Name: Non Replikatif Kanin adenovirüs tip 2 türetilmiş vektörler üretimi ve saflaştırılması (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2013-12-03T13:50:00.000+00:00
Duration: 14 min 55 s
Description: Öğrenin CAV2 türevli vektörlerin yapımını, üretimini ve saflaştırılmasını. Bu yöntem gen tedavisi ve aşılama uygulamalarında yüksek verimli hücre transdüksiyonu sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma, INSERM, CNRS, Fondation pour la Recherche Médicale ve Agence Nationale pour la Recherche (ANR- 10-Blanc-1322) tarafından DGD'ye verilen hibelerle finansal olarak desteklenmiştir; Avrupa Komisyonu'nun B.K.'ye yönelik Yedinci Çerçeve Programı; Yüksek Lisans, FRM'den ("Equipe FRM 2009" programı) doktora sonrası bursu ile desteklenmiştir; C.B., 245266 numaralı hibe sözleşmesi (Orbivac) kapsamında UE'den doktora sonrası bir burs ile desteklenmiştir.

1. Replikatif Olmayan CAV2 Genom Plazmidinin İnşası
Not: Bu protokolde açıklanan tüm plazmitler daha önce7 açıklanmıştır ve istek üzerine temin edilebilir.
<ol>
	<li>pShuttle-GOI oluşturmak için uygun kısıtlama enzimlerini kullanarak GOI'yi pShuttle plazmidine klonlayın (Şekil 1A).</li>
	<li>2 μg pShuttle-GOI'yi AscI/PacI ile sindirin. Sindirim, plazmit omurgasından (2.8 kbp) Shuttle-GOI fragmanını (~ 2.9 kbp + GOI ORF dizisi) serbest bırakır.</li>
	<li>NucleoSpin Jel ve PCR Temizleme kiti kullanarak agaroz jel elektroforezinden sonra Shuttle-GOI fragmanını saflaştırın.</li>
	<li>Paralel olarak, 1 μg pCAV2 genomik plazmitini SwaI ile sindirin. pCAV2 plazmidi, E1 bölgesi içinde bulunan benzersiz bir SwaI bölgesi içerir (Şekil 1B). Bu kısıtlama enzimini 65 ° C'de 20 dakika boyunca ısıyla etkisiz hale getirin.</li>
	<li>Yetkili E. coli BJ5183 bakterilerini homolog rekombinasyon için 500 ng saflaştırılmış Shuttle-GOI fragmanı ve 100 ng doğrusallaştırılmış pCAV2 plazmidi ile dönüştürün (Figure 1B). LB-Amp plakalarına yayın. Plakaları 37 °C'de en az 20 saat inkübe edin.</li>
	<li>Aşağıdaki döngü koşulları altında ileri (5'-CACGAGGCCCTTTCGTCTTCAA-3') ve geri (5'-GCGGTAGTTTATCACAGTTAAATTGC-3') primerli EmeraldAmp ana karışımını kullanarak doğrudan bakteri kolonileri üzerinde PCR analizi gerçekleştirin: 95 °C'de 10 dakika (bir döngü için), 95 dakika boyunca 1 °C; 58 dakika boyunca 1 °C; 72 °C için 1 dk/kbp (39 döngü için), ve son olarak 72 °C'de 5 dakika. 1 kbp + GOI ORF dizisinin bir ürünü, pCAV-GOI pozitif klonlardan amplifiye edilirken, negatif klonlarla hiçbir PCR ürünü tespit edilemez.</li>
	<li>Bir çalkalayıcıda (220 rpm) 37 ° C'de 5 ml LB-amp ortamda, her biri gece boyunca en az iki pozitif koloniyi aşılayın.</li>
	<li>Nucleospin plazmit kitini kullanarak plazmit DNA'larını çıkarın. Yetkili E. coli DH5α bakterilerini her DNA hazırlığının bir alikotu ile dönüştürün. Bakteriyel süspansiyonu LB-Amp plakalarına yayın ve gece boyunca 37 °C'de inkübe edin.</li>
	<li>Her pozitif klonun iki kolonisini gece boyunca 3 ml LB-amp ortamında 37 ° C'de bir çalkalayıcıda (220 rpm) aşılayın. Nucleospin plazmit kitini kullanarak plazmit DNA'sını çıkarın.</li>
	<li>Elde edilen DNA'yı ve ebeveyn pCAV2 plazmidini (kontrol olarak) NdeI ile sindirin. Ebeveyn pCAV2'nin kısıtlama modeli 14,8 kbp, 9 kbp, 7,9 kbp ve 1,6 kbp'dir. GOI ifade kaseti, 7.9 kbp fragmanının içine yerleştirilir ve en az bir NdeI bölgesi, yani kasette bir tane ve GOI'de bulunan potansiyel bölgeleri içerir.</li>
	<li>Pozitif yapıları seçin ve en az 2 bağımsız klon ile 2. adıma geçin.</li>
</ol>
2. Rekombinant CAV2 Genom Plazmidinin DK-E1 Hücrelerine Transfeksiyonu
Not: CAV2'den türetilen replikatif olmayan vektörler, Biyogüvenlik Seviyesi 2 (BSL-2) olarak sınıflandırılan genetik olarak değiştirilmiş organizmalardır, oysa hayvan modellerinde kullanımları BSL-1 olarak sınıflandırılır. Lütfen kişisel koruyucu ekipman da dahil olmak üzere uygun muhafaza ve atık işleme önlemlerini kullanın ve BSL-2 laminer akış davlumbazları altında çalışın.
<ol>
	<li>Transfeksiyondan bir gün önce, DK-E1 hücrelerini 6 oyuklu bir plakaya tohumlayın. Dulbecco'nun Modifiye Kartal Ortamında (DMEM) %7 ısıyla inaktive edilmiş fetal buzağı serumu (FCS), 1 mM sodyum piruvat ve 100 U/ml penisilin / 100 μg/ml streptomisin içeren yüksek glikozlu Modifiye Kartal Ortamında 37 °C ve %5 CO2'de hücreleri büyütün. Transfeksiyon için hücreler% 70-80 birleşik olmalıdır.</li>
	<li>Plazmidin viral olmayan dizisini serbest bırakmak için 2 μg pCAV-GOI plazmitini AscI ile sindirin. Ortaya çıkan kısıtlama modelini% 0.8 agaroz jel elektroforezi ile kontrol edin. Sindirim, rekombinant genomu içeren ~ 31 kbp'lik bir fragman ve plazmit omurgasına karşılık gelen 2 kbp'lik bir fragman vermelidir.</li>
	<li>Sindirilmiş DNA'yı 200 μl Jet Prime Tamponu ile 10 saniye girdaplayarak karıştırın. 4 μl Jet Prime ekleyin ve 10 saniye girdaplayarak karıştırın. Damlacıkları çıkarmak için kısa bir süre döndürün ve oda sıcaklığında 10 dakika inkübe edin.</li>
	<li>Transfeksiyon karışımını hücrelere damla damla ekleyin. Karışımı eşit şekilde dağıtmak için plakaları hafifçe sallayın ve 37 °C'de inkübe edin.</li>
