Name: Kültür Hücrelerinin retikulum Subdomainler Görselleştirme (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-18T13:45:00.000+00:00
Duration: 16 min 43 s
Description: Öğrenin, kültür hücrelerinde endoplazmik retikulumun alt alanlarını canlı hücre konfokal görüntüleme ve elektron mikroskobisi kullanarak nasıl görselleştireceğinizi. Bu yöntem protein hareketliliği ve hücresel mimari üzerine temel araştırmalar için değerlidir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar bu yazının yayınlanmasından onun yardım ve destek için Fondazione Filarete minnettarız. Biz de Tecnai G2 transmisyon elektron mikroskobu kullanımı için Centro Europeo di Nanomedicina teşekkür etmek istiyorum.

1.. ER Floresan Proteinleri ile plazmid, Hücre Kültürü ve Transfection <ol><li> Bu çalışmada kullanılan fare plasmid sitokrom b&#39;nin ER izoformunun kuyruk bölgeye C-terminalinde kaynaşmış GFP geliştirilmiş bir versiyonu olan (5) bir bağ dizisi yoluyla (b olarak (5) burada kısaltılmıştır). Kuyruk bölgesi (5), üst ve alt polar diziler tarafından eteklenen 17-artık TMB (transmembran domain), (UPS ve DPS) de dahil olmak üzere, doğal B tripsin bölünmesinden sonra ilişkili membran kalan bütün dizisi (Pro94-Asp134) içerir . Bağlayıcı [(Gly) 4, Ser] 3 ve ardından myc epitopu oluşur ve tüm cDNA, memeli ekspresyon vektörü pCDNA3 ve Hind3-Xba1 sitelerine sokulur. Bu plazmidin yapımı ayrıntılar GFP-ER 16 olarak adlandırılır edildiği önceki bir yayında tarif edilmiştir. </li><li> ,% 10 beyaz peynir ile takviye edilmiş Dulbecco Modified Eagle Medium (DMEM) içinde COS-7 hücrelerinin büyütünl sığır serumu, 2 mM L-glutamin, 37 ° C&#39;de bir inkübatör içinde% 1 penisilin / streptomisin ve% 10 CO2. </li><li> Transfeksiyon. Üretici tarafından tarif edildiği gibi plaka 3 x 10 5, 6 oyuklu bir plaka içerisinde yuvarlak cam lamel üzerinde hücreleri ve, bir sonraki gün, JetPEI sistemi ile transfekte. Optimal JetPEI / DNA oranı, kullanılan plazmid ve hücre serisine bağlı olarak en fazla transfeksiyon verimi kurmak amacıyla test edilmiştir Not: bizim durumda, bir JetPEI: 2:1 DNA oranı,% 70-80 transfeksiyon verimliliği sağlanır. </li></ol> 2. Canlı Floresan Tarama Eşodaklı Mikroskopi <ol><li> Canlı hücre görüntüleme. Transfekte hücreler, w /% 10 FBS, 2 mM L-glutamin,% 1 pen / strep, 25 mM HEPES ile desteklenmiş fenol kırmızısı, o DMEM dolu 24 mm kapak için bir çelik hücre kültür odası içine ekildi üzerinde lamel koyun , ışıkla ağartma gelen örnekleri önlemek için 50 ug / ml sikloheksimidin ve 1:100 OxyFluor. Bir SP5 konfokal mikroskopd GFP-ER 488 nm lazer ve bir 525/50 bant geçiş emisyon filtresi kullanılarak görselleştirilmiştir olması ile ısı kontrollü bir CO2 inkübatör (37 ° C ve% 5 CO2) e sahip, canlı hücre görüntüleme deneyleri için kullanılır. </li><li> (Sıkı bağlamak) photobleaching sonra floresan kurtarma. Bir OSER yapısına karşılık gelen, (ROI) bir bölge çizin ve (örnek olarak 5,5-6 μW tekabül eden, 30 mW argon lazer% 100) 20 tekrar ve 488 nm bir kombinasyonu kullanılarak ve 405 nm çamaşır suyu bizim deneyim, verimli ve hızlı ağartmanın yol açar, (numune 11.6 μW tekabül eden 30 mW Diyot 405 lazerin% 60) lazerler. </li><li> 10 dakika (piksel süresi = 1.61 mikro saniye olduğu / px) için tek bir kare her 10 sn alarak ağartılmış ROI&#39;lardaki floresan kurtarma kaydedin. </li><li> (FLIP) Photobleaching floresan kaybı. A, bir OSER yapısına karşılık gelen YG ve yukarıda tarif edildiği gibi ağartıcı çizin. Ağartma her 30 saniye tekrar edilir,ve post-beyazlatma görüntüleri 30 dakika (piksel süresi = 1.61 mikro saniye olduğu / px) boyunca her 10 sn kaydedilir. </li><li> Sıkı bağlamak ve FLIP analizi. Görüntülerin tüm ImageJ yazılımı (kullanarak analiz