Name: Fibroblast aracılı Fibrin Jel Sıkıştırmayı Gözlemleme ve Ölçme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-16T13:45:00.000+00:00
Duration: 10 min 37 s
Description: Keşfedin, zaman atlamalı mikroskopi ve dijital görüntü korelasyonu kullanarak fibrin jel içinde fibroblast aracılı matris yeniden yapılanmasını. Bu yöntem, hücre-matris etkileşimlerini ve doku mühendisliği uygulamalarını incelemek için değerli bilgiler sunar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

George Giudice ve Steven Eliason'a insan dermal fibroblastları ve Ramesh Raghupathy'yi gerinim izleme algoritmasına yardım için bağışlayarak teşekkür ederiz. Bu çalışma için destek, ABD Eğitim Bakanlığı Lisansüstü Yardım Ulusal İhtiyaç Bursu Alanlarında (GAANN P200A120071) tarafındansağlanmıştır.

1. Şablon Hazırlama
İstenen geometriyi(Şekil 1A ve 1B)izleyerek her eksplantın konumunu düzene almak için Parafilm üzerinde bir şablon hazırlayın. Her biri yaklaşık 1-2 mm aralıkla boşluk açın. Bu mesafe, eksplantlar arasında fiber hizalaması oluşturmak için ideal bir araya karşılık gelir. Kalıp, numunenin bantla hazırlanacağı örtü alanının altına takın.
2. Sterilizasyon
Biyoreaktörün tüm bileşenlerini% 70 etanol kullanarak iyice temizleyin ve deneyden önce UV ışığı altında 2-3 saat sterilize edin. Biyoreaktör yerine alternatif bir damar kullanılıyorsa uygun sterilizasyon teknikleri kullanılmalıdır. Cam alt Petri kabı kullanma hakkında yorum için 4.12 adımına bakın.
3. Fibrin Jel Hazırlama
Biyoreaktörün bileşenleri sterilize edildikten sonra, kapakçık yüzeyine ince bir fibrin jeli tabakası atın. 6.6 mg/ml fibrin jelleri yapmak için fibrinojen ve trombin stok çözeltileri hazırlamaya yönelik ayrıntılar Sander ve ark. 13 Ye ve ark. 3.3 mg/ml fibrin jelleri yapmak için 19 jove web sitesinde de görülebilir.
<ol><li>DMEM'de 10 milyon boncuk/ml konsantrasyonda floresan mikrobead çözeltisi hazırlayın. Boncuklar jel yer değiştirmelerini izlemek için kullanılacaktır. Bu konsantrasyonu elde etmek için, 0.017 ml mikrobead stok çözeltisini ve 0.149 ml DMEM'i bir mikrosantrifüj tüpünde birleştirin.</li>
	<li>Boncukları dağıtmak ve çözeltiyi homojenize etmek için bu süspansiyonu 10 dakika boyunca sonicate edin.</li>
	<li>Fibrin Çözeltisi — 15 ml c-tüpte, 0,22 ml fibrinojen stok çözeltisi ile 0,44 ml 20 mM HEPES tamponunu karıştırın. Adım 3.1'de oluşturulan mikrobeadlarla 0.1667 ml DMEM ekleyin.</li>
	<li>Trombin Çözeltisi — Ayrı bir 15 ml c-tüpte, 0.0328 ml trombin stok çözeltisi, 0.131 ml 20 mM HEPES tamponu ve 0.00246 ml 2 M CaCl2karıştırın.</li>
	<li>Çözelti eşit olarak dağıtılana kadar 5-10x yukarı ve aşağı pipetleme yaparak trombin çözeltisini (adım 3.4) fibrinojen çözeltisi (adım 3.3) ile dikkatlice karıştırın. Kabarcıkları mümkün olduğunca tanıtmaktan kaçının. Üretilen kabarcık miktarını azaltmak için, karıştırırken pipeti tamamen boşaltmamaya dikkat edin.</li>
	<li>Trombin ilavesi çözeltinin hızlı bir şekilde jel etmesine neden olur (~30 sn). Pipet karışık çözeltiyi mümkün olan en kısa sürede örtünün üzerine. Jelin RT'de polimerize olmasını izin verin.</li>
	<li>Biyoreaktörü kapatın, ısıtma bloklarını takın ve termokuplları sıcaklık kontrol cihazına bağlayın. Jeli 37 °C'de 15-30 dakika kuluçkaya yatırın.</li>
</ol>4. Hücre Explant Hazırlığı
<ol><li>İnsan dermal fibroblast hücrelerini içeren T-75 şişesinden ortamı çıkarın.</li>
	<li>Serum proteinlerini çıkarmak için yüzeyi yaklaşık 5 ml fosfat tamponlu salin (PBS) ile dikkatlice durulayın. 1 ml tripsin-EDTA ekleyin ve 3 dakika boyunca veya hücreler kaldırılana kadar kuluçkaya yatırın.</li>
	<li>Hücreler kaldırıldıktan sonra, süspansiyonu 5 dakika boyunca 200 x g'da bir santrifüjde aşağı çevirin. Üstnatantı çıkarın ve peletin 20 milyon hücre/ml'lik son konsantrasyona izin verecek bir DMEM hacminde yeniden süzdü.</li>
	<li>Hücreler santrifüjde aşağı dönerken biyoreaktörün ısıtma bloklarından ve termokupllardan bağlantısını kesin. Biyoreaktörü bir biyogüvenlik kabinine aktarın ve aseptik teknikleri izleyerek kapağı dikkatlice çıkarın.</li>
	<li>Hücre süspansiyonunun 0,3 μl'lik kısmını polimerize fibrin jeline pipetleme yaparak, şablondaki deseni izleyerek eksplantlar oluşturun. Her eksplant yaklaşık 6.000 hücre içermelidir. Düşük hacimli mikropipette uçlarının kullanıldığından emin olun (0,1-10 μl).</li>