</ol>
3. Rekombinant CAV2'nin Yayılımı
<ol>
	<li>Transfeksiyondan bir hafta sonra, hücreleri ve kültür ortamını 15 ml'lik bir polipropilen tüpte toplayın. Hücreleri üç donma-çözülme döngüsü (-80 °C / 37 °C) ile bozun ve lizatı 1.800 x g'da 10 dakika santrifüjleme ile temizleyin.</li>
	<li>Süpernatanı toplayın ve sonraki virüs yayılımı için -20 ° C'de saklayın.</li>
	<li>0.5 ml virüs içeren süpernatan ile 6 oyuklu plakanın bir oyuğunda büyütülen% 80-90 birleşik DK-E1 hücresi tek tabakasını enfekte edin. Hafif çalkalama altında 37 ° C'de 1 saat inkübe edin. İnokulumu çıkarın ve %5 ısıyla etkisiz hale getirilmiş FCS içeren 1,5 ml tam DMEM ile değiştirin.</li>
	<li>Hücreleri 37 ° C'de 3-4 gün inkübe edin. Hücreler, sitopatik bir etkinin ortaya çıkması için günlük olarak izlenmelidir (CPE, Şekil 2A-B). Net bir CPE görünmüyorsa, 4 günlük kültürden sonra hücreleri hasat edin ve 3.1-3.4 adımlarını tekrarlayın.</li>
	<li>Berrak bir CPE hücrelerin çoğunu etkilediğinde, genellikle 2-4 viral amplifikasyon turundan sonra, hücreleri kültür ortamı ile toplayın ve yukarıda tarif edildiği gibi 3 kez dondurun. Her seferinde 0.5 ml virüs içeren süpernatan kullanarak, 10 cm çapında üç doku kültürü kabında büyütülen %80-90 birleşik DK-E1 hücrelerini enfekte edin.</li>
	<li>3-4 gün sonra (CPE tamamlandığında), bu 10 cm'lik tabaklardan hücreleri hasat edin, tekrar üç donma-çözülme döngüsü ile parçalayın, lizatı 1.800 x g'da 10 dakika santrifüjleme ile temizleyin, süpernatant toplayın ve büyük ölçekli CAV2 amplifikasyonu için -20 ° C'de saklayın.</li>
</ol>
4. Büyük Ölçekli CAV2 Saflaştırma
<ol>
	<li>Kırk adet 10 cm çapında doku kültürü kaplarında büyütülen DK-E1 hücrelerinin %80-90 birleşik tek tabakalarını enfekte eder. Her yemek için, FCS olmadan 1 ml tam DMEM içinde seyreltilmiş 0.1 ml virüs içeren süpernatan kullanın. Hücreleri hafif çalkalama altında 37 ° C'de 3 ila 4 saat inkübe edin. % 5 FCS ile desteklenmiş 5 ml tam DMEM ekleyin.</li>
	<li>3 gün kuluçkaya yatırın. 50 ml'lik polipropilen tüplerdeki kırk 10 cm'lik tabaktan enfekte olmuş hücreleri hasat edin. Pelet hücreleri 1,200 x g'da 4 ° C'de 10 dakika boyunca ve 15 ml DMEM ortamında yeniden süspanse edin.</li>
	<li>Hücreleri üç donma-çözülme döngüsü (-80 °C/37 °C) ile bozun. 10 dakika boyunca 1.800 x g'da santrifüjleyerek hücre kalıntılarını çıkarın ve viral partiküllerin saflaştırılmasından önce süpernatanı -20 ° C'de saklayın.</li>
	<li>14 ml'lik Ultra-Clear bir tüpte süreksiz bir CsCl gradyanı hazırlayın. İlk olarak, tüpün dibine 2 ml CsCl çözeltisi (fosfat tamponlu tuzlu su içinde 1.40 g / ml) dökün. Daha sonra, ilk çözeltinin üzerine yavaşça 2 ml CsCl çözeltisi (fosfat tamponlu tuzlu su içinde 1.25 g / ml) ekleyin.</li>
	<li>Viral süpernatanı CsCl gradyanının üstüne dikkatlice yükleyin. Tüpü üstten 2-3 mm'ye kadar mineral yağ ile doldurun. Sallanan bir SW40 rotorda 130.000 x g ve 18 °C'de 1,5 saat santrifüjleyin.</li>
	<li>Santrifüjlemeden sonra, 2 CsCl çözelti katmanı arasındaki arayüzde iki beyaz bant açıkça görülebilir (Şekil 2C). 21 G'lik bir iğne ve bir şırınga kullanarak, olgun CAV2 parçacıkları içeren alt bandı yandan delinerek toplayın. Boş viral partiküllere karşılık gelen üst bandı toplamaktan kaçınmak için mümkün olduğunca deneyin.</li>
	<li>Toplanan viral partikülleri bir CsCl çözeltisi (fosfat tamponlu salin içinde 1.34 g / ml) ile karıştırarak 14 ml'lik şeffaf bir tüpte sürekli bir CsCl gradyanı hazırlayın. Tüpü üstten 2-3 mm'ye kadar mineral yağ ile doldurun. Sallanan bir SW40 rotorda 130.000 x g ve 18 °C'de 18 saat santrifüjleyin.</li>
	<li>Santrifüjlemeden sonra, beyaz CAV2 içeren bandı yukarıda açıklandığı gibi bir şırınga ile yan yana delinerek toplayın. Yine, kalan üst bandı toplamaktan kaçınmaya çalışın. İki bandı daha iyi ayıran bu sürekli gradyanda bu daha kolay olmalıdır. Toplanan süspansiyonun toplam hacmi 2 ml'yi geçmemelidir.</li>
	<li>Bir Sephadex G-25 PD-10 kolonunu 30 ml PBS ile dengeleyin.</li>
	<li>Viral süspansiyonu yükleyin ve akışı atın.</li>
	<li>500 μl PBS'nin fraksiyonları ile elute. Genellikle tuzdan arındırılmış CAV2 parçacıklarını içeren 5-7 fraksiyonlarını toplayın. Virüs içeren fraksiyonlar, yanardöner oldukları için kolayca tanımlanabilir. 1.5 ml CAV2 süspansiyonuna 150 μl gliserol ekleyin ve -80 ° C'de alikotlarda saklayın.</li>
</ol>
5. Son Nokta Seyreltme ile CAV2 Titrasyonu
<ol>
	<li>Saflaştırılmış virüsün bir kısmını buz üzerinde çözdürün ve serumsuz DMEM'de 10 kat seri seyreltme (10-2-10-12 arasında değişen) gerçekleştirin.</li>
	<li>96 oyuklu bir plakanın 5 oyuğuna her viral seyreltmeden 50 μl ekleyin. Her oyuğa 1,5 x 104 DK-E1 hücresi ekleyin. Plakayı 5 gün boyunca 37 ° C ve% 5 CO2'de inkübe edin.</li>
	<li>Enfeksiyondan sonraki 5. günde, mikroskobik gözlemle CPE görünümünü izleyin (Şekil 2A-B). Enfeksiyöz titreler, Reed ve Muench istatistiksel yöntemi13 kullanılarak medyan doku kültürü enfeksiyöz dozları (TCID50) olarak belirlenir.</li>
</ol>