edilir <a href="http://rsbweb.nih.gov/ij/download.html" target="_blank">http://rsbweb.nih.gov/ij/download.html</a> ). FRAP deneylerde, ağartılmış ROI floresan iyileşme süresi ve her zaman içinde sabit olduğu kontrol edilir ağartılmış hücrenin toplam floresan, normalize boyunca ölçülür. </li><li> FLIP deneyler için, ağartılmış OSER ve bütün bir hücresinin kaplayan bir dış ROI çizin. Zaman içinde floresan yoğunluğu ölçülür ve görüntüleme kendisinin neden floresan herhangi bir azalma için düzeltme amacıyla bir beyazlatılmamış hücre üzerinde çekilen bir ROI floresan seviyeleri için normalize. </li><li> Deneylerin tamamında, İB&#39;nin floresan şiddetleri dan (hücrelerin dışındaki bir alanda belirlenen) bir arka plan sinyali çıkarılır. Son olarak, Gr kullanarak sonuçları arsaaphPad Prism yazılımı. </li></ol> 3. Transmisyon Elektron Mikroskobu Yoluyla Ultrastrüktürel Analizi Reaktiflerin birçok toksisite göz önüne alındığında, tüm prosedürleri, uygun bir laboratuarı giyen yürütülmelidir. davlumbaz altında ceket ve eldiven. <ol><li> Petri kabı lamel ayrılmasından sonra, oda sıcaklığında 10 dakika boyunca 0.1 M kakodilat tampon maddesi, pH 7.4 içinde, süzüldü% 2 glutaraldehid ile bir tek tabaka olarak çanak alt, üzerinde yetiştirilen kalan hücreleri gidermek. </li><li> Bir Teflon kazıyıcı kullanarak hücreleri kazıyın ve 1.5 ml Eppendorf tüpleri içine aktarın. 10 dakika boyunca 9000 g&#39;de santrifüj vasıtasıyla Pelet hücreleri. Süpernatantı taze fiksatif ekleyin ve 4 ° C&#39;de gece bekletin </li><li> Tamponu ile yıkayın peletleri, daha sonra oda sıcaklığında 1 saat boyunca kakodilat tampon içinde% 1 ozmiyum tetroksit çözeltisi ile post-sabitleyin. </li><li> MilliQ su ile durulayın, ve ile blok leke tr20-60 arasında dakika için damıtılmış su içinde% 1 uranil asetat. </li><li> Etanol serisi (% 70,% 80,% 90,% 100 ve 10 dakika her biri için% 100) artan örnekleri dihidrat ve (15 dk) propilen oksit içinde kısa süreyle iki kez yıkayın. </li><li> (2 saat ilâ gece boyunca) propilen oksit + EPON (1:1) oluşan bir karışım içerisinde örnekleri sızmak. </li><li> En az 24 saat boyunca 60 ° C&#39;de tedavi Epon epoksi reçine gömme. </li><li> Bölüm 60-70 nm kalınlığında bölümleri elde etmek için bir 45 ° bir elmas bıçak ile donatılmış bir ultramikrotom LEICA UC6 kullanarak el ile kesilmiş reçine bloklar. 300 örgü bakır ızgaralar üzerinde bölümleri toplayın. </li><li> Uranil asetat (20 dakika) içinde doymuş bir çözeltisi ile ızgara üzerinde bölümleri leke ve sitrat (7 dakika) yol, iyice bi damıtılmış süzüldü, su içine daldırılarak ızgaraları yıkama ve bunları oda sıcaklığında kurumaya bırakın. </li><li> Boyanan ızgaraları Tecnai G2 transmisyon elektron mikroskobu kullanılarak gözlenmiştir, ve görüntüler bir Bott kullanılarak yakalanır(genelde 6,000-39,000 X kadar) farklı nihai büyütme om monte CCD kamera. </li></ol>

<ol><li>Fasana, E., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+VAPB+mutant+linked+to+amyotrophic+lateral+sclerosis+generates+a+novel+form+of+organized+smooth+endoplasmic+reticulum%5BTitle%5D)+AND+%22FASEB+J%22%5BJournal%5D)">A VAPB mutant linked to amyotrophic lateral sclerosis generates a novel form of organized smooth endoplasmic reticulum.</a> FASEB J. 24, 1419-1430 (2010).</li>
<li>Borgese, N., Francolini, M., Snapp, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Endoplasmic+reticulum+architecture%3A+structures+in+flux%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Endoplasmic reticulum architecture: structures in flux.</a> Curr. Opin. Cell Biol. 18, 358-364 (2006).</li>
