Name: Deniz Kestanesi Zigotlar Yüksek Randımanlı Microinjections (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-21T21:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 40 s
Description: Öğrenin deniz kestanesi zigotlarına yüksek verimli mikroenjeksiyon tekniğini. Bu yöntemle RNA ve protein ekspresyonunu inceleyerek gelişim biyolojisi araştırmalarında gen fonksiyonlarını analiz edebilirsiniz.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz fotoğraf yardım için el yazması ve Betty Cowgill eleştirel okuma Santiago Suarez teşekkür ederim. Biz de onların kritik geribildirim için anonim yorumcular teşekkür ederim. Bu çalışma University of Delaware Araştırma Fonu tarafından desteklenmektedir.

1.. Protamin sülfatın hazırlanışı (PS) Züccaciye Kaplı <ol><li> 50 ml konik bir tüp içinde, deiyonize damıtılmış su (GKD 2 O), 50 ml PS 0.5 g eklenmesi ile protamin sülfat (PS)% 1 çözeltisi hazırlayın. PS tam olarak çözünmesini sağlamak için 1-2 saat boyunca oda sıcaklığında bir tezgah bir karıştırıcı üzerinde yüksek hızda iyice çalkalayın. Bu çözelti, (tam olarak, her kullanım öncesi jel benzeri bir çökeltinin çözünmesi için emin olun) 3, en az 3 ay boyunca 4 ° C&#39;de saklanabilir. </li><li> 60 mm x 15 mm polistren Petri yemekleri bir kol alın ve bankta hem kapaklarını ve dipleri yatıyordu. </li><li> En az 2 dakika boyunca bırakın, yüzeyini kaplamak için yeterli her yemeğin içinde% 1 PS solüsyonu (hem dipleri ve kapaklar kullanılır) dökün. 4 ° C &#39;de muhafaza edildiğinde, geri kalan çözelti, PS 3 ay içinde bir çok kez tekrar edilebilir </li><li> Yer, damıtılmış su (dH 2 O) ile dolu bir beher içinde yemekler PS-işlemden geçirildi. Için dH 2 O çalıştıran altında beher bırakın en azından10 dk. </li><li> PS kaplı yemekler depolama için hemen veya hava kuru kullanılabilir. Toz birikmesini önlemek için onları kapsar. Bunlar, 1 ay 3 oda sıcaklığında saklanabilir. </li></ol> 2. Deniz Kestanesi gamet elde etmek ve Mikroenjeksiyon için bir PS kaplı çanak üzerinde Yumurta hareketsiz <ol><li> Garnetleri 3 (Şekil 2) serbest bırakmak için düz kasların kasılmasını uyardığı sallayarak ya da% 0.5 KCl kadar 1 ml intracoelomic enjeksiyonu ile Spawn deniz kestanesi. </li><li> Hayvan bir erkek ise, beyaz renk sperm ile gösterildiği gibi, 1.5 ml tüp içine bir hayvanın yüzeyinden sperm kuru toplar. Kuru sperm biyolojik fonksiyon kaybı olmadan bir hafta boyunca 4 ° C&#39;de saklanabilir. </li><li> Hayvan nedeniyle yumurta sarısı içeriğine sarı renk ile gösterildiği gibi, bir kadın, deniz suyu ile dolu bir beher içinde gonopores daldırma tarafından gamet toplamak değilse. Yumurta gonopores salınır ve yerçekimi tarafından aşağı yerleşmek olacaktır. &lt;/ Li&gt; <li> Enkaz böyle 80 mikron naylon örgü filtre kullanılarak hayvan dikenler gibi yumurta Filtre. Yumurta yumurtlama sonra 5-7 saat içinde kullanılması halinde iyi sonuçlar elde edilir. </li><li> Yumurta Dejelly: <ol><li> Yumurtanın yaklaşık olarak 1 ml asitli deniz suyu 100 ml hazırlayın. 5,1-5,2, pH 8.0 deniz suyunun pH değerini ayarlamak için, 0.5 M sitrik asit kullanın. Bir pH değerinde çok düşük döllenme azalacak ve bir pH çok yüksek yumurta PS kaplı plakalara takmak için izin vermez. </li><li> Asidik deniz suyuna yumurta (en fazla 1 mi) ilave edin ve yumurta 10 dakika boyunca buz üzerinde yerleşmek için izin verir. Seçenek olarak ise, jöle kat çıkarılması tedavi sırasında yumurta Hafifçe girdapladıktan kolaylaştırılabilir. Bir 3-4 dakika içinde etkili dejelly bu şekilde S. purpuratus yumurta yapabilirsiniz. </li><li> Dikkatle, asitli deniz suyu dökün taze deniz suyu ekleyin ve yumurta buz üzerinde yeniden yerleşmek edelim. Dejellied yumurta gübreleme sorunsuz kadar 6 saat boyunca buz üzerinde saklanabilir </li></ol></li&gt; </ol> 3. Yumurta Row <ol><li> GKD 2 O., 10 ml 3-AT 0.84 g çözülerek 3-aminotriazol (3-N, MW = 84,08) içinde 1 M stok çözelti hazırlayın Bu çözüm, en fazla 6 ay için 4 ° C&#39;de saklanabilir. </li><li> Önceden soğutulmuş deniz suyunun 50 ml 1 M stok çözeltisinden 50 ul ekleyerek 3-AT 1 mM&#39;lik çalışma çözeltisi hazırlayın. Buz üzerinde çözüm tutun. </li><li> Yumurta yumuşak kullanım için ağız pipet (Şekil 3) hazırlayın: <ol><li> Pipet manuel cam mikropipetler (100 x 1.09 mm OD) çekilir. Açık alev üzerinde iki elinizle mikropipet tutun. Cam erimeye başladığında, dikkatli bir şekilde karşı doğrultularda pipet uçları çekin. </li><li> Parafilm ile sızdırmaz bir mühür, bir plastik boru (ID 1.14 mm) bir pipet çekilmiş bağlayın. Borunun uzunluğu yaklaşık 50-70 cm olmalıdır. </li><li> Için cam boru için tüp ters sonunda steril filtre edilmiş P20 veya P200 ucu takınağız parçası olarak