<ol><li>Kaufmann, J. K., Nettelbeck, D. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Virus+chimeras+for+gene+therapy%2C+vaccination%2C+and+oncolysis%3A+adenoviruses+and+beyond%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+Mol.+Med%22%5BJournal%5D)">Virus chimeras for gene therapy, vaccination, and oncolysis: adenoviruses and beyond.</a> Trends Mol. Med. 18, 365-376 (2012).</li>
<li>Curr, Topics Microbiol. Immunol. 343, 195-224 (2010).</li>
<li>Zak, D. E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Merck+Ad5%2FHIV+induces+broad+innate+immune+activation+that+predicts+CD8%28%2B%29+T-cell+responses+but+is+attenuated+by+preexisting+Ad5+immunity%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Merck Ad5/HIV induces broad innate immune activation that predicts CD8(+) T-cell responses but is attenuated by preexisting Ad5 immunity.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 109, 3503-3512 (2012).</li>
<li>Paillard, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Advantages+of+non-human+adenoviruses+versus+human+adenoviruses%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Advantages of non-human adenoviruses versus human adenoviruses.</a> Hum. Gene Ther. 8, 2007-2009 (1997).</li>
<li>Ackermann, A., Guelzow, T., Staeheli, P., Schneider, U., Heimrich, B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+viral+dissemination+in+the+mouse+nervous+system%2C+using+a+green+fluorescent+protein-expressing+Borna+disease+virus+vector%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Visualizing viral dissemination in the mouse nervous system, using a green fluorescent protein-expressing Borna disease virus vector.</a> J. Virol. 84, 5438-5442 (2010).</li>
<li>Bru, T., Salinas, S., Kremer, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+update+on+canine+adenovirus+type+2+and+its+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Viruses%22%5BJournal%5D)">An update on canine adenovirus type 2 and its vectors.</a> Viruses. 2, 2134-2153 (2010).</li>
<li>Bouet-Cararo, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Canine+adenoviruses+elicit+both+humoral+and+cell-mediated+immune+responses+against+rabies+following+immunisation+of+sheep%5BTitle%5D)+AND+%22Vaccine%22%5BJournal%5D)">Canine adenoviruses elicit both humoral and cell-mediated immune responses against rabies following immunisation of sheep.</a> Vaccine. 29, 1304-1310 (2011).</li>
<li>Soudais, C., Skander, N., Kremer, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+in+vivo+transduction+of+neurons+throughout+the+rat+CNS+using+novel+helper-dependent+CAV-2+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Long-term in vivo transduction of neurons throughout the rat CNS using novel helper-dependent CAV-2 vectors.</a> FASEB J. 18, 391-393 (2004).</li>
<li>Deinhardt, K., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rab5+and+Rab7+control+endocytic+sorting+along+the+axonal+retrograde+transport+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Rab5 and Rab7 control endocytic sorting along the axonal retrograde transport pathway.</a> Neuron. 52, 293-305 (2006).</li>
<li>Soudais, C., Laplace-Builhe, C., Kissa, K., Kremer, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preferential+transduction+of+neurons+by+canine+adenovirus+vectors+and+their+efficient+retrograde+transport+in+vivo%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">Preferential transduction of neurons by canine adenovirus vectors and their efficient retrograde transport in vivo.</a> FASEB J. 15, 2283-2285 (2001).</li>
<li>Peltekian, E., Garcia, L., Danos, O. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neurotropism+and+retrograde+axonal+transport+of+a+canine+adenoviral+vector%3A+a+tool+for+targeting+key+structures+undergoing+neurodegenerative+processes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Ther%22%5BJournal%5D)">Neurotropism and retrograde axonal transport of a canine adenoviral vector: a tool for targeting key structures undergoing neurodegenerative processes.</a> Mol. Ther. 5, 25-32 (2002).</li>
<li>Chartier, C., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+generation+of+recombinant+adenovirus+vectors+by+homologous+recombination+in+Escherichia+coli%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Virol%22%5BJournal%5D)">Efficient generation of recombinant adenovirus vectors by homologous recombination in Escherichia coli.</a> J. Virol. 70, 4805-4810 (1996).</li>
<li>Reed, L. J., Muench, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+simple+method+of+estimating+fifty+percent+endpoints%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Hyg%22%5BJournal%5D)">A simple method of estimating fifty percent endpoints.</a> Am. J. Hyg. 27, 493-497 (1938).</li>
<li>Segura, M. M., Puig, M., Monfar, M., Chillon, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chromatography+purification+of+canine+adenoviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Human+Gene+Ther.+Methods%22%5BJournal%5D)">Chromatography purification of canine adenoviral vectors.</a> Human Gene Ther. Methods. 23, 182-197 (2012).</li>
<li>Segura, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+real-time+PCR+assay+for+quantification+of+canine+adenoviral+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+virological%22%5BJournal%5D)">A real-time PCR assay for quantification of canine adenoviral vectors.</a> Journal of virological. 163, 129-136 (2010).</li>
<li>Fernandes, P., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bioprocess+development+for+canine+adenovirus+type+2+vectors%5BTitle%5D)+AND+%22Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Bioprocess development for canine adenovirus type 2 vectors.</a> Gene Ther. , (2012).</li>
<li>Rinne, A., Littwitz, C., Bender, K., Kienitz, M. C., Pott, L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus-mediated+delivery+of+short+hairpin+RNA+%28shRNA%29+mediates+efficient+gene+silencing+in+terminally+differentiated+cardiac+myocytes%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Adenovirus-mediated delivery of short hairpin RNA (shRNA) mediates efficient gene silencing in terminally differentiated cardiac myocytes.</a> Methods Mol. Biol. 515, 107-123 (2009).</li>
<li>Huang, B., Kochanek, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Adenovirus-mediated+silencing+of+huntingtin+expression+by+shRNA%5BTitle%5D)+AND+%22Hum.+Gene+Ther%22%5BJournal%5D)">Adenovirus-mediated silencing of huntingtin expression by shRNA.</a> Hum. Gene Ther. 16, 618-626 (2005).</li>
<li>Tordo, N., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Canine+adenovirus+based+rabies+vaccines%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Canine adenovirus based rabies vaccines.</a> Dev. Biol. 131, 467-476 (2008).</li>
</ol>