<li>Ronchi, P., Colombo, S., Francolini, M., Borgese, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transmembrane+domain-dependent+partitioning+of+membrane+proteins+within+the+endoplasmic+reticulum%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Transmembrane domain-dependent partitioning of membrane proteins within the endoplasmic reticulum.</a> J. Cell Biol. 181, 105-118 (2008).</li>
<li>Lippincott-Schwartz, J., Snapp, E., Kenworthy, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Studying+protein+dynamics+in+living+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Rev.+Mol.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Studying protein dynamics in living cells.</a> Nat. Rev. Mol. Cell Biol. 2, 444-456 (2001).</li>
<li>Lee, M. C., Miller, E. A., Goldberg, J., Orci, L., Schekman, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bi-directional+protein+transport+between+the+ER+and%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Bi-directional protein transport between the ER and.</a> 20, 87-123 (2004).</li>
<li>Snapp, E. L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Formation+of+stacked+ER+cisternae+by+low+affinity+protein+interactions%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Formation of stacked ER cisternae by low affinity protein interactions.</a> J. Cell Biol. 163, 257-269 (2003).</li>
<li>Papiani, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Restructured+endoplasmic+reticulum+generated+by+mutant+amyotrophic+lateral+sclerosis-linked+VAPB+is+cleared+by+the+proteasome%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Restructured endoplasmic reticulum generated by mutant amyotrophic lateral sclerosis-linked VAPB is cleared by the proteasome.</a> J. Cell Sci. 125, 3601-3611 (2012).</li>
<li>Almsherqi, Z. A., Kohlwein, S. D., Deng, Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cubic+membranes%3A+a+legend+beyond+the+Flatland%2A+of+cell+membrane+organization%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cubic membranes: a legend beyond the Flatland* of cell membrane organization.</a> J. Cell Biol. 173, 839-844 (2006).</li>
<li>Federovitch, C. M., Ron, D., Hampton, R. Y. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+dynamic+ER%3A+experimental+approaches+and+current+questions%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Opin.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">The dynamic ER: experimental approaches and current questions.</a> Curr. Opin. Cell Biol. 17, 409-414 (2005).</li>
<li>Takei, K., Mignery, G. A., Mugnaini, E., Sudhof, T. C., De Camilli, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Inositol+1%2C4%2C5-trisphosphate+receptor+causes+formation+of+ER+cisternal+stacks+in+transfected+fibroblasts+and+in+cerebellar+Purkinje+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Inositol 1,4,5-trisphosphate receptor causes formation of ER cisternal stacks in transfected fibroblasts and in cerebellar Purkinje cells.</a> Neuron. 12, 327-342 (1994).</li>
<li>Feldman, D., Swarm, R. L., Becker, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrastructural+study+of+rat+liver+and+liver+neoplasms+after+long-term+treatment+with+phenobarbital%5BTitle%5D)+AND+%22Cancer+Res%22%5BJournal%5D)">Ultrastructural study of rat liver and liver neoplasms after long-term treatment with phenobarbital.</a> Cancer Res. 41, 2151-2162 (1981).</li>
<li>Sprocati, T., Ronchi, P., Raimondi, A., Francolini, M., Borgese, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Dynamic+and+reversible+restructuring+of+the+endoplasmic+reticulum+induced+by+PDMP+in+cultured+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Dynamic and reversible restructuring of the endoplasmic reticulum induced by PDMP in cultured cells.</a> J. Cell Sci. 119, 3249-3260 (2006).</li>