kullanılabilir. </li><li> Ucun çapını ayarlamak için makas ile cam mikropipet ucunu Klip. Optimal çapı hafifçe yumurta (80 um) çapını aşmaktadır. </li></ol></li><li> Her PS kaplı tabak (taban veya kapak) içine 1 mM 3-AT deniz suyu 4 ml dökün. </li><li> , Ağız pipet al ağzına P20/P200 ucu koymak ve dişleri ile sabitleyin. Yumurta aspire için, ilk olarak deniz suyu, az miktarda aspire. Önce yumurta yükleme için bir sıvı sütunu sahip olarak, tek ağız pipetleme tekniği üzerinde maksimum kontrole sahip olacak. </li><li> Yumurta yakın mikropipet ucu yerleştirin ve yavaşça pipet yumurta birkaç yüzlerce aspire. Cam mikropipet içinde yumurta hapsedin. </li><li> Satır düz bir çizgi ucu hareket ederken yavaşça ağız pipet onları üfleme bir yemeğin üzerine düz bir çizgide yumurta dejellied. Döllenme sorunları nedeniyle p oluşabilir, çünkü sağ enjeksiyonlar önce yumurta Row3-AT deniz suyu 3 maruz rolonged. Ayrıca, PS gibi katyonik yapıştırıcılar yumurta için toksik olabilir, ve gübreleme zarflar kaldırılmış, özellikle uzun süre bu reaktiflerin embriyo maruz için tavsiye edilmez. </li><li> Cam bir pipet kullanarak sıralı yumurta çizgiye yakın yemeğin üzerine bir çizik yapın. Bu çizik gerektiği gibi çözümün akışını ayarlamak için enjeksiyon iğnesi kırmak için önemli olacaktır. Alternatif olarak, çizik çanak 3-AT deniz suyu dökme önce yapılabilir. </li></ol> 4. Deniz Kestanesi Zigotlar Mikroenjeksiyon <ol><li> Mikroenjeksiyon istasyonu açmak. Burada FemtoJet enjeksiyon sisteminin kullanımı açıklanmaktadır. </li><li> Bir iğne çektirmenin kullanarak enjeksiyon kılcal damarları çekin. İyi bir iğnenin bir örneği Şekil 4&#39;te gösterilmektedir. Not: RNA enjeksiyonlar için, kılcal kısımların enjeksiyon RNAaz kirlenmesini önlemek için 31 ön-muamele edilmelidir: <ol><li> 50 ml konik içine enjeksiyon kılcal damarları yerleştirinborular ve süzüldü, metanol / HCI (9:1) 50 ml. İyice çalkalayın ve 10 saat daha uzun bir gece bekletin. </li><li> Metanol / HCl dökün ve kılcal damarlar aynı tüp içerisinde, süzüldü, metanol ile 2x yıkayın. </li><li> Mümkün olduğu kadar metanol süzün ve metanol içinde tamamen çıkarılmasını sağlamak üzere bir gece boyunca liyofilize kılcal. </li></ol></li><li> Dikkatli bir iğne yükleme tutucu üzerine iğne kılcal montaj ve Microloader ipuçlarını kullanarak bir örnek çözeltisi &lt;0.5 ul ile yükleyebilirsiniz. Örnek çözeltiler genellikle enjekte edilen malzemenin 3 bağlı olarak,% 20 gliserol ihtiva etmektedir. </li><li> Mikroskop aşamasında (Gözmerceklerinden bakıldığında yumurta dikey olarak aynı hizada olmalıdır) rowed yumurta çanak yerleştirin ve yumurta odaklanın. </li><li> Dikkatlice iğne microinjecting sahibinin üzerine yüklenen iğne montaj ve alanın ortasında mükemmel odaklanmış ipucu var iğnenin konumunu ayarlamak. </li><li> Maksimum basıncı fo uygulamak için düğmeye basınızr iğne temizleme. Çözüm iğne çıkması gerekir. Gerekirse, basıncı ayarlamak için: enjeksiyon basıncı, yaklaşık 1/3, enjeksiyon basıncı dengeleme basıncı ile, 90-360 hPa aralığında olmalıdır. </li><li> Döllenmemiş yumurtanın içine enjekte edilerek çözelti akışını ayarlayın. Bir joystick micromanipulator kullanarak, döllenmemiş yumurta enjeksiyon iğne ucu doğrudan. , Iğne girişini kolaylaştıracak böyle bir tornavida gibi sert bir cisimle aşamasında nazik dokunarak hafif titriyordu oluşturmak için. Yumurta içinde şekillendirme bir bolus enjeksiyon (Şekil 5) görülmelidir. </li><li> Enjeksiyon iri hap şeklinde görünür değilse, hafif, yumurtaların yukarıdaki iğne ucu yükseltmek yemeğin üzerinde çizik bulmak ve alanın ortasında yer şekilde ayarlamak. Yavaşça bir iğne ucu kırmak için karalama işaretine iğne ucu dokunun. Enjeksiyon bolus t 1/5 aşmamasını sağlamak için enjeksiyon ve tazminat basınçları ayarlayınyumurta (1-2 pm) ve o çapı. </li><li> Enjeksiyonu bolus kalibre edildikten sonra, sulandırılmış sperm (1:1,000) veya sperm 1-2 ul ekleyerek yumurtaları döller. Yumurta satır yerinden oynatmamaya önlemek için dikkatli bir şekilde iyice karıştırın. </li><li> Fertilizasyon zarf (Şekil 5) görünür hale gelir hemen sonra enjeksiyonları başlayın. Sahne denetleyicisi kullanarak sıralı yumurta hattı boyunca hareket ve joystick micromanipulator tarafından kontrol iğne ile alay ederek mümkün olduğunca çok sayıda zigot enjekte. </li><li> 10-15 dakika sonra, yeni döllenmiş yumurta sertleştirilmiş olacaktır ve herhangi bir daha fazla enjekte edilebilir olamaz. Aşamasından çanak çıkarın ve dikkatli bir plastik Pasteur pipet kullanarak 3-AT deniz suyunda sperm dışarı aspire. </li><li> Zigot kuru izin vermeyin. Çabuk çanak kapağı taze önceden soğutulmuş deniz suyu ekleyin. 15 ° C de inkübe embriyolar </li></ol>