	<li>Hücrelerin 37 °C'de 1 saat boyunca fibrin matrisine yerleşmesine ve bağlanmasına izin verin.</li>
	<li>Biyoreaktör hala açıkken, doğrudan biyoreaktör odasına %10 fetal sığır serumu (FBS), %1 penisilin-streptomisidin, %0,1 amfoterisilin B ve 10 mg/ml aprotinin ile desteklenmiş yaklaşık 5 ml DMEM ekleyin. DMEM bikarbonat tamponludur ve nötr bir pH sağlamak için% 5 CO2 gerektirir. Biyoreaktör CO 2 ile birlikte olmadığından, ortamı kullanmadan önce2-3saat boyunca% 5 CO2 ile bir inkübatörde koşullandırılmıştır. Aprotinin, fibrin bozulması oranını azaltmak için yaygın olarak kullanılan bir serine proteaz inhibitörüdür20.</li>
	<li>Biyoreaktörün yeniden halinen. Giriş portunda dikenli bağlantı elemanı aracılığıyla ek 5 ml CO2 şartlandırılmış ortam sağlamak için bir şırınna kullanın. Ortamı yavaşça dağıtın ve biyoreaktör odasının tüm hacminin dolduğundan emin olun. Biyoreaktörde oluşan kabarcıkları dikkatlice çıkarın.</li>
	<li>pH'ı korumak, besin sağlamak ve atık ürünleri çıkarmak için deney boyunca biyoreaktöre taze,%5 CO 2 şartlandırılmış ortam sağlayın. %5 CO2 şartlandırılmış ortamla dolu 10 ml veya 30 ml şırınna ile şırınna pompası kur. Şırınnayı doğrudan Luer kilidi takılmış steril boru ile biyoreaktör kapağındaki giriş portunu bağlayın. Erkek bağlantı elemanını çıkarın ve boruyu biyoreaktör üzerindeki dikenli bağlantı parçasına takın (bkz. Şekil 1C).</li>
	<li>Perfüzyon oranını 0,01 ml/dk olarak ayarlayın. Değiştirilmiş boru parçalarını her iki çıkış bağlantı noktasına bağlayın ve atıkları toplamak için uçlarını 100 ml'lik bir kabın içine yerleştirin.</li>
	<li>Giriş ve çıkış beslemelerinin yüksekliklerini biyoreaktörde basınç farkı gelişmeyecek şekilde ayarlamak için bir laboratuvar jakı kullanın (referans için Şekil 1D'ye danışın).</li>
	<li>Bir biyoreaktör yoksa, cam üstlü 35 mm cam alt Petri kaplarda numuneler hazırlayın. Kullanılacak belirli hedefler kümesi için optimize edilmiş bir kapak boyutuna sahip bir tane kullanın. Petri kaplarında hazırlanan numuneler 37 °C ve%5 CO2'debir inkübatörde muhafaza edilmelidir. Not: Polistiren ışığı depolarize eder ve DIC görüntülemeyi kesintiye uğratacaktır, bu nedenle DIC görüntüleme yapılacaksa cam üstler kullanılmalıdır. Faz kontrastı uygun bir alternatif görüntüleme yöntemidir. Bulaşıkların inkübatör ve mikroskop arasında aktarılması görüntü kaydını zorlaştırır. Görüntüler düzgün kaydedilmezse, Bölüm 6'da hesaplanan gerinim doğru olmayacaktır.</li>
</ol>5. Zaman Atlamalı Görüntüleme
<ol><li>Numune hazırlandıktan sonra biyoreaktörü yeniden bağlayın, ısıtma bloklarını ve termokuplları yeniden bağlayın ve biyoreaktör sıcaklığını 37 °C'ye ayarlayın.</li>
	<li>Biyoreaktörü mikroskop monteli motorlu sahne üzerine ayarlayın. 20X DIC hedefini görünüm bağlantı noktasının altına yerleştirin. Özellikle hassas motorlu bir aşama mevcut değilse, daha düşük bir büyütme hedefi kabul edilebilir. Polarizatör, analizör ve prizmanın yerinde olduğundan emin olun. Alternatif olarak, örnekler faz kontrastı kullanılarak da görüntülenebilir.</li>
	<li>Görüntüleme yazılımını açın.</li>
	<li>Hedefi üç eksplant arasındaki alana odakla.</li>
	<li>Bu konumun koordinatlarını (x, y ve z) görüntüleme yazılımına kaydedin.</li>
	<li>Eksplantlar arasındaki ve çevresindeki tüm alanı görüntülemek için büyük bir görüntü elde etme seçeneğini belirleyin ve alanın boyutunu belirtin. Bu, belirtilen alanın etrafında birden çok görüntünün alınmasına izin verir ve örneğin daha büyük bir bölgesini temsil eden döşeli bir görüntü oluşturur.</li>
	<li>Maruz kalma süresini ve ışık yoğunluğunu fototoksikitenin neden olduğu hücre ölümünü önlemek için mümkün olan en düşük değerlere ayarlayın, aynı zamanda hücreler, mikrobeadlar ve fibrin lifleri arasında ayrım yapmak için yeterli çözünürlük sağlar.</li>
</ol>6. Gerinim Takibi
Kullanılan gerinim izleme yazılımı (Şekil 2) hakkında ayrıntılı bilgi ve talimatlar için bkz. 21 Algoritma, <a href="http://www.license.umn.edu/default.aspx">http://www.license.umn.edu/default.aspx</a>'den indirilebilen özel bir MATLAB kodudur. DIC görüntülerin genellikle gerinim izleme için yeterli dokuya sahip olduğunu unutmayın. Mikrobeadlar, hesaplanan gerinim alanlarında bir kontrol görevi görmek için dahil edilir. Gerinim takibi yapılacaksa, elde edilen görüntülerin aynı yerde alınması kritik öneme sahiptir, böylece görüntüler kaydedilir. Kayıtsız görüntüler sahte suşlar üretecektir.