<li>Costantini, L. M., Fossati, M., Francolini, M., Snapp, E. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+the+tendency+of+fluorescent+proteins+to+oligomerize+under+physiologic+conditions%5BTitle%5D)+AND+%22Traffic%22%5BJournal%5D)">Assessing the tendency of fluorescent proteins to oligomerize under physiologic conditions.</a> Traffic. 13, 643-649 (2012).</li>
<li>Pyszniak, A. M., Welder, C. A., Takei, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+surface+distribution+of+high-avidity+LFA-1+detected+by+soluble+ICAM-1-coated+microspheres%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Immunol%22%5BJournal%5D)">Cell surface distribution of high-avidity LFA-1 detected by soluble ICAM-1-coated microspheres.</a> J. Immunol. 152, 5241-5249 (1994).</li>
<li>Taylor, J. P., Hardy, J., Fischbeck, K. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Toxic+proteins+in+neurodegenerative+disease%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Toxic proteins in neurodegenerative disease.</a> Science. 296, 1991-1995 (2002).</li>
<li>Winklhofer, K. F., Tatzelt, J., Haass, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+two+faces+of+protein+misfolding%3A+gain-+and+loss-of-function+in+neurodegenerative+diseases%5BTitle%5D)+AND+%22EMBO+J%22%5BJournal%5D)">The two faces of protein misfolding: gain- and loss-of-function in neurodegenerative diseases.</a> EMBO J. 27, 336-349 (2008).</li>
<li>Borgese, N., Gazzoni, I., Barberi, M., Colombo, S., Pedrazzini, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+of+a+tail-anchored+protein+to+endoplasmic+reticulum+and+mitochondrial+outer+membrane+by+independent+but+competing+pathways%5BTitle%5D)+AND+%22Mol.+Biol.+Cell%22%5BJournal%5D)">Targeting of a tail-anchored protein to endoplasmic reticulum and mitochondrial outer membrane by independent but competing pathways.</a> Mol. Biol. Cell. 12, 2482-2496 (2001).</li>
<li>Chudakov, D. M., Matz, M. V., Lukyanov, S., Lukyanov, K. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescent+proteins+and+their+applications+in+imaging+living+cells+and+tissues%5BTitle%5D)+AND+%22Physiol+Rev%22%5BJournal%5D)">Fluorescent proteins and their applications in imaging living cells and tissues.</a> Physiol Rev. 90, 1103-1163 (2010).</li>
<li>Bancaud, A., Huet, S., Rabut, G., Ellenberg, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fluorescence+perturbation+techniques+to+study+mobility+and+molecular+dynamics+of+proteins+in+live+cells+FRAP%2C+photoactivation%2C+photoconversion%2C+and+FLIP%5BTitle%5D)+AND+%22Cold+Spring+Harb.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Fluorescence perturbation techniques to study mobility and molecular dynamics of proteins in live cells FRAP, photoactivation, photoconversion, and FLIP.</a> Cold Spring Harb. Protoc. 2010, (2010).</li>
<li>Michida, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Role+of+endothelin+1+in+hemorrhagic+shock-induced+gastric+mucosal+injury+in+rats%5BTitle%5D)+AND+%22Gastroenterology%22%5BJournal%5D)">Role of endothelin 1 in hemorrhagic shock-induced gastric mucosal injury in rats.</a> Gastroenterology. 106, 988-993 (1994).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Bu yazıda anlatılan protokoller ve görüntüleme yaklaşımlar canlı hücrelerin ER ikamet transfekte TA floresan proteinlerinin dağılımını ve hareketliliği araştırmak için kullanılmıştır. Ayrıca mikroskobik analizler vasıtasıyla bu hücre içi bölmesinin mimarisi bu proteinlerin aşırı ifadesinin etkisini analiz ettik. Canlı hücre konfokal görüntüleme ve elektron mikroskobu birleşimi proteinlerin dinamik özelliklerini araştıran bir çok güçlü bir araç olduğunu temsil eder, ve protein fonksiyonu ile ...