Yazarların açıklayacak hiçbir şeyi yoktur.

Burada açıklanan ve iyi belgelenmiş Ad5 teknolojisinden uyarlanan basit yöntem, ~4,2 kbp'lik tipik bir klonlama kapasitesine sahip, replikatif olmayan CAV2 vektörlerinin verimli bir şekilde üretilmesine olanak tanır. Zaman değerlendirmeleri ile ilgili olarak, rekombinant bir CAV2 genomu genellikle iki hafta içinde üretilirken, viral süspansiyonları çoğaltmak, saflaştırmak ve titrek etmek için ek 5 hafta sürecektir.
CAV2'den türetilen vektörlerin ilk partisinin üretimi zaman alıcı görünse de, C...

Son on yıllarda, adenovirüslerden (Ads) türetilen vektörler, gen terapisi ve aşılamanın yanı sıra onkolitik viroterapi 1 için etkinliklerini kanıtlamıştır. Reklamlar, memelilerden, kuşlardan, sürüngenlerden, amfibilerden ve balıklardan izole edilmiş Adenoviridae familyasının zarfsız ikosahedral virüsleridir. 1953'teki keşiflerinden bu yana, ADS, virüs/hücre etkileşimlerini incelemek için modeller olarak ve daha yakın zamanda vektör tabanlı gen dağıtım sistemleri olarak yoğun bir şekilde incelenmiştir 2. Gerçekten de, Ads tabanlı vektörler, geniş konak yelpazesi ve iyi karakterize edilmiş biyolojileri gibi birçok avantajın yanı sıra, büyük ölçekli üretim için genetik olarak manipüle edilebilme ve büyütülebilme kolaylığı sunar.
İnsan popülasyonlarında insan Ads 3'ten türetilen vektörlere karşı önceden var olan bağışıklıkla ilgili klinik zorlukların üstesinden gelmek için, biz ve diğerleri insan olmayan Ads 4'ten vektörler türetmeye başladık. Ek olarak, insan dışı adenoviral vektörler, ulusal düzenleyici makamlar tarafından risk değerlendirmesi sırasında güvenlik ve güvenlik gerekliliklerine daha uyumlu olmaları gerektiğinden, veteriner hekimlikte toplu aşılama için klasik olarak kullanılan adenovirüs tip 5'ten (Ad5) daha fazla uyarlanmış görünmektedir. 1990'ların sonlarında, ilk rekombinant CAV2'yi Ad5 5'ten türetilen vektörlere insan olmayan bir alternatif olarak tanımladık. O zamandan beri, çok sayıda çalışma, CAV2 vektörlerinin terapötik veya antijenik gen transferi için potansiyelini doğrulamıştır (incelemeler için 6,7). Diğer Reklamlar gibi, CAV2'den türetilen vektörler de kararlıdır ve yüksek titrelerde üretilebilir, bu da in vivo kullanımlarını kolaylaştırır. Uzun süreli transgen ekspresyonuna izin vermelerine rağmen bütünleştirici olmadıkları için de güvenlidirler in vivo (>1 yıl) 8. Dikkat çekici bir şekilde ve insan Ads serotiplerinden daha iyi olan CAV2 vektörlerinin, aksonlarda çok verimli bir retrograd taşıma ile oldukça nörotropik olduğu gösterilmiştir 9,10. Bu içsel özellik, şimdiye kadar merkezi sinir sistemine gen transferi için yaygın olarak kullanılan, lentiviral vektörler tarafından zorlukla erişilemeyen belirli beyin bölgelerinin nöronlarını dönüştürmek için rekombinant CAV2 vektörlerini kullanma fikrini getirdi 11.
Burada, Manhattan suşundan türetilen replikatif olmayan CAV2 vektörlerini oluşturmak, üretmek ve saflaştırmak için basit ve klasik bir protokolü açıklıyoruz. Rekombinant CAV2 genomları, her yerde bulunan bir ekspresyon sağlayan sitomegalovirüs (CMV) erken promotörün bir kaset aşağı akışında istenen ilgilenilen genin (GOI) klonlanmasıyla oluşturulur. CAV2 vektörleri, büyük cDNA'nın eksprese edilmesine izin veren ~ 4.2 kbp'lik bir klonlama kapasitesine sahiptir. İkinci adımda, bu ekspresyon kaseti, CAV2 genomunun E1 bölgesinin yerine homolog rekombinasyon ile yerleştirilir ve başlangıçta Chartier ve arkadaşları tarafından tarif edildiği gibi replikatif olmayan bir virüse (dlE1) yol açar. 12 Son olarak, genomik plazmidin bir CAV2-E1 eksprese eden köpek böbrek hücre hattına (DK-E1) transfeksiyonu üzerine viral partiküller üretilir ve viral stokların konsantrasyonu ve saflaştırılmasından önce seri olarak amplifiye edilir. Burada tarif edilen yöntem, sezyum klorür (CsCl) gradyanlarında iki aşamalı bir ultrasantrifüjleme kullanır, bu da bulaşıcı parçacıkların yüksek bir nihai titre ile zenginleştirilmesini sağlar (genellikle ml başına 1010'dan fazla bulaşıcı parçacık). Viral süspansiyon daha sonra tek kullanımlık Sephadex G-25 kolonları aracılığıyla kromatografi ile tuzdan arındırılır, böylece sonuçta doğrudan in vivo olarak kullanılabilecek kadar saf olur.