<ol><li>Grinnell, F., Petroll WM, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+motility+and+mechanics+in+three-dimensional+collagen+matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Annu.+Rev.+Cell.+Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell motility and mechanics in three-dimensional collagen matrices.</a> Annu. Rev. Cell. Dev. Biol. 26, 335-361 (2001).</li>
<li>Sander, E. A., Barocas, V. H. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aSander%2C+EA+%22Biomimetic+collagen+tissues%3A+collagenous+tissue+engineering+and+other+applications.+In%3A+Collagen%3A+Structure+and+Mechanics%22">Biomimetic collagen tissues: collagenous tissue engineering and other applications. In: Collagen: Structure and Mechanics</a>. , Springer. New York. (2008).</li>
<li>Pedersen JA,, Swartz MA, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanobiology+in+the+third+dimension%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Mechanobiology in the third dimension.</a> Ann. Biomed. Eng. 33 (11), 1469-1490 (2005).</li>
<li>Bell, E., Ivarsson, B., Merrill, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Production+of+a+tissue-like+structure+by+contraction+of+collagen+lattices+by+human+fibroblasts+of+different+proliferative+potential+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">Production of a tissue-like structure by contraction of collagen lattices by human fibroblasts of different proliferative potential in vitro.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 76 (3), 1274 (1979).</li>
<li>Guidry, C., Grinnell, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studies+on+the+mechanism+of+hydrated+collagen+gel+reorganization+by+human+skin+fibroblasts%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Sci%22%5BJournal%5D)">Studies on the mechanism of hydrated collagen gel reorganization by human skin fibroblasts.</a> J. Cell. Sci. 79 (1), 67-81 (1985).</li>
<li>Fluck, J., Querfeld, C., Cremer, A., Niland, S., Krieg, T., Sollberg, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Normal+human+primary+fibroblasts+undergo+apoptosis+in+three-dimensional+contractile+collagen+gels%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Invest.+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Normal human primary fibroblasts undergo apoptosis in three-dimensional contractile collagen gels.</a> J. Invest. Dermatol. 110 (2), 153-157 (1998).</li>
<li>Rosenfeldt, H., Grinnell, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblast+quiescence+and+the+disruption+of+ERK+signaling+in+mechanically+unloaded+collagen+matrices%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biol.+Chem%22%5BJournal%5D)">Fibroblast quiescence and the disruption of ERK signaling in mechanically unloaded collagen matrices.</a> J. Biol. Chem. 275 (5), 3088-3092 (2000).</li>
<li>Nakagawa, S., Pawelek, P., Grinnell, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Long-term+culture+of+fibroblasts+in+contracted+collagen+gels%3A+Effects+on+cell+growth+and+biosynthetic+activity%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Invest.+Dermatol%22%5BJournal%5D)">Long-term culture of fibroblasts in contracted collagen gels: Effects on cell growth and biosynthetic activity.</a> J. Invest. Dermatol. 93 (6), 792-798 (1989).</li>
<li>Harris, A. K., Stopak, D., Wild, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibroblast+traction+as+a+mechanism+for+collagen+morphogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Fibroblast traction as a mechanism for collagen morphogenesis.</a> Nature. 290, 249-251 (1981).</li>
<li>Stopak, D., Harris AK, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Connective+tissue+morphogenesis+by+fibroblast+traction%3A+I.+tissue+culture+observations%5BTitle%5D)+AND+%22Dev.+Biol%22%5BJournal%5D)">Connective tissue morphogenesis by fibroblast traction: I. tissue culture observations.</a> Dev. Biol. 90 (2), 383-398 (1982).</li>
<li>Sawhney, R. K., Howard, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Slow+local+movements+of+collagen+fibers+by+fibroblasts+drive+the+rapid+global+self-organization+of+collagen+gels%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell.+Biol%22%5BJournal%5D)">Slow local movements of collagen fibers by fibroblasts drive the rapid global self-organization of collagen gels.</a> J. Cell. Biol. 157 (6), 1083-1092 (2002).</li>
<li>Provenzano, P. P., Inman, D. R., Eliceiri, K. W., Trier, S. M., Keely, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Contact+guidance+mediated+three-dimensional+cell+migration+is+regulated+by+rho%2FROCK-dependent+matrix+reorganization%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Contact guidance mediated three-dimensional cell migration is regulated by rho/ROCK-dependent matrix reorganization.</a> Biophys. J. 95 (11), 5374 (2008).</li>
<li>Sander, E., Barocas, V., Tranquillo, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Initial+fiber+alignment+pattern+alters+extracellular+matrix+synthesis+in+fibroblast-populated+fibrin+gel+cruciforms+and+correlates+with+predicted+tension%5BTitle%5D)+AND+%22Ann.+Biomed.+Eng%22%5BJournal%5D)">Initial fiber alignment pattern alters extracellular matrix synthesis in fibroblast-populated fibrin gel cruciforms and correlates with predicted tension.</a> Ann. Biomed. Eng. 39 (2), 714-729 (2011).</li>
<li>Barocas, V. H., Tranquillo, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((An+anisotropic+biphasic+theory+of+tissue-equivalent+mechanics%3A+the+interplay+among+cell+traction%2C+fibrillar+network+deformation%2C+fibril+alignment%2C+and+cell+contact+guidance%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomech.+Eng%22%5BJournal%5D)">An anisotropic biphasic theory of tissue-equivalent mechanics: the interplay among cell traction, fibrillar network deformation, fibril alignment, and cell contact guidance.</a> J. Biomech. Eng. 119, 137-146 (1997).</li>