Yeşil floresan proteininin (GFP) ve spektral varyantları, ve floresan mikroskopi paralel gelişme keşif, hücrelerin protein davranış soruşturma için tamamen yeni yollar açtı. Çünkü yoğun bir aydınlatma altında floresan söndürmek için Flüoroforlann içsel kapasitesinin mümkündür (FLIP), ışıkla in (sıkı bağlamak) ve floresan kaybı photobleaching sonra floresan kurtarma gibi teknikler, konfokal canlı hücre görüntüleme dayalı ve kullanımı transfekte floresan füzyon proteinleri 1-3. Çıktıkları fonksiyon 4 ile ilgili önemli ipuçları ortaya çıkarabilir proteinlerin lokalizasyonu, aynı zamanda onların hareketlilik ve veziküler taşıma, sadece değerlendirmek için kullanılır. Ökaryotik hücrelerin benzersiz özelliği spesifik lipid ve protein bileşimleri olan hücre içi bölmelerin varlığıdır. Organelleri fiziksel isolat rağmened, birbirleriyle iletişim ve hücresel homeostazı sürdürmek için moleküler bileşenleri paylaşmak gerekir. Salgı yolu ER sentezlenen proteinler ve lipidler onların işlevini uyguladıkları doğru son hedefe ulaşmasını garanti eder. Hücre içi organelleri de moleküller (lipidler) doğrudan bölmeleri arasında değiş tokuş edilmesine izin dinamik iletişim siteleri tarafından bağlanabilir. Ayrıca, birçok protein büyük heteromerik komplekslerine asamblajı ya da işlevsel olarak aktif olmaya ya da nihai hedefe taşınması amacıyla özel lipid türleri (lipid sal / mikro bölgeleri) ile bağlantılı olması. Bu biyolojik açıdan tüm büyük proteinlerin kinetik özelliklerini etkileyen ve bu nedenle, uygun bir şekilde aşağıda tarif edilen teknikler vasıtasıyla incelenebilir. Grubumuz ER mimarisi ve farklı alt incelemek için yaygın olarak kullanılan sıkı bağlamak ve elektron mikroskobu ile birlikte FLIPetki. ER salgı yolunun ilk istasyonu ve protein ve lipid 5 sıralama önemli bir rol oynar. Bu kimin ayrı alt alan birçok farklı işlevleri (yani protein ve lipit biyosentezi ve ticareti, protein katlanması, Ca 2 + depolama ve serbest ve ksenobiyotik metabolizma) yansıtan son derece dinamik bir organelidir. Bu uzaysal olarak, morfolojik, ve fonksiyonel olarak farklı olmasına rağmen, ancak, bu etki birbirleri ile süreklidir ve bunların nispi bolluk fizyolojik ve patolojik koşullar altında hücrelerde değiştirilebilir. Iyi bilinen ve ER genellikle mekansal ayrılmış alanlar nükleer zarf ve pürüzsüz ve pürüzlü ER olmakla birlikte, biz ve diğerleri ER yapı, çeşitli hücre tiplerinde daha ayrıntılı mimari ve üç boyutlu organizasyon ile olduğunu göstermiştir ve var Ayrıca, hipoksi, ilaç olarak stresli uyaranlara vasıtasıyla tahrik edilebilir, fizyolojik koşullar altında dokularınuygulama veya ER-yerleşik transmembran proteinlerin 2,6 arasında aşırı ekspresyonu (ve buradaki referanslar). Ayrıca son zamanlarda insan hastalıklarının 1,7 hücre modellerinde bu tür yapıların varlığını göstermiştir. Pürüzsüz ER yığılmış sisternalarında kaynaklanan onlar da kendi mimarlık temelinde karmellae, lameller ve kristalloid ER olarak bilinmesine rağmen, onlar, 2003 6 düzenlenen düz endoplazmik retikulum (OSER) kolektif adı verildi, hangi gibi onların boyutu, değişebilir. Hücreler kuyruk demirlemiş (TA) ER-yerleşik proteinler (d EGFP-ER), trans GFP zayıf dimerize eğilimi dramatik ER organizasyon ve yapısını değiştirir sitozolik bölgeye kaynaşmış GFP ile transfekte sonra. Sıkı bağlamak ve FLIP deneyler d EGFP-ER OSERs içinde yayılmak için serbest olduğunu gösterdi ve OSER için retiküler ER hareket eder ve tersi &lt;gerçeği/ Em&gt; agrega çevreleyen retiküler ER sürekli olduğunu göstermektedir. Ultrastrüktürel analizi bize nano düzeyde OSER mimarlık ve örgüt ayrıntılı bir açıklama ile floresan veri ilişkilendirmek için izin verdi: OSERs her zaman düzgün ER eşleştirilmiş sisternalarında yığınlarının kadar yapılır ama böyle düzenli sinüs düzenlenmiş gibi mekansal organizasyon farklı biçimlere sahip olabilir diziler veya ağırşak, veya altıgen &quot;kristalloid&quot; boru şeklinde diziler. Bu yeniden düzenlemeler de fizyolojik koşullar 9 ve hipoksi 10, 11, ilaç tedavisi ve kanser 9 Aşağıdaki gibi stresler altında hücrelerde bulunan edilmiş olarak, ultrastrüktürel marker olarak önemli bir potansiyele sahip olabilir, kübik morfolojileri 8 yol açar. GFP füzyon proteinleri kullanılarak bu ilk gösteri sonra, farmakolojik tedavilere 12, asse tepki olarak ER etki proliferasyonunu analiz etmek için kullanılan deneyler görüntülemep hücreleri 13 oligomerize etmek, ve 1,8 patojenite ile ilgili olabilir ER kaynaklı hücre içi agrega oluşumunda bir mutant, ALS TA-bağlantılı protein rolünü araştırmak için floresan protein eğilimidir. Bu, (çok sayıda nörodejeneratif hastalıkların 14 oluşur) hücre içi agrega oluşumu toksik mutant proteinleri ve çevreleyen hücre bileşenleri 15 arasındaki etkileşimleri önlemek için tasarlanan bir koruyucu mekanizma olabileceğini öne sürülmüştür. Aşağıda olan C-terminal hidrofobik alanları, ER&#39;nin zarı içine sokulur ve dinamik davranış bir analiz ve ER alanı üzerindeki aşırı ifade yapıları etkileri araştırmak için, optik ve elektron mikroskopi yöntemlerin bir kombinasyonu bir açıklamasıdır kültürlenmiş hücrelerde mimarisi (deney protokolünün bir akış şeması için Şekil 1&#39;e bakınız).

