir mikroskop altında tamamlanacak. Bu gözlemler esnasında, biz mikroskop bağlı bir yüksek çözünürlüklü kamera ile böceği yumurtlama davranışı ele geçirdi. Diğer önemli gözlemler arkadaşları öldürülmesi ve özellikle akustik tedavileri ile ilişkili uçuş başlatılmasını dahil. Floem sandviç tahlil akustik tedavilere kabukböcekleri yanıtların bizim çalışmamızda çok önemliydi. Bir ağacın kabuğu altında gözlemlemek imkansız olurdu Bu keşifler, kabuk böceği salgınını mücadele için yönetim seçeneklerini geliştirmeye değerli katkıları vardır. <img alt="Şekil 1," src="/files/ftp_upload/50793/50793fig1highres.jpg" /> Şekil 1. A) Araçlar ağacının kabuğunu çıkarmak gerekiyordu. Ürünler 1 ve 2 ağacın kapalı kabuğu kazımak için kullanılan beraberlik bıçaklar vardır. Ürün 3 (balta) ve 4 (çekme testere) şube kaldırmak için yararlıdıryakın tıraş alanı. B) beraberlik bıçakların kullanımı ağacının kabuğunu çıkarmak için. Kırmızımsı kabuğu altında floem ışık rengini dikkat edin. <img alt="Şekil 2," src="/files/ftp_upload/50793/50793fig2highres.jpg" /> Şekil 2. A) kabuğundan sonra floem çıkarılması ağacı. B) vakum mühürlü torba. C) kelepçeler birlikte akrilik parçaları tutan ve Parafilm etrafında kirlenmeyi ve floem kuruma önlemek için kenarları ile Phleom sandviç saklanan Taze floem kazındı. D ) Bark böceği yakın delik floem sandviç gözlemlemek için mikroskobu kullanarak) akrilik. E içine delinmiş. floem Sandviç içinde kabuk böceklerinin F) Video ekranı. <img alt="Şekil 3," src="/files/ftp_upload/50793/50793fig3highres.jpg" /> Şekil 3. <strong&gt; A) floem sandviç böcekleri Feromon edinimi. Hava floem Sandviç içinde çam böcekleri bir piezo-elektrik transdüser (resmin merkezi) aracılığıyla Süper-Q emici. B) Kayıt ve ses oynatmayı içeren tüpler aracılığıyla çekti ediliyor.

Bozulmamış ağaç floemini korumak ve gözlem için hazırlamak için bir teknik sağlıyoruz. Eklembacaklıların, mikropların ve floem dokularında yaşayan diğer organizmaların tanıtılmasına ve gözlemlenmesine izin veren floem sandviç adı verilen bir aparat oluşturuyoruz.

Ağaç Dokuların içinde eklembacaklı ve Mikrobiyal Toplulukları incelenmesi için Tekniği

Phloem tissues of pine are habitats for many thousands of organisms.  Arthropods and microbes use phloem and cambium tissues to seek mates, lay eggs, rear ...