<table><tbody><tr><td>Restriksiyon enzimleri</td><td>New England Biolabs</td><td>Çeşitli</td><td></td></tr><tr><td>Jet Prime transfeksiyon kiti</td><td>Polyplus</td><td>114-01</td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>Gibco (Yaşam Teknolojileri)</td><td>10567014</td><td></td></tr><tr><td>E. coli BJ5183 bakteri</td><td>Agilent</td><td>200154</td><td></td></tr><tr><td>PD-10 tuz giderme kolonu</td><td>GE Sağlık</td><td>17-0851-01</td><td></td></tr><tr><td>EmeraldAmp polimeraz</td><td>Takara</td><td>RR320A</td><td></td></tr><tr><td>Nucleospin plazmid kiti</td><td>Macherey-Nagel</td><td>740558.250</td><td></td></tr><tr><td>NucleoSpin Jel ve PCR Temizleme</td><td>Macherey-Nagel</td><td>740609.50</td><td></td></tr><tr><td>14 ml tüpler, Ultra Clear</td><td>Beckman</td><td>344060</td><td></td></tr></tbody></table>

non replikatif kanin adenovirüs tip 2 türetilmiş vektörler üretimi ve saflaştırılması

Production and Purification of Non Replicative Canine Adenovirus Type 2 Derived Vectors

Adenovirüs (Ad) türevi vektörler, hem gen tedavisi hem de aşı uygulamaları için kısa veya uzun süreli gen transferi için yaygın olarak kullanılmaktadır. Klasik olarak kullanılan insan adenovirüsü tip 5'e karşı önceden var olan sık bağışıklık nedeniyle, köpek adenovirüsü tip 2 (CAV2), insan gen transferi için alternatif bir vektör olarak önerilmiştir. CAV2'nin iyi karakterize edilmiş biyolojisi, genetik manipülasyon kolaylığı ile birlikte, özellikle merkezi sinir sistemine gen transferi veya humoral bağışıklıktan hücresel bağışıklığa kadar çok çeşitli koruyucu bağışıklık tepkilerini indüklemek için büyük avantajlar sunar. Günümüzde CAV2, bir aşı vektörü olarak kullanım için en çekici insan dışı adenovirüslerden birini temsil etmektedir. Bu protokol, rekombinant CAV2 vektörlerini oluşturmak, üretmek ve titre etmek için basit bir yöntemi açıklar. İlgilenilen genin ekspresyon kasetinin bir mekik plazmidine klonlanmasından sonra, rekombinant genomik plazmit, E. coli BJ5183 bakteri suşunda homolog rekombinasyon ile elde edilir. Elde edilen genomik plazmit daha sonra tamamlayıcı CAV2-E1 genlerini (DK-E1) eksprese eden köpek böbrek hücrelerine transfekte edilir. Viral amplifikasyon, sezyum klorür gradyanları yoluyla ultrasantrifüjleme ile saflaştırılan ve diyaliz ile tuzdan arındırılan büyük bir viral stoğun üretilmesini sağlar. Elde edilen viral süspansiyon rutin olarak ml başına 1010'dan fazla enfeksiyöz partikülden oluşan bir titreye sahiptir ve doğrudan in vivo olarak uygulanabilir.

Rekombinant CAV2 vektörlerinin üretimi, temel ancak önemli moleküler biyoloji tekniklerine dayanır. Viral vektörlerin üretilmesinden önce, transgen için bir ekspresyon kaseti taşıyan rekombinant bir CAV2 genomu oluşturulması gereklidir. Bu oluşturma süreci iki aşamadan oluşur: ilk olarak, ilgilenilen gen (GOI), bir shuttle plazmide ekspresyon kaseti olarak (yani promotör ve poliadenilasyon sinyali ile birlikte) klonlanır. Bu fonksiyonel element, yukarı akış (upstream) ve aşağı akış (downstream) rekombinasyon böl...

Son 15 yılda, köpek adenovirüsü tip 2 (CAV2) türevi vektörler, in vitro ve in vivo hücreleri dönüştürme etkinliklerini kanıtlamıştır ve aşılama ve gen tedavisi için yaygın olarak kullanılmaktadır. Burada, yüksek titreli viral süspansiyonlara yol açan CAV2 vektörlerini oluşturmak, üretmek ve saflaştırmak için bir prosedür açıklıyoruz.

Non Replikatif Kanin adenovirüs tip 2 türetilmiş vektörler üretimi ve saflaştırılması

Adenovirus (Ad) derived vectors have been widely used for short or long-term gene transfer, both for gene therapy and vaccine applications. Because of the ...