<table><tbody><tr><td>Dulbecco' s Modifiye Kartal Ortamı (DMEM)</td><td>İnvitrojen</td><td>41966029</td><td></td></tr><tr><td>Dulbecco' s Fenol kırmızısı içermeyen Modifiye Kartal Ortamı (DMEM)</td><td></td><td>31053028</td><td></td></tr><tr><td>Fetal Sığır Serumu (FBS)</td><td>İnvitrojen</td><td>10270106</td><td></td></tr><tr><td>Kalem/Strep</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>L-Glutamin 200 mM çözeltisi</td><td>Invitrogen</td><td>25030-024</td><td></td></tr><tr><td>jetPEI</td><td>Polyplus Transfeksiyon</td><td>PP10110</td><td></td></tr><tr><td>OxyFluor</td><td>Oksiraz Inc.</td><td>OF-0005</td><td></td></tr><tr><td>Gluteraldehit Sınıf I</td><td>Sigma Aldrich</td><td>G5882</td><td></td></tr><tr><td>Sodyum Kakodilat Trihidrat</td><td>Sigma Aldrich</td><td>C0250</td><td></td></tr><tr><td>Osmiyum Tetroksit %4 çözelti</td><td>Elektron Mikroskobu Bilim</td><td>19150</td><td></td></tr><tr><td>Uranil Asetat Dihidrat</td><td>Sigma Aldrich</td><td>73943</td><td>hafif radyoaktif</td></tr><tr><td>Propilen Oksit</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>82320</td><td></td></tr><tr><td>EPON gömme ortam kiti</td><td>Sigma-Aldrich</td><td>45359-1EA-F</td><td></td></tr><tr><td>Kurşun Sitrat Elektron </td><td>Mikroskobu Bilimi</td><td>17800</td><td></td></tr><tr><td>Tezgah üstü santrifüj</td><td>Eppendorf</td><td>5415 D</td><td></td></tr><tr><td>Spektral Konfokal Mikroskop </td><td>Leica Microsystems</td><td>TCS SP5</td><td></td></tr><tr><td>CO2 Mikroskop Kafesi İnkübasyon Sistemi </td><td>OkoLab</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Ultramicrotome </td><td>Leica Microsystems</td><td>UC6</td><td></td></tr><tr><td>Elmas bıçak </td><td>Diatome</td><td>Ultra 45 & deg;</td><td></td></tr><tr><td>Transmisyon Elektron Mikroskobu </td><td>FEI</td><td>Tecnai G2</td><td></td></tr><tr><td>GraphPad Prizma Yazılımı</td><td>GraphPad Yazılımı, Inc</td><td></td><td></td></tr><tr><td>24 mm lamel için çelik kültür hücre odası</td><td>Biyobilim Araçları</td><td>CSC-25</td><td></td></tr><tr><td>Elektron Mikroskobu ızgaraları</td><td>Elektron Mikroskobu Bilimi</td><td>G300Cu</td><td></td></tr></tbody></table>

kültür hücrelerinin retikulum subdomain&#39;ler görselleştirme

Visualization of Endoplasmic Reticulum Subdomains in Cultured Cells

Bu yoğun interorganelle moleküler trafik rağmen ayırt edici bileşimin ve fonksiyonlarını muhafaza rağmen ökaryotik hücrelerde lipidler ve proteinlerin sürekli hücre bölmelerine arasında değiş tokuş edilir. Bu yazıda anlatılan teknikler in vivo ve fizyolojik ortamda protein ve lipid hareketlilik ve kaçakçılığı okuyan güçlü araçlardır. (FLIP) Photobleaching içinde (sıkı bağlamak) ve floresan kaybı photobleaching sonra floresan kurtarma yaygın exo-endositik yolu, organellere veya alt bölme arasındaki süreklilik, protein komplekslerinin oluşumu ve protein yerelleştirme yoluyla hücre içi ticaretini incelemek için canlı hücre görüntüleme teknikleri kullanılır Lipid mikro bölgeleri olarak, her biri, fizyolojik ve patolojik koşullar altında gözlemlenebilir. Bu yaklaşımların sınırlamaları nedeniyle floresan füzyon proteinlerinin kullanımı ile esas olarak ve