<ol><li>Muramatsu, T., Mizutani, Y., Ohmori, Y., Okumura, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+three+nonviral+transfection+methods+for+foreign+gene+expression+in+early+chicken+embryos+in+ovo%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.Res.+Commun%22%5BJournal%5D)">Comparison of three nonviral transfection methods for foreign gene expression in early chicken embryos in ovo.</a> Biochem. Biophys.Res. Commun. 230, 376-380 (1997).</li>
<li>Peng, H., Wu, Y. Y., Zhang, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Efficient+Delivery+of+DNA+and+Morpholinos+into+Mouse+Preimplantation+Embryos+by+Electroporation%5BTitle%5D)+AND+%22Plos+One%22%5BJournal%5D)">Efficient Delivery of DNA and Morpholinos into Mouse Preimplantation Embryos by Electroporation.</a> Plos One. 7, 13 (2012).</li>
<li>Ettensohn, C. A., Wray, G. A., Wessel, G. M. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aEttensohn%2C+CA+%22eds.+Development+of+sea+urchins%2C+ascidians%2C+and+other+invertebrate+deuterostomes%3A+experimental+approaches%22">eds. Development of sea urchins, ascidians, and other invertebrate deuterostomes: experimental approaches</a>. 74, Elsevier Academic Press. (2004).</li>
<li>Franks, R. R., Houghevans, B. R., Britten, R. J., Davidson, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+introduction+of+cloned+DNA+into+the+sea+urchin+zygote+nucleus%2C+and+fate+of+injected+DNA%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Direct introduction of cloned DNA into the sea urchin zygote nucleus, and fate of injected DNA.</a> Development. 102, 287-299 (1988).</li>
<li>Kinsey, W. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+signaling+pathways+in+zebrafish+development+by+microinjection%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of signaling pathways in zebrafish development by microinjection.</a> Methods Mol. Biol. 518, 67-76 (2009).</li>
<li>Kola, I., Sumarsono, S. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Microinjection+of+in+vitro+transcribed+RNA+and+antisense+oligonucleotides+in+mouse+oocytes+and+early+embryos+to+study+the+gain-+and+loss-of-function+of+genes%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biotechnol%22%5BJournal%5D)">Microinjection of in vitro transcribed RNA and antisense oligonucleotides in mouse oocytes and early embryos to study the gain- and loss-of-function of genes.</a> Mol. Biotechnol. 6, 191-199 (1996).</li>
<li>Mishina, T., Fuchimukai, K., Igarashi, K., Tashiro, K., Shiokawa, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Modification+of+secondary+head-forming+activity+of+microinjected+a+dagger+beta-catenin+mRNA+by+co-injected+spermine+and+spermidine+in+Xenopus+early+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Amino+Acids%22%5BJournal%5D)">Modification of secondary head-forming activity of microinjected a dagger beta-catenin mRNA by co-injected spermine and spermidine in Xenopus early embryos.</a> Amino Acids. 42, 791-801 (2012).</li>
<li>O'Meara, C. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Gene+silencing+in+bovine+zygotes%3A+siRNA+transfection+versus+microinjection%5BTitle%5D)+AND+%22Reprod.+Fertil.+Dev%22%5BJournal%5D)">Gene silencing in bovine zygotes: siRNA transfection versus microinjection.</a> Reprod. Fertil. Dev. 23, 534-543 (2011).</li>
<li>Dean, D. A., Gasiorowski, J. Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nonviral+gene+delivery%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Nonviral gene delivery.</a> Cold Spring Harb. Protoc. , (2011).</li>
<li>Hiramoto, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+division+without+mitotic+apparatus+in+sea+urchin+eggs%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Cell division without mitotic apparatus in sea urchin eggs.</a> Exp. Cell Res. 11, 630-636 (1956).</li>
<li>Wilson, L. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aWilson%2C+L+%22Methods+in+Cell+Biology%22">Methods in Cell Biology</a>. 25, Elsevier. (1982).</li>
<li>Gross, J. M., McClay, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+role+of+Brachyury+%28T%29+during+gastrulation+movements+in+the+sea+urchin+Lytechinus+variegatus%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">The role of Brachyury (T) during gastrulation movements in the sea urchin Lytechinus variegatus.</a> Dev. Biol. 239, 132-147 (2001).</li>
<li>Yajima M, W. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Autonomy+in+specification+of+primordial+germ+cells+and+their+passive+translocation+in+the+sea+urchin%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Autonomy in specification of primordial germ cells and their passive translocation in the sea urchin.</a> Development. 139, 3786-3794 (2012).</li>
<li>Duboc, V., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nodal+and+BMP2%2F4+pattern+the+mesoderm+and+endoderm+during+development+of+the+sea+urchin+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Nodal and BMP2/4 pattern the mesoderm and endoderm during development of the sea urchin embryo.</a> Development. 137, 223-235 (2010).</li>
<li>Ernst, S. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Offerings+from+an+Urchin%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Offerings from an Urchin.</a> Dev. Biol. 358, 285-294 (2011).</li>
<li>McClay, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Evolutionary+crossroads+in+developmental+biology%3A+sea+urchins%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Evolutionary crossroads in developmental biology: sea urchins.</a> Development. 138, 2639-2648 (2011).</li>
<li>Sodergren, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Research+article+-+The+genome+of+the+sea+urchin+Strongylocentrotus+purpuratus%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Research article - The genome of the sea urchin Strongylocentrotus purpuratus.</a> Science. 314, 941-952 (2006).</li>
<li>Roux, M. M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+functional+genomic+and+proteomic+perspective+of+sea+urchin+calcium+signaling+and+egg+activation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">A functional genomic and proteomic perspective of sea urchin calcium signaling and egg activation.</a> Dev. Biol. 300, 416-433 (2006).</li>
<li>Turner, P. R., Sheetz, M. P., Jaffe, L. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fertilization+increases+the+polyphosphoinositide+content+of+sea+urchin+eggs%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Fertilization increases the polyphosphoinositide content of sea urchin eggs.</a> Nature. 310, 414-415 (1984).</li>
<li>Voronina, E., Marzluff, W. F., Wessel, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cyclin+B+synthesis+is+required+for+sea+urchin+oocyte+maturation%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cyclin B synthesis is required for sea urchin oocyte maturation.</a> Dev. Biol. 256, 258-275 (2003).</li>
<li>Wong, J. L., Wessel, G. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extracellular+matrix+modifications+at+fertilization%3A+regulation+of+dityrosine+crosslinking+by+transamidation%5BTitle%5D)+AND+%22Development%22%5BJournal%5D)">Extracellular matrix modifications at fertilization: regulation of dityrosine crosslinking by transamidation.</a> Development. 136, 1835-1847 (2009).</li>
<li>Shuster, C. B., Burgess, D. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transitions+regulating+the+timing+of+cytokinesis+in+embryonic+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Biol%22%5BJournal%5D)">Transitions regulating the timing of cytokinesis in embryonic cells.</a> Curr. Biol. 12, 854-858 (2002).</li>
<li>Morris, R. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Analysis+of+cytoskeletal+and+motility+proteins+in+the+sea+urchin+genome+assembly%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Analysis of cytoskeletal and motility proteins in the sea urchin genome assembly.</a> Dev. Biol. 300, 219-237 (2006).</li>
<li>Minc, N., Burgess, D., Chang, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Influence+of+Cell+Geometry+on+Division-Plane+Positioning%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Influence of Cell Geometry on Division-Plane Positioning.</a> Cell. 144, 414-426 (2011).</li>
<li>Davidson, E. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+genomic+regulatory+network+for+development%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">A genomic regulatory network for development.</a> Science. 295, 1669-1678 (2002).</li>
<li>Oliveri, P., Tu, Q., Davidson, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Global+regulatory+logic+for+specification+of+an+embryonic+cell+lineage%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Global regulatory logic for specification of an embryonic cell lineage.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105, 5955-5962 (2008).</li>
<li>Peter, I. S., Davidson, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+gene+regulatory+network+controlling+the+embryonic+specification+of+endoderm%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">A gene regulatory network controlling the embryonic specification of endoderm.</a> Nature. 474, (2011).</li>
<li>Nam, J. M., Dong, P., Tarpine, R., Istrail, S., Davidson, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+cis-regulatory+genomics+for+systems+biology%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Functional cis-regulatory genomics for systems biology.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 107, 3930-3935 (2010).</li>
<li>Showman, R. M., Foerder, C. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Removal+of+the+fertilization+membrane+of+sea-urchin+embryos+employing+aminotriazole%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell+Res%22%5BJournal%5D)">Removal of the fertilization membrane of sea-urchin embryos employing aminotriazole.</a> Exp. Cell Res. 120, 253-255 (1979).</li>
<li>Lepage, T., Sardet, C., Gache, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Spatial+expression+of+the+hatching+enzyme+gene+in+the+sea-urchin+embryo%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Spatial expression of the hatching enzyme gene in the sea-urchin embryo.</a> Dev. Biol. 150, 23-32 (1992).</li>
<li>Jaffe, L. A., Terasaki, M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Quantitative+microinjection+of+oocytes%2C+eggs%2C+and+embryos%5BTitle%5D)+AND+%22Development+of+Sea+Urchins%2C+Ascidians%2C+and+Other+Invertebrate+Deuterostomes%3A+Experimental+Approaches%22%5BJournal%5D)">Quantitative microinjection of oocytes, eggs, and embryos.</a> Development of Sea Urchins, Ascidians, and Other Invertebrate Deuterostomes: Experimental Approaches. 74, 219-242 (2004).</li>
</ol>