Bu prosedürün genel amacı, köpek adenovirüsü tip iki türetilmiş vektörü oluşturmak, üretmek ve saflaştırmaktır. Bu, önce ilgilenilen genin bir mekik plazmidine klonlanmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adım, homolog rekombinasyon ile rekombinant bir genomik plazmit elde etmektir.Daha sonra, rekombinant kusurlu buzağı, bir trans tamamlayıcı hücre hattında üretilen ve çoğaltılan iki virüs. Son adım, elde edilen rekombinant virüsü in vivo ve in vitro olarak çeşitli uygulamalar için saflaştırmak ve konsantre etmektir. Sonuç olarak, kemirgen beyninde viral transdüksiyon örneklerini göstermek için immünofloresan konfokal mikroskopi kullanılır.Bu tekniklerin insan ad nevrozundan türetilen vektörler gibi mevcut yöntemlere göre en büyük avantajı, insan popülasyonlarında buzağı ikisine karşı önceden var olan bir bağışıklığın olmamasıdır. Dolayısıyla bu yöntem, belirli beyin bölgelerinde ifade edilen proteinlerin rolünü değerlendirmek gibi aşılama veya gen terapisi alanlarındaki temel soruları yanıtlamaya yardımcı olabilir. Dolayısıyla bu prosedürü göstermek KY ve Corin Bergeron olabilir.Laboratuvarlarımızdan iki doktora sonrası araştırmacı, transfeksiyondan bir gün önce, DKE bir hücreyi altı oyuklu bir plaka üzerine ekleyerek, 37 santigrat derecede ve DMEM'de% 5 CO2'de% 7 ısı içeren yüksek glikoz, inaktive fetal baldır, serum sodyum, piruvat, penisilin ve streptomisin ile büyüyen hücreler yetiştirerek bu prosedüre hazırlanın. Ertesi gün, hücreler transfeksiyon için %70 ila 80 oranında birleşmiş olmalıdır, iki mikrogram pcal GOI'yi sindirin, rekombinant kav iki genomik plazmit, ASC ile bir, plazmidin viral olmayan dizisini serbest bırakmak için, elde edilen kısıtlama modelini %0.8 ile kontrol edin, Agro jel elektroforezi sindirimi, rekombinant genomu içeren yaklaşık 31 kilobaz çifti fragmanı ve plazmid omurgasına karşılık gelen iki kilobaz çifti fragmanı vermelidir. Sindirilmiş DNA'yı 200 mikrolitre jet prime tamponu ile karıştırın ve 10 saniye boyunca girdap yapın.Dört mikrolitre jet prime ekleyin ve 10 saniye boyunca girdap yaparak karıştırın. Damlacıkları çıkarmak için kısa bir süre döndürün ve 10 dakika inkübe edin. Oda sıcaklığında, transfeksiyon karışımını DKE one hücrelerinin üzerine damla damla ekleyin.Karışımı eşit şekilde dağıtmak ve 37 santigrat derecede inkübe etmek için plakayı hafifçe sallayın. Transfeksiyondan bir hafta sonra, hücreleri ve kültür ortamını 15 mililitrelik bir polipropilen tüpte toplayın. Hücreleri üç donmuş düşünce döngüsü ile bozun.Lizatı 1.800 kez 10 dakika santrifüjleme ile temizleyin G. Süpernatanı toplayın ve virüsü çoğaltmak için% 80 ila 90 birleşik tek tabakalı bir DKE hücresini enfekte etmek için eksi 20'de saklayın, altı oyuklu bir plakanın bir oyuğunda büyütülen bir hücre, 0.5 mililitre süpernatan içeren bir plaka. Hafif çalkalama altında bir saat boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin Bir saat sonra. Aşıyı çıkarın ve %5 Isı ile etkisiz hale getirilmiş FCS içeren 1,5 mililitre tam DMEM ile değiştirin, hücreleri üç ila dört gün boyunca 37 santigrat derecede inkübe edin.Hücreler, sitopatik bir etki veya CPE'nin görünümü için günlük olarak izlenmelidir. Net bir CPE görünmüyorsa. Dört günlük kültürden sonra hücreleri toplayın ve net bir CPE hücrelerin çoğunu etkilediğinde viral amplifikasyonu tekrarlayın.Genellikle iki ila dört viral amplifikasyon turundan sonra, kültür ortamı ile hücreleri toplayın ve daha önce gösterildiği gibi üç kez dondurun, çözün. % 80 ila 90 oranında enfekte olur. DKE, CPE tamamlandığında üç ila dört gün sonra tabak başına 1.5 mililitre virüs içeren süpernatan kullanılarak 10 santimetre çapında üç doku kültürü kabında büyütülen bir hücredir.Bu 10 santimetre çapındaki tabaklardan hücreleri hasat edin, onları üç serbest stil döngüsüyle bozun ve lizatı 1.800 kez 10 dakika santrifüjleme ile temizleyin. G süpernatant toplayın ve büyük ölçekli Cav için eksi 20'de saklayın, ölçek büyütme prosedürüne başlamak için iki amplifikasyon, DKE'nin% 80 ila 90'ını birleşik tek katmanlarını enfekte edin, her tabak için 40 10 santimetre çapında doku kültürü kaplarında büyütülen bir hücre, FCS olmadan bir mililitre tam DMEM'de seyreltilmiş süpernatan içeren 0.1 mililitre virüs kullanın, hafif ajitasyon altında üç ila dört saat boyunca hücreleri 37 santigrat derecede inkübe edin. Üç ila dört saat sonra,% 5 FCS ile takviye edilmiş beş mililitre tam DMEM ekleyin ve üç gün boyunca inkübe edin.Üç gün sonra, 50 mililitrelik polipropilen tüplerdeki 40 10 santimetrelik tabaklardan enfekte olmuş hücreleri, dört santigrat derecede 10 dakika boyunca 1.200 kez G'de pelet hücrelerini hasat edin. Resus, bunları 15 mililitre DMEM ortamında askıya alır, hücreleri üç donma-çözülme döngüsü ile bozar. 10 dakika boyunca 1.800 kez G'de santrifüjleyerek hücre kalıntılarını çıkarın.Viral partiküllerin saflaştırılması için viral partiküllerin saflaştırılmasından önce süpernatanı eksi 20'de saklayın. 