Bu prosedürün genel amacı, sonbahar dokusunda yaşayan eklembacaklıların, mikropların ve diğer organizmaların yerleştirilmesine ve gözlemlenmesine olanak tanıyan AOL sandviç adı verilen bir düzenek oluşturmaktır. Sağlanan protokol, bazen küçük varyasyonlarla, araştırmacılar ve eğitimciler için ağaç kabuğu böceklerini, akarları, Nematodları ve mantarları incelemede etkili bir araç olmuştur. İlk olarak, uygun bir ağaç belirlenir.Ardından, F floem tabakasını açığa çıkarmak için kabuk soyulur. Floem çıkarıldıktan sonra laboratuvara geri getirilir veya iki pleksiglas parçası arasına yerleştirilir. Mühürlenip sıkıca kenetlendikten sonra, organizmayı yerleştirmeye hazır hale gelirsiniz.Çalışma kapsamında, çam ağaçlarının birkaç milimetre kalınlığında olabilen belirgin bir akış tabakası vardır. İncelenen organizma, hangi F akış türünün gerektiğini belirleyecektir. Şu an Kuzey Arizona'da bir Ponderosa çamı ormanındayız.Mütevazı boyutlarda, geniş bir tacı ve az sayıda alt dalı olan ideal bir ağaç arıyoruz. Burada uygun bir ağaç belirledik. Akış kaldırılırken her dalın çevresinden kesilmesi gerektiğinden, bu özellikler muhtemelen daha yoğun ve kaldırılması daha kolay bir akış sağlayacaktır.Ağaç hasadı için kullandığımız Ekipmanların bir örneği burada verilmiştir. Unutmayın, ağaç devirmek tehlikelidir ve yalnızca uygun güvenlik ekipmanlarına sahip, deneyimli bir kişi tarafından yapılmalıdır. Ağaç güvenli bir şekilde yere indirildikten sonra, dalları temizlemeye başlayın.Ardından kütüğü, ağacın çapına bağlı olarak genellikle altı ila sekiz fit civarında, yönetilebilir parçalara bölün. Şimdi kabuğu soyma zamanı. İşte bunu başarmak için kullandığımız araçlara bir örnek.John Ice bu süreçte vazgeçilmezdir, akış tabakasını belirten beyaz veya açık kahverengi izler görünene kadar kabuğu dikkatlice kazıyın. Bu tabakayı oyup çıkarmamak önemlidir çünkü bu durum, tabakanın daha sonraki kullanım faydasını büyük ölçüde azaltır. Ağacın bir kısmı yeterince kabuksuz hale getirildiğinde, tam parçayı kesip çıkarmak için bir bıçak kullanın.Gerektiğinde alt kısımdan keserek bu katmanı dikkatlice yukarı doğru çekin. Bazı ağaçlarda dökülen kısımları temizlemenin diğerlerine göre daha kolay olduğunu unutmayın. Sabırlı olmak burada kilit noktadır.Zorlu bir ağaçla çalışırken, dökülenleri toplamak için genellikle yılın en uygun zamanı yaz mevsimidir. Plastik torbada beş ila yedi parça topladıktan sonra, bunları sahaya getirdiğimiz bir vakum paketleme torbasına aktarırız. Bu torbaları donma noktasının hafifçe üzerinde saklamak en iyisidir.Bu Protokolün saha bileşenini tamamladık ve sandviçi oluşturmak için laboratuvara geri dönüyoruz. Sandviçi oluşturmak için kullandıklarımız şunlardır. Alt kısımda çeşitli pleksiglas plakalar ve çiftler yer almaktadır.Kenarları mühürlemek için paraform kullanılır ve pleksiglas ile akış arasında boşluk kalmadığından emin olmak için klempler kullanılır. Pleksiglas parçalar kesilip delindikten sonra, %90 veya daha yüksek konsantrasyonda etanol ile sterilize edilirler. Taze bir akış parçası ve boyut çıkarılarak sandviç yapısı oluşturulmaya başlanır.Pleksiglas parçası için uygun hale getirin. Pleksiglas yerine cam da kullanılabilir. Farklı organizmalara ve deney sürelerine uygun olarak çeşitli boyutlarda sandviç düzenekler de hazırlanabilir.Örneğin, bir çift ağaç kabuğu böceği bir ay boyunca dört demeter karelik düşmüş bir parçayı kullanabilir, ancak çalışma birkaç gün içinde gerçekleşirse yalnızca bir Demeter karelik bir parçaya ihtiyaç duyacaklardır. Pleksiglastaki giriş noktası sayısını, aynı anda birden fazla organizma yerleştirmek için değiştirebileceğinizi unutmayın. Bu, farklı türler arasındaki rekabeti veya avlanmayı gözlemlemek için kullanışlıdır.Şimdi, kenarları sızdırmaz hale getirmek için iki inçlik parafilm kullanılır. Sızdırmazlık için non-G yapıştırıcı epoksi veya vazelin gibi diğer malzemeler de kullanılabilir. Ardından, pleksiglası akış tabakasına sıkıca sabitlemek için kenarların etrafına yeterli sayıda klempler yerleştirin.Şimdi çalışma organizmasını tanıtmaya hazırız. Laboratuvarımızda, ağaç kabuğu böceklerini ve ilişkili organizmaları gözlemlemek için sıklıkla Sağlanan protokolü kullanıyoruz. Bu protokol, günlük tünelleme uzunluğu ve yumurta üretimi gibi pek çok unsuru gözlemlemek için harika bir fırsat sunar.Kimyasal emisyonları, kabuk böceklerini ve ürünlerini ekstrakte edip daha sonra analiz edebileceğimiz gibi, bir uygulamayı başlatıp yanıtı da gözlemleyebiliriz. Burada, bir kabuk böceği akustik uygulamadan uzaklaşmaya çalışmaktadır. Bu protokolü kullanarak akarların, nematodların ve böcek avcılarının da gözlemlendiği görülmüştür.Bu videoyu izledikten sonra, uçan bir sandviç oluşturabilmeli ve bunu kendi özel çalışma ihtiyaçlarınıza göre düzenleyebilmelisiniz. Bu prosedür, etkili bir araştırma aracı olmasının yanı sıra, ilkokuldan üniversite düzeyine kadar öğrenciler için eğitim ve keşif amaçları doğrultusunda mükemmel bir yöntemdir.