Yazarlar herhangi bir mali çıkarlarını ya da diğer ilgi çatışmalarını beyan.

Mikroenjeksiyon DNA, mRNA, yeniden birleştirici proteinlerin, fonksiyon kaybı ve yumurta, embriyo ve çeşitli organizmaların 1-7 hücrelerine fonksiyonu reaktifler, boyalar ve bunların kombinasyonları gibi çeşitli tedaviler kazancı sağlanması için güçlü bir tekniktir. Mikroenjeksiyon deney tasarımı Ancak, bazı noktalar akılda tutulmalıdır. Bu teslim tedavi ve enjeksiyon hacminin çözünürlüğünü dikkate almak çok önemlidir. Microinjected çözüm bile hafif bir çökelti oluşturmak eğilimi ...

Verimli ve tekrarlanabilir tedavi teslim araştırmacılar için temel metodolojik zorluklardan biridir. Çeşitli yöntemler geçici yumurta, embriyo ve hücre içine tedavi çözümleri sunmak için kurulmuştur. Bu yöntemler, 1,2, lipofeksiyon (membran ile muamele ihtiva eden lipozomların füzyon yoluyla teslim) 1, mikropartikül bombardımanı 1 (DNA mikron çökeltilir (kısa elektrik darbeleri kullanılarak membran içine bir üreten geçici gözenekler göre) elektroporasyonu ölçekli metal daha sonra yüksek hızda hücrelere nüfuz için kullanılan parçacıklar) ve transdüksiyon (virüs transgenlerin bir iletim aracı olarak kullanılır). Şu anda, mikroenjeksiyon minimal reaktifler ile% 100 verim ile herhangi bir çözüm sunma avantajına sahip tek yaklaşımdır. Ayrıca, tek bir enjeksiyon çözeltisi tedaviler karmaşık bir kokteyli imal edilebilir. Bu teknik, başarılı için kullanılmıştırly örneğin deniz kestanesi 3,4, zebra balığı 5, 6 fare, kurbağa 7, 8 ve sığır hem de doku kültürü 9 tek hücreleri gibi çok sayıda türden yumurta ve embriyolar Microinject. Sonraki gelişim aşamalarında tek blastomerler enjeksiyonları da 10-12 yapılmıştır. Microinjections güncel yöntem başlangıçta Hiramoto 10 tarafından tarif edilmiştir basınçlı enjeksiyon yöntemine dayalı, ancak büyük ilerleme bu sürecin optimizasyonu doğru yapılmıştır. Mükemmel mikroenjeksiyon teknikleri yerde 11 tarif edilmiştir, ve burada şu anda deniz kestanesi (Strongylocentrotus purpuratus) yeni döllenmiş yumurta Microinject için kullanılan özel yöntemler birini açıklar. Bir yüzyılı aşkın süredir, deniz kestanesi değerli bir deneysel model 15,16 olmuştur. Deniz kestaneleri evrimsel yakından (bize dahil) omurgalılar ve analizi ile ilgiliBu genom, insan 17 gibi tüm ana gen aileleri içerdiğini ortaya koymuştur. Bunlar, senkron olarak kolayca manipüle edilebilir şeffaf embriyo geliştirme, çok sayıda üretir. Bir model organizma olarak deniz kestanesi kullanarak, deniz kestanesi Topluluğumuza döllenme süreci anlayış 18-21, hücre biyolojik süreçler 22-24, ve gen düzenleyici ağlar (GRNs) 25-28 katkıda bulunmuştur. Deniz kestanesi zigot içine mikroenjeksiyon birkaç adım gerektirir. İlk olarak, yumurta önce (aşağıda tarif edilmiştir) enjeksiyonu için hareketsiz olması gerekir. Mikroenjeksiyon yemekler negatif yüklü yumurta 3 yapışabildiği bir pozitif yüklü yüzey oluşturur protamin sülfat (PS) ile kaplanır. Yumurtalar, doğal veya yapay deniz suyu, deniz suyu (pH 8.0) içinde iki yıkama ve ardından, 10 dakika boyunca asidik deniz suyu içinde inkübe (pH 5.15) ile dejellied edilir. Dejellied yumurta dikkatli bir çizgide küreklidöllenme 29 bir sonucu olarak yumurtanın kortikal granüllerden salgılanan ovoperoxidase aktivitesini inhibe etmek için gerekli olan 1 mM 3-aminotriazolün (3-AT), varlığında, PS kaplı çanak ortasında. Bu adım, döllenme zarfın sertleşmesini önlemek ve mikro-enjeksiyon iğne girişi kolaylaştırmak için önemlidir. 