14 mililitrelik bir UltraClear tüpte süreksiz bir sezyum klorür gradyanı hazırlayın. İlk olarak, tüpün dibine iki mililitre yüksek yoğunluklu sezyum klorür çözeltisi dökün.Daha sonra, ilk çözeltinin üzerine yavaşça iki mililitre düşük yoğunluklu sezyum klorür çözeltisi ekleyin. Viral süpernatanı sezyum klorür gradyanının üzerine dikkatlice yükleyin. Tüpü, santrifüjlemeden sonra 130.000 kez g ve 18 santigrat derece sıcaklıkta bir saat 30 dakika boyunca sallanan bir SW 40 rotorunda üst santrifüjden iki ila üç milimetreye kadar mineral yağ ile doldurun.İki sezyum klorür çözeltisi tabakası arasındaki arayüzde iki beyaz bant açıkça görülebilir. 21 gauge bir iğne ve yandan toplanan bir şırınga kullanarak, olgun kav iki parçacık içeren alt bandı delin. Boş viral partiküllere karşılık gelen üst bandı toplamaktan kaçınmak için mümkün olduğunca deneyin.Kolektif viral parçacıkları bir sezyum klorür çözeltisi ile karıştırarak 14 mililitrelik şeffaf bir tüpte sürekli bir sezyum klorür gradyanı hazırlayın. Tüpü, 130.000 kez G ve 18 derecede 18 saat boyunca sallanan bir SW 40 rotorunda üst santrifüjden iki ila üç milimetreye kadar mineral yağ ile doldurun. Santrifüjlemeden sonra, daha önce gösterildiği gibi bir şırınga ile yan yana delinme içeren iki beyaz buzağıyı toplayın.Yine, kalan üst bandı toplamaktan kaçınmaya çalışın. İki bandı daha iyi ayıran bu sürekli gradyanda bu daha kolay olmalıdır. Toplanan süspansiyonun toplam hacmi iki mililitreyi geçmemelidir.Daha sonra bir cidex G 25 PD 10 sütununu 30 mililitre PBS ile dengeleyin. Viral süspansiyonu kolona yükleyin ve 500 mikrolitrelik PBS fraksiyonları ile elute boyunca akışı atın, genellikle tuzdan arındırılmış cav iki partikülü içeren beş ila yedi fraksiyonları toplayın. Virüs içeren fraksiyonlar, kutsanmış kokular olduğu için kolayca tanımlanabilir.Son olarak, 1.5 mililitre CAV iki süspansiyonuna 150 mikrolitre gliserol ekleyin ve eksi 80 santigrat derecede Eloqua'da saklayın, son nokta seyreltme ile cav iki titre edin, buz üzerinde saflaştırılmış virüsün bir kısmını çözün ve serum serbest DMEM'de 10 ila eksi iki ila 10 ila eksi 12 arasında değişen on kat seri seyreltme gerçekleştirin. 96 oyuklu bir plakanın beş oyuğuna her viral seyreltmeden 50 mikrolitre ekleyin, dördüncü DKE'ye 1.5 kez 10 ekleyin, her oyuğa bir hücre ekleyin, plakayı beşinci günde beş gün boyunca 37 santigrat derece ve% 5 CO2'de inkübe edin. Enfeksiyon sonrası mikroskobik gözlem ile CPE görünümünü izleyin.Enfeksiyöz titreler, viral vektörlerin üretilmesinden önce okuma ve men istatistiksel yöntemi kullanılarak medyan doku kültürü enfeksiyöz dozları olarak belirlenir. Transgen için bir ekspresyon kaseti taşıyan bir rekombinant CAV iki genomu, standart moleküler biyoloji teknikleri kullanılarak oluşturulur. İlk olarak, ilgilenilen gen, bir sitomegalovirüs erken promotörü ve yukarı ve aşağı akış rekombinasyon hedef dizilerini temsil eden iki CAV iki türetilmiş genomik dizi ile çevrili bir poliadenilasyon sinyali ile bir ekspresyon kaseti olarak bir mekik plazmidinde klonlanır.İkinci adımda, ekspresyon kaseti, mekik plazmidinden homolog rekombinasyon ile CAV iki genomuna yerleştirilir. GOI ekspresyon kasetinin eklenmesi, rekombinant genomdaki EA'nın ve E bir B geninin bir kısmının silinmesine yol açacaktır. Rekombinant genomik plazmit elde edildikten sonra, viral partiküller, DKE bir hücreyi tamamlayan CAV iki E bir kullanılarak üretilir.Enfekte hücrelerde üretilen büyük miktarda viral partiküllere bağlı net bir sitopatik etki, parlak alan mikroskobu veya transgen ekspresyonu ile kolayca görselleştirilebilir. Bu örnek, CAV iki vektörünü ifade eden bir GFP'dir. Taze DKE one hücreleri kullanılarak birkaç viral amplifikasyon turundan sonra, viral partiküller sezyum klorür gradyanları üzerinde ultrasantrifüjleme ile saflaştırılır.Konsantre viral parçacıklar, sezyum gradyanı içinde iki yanardöner bant olarak görünür. Alt bant, toplanması gereken matür rekombinant kav iki'ye karşılık gelir. Üst bant, kaçınılması gereken boş, bulaşıcı olmayan parçacıklar içerirken.Elde edilen rekombinant buzağı iki vektörü, in vitro veya in vivo olarak çok çeşitli türlerde neredeyse tüm hücre tiplerini dönüştürmek için kullanılabilir. Burada, CAV iki eksprese eden GFP'nin stereo taksi ile fare merkezi sinir sisteminin farklı bölgelerine enjekte edildiği bir uygulama örneği gösterilmektedir. Bu protokol yüksek titre ve saf, saf viral stoklar verdiğinden, dentat girus veya DG'de CAV iki vektörünü eksprese eden bir mikrolitre kadar küçük PBS seyreltilmiş GFP enjeksiyonu %40 ila 50 nöronal transdüksiyona yol açar.Ayrıca, C 2'nin aksonlarda retrograd olarak taşınabilme özelliği nedeniyle, striatumda CAV iki vektörünü eksprese eden iki mikrolitre PBS seyreltilmiş GFP enjeksiyonu, nigro stri AAL nöronlarının yaklaşık %80'inin transdüksiyonunu sağlar, nigra pars compacta Gelişmelerden sonra. Bu teknikler, alanlardaki veya aşı bilimi veya sinirbilim alanlarındaki araştırmacıların, birçok farklı hayvan modelinde beyindeki yeni antijenleri ve gen fonksiyonlarını keşfetmelerinin yolunu açmaktadır. Bu nedenle, CAF iki türetilmiş vektörle çalışmanın son derece tehlikeli ve tehlikeli olabileceğini unutmayın, örneğin kişisel koruyucu ekipman ve BSL'deki laminer akış davlumbazlarında çalışma dahil olmak üzere uygun muhafaza ve atık işleme önlemleri gibi iki laboratuvar bu prosedürü gerçekleştirirken her zaman alınmalıdır.