<li>Neidert, M. R., Tranquillo, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tissue-engineered+valves+with+commissural+alignment%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng%22%5BJournal%5D)">Tissue-engineered valves with commissural alignment.</a> Tissue Eng. 12 (4), 891-903 (2006).</li>
<li>Robinson PS,, Robinson PS, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Planar+biaxial+behavior+of+fibrin-based+tissue-engineered+heart+valve+leaflets%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Planar biaxial behavior of fibrin-based tissue-engineered heart valve leaflets.</a> Tissue Eng. Part A. 15 (10), 2763-2772 (2009).</li>
<li>Grassl, E., Oegema, T., Tranquillo, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibrin+as+an+alternative+biopolymer+to+type+I+collagen+for+the+fabrication+of+a+media+equivalent%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res%22%5BJournal%5D)">Fibrin as an alternative biopolymer to type I collagen for the fabrication of a media equivalent.</a> J. Biomed. Mater. Res. 60 (4), 607-612 (2002).</li>
<li>Paten, J. A., Zareian, R., Saeidi, N., Melotti, S. A., Ruberti, J. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Design+and+performance+of+an+optically+accessible%2C+low-volume%2C+mechanobioreactor+for+long-term+study+of+living+constructs%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+C+Methods%22%5BJournal%5D)">Design and performance of an optically accessible, low-volume, mechanobioreactor for long-term study of living constructs.</a> Tissue Eng. Part C Methods. 17 (7), 775-788 (2001).</li>
<li>Ye KY,, Sulli van KE,, Black LD, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Encapsulation+of+cardiomyocytes+in+a+fibrin+hydrogel+for+cardiac+tissue+engineering%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Encapsulation of cardiomyocytes in a fibrin hydrogel for cardiac tissue engineering.</a> J. Vis. Exp. (55), (2011).</li>
<li>Ahmann, K. A., Weinbaum, J. S., Johnson, S. L., Tranquillo, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fibrin+degradation+enhances+vascular+smooth+muscle+cell+proliferation+and+matrix+deposition+in+fibrin-based+tissue+constructs+fabricated+in+vitro%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Fibrin degradation enhances vascular smooth muscle cell proliferation and matrix deposition in fibrin-based tissue constructs fabricated in vitro.</a> Tissue Eng. Part A. 16 (10), 3261-3270 (2010).</li>
<li>Raghupathy, R., Witzenburg, C., Lake, S. P., Sander, E. A., Barocas, V. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Identification+of+regional+mechanical+anisotropy+in+soft+tissue+analogs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomech.+Eng%22%5BJournal%5D)">Identification of regional mechanical anisotropy in soft tissue analogs.</a> J. Biomech. Eng. 133, (2011).</li>
<li>Robinson, P. S., Johnson, S. L., Evans, M. C., Barocas, V. H., Tranquillo, R. T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Functional+tissue-engineered+valves+from+cell-remodeled+fibrin+with+commissural+alignment+of+cell-produced+collagen%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+A%22%5BJournal%5D)">Functional tissue-engineered valves from cell-remodeled fibrin with commissural alignment of cell-produced collagen.</a> Tissue Eng. Part A. 14 (1), 83-95 (2008).</li>
<li>Gabbiani, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+myofibroblast+in+wound+healing+and+fibrocontractive+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">The myofibroblast in wound healing and fibrocontractive diseases.</a> J. Pathol. 200 (4), 500-503 (2003).</li>
<li>PaszeK, M. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Tensional+homeostasis+and+the+malignant+phenotype%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Cell%22%5BJournal%5D)">Tensional homeostasis and the malignant phenotype.</a> Cancer Cell. 8 (3), 241-254 (2005).</li>
<li>Grinnell, F., Rocha L, B., Iucu, C., Rhee, S., Jiang, H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nested+collagen+matrices%3A+A+new+model+to+study+migration+of+human+fibroblast+populations+in+three+dimensions%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell.+Res%22%5BJournal%5D)">Nested collagen matrices: A new model to study migration of human fibroblast populations in three dimensions.</a> Exp. Cell. Res. 312 (1), 86-94 (2006).</li>
<li>Miron-Mendoza, M., Seemann, J., Grinnell, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+differential+regulation+of+cell+motile+activity+through+matrix+stiffness+and+porosity+in+three+dimensional+collagen+matrices%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">The differential regulation of cell motile activity through matrix stiffness and porosity in three dimensional collagen matrices.</a> Biomaterials. 31 (25), 6425-6435 (2010).</li>
<li>Wakatsuki, T., Kolodney MS,, Zahalak GI,, Elson EL, <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+mechanics+studied+by+a+reconstituted+model+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Biophys.+J%22%5BJournal%5D)">Cell mechanics studied by a reconstituted model tissue.</a> Biophys. J. 79 (5), 2353-2368 (2000).</li>
<li>De Jesus, A., Aghvami, M., Sander, E. Fibroblast-mediated fiber realignment in fibrin gels. ASME Summer Bioengineering Conference, 2013 Jun 26-29, Sunriver, OR, , (2013).</li>
<li>Aghvami, M., Barocas, V. H., Sander, E. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Multiscale+mechanical+simulations+of+cell+compacted+collagen+gels%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomech.+Eng%22%5BJournal%5D)">Multiscale mechanical simulations of cell compacted collagen gels.</a> J. Biomech. Eng. 135, (2013).</li>
</ol>