technique-for-studying-arthropod-microbial-communities-within-tree

Research

JoVE Journal

Environment

Çevre

Bu video termit hindgut ikamet mikropların türünün DNA ayıklamak için teknik göstermektedir. Bağırsak mikrobiyal topluluk görüntülenmesi için yararlı bir ıslak montaj kaydırağı, hazırlık da gösterilmiştir ve türler açısından zengin bir bağırsak ortamı üzerinden bir tur verilir.

Termit Gut Mikroplar (Zootermopsis Angusticollis) DNA ayıklanıyor ve Gut Mikroplar görselleştirme

Jared Leadbetter termit-bağırsak mikrobiyal topluluk mikrop arasındaki karmaşık etkileşimler çalışmak için mükemmel bir sistem neden açıklar. Ana böcek ve lignoselüloz-aşağılayıcı bağırsak mikrop arasındaki simbiyotik bir ilişki mevcut yanı sıra, aşağılayıcı bitki biyokütle ve biyoyakıt üreten endüstriyel kullanımlar için bu mikropların olarak açıklanmıştır.

Röportaj - Termit Hindgut Mikrobiyal Topluluk incelenmesi

Burada, büyüme yapılarının genel değerlendirmesi için ahşap örneklerin nasıl örnekleneceğini özetleyen bir protokol sunuyoruz. İyi çoğaltılmış ve yüksek oranda çözülmüş ahşap anatomik ve dendroekolojik veri seti oluşturmak için gerekli makro ve mikroskobik hazırlama ve görselleştirme teknikleri açıklanır.

Modern Ağaç halkası Araştırma A Teknik Perspektif - Dendroekolojik ve Ahşap Anatomik Zorluklar Üstesinden Nasıl

Kazı alanından bitki köklerinin yanı sıra endosphere, rizosferde ve toprak içine örnekleri işleme DNA ekstraksiyon ve veri analiz yöntemleri de dahil olmak üzere ayrıntılı olarak açıklanmıştır. Bu kağıt bu teknikleri toprak, endosphere ve rizosferde microbiomes çalışma için kullanmak diğer laboratuvarlar sağlamak için tasarlanmıştır.

Yalıtım ve mikrobiyal topluluklarda toprak, rizosferde ve kökleri çok yıllık çim deneylerde Analizi

Çalışmada böcek sensillasının ultrayapısını gözlemlemek amacıyla tarama ve iletim elektron mikroskobu (sırasıyla SEM ve TEM) örnek hazırlama protokolü sunulmuştur. SEM.Floresan mikroskopide örnek deformasyonu önlemek için fiksatife ara 20 eklenmiştir.