potansiyel sakıncaları aşırı ifade suni içerirhücrelerde iyonu ve etiketli ve yerli protein katlanması ve lokalizasyon farklılıklar olasılığı. Son olarak, optik mikroskopi (yaklaşık 200 nm) çözünürlük limiti olarak stres altında hücrelerde kaynaklı olabilir ER veya belirli bir alt bölme ve ince yapısı soruşturma izin vermez (örneğin, hipoksi, ilaç uygulama, transmembran aşırı ifadesi ER ikamet proteinler) ya da patolojik koşullar altında, ultrastrüktürel ile kültür transfekte edilmiş hücrelerin canlı hücre görüntüleme kombine transmisyon elektron mikroskobu göre analiz eder.

Şekil 2, protein hareketlilik örnek FRAP çalışmayı gösterir. D EGFP-ER proteininin hareketlilik beyazlatılmış OSERs olarak ışıkla ağartma sonra hızlı bir floresan kurtarma ile gösterilir. Nicel analiz için, yarım saat ve cep kısmı, aşağıdaki denklem monoexponential uydurularak deneysel ölçümlere dayanan verilerden elde edilmiştir: F (t) = F post + (F rec-F sonrası) (1-e-t / τ) F sonrası<...

Biz canlı hücre konfokal görüntüleme vasıtasıyla, endoplazmik retikulum (ER) içerisinde yerleşik transfekte floresan protein dağılımı ve hareketliliği incelemek için kullanılan görüntüleme yaklaşımı tarif eder. Biz de ultrastruktural bu subselüler bölmesinin mimarisi üzerine kendi ifade etkisini analiz.

Kültür Hücrelerinin retikulum Subdomain&#39;ler Görselleştirme

The lipids and proteins in eukaryotic cells are continuously exchanged between cell compartments, although these retain their distinctive composition and ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, transfekte edilmiş floresan proteinlerin endoplazmik retikulumda nasıl dağıldığını ve hareket ettiğini araştırmak ve ekspresyonun ultrastrüktürel mimari üzerindeki etkisini değerlendirmektir. Bunu gerçekleştirmek için, kültür hücreleri GFP etiketli, kuyruk demirli ER yerleşik proteinleri ile geçici olarak transfekte edilir. Transfeksiyonun ardından, fotobeleçme sonrası floresans geri kazanımını (frap) ve floresans kaybını değerlendirmek için canlı hücre konfokal görüntüleme yapılır.Fotobeyazlatma veya FRAP yönteminde, transmisyon elektron mikroskopisi kullanılarak ultrastrüktürel analiz gerçekleştirilir. Elde edilen veriler, GFP etiketli B five konstrüktünün ekspresyonunun, endoplazmik retikulumun organizasyonunu ve yapısını dramatik bir şekilde değiştirerek agregat oluşumunu tetiklediğini göstermektedir. Burada sunduğumuz yöntem; protein ve lipid mobilite ve trafiği gibi temel hücre biyolojisi süreçlerine dair içgörü sağlayabilir.Ayrıca, floresan protein veya oligo modernizasyonunu değerlendirmek için farmakolojik tedavilere verilen yanıtları incelemede veya atrofik lateral sklerozda olduğu gibi, patojenite ile ilişkili olabilecek hücre içi agregatların oluşumunda patojenik mutant proteinlerin rolünü çalışmada da kullanılabilir. Bu çalışmada kullanılan plazmid, C terminusünden bir bağlayıcı sekans aracılığıyla sıçan sitokrom B beşin er izoformunun kuyruk bölgesine füzyonlanmış, geliştirilmiş bir GFP versiyonundan oluşmaktadır. B beşin kuyruk bölgesi, tripsin tarafından kesildikten sonra membranla ilişkili kalan tüm sekansı içerir.Bu, yukarı akış ve aşağı akış polar dizileriyle