production-purification-non-replicative-canine-adenovirus-type-2

Research

JoVE Journal

Immunology and Infection

İmmünoloji ve Enfeksiyon

Rekombinant adeno-ilişkili virüs (rAAVs) vektörleri için giderek daha değerli hale...

Rekombinant Adeno ilişkili Viral Vektörlerin Üretimi ve Titering

Burada biz sadece kullanılan diğer protokollere göre 100'den fazla kat rekombinant parvovirüs üretim verimliliğini artırır hücre enfeksiyonu, dayalı bir protokol tanımlamaktadır. Bu protokol, parvovirüsü VP transkripsiyon ünitesi (AD-VP) ihtiva eden 5-bazlı yardımcı yeni bir adenovirüs kullanımına dayanır.

Adenovirüs kaynaklı Sistemleri Yardımı ile verimli Rekombinant Parvovirus Üretim

Source: Ehrke-Schulz, E., et al. Cloning and Large-Scale Production of High-Capacity Adenoviral Vectors Based on the Human Adenovirus Type 5. J. Vis. Exp. (2016)This video demonstrates the large-scale amplification of high-capacity adenoviral vectors in suspension-adapted human embryonic kidney cells expressing Cre recombinase for use in gene delivery applications requiring high-titer, helper-free vector preparations.

Large-Scale Production of High-Capacity Adenoviral Vectors 

Tüm viral kodlama dizilerinden yoksun yüksek kapasiteli adenoviral vektörlerin üretilmesi için bir protokol sunulmuştur. Vektör genomunda bulunan transgenlerin klonlanması, hedef güdümlü endonükleazlara dayanmaktadır. Yapışık hücreler olarak büyütülen ve süspansiyon halinde üretilen üretici hücrelerde virüs amplifikasyonu, trans halinde viral genler sağlayan yardımcı bir virüse dayanır.

İnsan Adenovirüs Tip 5 dayanarak Yüksek Kapasiteli Adenoviral Vektörler klonlanması ve Büyük Ölçekli Üretim

Burada, biz üretmek için verimli ve tekrarlanabilir bir strateji, titresi ve adeno ilişkili virüs vektörlerin kalite kontrol toplu işlemleri açıklanmaktadır. Bir vektör hazırlık ile yüksek-titresi elde etmek kullanýcýnýn (≥1 x 1013 vektör genleri/mL) ve yüksek saflıkta, vitro veya vivo içinde kullanıma hazır.

Üretim, arıtma ve kalite kontrol için virüs tabanlı vektörel çizimler Adeno ilişkili

Burada, pAdEasy sistemini kullanarak adenovirüs üretimi için bir protokol sunuyoruz. Teknoloji, pAdTrack ve pAdEasy-1 plazmidlerinin rekombinasyonunu, adenovirüs paketleme ve amplifikasyonunu, adenoviral parçacıkların hücre lysate ve kültür ortamından arındırılmasını, viral titrasyonunu ve adenovirüsün fonksiyonel testini içerir.

Adenovirüs Üretimi İçin Verimli Bir Yöntem

Burada, hücre yığınlarında yetişen yapışan HEK 293 hücrelerini ve benzeşim kromatografisi saflaştırmayı kullanarak araştırma sınıfı AAV vektörlerinin büyük ölçekli üretimi için ayrıntılı bir prosedür sunuyoruz. Bu protokol sürekli olarak &gt;1 x 1013 vektör genomları /mL verir ve büyük hayvan çalışmaları için uygun vektör miktarları sağlar.

Büyük Hayvan Modellerinde Preklinik Çalışmalar İçin Hücre Yığınlarında Adeno İlişkili Virüs Vektörlerinin Üretimi

Bu protokolde AAV2 vektörü, süspansiyon kültüründe baculovirüs (BV)-AAV2-yeşil floresan protein (GFP) veya terapötik gen ve BV-AAV2-rep-cap enfekte Sf9 hücreleri ile Spodoptera frugiperda (Sf9) böcek hücrelerinin birlikte kült haline sokulmasıyla üretilmektedir. AAV parçacıkları deterjan kullanılarak hücrelerden salınır, netleştirilir, benzeşim kolonu kromatografisi ile saflaştırılır ve teğetsel akış filtrasyonu ile konsantre edilir.

Baculovirus-Insect Hücre Kültürü Sistemi Kullanılarak Adeno-İlişkili Virüsün (AAV)2 Vektörün Üretimi ve Saflaştırılması için Süreç Geliştirme

Burada, yüksek titreli rekombinant Newcastle hastalığı virüsünün üretimi, saflaştırılması ve miktarının belirlenmesi için ayrıntılı bir prosedür sunuyoruz. Bu protokol sürekli olarak &gt; 6 × 109 plak oluşturan birim / mL verir ve in vivo hayvan çalışmaları için uygun virüs miktarlarını sağlar. İn vivo güvenliği sağlamak için ek kalite kontrol testleri açıklanmaktadır.

Allantoik Sıvıdan Yüksek Titerli Rekombinant Newcastle Hastalığı Virüsü Üretimi

Burada, bir süspansiyon HEK293 hücre tabanlı AAV üretim protokolü sunulmakta olup, ticari satıcılardan araştırma amacıyla temin edilebilen bileşenleri kullanarak vektör üretimi için gereken zaman ve işçiliğin azaltılmasına neden olmaktadır.

HEK293 Süspansiyon Hücreleri Kullanılarak Yüksek Verimli Adeno İlişkili Vektör Partilerinin Üretimi

Öğrenin CAV2 türevli vektörlerin yapımını, üretimini ve saflaştırılmasını. Bu yöntem gen tedavisi ve aşılama uygulamalarında yüksek verimli hücre transdüksiyonu sağlar.

Non Replikatif Kanin adenovirüs tip 2 türetilmiş vektörler üretimi ve saflaştırılması

Daha fazla video keşfet