1 mM 3-AT bir alternatif olarak, 10 mM paraminobenzoic asit (PABA) kullanılabilir. Enjeksiyon çözeltisi özel bir microloading pipet kullanarak mikro-enjeksiyon iğne içine yüklendi ve mikromanipülatör ve baskı ünitesine bağlı bir tutacak (Şekil 1) üzerine monte edilir. Her iğne ayrı günlerde çok deneylerde tek zigotların Microinject için kullanılabilir. Zigotlar sertleşmesine kadar Mikroenjeksiyon 10-15 dakika boyunca gerçekleştirilebilir. Zigotlar daha sonra 15 ° C&#39;de deniz suyu ile yıkanır ve kültüre Embriyolar blastula aşamasına kuluçka ulaştıklarında, fer bileşenlerini sindirir kuluçka enzim serbesttilization zarf 30 ve onları doğal PS-kaplı çanak ayırmak için izin verir. Gerekirse, embriyolar hafifçe aşağı embriyoların üzerine deniz suyu üflenerek bir ağız pipet veya Pasteur pipeti kullanılarak tabaktan sökülebilmektedir. Tarif edilen yöntem, alt analizler için yüksek verimli bir yöntem sağlayarak, tek bir tabak üzerinde 100-400 yeni döllenmiş yumurta etkin ve güvenilir bir mikroenjeksiyon sağlar.

<table><tbody><tr><td>Cam Pastör pipetleri</td><td>VWR</td><td>14673-043&</td><td>nbsp;</td></tr><tr><td>Ters mikroskop&nbsp; Eksen 40 & derece; C</td><td>Zeiss</td><td>4109431007990000</td><td>Enjeksiyon mikroskobu</td></tr><tr><td>Mikro yükleyici uçları</td><td>Eppendorf</td><td>5242 956.003</td><td>Yük enjeksiyon çözeltisi</td></tr><tr><td>Naylon filtre ağı 80&nbsp; &mu; m</td><td>Amazon.com</td><td>03-80-37</td><td>Döküntülerden kurtulmak için yumurtaları filtreleyin</td></tr><tr><td>P20 veya P200 Aerosol Bariyer Pipet Uçları</td><td>Fisher Scientific</td><td>02707432 veya 02707430</td><td>Ağız pipetinin bir parçası</td></tr><tr><td>Parafilm</td><td>Fisher Scientific</td><td>13 374 12</td><td>Ağız pipetinin bir parçası</td></tr><tr><td>Polietilen boru</td><td>Intramedic</td><td>PE-160</td><td>Ağız pipetinin bir parçası</td></tr><tr><td>Protamin sülfat</td><td>MP Biyomedikal, LLC</td><td>194729</td><td>Deniz</td></tr><tr><td>kestaneleri S. purpuratus</td><td>Pt. Loma Deniz Omurgasızları Laboratuvarı</td><td>N/A</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Deniz suyu</td><td>herhangi bir evcil hayvan dükkanı</td><td>Anında Okyanus</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Steril 60 mm x 15 mm Polistiren Petri Kabı</td><td>Fisher Scientific</td><td>0875713A</td><td>Enjeksiyon kapları</td></tr><tr><td>Üç Eksenli Kaba Konumlandırma Mikromanipülatörü MMN-1</td><td>Narishige</td><td>9124</td><td>Manipülasyon enjeksiyon iğnesi</td></tr><tr><td>Üç Eksenli Joystick Tipi Yağ Hidrolik İnce Mikromanipülatör MMO-202ND</td><td>Narishige</td><td>9212</td><td>Manipülasyon enjeksiyon iğnesi</td></tr><tr><td>Transfer pipetleri</td><td>Fisher Scientific</td><td>13-711-9AM</td><td>&nbsp;</td></tr><tr><td>Dikey&nbsp; iğne çektirme&nbsp;</td><td>Narishige</td><td>PC-10</td><td>Çekme Enjeksiyon İğneleri</td></tr></tbody></table>

deniz kestanesi zigotlar yüksek randımanlı microinjections

High Throughput Microinjections of Sea Urchin Zygotes

Hücre ve embriyo mikro enjeksiyon biyolojik süreçlerin geniş bir çalışma için kullanılan yaygın bir tekniktir. Bu yöntemde, muamele çözeltisi bir miktar fiziksel olarak tek tek hareketsiz hücreler ya da embriyolar enjekte etmek için kullanılan bir mikro-enjeksiyon iğne içine yüklenir. Yüksek verimli teslimat için bu yordamı gerçekleştirmek için ilk eğitim ihtiyacına karşın, mikroenjeksiyon maksimum verimlilik ve hücreler, yumurta veya embriyo içine (numunelerinin kompleks karışımlar dahil) tedavi çözümleri geniş bir yelpazede tekrarlanabilir teslim sunuyor. Mikroenjeksiyon için Uygulamalar DNA konstruktları, mRNA, yeniden birleştirici proteinlerin, fonksiyon kazancı ve reaktiflerin işlev kaybı verilmesini içerir. Floresan boya veya kolorimetrik anlık etkili teslimat görselleştirme hem de verilen ilaç miktarının güvenilir normalizasyonu için bir araç sağlamak için enjekte edilen çözeltiye ilave edilir. Anlatılan yöntem 100-400 deniz kestanesi z mikroenjeksiyon sağlar10-15 dakika içinde ygotes.