Çıkar çatışması bildirilmedi.

Bu protokol, hücre aracılı ECM tadilatında yer alan mekaniği gözlemlemek ve ölçmek amacıyla geliştirilmiştir. Bu tür süreçler bir dizi biyolojik fenomenin altında yatan ve mühendislik dokuları için önemli etkileri olan2,22, yara izini1,23azaltarak ve patolojik doku tadilatını anlamak12,24. Zaman atlamalı DIC mikroskopisi kullanımı, hücre çekiş kuvvetlerinin bir sonucu olarak ortaya çıkan fibrin liflerinin yer değiştirmesini ve hizalamasını çözmesini ve ölçmesini sağlar. Burada gözlemlenen...

Hücre matrisi etkileşimlerini incelemek için önemli bir araç hücre doldurulmuş kollajen jel1,2. Jel, dokunun in vivo karakterine daha yakın ve hücre davranışını anlamak için geleneksel 2D kültürleri tarafından sunulandan daha uygun bir3Dortam sağlar 3 . Fibroblastların bir kollajen jel içinde homojen bir şekilde dağıtıldığı ilk çalışmalar, hücrelerin kollajen liflerini hızla birleştirdiğini ve jeli kompakt hale geldiğini buldu4,5. Serbest yüzen jellerdeki kontrtil fibroblastlar, jel tamamen sıkıştırmaya ulaştıktan kısa bir süre sonra sessiz bir duruma geçiş1,6,7. Sınırlarda kısıtlanan jellerdeki fibroblastlar aktif, sentetik bir durumda kalır8 ve jel geometrisine ve dış kısıtlamalara bağlı bir şekilde fiber hizalama oluştururlar5,9. Hücre aktiviteslerindeki farklılıklar, hücrelerin jeldeki kolajen lifleri üzerindeki integrinler yoluyla çekiş kuvveti uygulamasıyla gelişen iç gerilimin (veya eksikliğinin) bir sonucu olarak görünmektedir.
Bu tekniğin bir varyantı, fibroblast eksplantlarının(yani hücre kümelerinin) bir kollajen jel içinde birbirinden uzak bir mesafe yerleştirilmesini ve hücre matrisi etkileşimlerini ve eksplantlar (bazen bağ benzeri kayışlar olarak adlandırılır) arasındaki lif hizalamasının kademeli gelişimini gözlemlemeyi içerir10-12. Eksplant sisteminin birincil avantajı, hücreleri basit geometrik desenler halinde düzenlemesine izin vermesidir, bu da hücre güdümlü fiber yeniden hizalamanın altında bulunan mekanizmaları görselleştirmeyi ve araştırmayı kolaylaştırır. Öncelikle hücre çekiş kuvvetleri, hücre mekansal dağılımı, jel geometrisi ve jel üzerindeki mekanik kısıtlamalar arasındaki etkileşime bağlı olan bu hizalama kalıplarının anlaşılması önemlidir, çünkü küresel doku organizasyonunda, mekanik işlevde ve yerel mekanik ortamda merkezi bir rol oynarlar13.
Doku mühendisliği alanında, mekanik olarak işlevsel, mühendislik dokuları üretmek için bir strateji, hücre sıkıştırmasından gelişen lif hizalama deseninin kontrol edilmesidir, böylece mühendislik dokusu yerel dokununkini taklit eden lif hizalamaya sahiptir14,15. Bu hizalamanın, tasarlanmış dokuların yerli dokuların karmaşık mekanik davranışlarını çoğaltması için gerekli olduğuna inanılmaktadır. Bu stratejinin bir modifikasyonu kollajen jelini bir fibrin jeli ile değiştirmektir16. Fibrin jeli, sıkıştırma sırasında kollajen jel ile benzer bir hizalama deseni geliştirir. Zamanla fibrin bozulur ve ilk fibrin lif hizalama desenini izleyen hücre sentezlenmiş ECM ile değiştirilir. Elde edilen mühendislik yapısı, kollajen jel türetilmiş yapılara kıyasla önemli ölçüde geliştirilmiş mekanik özelliklere sahiptir17.
Fibrin jellerindeki hizalama işlemi ve sonraki yeniden şekillendirme olayları karmaşık ve kötü anlaşılmış bir şekilde ilerler. Bu etkileşimleri ve bunların hücre davranışı ve ECM tadilatı üzerindeki etkilerini daha iyi karakterize etmek için explant yöntemine dayanan bir prosedür geliştirdik. Bu yöntemde fibroblast eksplantları farklı geometrik desenlerde bir fibrin jeli üzerine yerleştirilmiştir. Jeller çevre kontrollü, mikroskop monteli biyoreaktör18'detutulur ve sıkıştırma ve fiber yeniden hizalama işlemi zaman atlamalı diferansiyel girişim kontrastı (DIC) mikroskopisi ile izlenir. Öteleme alanları özel algoritmalarla ölçülür. Bu deneylerden elde edilen veriler, doku mühendisliği stratejilerini optimize etmek, yara iyileşmesini iyileştirmek ve patolojik doku tadilatını tedavi etmek de dahil olmak üzere bir dizi süreç için geniş kapsamlı etkilere sahiptir.

<table><tbody><tr><td>Sigma-Aldrich</td><td>F8630</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sigma-Aldrich</td><td>T4648</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gibco</td><td>11965-092</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gibco</td><td>15140-122</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sigma-Aldrich</td><td>A2942</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sigma-Aldrich</td><td>H0887</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sigma-Aldrich</td><td>223506</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gibco</td><td>25200-056</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Invitrogen</td><td>3000</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Lonza</td><td>DE14-701F</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Moleküler Problar</td><td>F8858</td><td></td><td></td></tr><tr><td>GIBCO</td><td>A10483-01</td><td></td><td></td></tr><tr><td>GIBCO</td><td>11430-030</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Fisher-Scientific</td><td>SS264-1</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Sigma-Aldrich</td><td>A3428-25MG</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Biyotens Biyoreaktör</td><td>ADMET</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ti-Eklipin Mikroskobu</td><td>Nikon</td><td></td><td></td></tr><tr><td># 0 35 mm Cam Alt Petri Kabı</td><td>MatTek</td><td>P35G-0-20-C</td><td></td></tr><tr><td># 0 35 mm Cam Üst Petri Kabı</td><td>MatTek</td><td>P35GTOP-0-20-C</td><td></td></tr><tr><td>Plastik Luer bağlantı parçaları, Luer uçlu PVC boru</td><td>Cole-Parmer</td><td>30600-65</td><td></td></tr></tbody></table>

fibroblast aracılı fibrin jel sıkıştırmayı gözlemleme ve Ölçme

Observing and Quantifying Fibroblast-mediated Fibrin Gel Compaction

Kollajen ve fibrin jellerine gömülü hücreler jelin liflerine tüze gücü talar ve uygular. Bu kuvvetler jel mikro yapısının yerel ve küresel olarak yeniden düzenlenmesine ve yeniden düzenlenmesine yol açabilir. Bu işlem, kısmen hücrelerin konumu, jelin geometrisi ve jel üzerindeki mekanik kısıtlamalar arasındaki etkileşime bağlı karmaşık bir şekilde ilerler. Bu değişkenlerin küresel fiber hizalama desenlerini nasıl ürettiğini daha iyi anlamak için, geometrik aralıklı eksplantlar (fibroblast kümeleri) arasındaki sıkıştırma sürecini gözlemlemek için çevre kontrollü bir biyoreaktör ile birlikte zaman atlamalı diferansiyel girişim kontrastı (DIC) mikroskopisi kullanıyoruz. Görüntüler daha sonra gerinim haritalarını elde etmek için özel bir görüntü işleme algoritması ile analiz edilir. Bu teknikten elde edilen bilgiler, yara iyileşmesi, hastalık gelişimi ve doku mühendisliği uygulamalarındaki süreçleri anlamak için önemli etkileri olan çeşitli hücre matrisi etkileşimlerinin mekanobiyolojisini araştırmak için kullanılabilir.