Woodboring Böceği uzantıları için Tarama ve İletim Elektron Mikroskobu Örnek Hazırlama Yöntemi

Bir torbadaki dalların yapraklarını ve ucunu mühürleyerek, torbalanmış malzemeyi kırpıp dondurarak ve eklembacaklıları nicelleştirmek için alt tabakadan ayırmak için suda önceden dondurulmuş malzemeyi durulayarak yaprak lı eklembacaklıların nasıl ölçüleceklerini anlatıyoruz.

Yaprak-Konut Eklembacaklıların Ölçülme Yöntemi

Kortikolos (kabuk-konut) eklembacaklı topluluklarının ölçüm karakteristiklerini ölçmenin yarı kantitatif yaklaşımını tanımlıyoruz. Biz bereket, toplam uzunluğu (biyokütle için bir vekil), zenginlik ve ağaç türleri arasında karşılaştırma için Shannon çeşitliliği tahmin etmek için ağaç boles üzerinde ticari olarak üretilen yapışkan tuzaklar yerleştirilir.

Yapışkan Tuzaklar Kullanarak Kortikolos Eklembacaklıların Ölçülmesi

Mikro-BT, bitki yapılarını üç boyutlu olarak analiz edebilen tahribatsız bir araçtır. Mevcut protokol, parazitik bitki yapısını ve işlevini analiz etmek için mikro-BT'den yararlanmak için numune hazırlamayı açıklamaktadır. Belirli preparatlarla birleştirildiğinde bu yöntemin avantajlarını vurgulamak için farklı türler kullanılır.

Parazitik bitki-konakçı etkileşimlerini analiz etmek için mikro-BT taramasından yararlanma

Bu protokol, mikoheterotrofik bitki örneklerinin toplanması, sabitlenmesi ve sürdürülmesi için ayrıntılı prosedürler sağlamayı, mikorizal mantarlarla çimlenmiş bitki dokularında ve tohumlarda mantar kolonizasyonunu incelemek için tarama ve iletim elektron mikroskobu, ışık, konfokal ve floresan mikroskobu gibi farklı mikroskopi tekniklerini uygulamayı amaçlamaktadır.

Mikoheterotrofik Bitki Dokularında Mantar Kolonizasyonunu Yorumlamak ve Tohumların Simbiyotik Çimlenmesi için Mikroskopi Teknikleri

Bu protokol, Populus trichocarpa'nın kabuğunda bulunan endofitik ve epifitik bakteriyel mikrobiyomların profilini çıkarmak için numune toplamadan veri analizine kadar güvenilir ve verimli bir iş akışı sunar.

Populus trichocarpa kabuğunun endofitik ve epifitik bakteriyel mikrobiyomlarının kantitatif değerlendirmesi için bir iş akışı

Mikrobiyota ve biyofilm ile birlikte bitki ve mantar biyokütlesi içeren oldukça heterojen ve hassas numuneleri görselleştirmek için optimize edilmiş bir Taramalı Elektron Mikroskobu protokolü öneriyoruz. Bu protokol, mikrobiyota organizasyonunun mekansal boyutlarının tanımlanmasına izin verir.

Attine Karıncalarının Bahçelerinin Mikrobiyotası: Elektron Mikroskobunu Tarayarak Mikrobiyal Bir Manzarayı Görselleştirmek

Öğrenin ağaç floemindeki eklembacaklı ve mikrobiyal toplulukları incelemek için floem sandviçi yöntemini. Bu teknik, kabuk böcekleri, akarlar ve mantarların davranışlarını gözlemlemek için kullanılır.

Ağaç Dokuların içinde eklembacaklı ve Mikrobiyal Toplulukları incelenmesi için Tekniği

Daha fazla video keşfet