GFP ve MCherry raportör transkribe yapıları ve yeni döllenmiş yumurtalar içine mikro-enjekte in vitro idi. Embriyolar (Blastula aşamasına kadar), 24 saat boyunca 15 ° C'de inkübe edildi ve Zeiss Observer Z1 mikroskop kullanılarak görüntülendi. Raportör yapılan enjeksiyon herhangi gelişim kusurları (Şekil 6) yol vermedi. Floresan sinyallerin ölçümü için, görüntü alma maksimum floresan piksel (Şekil 6D-F) yakalamak için düşük büyütme (100X) gerçekleştirildi. Flüoresan sinyalleri ...

Mikroenjeksiyon yumurtalar, embriyo ve çeşitli türlerin hücrelerine DNA yapıları, mRNA, morfolino antisens oligonükleotidler veya diğer tedaviler sunmak için kullanılan bir tekniktir.

Deniz Kestanesi Zigotlar Yüksek Randımanlı Microinjections

Microinjection into cells and embryos is a common technique that is used to study a wide range of biological processes. In this method a small amount of ...

Bu prosedürün genel amacı, deniz kestanesi zigotlarının yüksek verimli mikro enjeksiyonlarını gerçekleştirmektir. Bunu yapmak için deniz kestanelerinde yumurtlama indüklenir ve erkek ve dişi gametler toplanır. Yumurtalar daha sonra asidik deniz suyu kullanılarak tapulanır ve Petri kapları üzerinde arka arkaya hareketsiz hale getirilir.Daha sonra spermler yumurtalara eklenerek döllenir ve istenen Mr.N.Mikroenjeksiyonu takiben fonksiyon kaybı, reaktifler veya proteinler gerçekleştirilir. Sperm içeren üç A T suyu, taze deniz suyu ile değiştirilir. Bu embriyolar, morfolojileri ve spesifik RNA ve proteinlerin zamansal ve mekansal ekspresyonu açısından incelenebilir.Bu tekniğin elektroporasyon, dudak mükemmelleştirme, mikropartikül, bombardıman ve transdüksiyon gibi mevcut yöntemlere göre en büyük avantajı, minimum reaktif kullanarak herhangi bir çözeltinin %100 verimlilikle verilmesini sağlamasıdır. Bu yöntem, deney başına binlerce X'lik tek bir tabakta 100 ila 400 x arasında verimli ve güvenilir mikroenjeksiyon sağlar ve aşağı akış analizi için yüksek verimli bir yöntem sağlar. Bu deneyi gerçekleştirmeden önce, gerekli tüm stok çözeltilerini ve ekipmanı hazırlayın.Tarifler için ekteki belgeye bakın, yumurtaların nazikçe taşınması için bir ağız pipeti gerekecektir. Birini hazırlamak için, cam erimeye başladığında bir cam mikro pipeti iki elinizle açık alev üzerinde tutarak başlayın, pipet iki yarıya ayrılana kadar pipetin uçlarını zıt yönlerde dikkatlice çekin. Ardından, çekilmiş bir pipeti 50 ila 70 santimetre uzunluğundaki plastik boruya bağlayın.Sıkı bir sızdırmazlık oluşturmak için paraform uygulayın. Ağızlık olarak kullanmak üzere tüpün diğer ucuna steril bir P 20 veya P 200 filtrelenmiş uç yerleştirin, son olarak ucun çapını ayarlamak için cam mikro pipetin ucunu makasla klipsleyin, optimum çap, kabaca 80 mikrometre olan yumurtanın çapını biraz aşacaktır. Ardından, protamin sülfat kaplı yemekler hazırlayın.Tezgahın üzerine 2060 milimetre x 15 milimetre polistiren petri kapları yerleştirin ve bulaşık kapaklarını çıkarın. Bunlar aynı zamanda bulaşıklar olarak da kullanılacaktır, bundan sonra her bir tabağa PS çözeltisi olarak adlandırılan% 1 protamin sülfat çözeltisi dökün. Yüzeyi kaplayacak kadar ekleyin ve inkübasyondan sonra en az iki dakika inkübe edin.PS çözümünü çıkarın ve daha sonra kullanmak üzere saklayın. Kalan PS çözeltisi, dört santigrat derecede saklandığında üç ay içinde birçok kez yeniden kullanılabilir. PS ile muamele edilmiş tabakları damıtılmış suyla dolu bir behere yerleştirin.Ardından kabı en az 10 dakika boyunca akan damıtılmış suyun altına koyun. PS kaplı tabaklar hemen kullanılabilir veya saklama için havayla kurutulabilir. Toz birikmesini önlemek için üzerlerini örtün.Oda sıcaklığında bir aya kadar saklanabilirler. Enjeksiyon kılcal damarlarını imal etmek için bir iğne çektirmesi kullanın. İğne çekicinin ayarları, makalede belirtildiği gibi ampirik olarak belirlenmelidir.Deniz kestanesini yumurtlamak için, bir ağ kullanarak bir hayvanı tanktan çıkarın ve bir kağıt havlunun üzerine koyun. Sonra hayvanı kaldırın ve sıkıca tutun. Salla onu.Alternatif olarak, aşağıdaki gibi bir emmik enjeksiyonu gerçekleştirin. Bir hayvanı tanktan çıkardıktan sonra, hayvanı bir elinizle tutun ve 10 mililitrelik bir şırıngaya bağlı 20 gauge bir iğne kullanarak hayvanın tek yumuşak kısmı olan perial membrana bir mililitre 0.5 molar potasyum klorür enjekte edin. Bir ila 10 dakika sonra, hayvan cinsiyeti belirginleşecektir.Erkekler beyaz sperm salmaya başlayacak ve dişiler sarı yumurta salmaya başlayacaktır. Hayvan erkekse, spermi 1,5 mililitrelik bir tüpe aktarmak için bir pipet kullanarak hayvanın yüzeyinden kuru olarak toplayın. Kuru sperm, önemli bir biyolojik fonksiyon kaybı olmadan bir hafta boyunca dört santigrat derecede saklanabilir.Hayvan bir dişiyse, ga etlerini toplamak için gno gözeneklerini deniz suyuyla dolu bir behere batırın. Gno gözeneklerinden salınan yumurtalar yerçekimi ile çöker. Yumurtlamadan sonra, yumurtaları içeren deniz suyunu dökerek yumurtaları hayvan dikenleri gibi kalıntılardan süzün.80 mikronluk bir naylon filtre ağından buz üzerinde temiz bir behere örün. Yumurtaları çıkarmak için plastik bir beherde bir mililitreye