Doku tadilatı, kısmen hücreler ve çevresindeki matris arasındaki karşılıklı fiziksel etkileşimler tarafından yönlendirilen karmaşık bir süreçtir. Hücreler çevredeki lifleri yeniden düzenler ve fiber ağda gerginlik oluşturur. Liflerin ve mekanik ortamın hizalanması hücre davranışını kontrol eder, böylece hem hücreler hem de matris küresel olarak yeniden şekillendirilmiş doku üretmek için yeniden düzenler. Bu deneyde, başlangıçta morfolojide yuvarlak olan eksplantların hücreleri jel içine uzanmaya ve fibrin liflerine yapış...

48 saatlik bir süre boyunca çevre kontrollü bir biyoreaktörde fibroblast aracılı jel sıkıştırma ve fibrin fiber yeniden hizalamayı gözlemlemek ve analiz etmek için zaman atlamalı mikroskopi ve görüntü işleme teknikleri kullanılmıştır.

Fibroblast aracılı Fibrin Jel Sıkıştırmayı Gözlemleme ve Ölçme

Cells embedded in collagen and fibrin gels attach and exert traction forces on the fibers of the gel. These forces can lead to local and global ...

Bu prosedürün genel amacı, bir fibrin jel sisteminde hücre-matriks etkileşimlerinin fiber yeniden hizalanması ve matriks yeniden şekillenme faaliyetleri üzerindeki etkisini gözlemlemek ve analiz etmektir. Bu işlem, öncelikle çevre kontrollü bir biyoreaktör içerisindeki lamel cam üzerine mikroboncuklar içeren üç boyutlu bir fibrin jelin polimerize edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım ise, fibroblast kümelerini veya X eksplantlarını jelin yüzeyine geometrik desenler halinde yerleştirmek için kullanılan yüksek konsantrasyonlu bir hücre süspansiyonunun hazırlanmasıdır.Ardından, örnek 48 saat boyunca her 15 dakikada bir diferansiyel girişim kontrast mikroskobu kullanılarak görüntülenir. Son adım, dijital görüntü korelasyonu kullanarak jelin farklı bölgelerinden gelen gerinim şeklinde fibrin reorganizasyonunun ve yeniden şekillenmesinin derecesini ölçmektir. Nihayetinde, bu eksplant sistemi, hücrelerin basit geometrik düzenlere yerleştirilmesine olanak tanıyarak hücre kaynaklı matris yeniden şekillenmesi ve fiber yeniden hizalanmasının altında yatan mekanizmaların görselleştirilmesini ve incelenmesini kolaylaştırır.Bu yöntem, çok mekansal ve zamansal mekanik uyaranların hücre davranışı üzerindeki etkileri ve bunların çevre doku matriksinde oluşturduğu değişiklikler gibi mekanik biyoloji alanındaki temel soruları yanıtlayabilir. Bu prosedürü, laboratuvarımdan lisansüstü öğrencisi Arabic de Jesus gerçekleştirecek. 33,3 mg/mL'lik bir stok çözelti oluşturmak için fibrinojeni 37 °C'de önceden ısıtılmış salinde gece boyunca yavaşça çözün. İstenen geometri aralığını takip ederek her bir x eksplantının konumunu belirlemek için perfile bir şablon hazırlayın.Her bir nokta yaklaşık bir ila iki milimetre aralıklarla yerleştirilir. Bu mesafe, eksplantlar arasında fiber hizalanmasının oluşturulması için ideal bir aralığa karşılık gelir. Ardından, biyoreaktörün tüm bileşenlerini %70 etanol kullanarak iyice temizleyin ve temizlenen bileşenleri, montajdan önce iki ila üç saat boyunca bir doku kültürü kabininin UV ışığı altında bekletin.Biyoreaktör bileşenleri sterilize edildikten sonra, örneğin hazırlanacağı 60 milimetre çapındaki lam kapak camının altına şablonu bant yardımıyla sabitleyin. Ardından, sırasıyla mikroboncuk süspansiyonunu, fibrinojeni ve trombini hazırlayın. Stok çözeltiler için, mililitrede 10 milyon boncuk konsantrasyonu elde etmek amacıyla 0,017 mililitre Mikroboncuk stok çözeltisi ve 0,149 mililitre DMEM'yi bir mikro santrifüj tüpünde birleştirin.Ardından, boncukları dağıtmak ve çözeltiyi homojenleştirmek için süspansiyonu 10 dakika boyunca sonike edin. 15 mililitrelik bir santrifüj tüpüne 0,22 mililitre fibrinogen stok çözeltisi, 0,44 mililitre 20 milimolar HEPES tamponu ve 0,1667 mililitre mikroboncuk çözeltisi ekleyin. Bileşenleri nazikçe karıştırın ve ardından tüpü, ayrı bir 15 mililitrelik santrifüj tüpü içerisinde buz üzerine yerleştirin.Birlikte karıştırılır. Saline içinde 25 units/mL konsantrasyonda çözünmüş 32.8 µL thrombin, 131 µL 20 mM HEPES tamponu ve 2.46 µL 2 M kalsiyum klorür.Ardından, hazırlanan trombin ve fibrinogen çözeltilerini, çözelti homojen bir şekilde dağılana kadar beş ila 10 kez pipetleyerek dikkatlice karıştırın. Karıştırma sırasında pipeti tamamen boşaltmayarak karışıma hava kabarcığı girmesini en aza indirmeye çalışın. Karıştırılmış çözeltiyi mümkün olan en kısa sürede lamel cam üzerindeki sekiz milimetrekarelik PDMS kalıplara pipetleyin ve jelin oda sıcaklığında polimerleşmesini bekleyin.Trombin eklenmesi, polimerizasyonu takiben çözeltinin yaklaşık 30 saniye içinde hızla jelleşmesini sağlayacaktır; biyoreaktörü kapatın ve hücre eksplantlarını hazırlayın. Bir T 75 flasktan tripsin kullanarak %70 ila %90 konfluense ulaşmış insan dermal fibroblast hücrelerini hasat edin ve bunları beş dakika boyunca 