kadar yumurtayı 100 mililitre asidik deniz suyuna aktarın, yumurtaları hafifçe döndürün ve 10 dakika boyunca buzun üzerinde oturmalarına izin verin. Tedaviyi takiben asidik deniz suyunu dikkatlice boşaltın.Sonra taze deniz suyu ekleyin ve yumurtaların buzun üzerine çökmesine izin verin. Yine. Jöleli yumurtalar, döllenmeyi etkilemeden altı saate kadar buz üzerinde saklanabilir. Mikro enjeksiyonları gerçekleştirmeden hemen önce, her PS kaplı tabağa üç ila dört mililitre bir milimolar, üç TC su dökün.Enjeksiyondan önce X her türlü olmalıdır hastaneye yatış Üçe uzun süre 80 c suya maruz kalırsa veya onik yapıştırıcılar, protein sülfat gibi toksik olabilirse X.So maruz kalma süresi bağlantılı olabilir, özellikle döllenme hayvanı çıkarılmışsa. Ağız pipetinin ucunu dişlerle sabitleyin ve az miktarda deniz suyunu aspire edin. Bu, aspire edildiklerinde yumurtalar üzerindeki kontrolü artıracaktır.Ardından, mikro pipet ucunu yumurtaların yanına yerleştirin ve birkaç yüz yumurtayı nazikçe aspire edin ve bunları cam mikro pipetin içine yerleştirin. Ardından, ucu düz bir çizgide hareket ettirirken, bir sıra oluşturacak şekilde pipetten tabağa yavaşça üfleyin. Bir cam pipet kullanarak, yol yumurtaları çizgisinin yakınındaki tabağa bir çizik yapın.Bu çizik daha sonra enjeksiyon iğnesini kırmak için kullanılabilir. Mikro enjeksiyon işlemi sırasında çözelti akışını gerektiği gibi ayarlamak için. Mikro enjeksiyon istasyonunu buradan açın.Bir femto jet enjeksiyon sistemi, bir çift forseps kullanılarak dikkatli bir şekilde kullanılır. İğne kılcalını bir iğne yükleme tutucusuna monte edin. İğne açıklığının kirlenmesini önlemek için iğnenin ucuna dokunmaktan kaçının.Bir mikro yükleyici ucu kullanarak, üzerine 0,5 ila 1,0 mikrolitre numune enjeksiyon solüsyonu yükleyin. Yol yumurtalarının bulunduğu tabağı mikroskop tablasına yerleştirin ve tabağı, yumurtalar dikey olarak hizalanacak şekilde konumlandırın. Göz merceklerinden bakıldığında, yumurtaları odak noktasına getirin.Yüklenen iğneyi mikro enjektörün iğne tutucusuna dikkatlice monte edin ve iğnenin konumunu, uç görüş alanının ortasında mükemmel bir şekilde Odakta olacak şekilde ayarlayın. İğneyi temizlemenin yanında, mikroskoptan maksimum basıncı uygulamak için düğmeye basın. Çözelti iğneden dışarı atılırken görülecektir.Dengeleme basıncı enjeksiyon basıncının yaklaşık üçte biri olacak şekilde enjeksiyon için basıncı 90 ila 360 HP aralığında olacak şekilde ayarlayın. Ardından, enjeksiyon kurulumunun akışını incelemek için döllenmemiş bir yumurta enjekte edin. Bir joystick mikro manipülatör kullanarak, enjeksiyon iğnesinin ucunu döllenmemiş yumurtaya yönlendirin.İğne girişini kolaylaştırmak için, tornavida gibi sert bir cisimle sahneye hafifçe vurarak hafif bir titreme oluşturun. Yumurtayı enjekte etmek için ayak pedalına basın. Enjeksiyon bolusu görünmüyorsa, iğneyi çizik işaretine getirin.Enjeksiyon iğnesinin ucunu kırmak için iğne ucunu çizik işaretine hafifçe vurun. Biraz daha geniş uç açıklığı daha kolay çözelti akışı sağlayacak ve kırık ucun keskin kenarı iğne girişini kolaylaştıracaktır. Döllenme zarfı görünür hale geldikten hemen sonra sperm ekleyerek yumurtaları dölleyin.Mikro manipülatörü kullanarak enjeksiyonları başlatın. Sağ elinizle, iğnenin ucunu döllenmiş yumurtaya doğru bastırın ve neredeyse aynı anda hafif bir girintiye neden olun. Sol elinizle tuttuğunuz tornavidayla mikroskop tablasına hafifçe vurun.Sahne denetleyicisini kullanarak yol zigotları hattı boyunca hareket edin ve mümkün olduğunca çok zigot enjekte edin. Enjeksiyon bolusu, zigotun beşte birini geçmemelidir. 10 ila 15 dakika sonra, yeni döllenmiş yumurtalar sertleşir ve artık enjekte edilemez.Çanağı sahneden çıkarın ve plastik bir makarna pipeti kullanarak sperm içeren üç A TC suyunu dikkatlice aspire edin. Zigotların kurumasına izin vermeyin ve hızlı bir şekilde taze, önceden soğutulmuş deniz suyu ekleyin. Çanağı örtün, 15 santigrat derecede inkübe edin.Enjeksiyonu takiben. Raportör yapıların enjeksiyonunun gelişimi etkileyip etkilemediğini belirlemek için embriyoları deney için uygun şekilde fenotipik veya moleküler değişiklikler açısından izleyin. GFP ve M kiraz raportör yapıları in vitro olarak kopyalandı ve yeni döllenmiş yumurtalara mikro enjekte edildi.Burada gösterilen enjekte edilen embriyolar, oklarla gösterilen enjekte edilmeyenlerden açıkça ayırt edilebilir. Embriyolar 15 santigrat derecede 24 saat boyunca blastula aşamasına kadar inkübe edildi ve burada görüldüğü gibi görüntülendi. Renkli enjekte edilen embriyolar, gri olan enjekte edilmeyen embriyolarla aynı morfolojiye sahiptir.Bu, raportör yapılarının enjeksiyonunun herhangi bir gelişimsel kusura yol açmadığını göstermektedir. Bu videoyu izledikten sonra, kestanenin nasıl mikro enjekte edileceğini iyi anlamış olmalısınız. Zigot Mikroenjeksiyonu, genetik, hücresel ve gelişim biyolojisi araştırmaları için değerli bir araçtır.Bu tekniği kullanarak, deniz kestanesi topluluğu, sülfat spesifikasyonu, gen regülasyonu, gen ekspresyonu ve gelişimsel biyolojinin altında yatan biyokimyasal yollar gibi gelişimsel yolları anlamamıza önemli bir katkı sağlamıştır.