200 ×g'de santrifüjleyin. Biyoreaktörü bir biyogüvenlik kabinine taşıyın ve aseptik koşullar altında kapağı dikkatlice çıkarın. Ardından besiyerini aspire edin ve hücre peletini %10 FBS içeren DMEM içerisinde mililitrede 20 milyon hücre nihai konsantrasyonuna kadar resüspande edin.Ardından, hücreleri bir mikro pipete yükleyip polimerize olmuş fibrin jel içine 0.3 µL hücre süspansiyonu enjekte ederek eksplantları oluşturun. Şablondaki deseni takip ederek, her bir eksplantın yaklaşık 6.000 hücre içermesini sağlayın. Eksplantlar jel üzerine yerleştirildikten sonra biyoreaktörü kapatın.Ardından, ısıtma bloklarını yerleştirin ve termokuplları sıcaklık kontrol cihazına bağlayın. Sıcaklık kontrol cihazını 37 °C'ye ayarlayın ve hücrelerin çökelip fibrin matrisine tutunması için jelleri bir saat boyunca inkübe edin. Daha sonra; %5 CO₂ ile iki ila üç saat boyunca kondisyonize edilmiş, %10 fetal bovine serum, %1 penisilin streptomisin, %0,1 amfoterisin B ve 10 µg/mL aprotinin ile desteklenmiş yaklaşık 5 mL DMEM'i doğrudan biyoreaktör haznesine ekleyin.Ardından biyoreaktörü yeniden kapatın. Biyoreaktörü tamamen doldurmak için giriş portundaki tırtıklı bağlantı elemanı üzerinden bir şırınga ile ek beş mililitre karbondioksit koşullandırılmış besiyeri ekleyin; oluşan tüm hava kabarcıklarını dikkatlice giderin. Ek %5 karbondioksit koşullandırılmış besiyeri ile doldurulmuş 10 mililitrelik veya 30 mililitrelik bir şırınga ile bir şırınga pompası kurun. Şırıngayı, luer lock uçlu steril tüplerle biyoreaktör kapağındaki giriş portuna doğrudan bağlayın.Şırınga pompasındaki perfüzyon hızını dakikada 0,01 mililitre olarak ayarlayın. Ardından, modifiye edilmiş tüp parçalarını her iki çıkış portuna bağlayın ve uçlarını 100 mililitrelik bir behere yerleştirin. Atıkları toplamak için, biyoreaktör beslemesinde bir basınç farkı oluşmaması amacıyla giriş ve çıkış hatlarının yüksekliklerini bir laboratuvar krikosu kullanarak ayarlayın.Deney boyunca biyoreaktöre taze %5 karbon dioksit ile koşullandırılmış besiyeri ekleyin. pH'ı korumak, besin maddeleri sağlamak ve atık ürünleri uzaklaştırmak için, besiyeri ile doldurulmuş 10 mililitrelik bir şırınga yaklaşık 16 saat yetecektir. 20 XDIC objektifini mikroskobun görüntüleme penceresinin altına yerleştirin ve polarizör analizör ile prizmanın yerinde olduğundan emin olun.Ardından görüntüleme yazılımını açın. Objektifi üç x explan arasındaki alana odaklayın ve bu konumun X, Y ve Z koordinatlarını görüntüleme yazılımına kaydedin. X explan ile çevresindeki tüm alanı görüntülemek için, geniş bir görüntü elde etme seçeneğini belirleyin ve alanın boyutunu tanımlayın.Bu işlem, belirtilen alan çevresinde birden fazla görüntünün elde edilmesine ve büyük bir mozaik görüntü oluşturulmasına olanak tanıyacaktır; ışık şiddetini ve pozlama süresini mümkün olan en düşük değerlere ayarlayın. Bu, hücreler, mikroboncuklar ve fibrin lifleri arasındaki ayrımı yapabilecek yeterli çözünürlüğü sağlarken, fototoksisite kaynaklı hücre ölümünü önlemeye yardımcı olacaktır. Bu özel deneyde, jeldeki ışık saçan boncukların yüksek yoğunluğu nedeniyle fibrin liflerinin görünür olmadığını unutmayın; fibrin liflerini gözlemlemek için boncuk yoğunluğunu veya jel kalınlığını azaltın.Ardından, gerinim takibine başlayın. Öncelikle özel MATLAB kodu oluşturarak veya indirerek, jel boyunca referans noktaları olarak kullanılan mikroboncuklar aracılığıyla görüntüleri kaydedin. Görüntülerin kaydedilmesi, elde edilen görüntülerin her seferinde tam olarak aynı konumdan alındığından emin olmanızı sağlayacaktır.Fiber yeniden hizalanması, her 15 dakikada bir karolu görüntüler yakalanarak gözlemlenmiştir. 48 saatlik bir süre boyunca, karolu görüntülerden münferit bölgeler çıkarılmış ve gerinim takip algoritması ile analiz edilmiştir. Mikroboncuk yer değiştirmelerinden yerel gerinimleri ölçmek için, kontur grafikleri kayışa karşılık gelen fiber yeniden hizalanma bölgesindeki maksimum asal gerinimin dağılımını göstermektedir.Bu teknikte uzmanlaşıldığında, doğru şekilde uygulandığı takdirde işlem yaklaşık üç ila dört saatte tamamlanabilir. Bu prosedürün ardından; doku yeniden şekillendirilmesinde hangi mekanobiyolojik yolakların yer aldığı ve bu süreçlerin çeşitli biyokimyasallar tarafından nasıl modüle edildiği gibi ek soruları yanıtlamak amacıyla, kolajenin vele hücre iskeleti proteinlerinin floresan işaretlenmesi ile hücre göçünün kantifikasyonu gibi diğer yöntemler uygulanabilir.

observing-and-quantifying-fibroblast-mediated-fibrin-gel-compaction

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu video in vitro anjiyogenez tayininde bir protokol anjiyogenez özetlediği çeşitli aşamaları olduğunu göstermektedir. Zaman atlamalı çimlenme görüntüleri, lümen oluşumu, dallanma ve anastomoz - anjiyogenez temel özellikleri gösterilmektedir.

Anjiyogenez Çalışmaları için optimize edilmiş Fibrin Jel Boncuk Testi

Bu video, hücre kültürü için uygun, uyumlu, ekstrasellüler matriks (ECM) kaplanmamış maddeler imal etmek için kullanılan deneysel teknikler göstermek ve çekiş gücü mikroskopi için uygun ve hücre davranışı üzerindeki etkilerinin gözlenmesi ECM sertlik.

Hücresel Daralma miktarının Şikayet Matrisler hazırlanması

Bu videoda, hücre dışı matris sertliğine bağlı Listeria monocytogenes'in endotel hücreleri yoluyla yayılımını değerlendirmek için kantitatif hızlandırılmış mikroskopi gösterilmektedir. Daha yumuşak bir hidrojel, daha sert muadillerine kıyasla endotel hücreleri yoluyla daha hızlı bakteri yayılımını kolaylaştırır ve matris sertliğinin bakteri yayılımı üzerindeki etkisini vurgular.

Hücre Dışı Matriks Sertliğine Bağlı Bakteri Yayılımını Değerlendirmek için Kantitatif Hızlandırılmış Mikroskopi

Bu model sistem bir tahribatsız şekilde endojen kolajen (yeniden) organizasyonu gerçek zamanlı çalışma için kullanılabilecek bir miyofibroblast nüfuslu fibrin jel başlar. Bu model sistemi, farklı hücre kaynakları, orta katkı maddeleri ile birlikte kullanılabilir gibi çok ayarlanabilir, ve özel ihtiyaçlarına göre kolay bir şekilde adapte edilebilir.

Mühendislik Fibrin tabanlı Doku miyofibroblastlar ve Kısıtlar Uygulamasından Yapıları ve Hücre ve Kollajen (Re) Organizasyon tetikleyebilecek süzün

Bu yazıda, hastalıklı durumlara bağlı normal ve anormal pıhtı yapıları arasındaki morfolojik farklılıkları incelemek için kan hazırlama, konfokal mikroskopi ve lizis hızı analizi gibi deneysel teknikler sunulmaktadır.

Normal ve Hastalıklı Devletleri&#39;nde Fibrin pıhtısı Yapıları incelenmesi için deneysel ve Görüntüleme Teknikleri

Burada, proliferatif diyabetik retinopati Patofizyoloji üç boyutlu yerel doku karakterizasyonu ve ex vivo kültürü için hasta kaynaklı, cerrahi olarak eksize, fibrovascular dokuları kullanarak eğitim için bir iletişim kuralı mevcut. Bu ex vivo kültür modeli sınama veya yeni tedaviler geliştirmek için mükellef da.

Bir Ex Vivo doku kültürü modeli Fibrovascular komplikasyon proliferatif diyabetik retinopati

Fibroblastların saf bir popülasyon elde yara onarımı ve fibrozis rollerini incelemek için çok önemlidir. Burada açıklanan yaralanmamış ve yaralı fare kalplerinden fibroblastlar ve miyofibroblastlar izole etmek için ayrıntılı bir yöntem immünofloresan, RTPCR, floresan destekli hücre sıralama ve saflık ve işlevsellik karakterizasyonu takip kollajen jel kontraksiyonu.

Erişkin Kardiyak Fibroblastlar ve Miyofibroblastların İzolasyon ve Karakterizasyonu

Sunulan yöntem, canlı konfokal mikroskopiye izin verirken silikon kauçuğun içine gömülü 3D yumuşak hidrojellerin tek eksenli gerilmesini içerir. Dış ve iç hidrojel suşlarının karakterizasyonu ve fiber hizalaması gösterilmiştir. Geliştirilen cihaz ve protokol, hücrelerin çeşitli gerinim rejimlerine tepkisini değerlendirebilir.

Canlı Mikroskopi Görüntüleme Altında 3D Hidrojellerin Kontrollü Suşu

Burada sunulan, mekanistik çalışmalar, hastalık modelleme ve tarama uygulamaları için uygun, çift kutuplu çok kuyulu bir plakada 48 dokudan oluşan paralel bir kültür için tasarlanmış bağ dokuları üretmek için bir protokoldür. Protokol, farklı organ ve türlerden fibroblastlarla uyumludur ve burada insan primer kardiyak fibroblastlarla örneklenmiştir.

Fibroblast Türetilmiş İnsan Tarafından Tasarlanmış Bağ Dokusu Tarama Uygulamaları için

Bu makale, hücre dışı matris sertleşmesini ve fibroblast aktivasyonunu incelemek için fototize edilebilir hidrojellerin 3D biyo-baskısının nasıl yapılacağını açıklamaktadır.

Fibroblast Aktivasyonunu İncelemek için 3D Biyobaskı Fototable Hidrojeller

Mekanik olarak izole edilmiş stromal vasküler fraksiyon (SVF), bir fibrin hidrojel ile kombinasyon halinde, doku mühendisliği ve/veya yara iyileşmesi amaçları dahil olmak üzere çeşitli endikasyonlar için canlı adipoz türevli stromal hücreler için kolay ve verimli bir taşıyıcı sunar. Burada, translasyonel araştırma ve klinik uygulama için mekanik bir SVF (mSVF)-fibrin hidrojel yapısının hazırlanmasını sunuyoruz.

Mekanik Olarak İzole Edilmiş Stromal Vasküler Fraksiyon ve Fibrin Hidrojel Kombinasyonu: Bir İşleme Protokolü

Keşfedin, zaman atlamalı mikroskopi ve dijital görüntü korelasyonu kullanarak fibrin jel içinde fibroblast aracılı matris yeniden yapılanmasını. Bu yöntem, hücre-matris etkileşimlerini ve doku mühendisliği uygulamalarını incelemek için değerli bilgiler sunar.

Fibroblast aracılı Fibrin Jel Sıkıştırmayı Gözlemleme ve Ölçme

Daha fazla video keşfet