high-throughput-microinjections-of-sea-urchin-zygotes

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Mikroenjeksiyon döllenmiş zebrafish embriyolar içine yabancı maddeler tanıtmak için bir köklü ve etkili bir yöntemdir. Burada, mRNA aşırı ekspresyonu gerçekleştirmek için sağlam bir mikroenjeksiyon tekniği ve morfolino oligonükleotid gen devirme çalışmaları zebrafish göstermektedir.

Zebra balığı Embriyolar mRNA ve morfolino Antisens Oligonükleotidler Mikroenjeksiyon.

Bu video morfolino veya mRNA sonraki gelişimi sırasında spesifik gen ürünlerinin seviyesini azaltmak veya artırmak için tek hücreli aşamada zebrafish embriyoların nasıl enjekte edilebilir gösterir.

Gen Fonksiyon Analiz Zebra balığı Embriyolar Mikroenjeksiyon

Biz, gelişimsel olarak düzenlenir genleri potansiyel artırıcı unsurları bulma ve mozaik zebrafish transgenesis fonksiyonu değerlendirmede bizim yaklaşımımız göstermektedir.

Mozaik Zebra balığı Transgenesis Enhancer Diziler değerlendirilmesi için

Bu videoda, bileşikleri Zebra balığı yumurta sarısı kesesine vermek için bir Embriyo mikroenjeksiyon tekniği açıklanmaktadır.

Embriyo Mikroenjeksiyonu: Zebra Balığı Sarısı İçine Bir Bileşik Verme Tekniği

Kaynak: Shi, J. ve ark., Bitki patojenlerinin salgılanan efektörlerinden RNA susturucu baskılayıcılarının taraması ve tanımlanması. J. Vis. Exp. (2020)Bu video, asetosyringon ile virülans gen ifadesi indükleyerek Agrobacterium tumefaciens kültürünün hazırlanması ve ardından antibiyotik çıkarılması ile yıkama ve yeniden süspansiyon ile yapılmasını ve bitki dokularına gen taşınması için dönüşüme hazır bir süspansiyon oluşturulmasını göstermektedir.

Zebrafish embriyolarının kaudal damarına bakterilerin mikroenjeksiyonu

Morphant embriyolar üretme yöntemleri gelişim düzenleyici mekanizmalarının ve gen ağları incelemek için gereklidir. Deniz yıldızı Patiria miniata bu çalışmalar için gelişmekte olan bir model sistem. Burada bir embriyo kültürleri, gamet elde üretmek için protokol ve bu türlerden zigot hızlı mikroenjeksiyon sunuyoruz.

Mikroenjeksiyonu Bir Yöntem Patiria Minata Zigotların

farklı genetik kökenden bireysel WT retina atalarıdır Canlı izleme nöron sırasında hücre özerk olmayan sinyalizasyon katkısı değerlendirilmesi için izin verir. Burada, embriyo transplantasyonu yoluyla ve in vivo time-lapse konfokal görüntüleme gen demonte, kimera nesil bir arada bu amaçla kullanılmıştır.

Kimerik Zebra balığı Embriyolar Bireysel Retina progenitörlerin Transgenik Gen İfade Vivo Görüntüleme Hücre otonom olmayan Etkiler Eğitim için

Zebra balığı embriyo ve larva mikroenjeksiyon birçok Zebra balığı modellerinde kullanılan çok önemli ama zorlu bir tekniktir. Burada, Zebra balığı mikroenjeksiyon ve görüntüleme için yönünü ve istikrar içinde yardım etmek için microscale araçlar bir dizi mevcut.

Microstructured cihazlar için en iyi duruma getirilmiş mikroenjeksiyon ve Zebra balığı larva görüntüleme

Burada, izole embriyonik zebra balığı hücrelerinin hücre içi mekanik özelliklerini optik bir tuzakla doğrudan kuvvet ölçümü ile üç boyutlu hapsetmede araştırmak için bir protokol sunuyoruz.

Optik Cımbız Kullanarak Hapsetmede Hücre Altı Mekaniğinin Doğrudan Kuvvet Ölçümleri

Genetik olarak hassas organizmalarda inflamatuar sinyallerin nörogelişimi nasıl etkilediğini modellemek için, zebrafish larvalarının Cuvier (ortak kardinal damar) kanalına IL-6 mikroenjeksiyonu için bir protokol sunuyoruz; bu protokol iltihabın kontrollü indüklenmesini ve tüberoz skleroz kompleksi (TSC) bağlamında gelişimsel etkisinin değerlendirilmesini mümkün kılmaktadır.

TSC zebrafish larvalarının kanına interleukin-6'nın mikroenjeksiyonu ve nöropsikiyatrik bozukluk benzeri davranışların incelenmesi

Öğrenin deniz kestanesi zigotlarına yüksek verimli mikroenjeksiyon tekniğini. Bu yöntemle RNA ve protein ekspresyonunu inceleyerek gelişim biyolojisi araştırmalarında gen fonksiyonlarını analiz edebilirsiniz.

Deniz Kestanesi Zigotlar Yüksek Randımanlı Microinjections

Daha fazla video keşfet