çevrelenmiş 17 kalıntılı transmembran alanı içerir. Bağlayıcı, M epitopunu ve ardından GLY dört S3'ü içerir. Tüm CDNA, memeli ekspresyon vektörü PC DNA üç'ün Hindi üç XO bir bölgelerine yerleştirilir. Transfeksiyon hazırlığı için, kost seven hücrelerini takviye edilmiş DMEM içinde 37 °C ve %5 CO2'de büyütün; transfeksiyondan bir gün önce, altı kuyucuklu bir plakadaki yuvarlak 24 mm'lik cam lameller üzerine 3 × 10⁵ hücre ekin.Hücreleri, üreticinin burada belirttiği jet PEI sistemiyle transfekte edin; ikiye bir oranında jet PEI'ye DNA kullanın. Bu işlem tipik olarak %70 ila %80 oranında bir transfeksiyon verimliliği sağlar. Görüntüleme öncesinde hücreleri 24 saat boyunca 37 °C ve %5 CO2 koşullarında tutun. Ardından, transfekte edilmiş hücrelerin bulunduğu lamelini bir penset yardımıyla görüntüleme haznesine aktarın.Kalan hücreleri korumak için doku kültürü kabını inkübatöre geri yerleştirin. Elektron mikroskopisi ile ultra yapısal analiz için. Canlı hücre görüntüleme için, çelik bir hücre kültürü haznesine iki mililitre görüntüleme besiyeri ekleyin.Numunelerin fotobeyazlamasını önlemek için görüntüleme ortamına Xi Fluor eklenir. Protein biyosentezinden kaynaklanan A floresan sinyalindeki ve dolayısıyla toplam floresanstaki herhangi bir artışı önlemek için deneyler, bir translasyon inhibitörü olan smide varlığında gerçekleştirilmelidir. Görüntüleme haznesini, sıcaklık kontrollü bir CO2 inkübatörü ve floresan geri kazanımını gerçekleştirmek için uygun fotomültipliyer ayarlarına sahip uygun lazerlerle donatılmış bir konfokal mikroskobun tablasına yerleştirin.Fotobeyazlatma veya çatlatma işleminden sonra hücreleri odaklayın ve piksellerin doygunluğa ulaşmasını önlemek için görüntüleme parametrelerini ayarlayın. Ayrıca, görüntüleme sırasında meydana gelebilecek fotobeyazlatmayı önlemek için lazer gücünün mümkün olduğunca düşük ayarlandığından emin olun. Görüntüleme parametreleri ayarlandıktan sonra, iki veya daha fazla hücrenin bulunduğu yeni bir görüş alanına geçin.Her bir görüntüleme alanındaki bir hücre, beyazlatılmış hücre veya hücrelerin floresan sinyalini normalize etmek için kullanılabilsin diye beyazlatılmamış olarak kalmalıdır. Beyazlatma işlemi için, organize düz endoplazmik retikulum (OSER) ile uyumlu bir ilgi alanı (ROI) çizin.Görüntüleme programını, verimli ve hızlı fotobleaching için yeterli sayıda yineleme kullanarak bleach moduna ayarlayın. Gerektiğinde 488 nanometre ve 405 nanometre lazerlerin kombinasyonu kullanılabilir. Yazılımı, deneyin tüm süresi boyunca her 10 saniyede bir tek kare görüntü alacak şekilde 10 dakika için ayarlayın. Buna preble, bleach ve recovery dönemleri dahildir.Her şey hazır olduğunda, beyazlatma ve görüntüleme işlemini başlatın. Görüntüleme tamamlandığında, yeni bir görüş alanına geçin ve bu işlemi tekrarlayın. Her lam için dört ila beş görüş alanı görüntüleyin.Fotobezme veya flip sırasında floresan kaybını ölçmek için bir sonraki adıma geçin. Programa, 10 dakika boyunca her 30 saniyede bir 10 saniye boyunca bir dizi bezme ve bezme sonrası görüntüleme yapmasını ve ardından yeni bir görüş alanına geçmesini komut edin. Bir OSER yapısına karşılık gelen bir ROI çizin ve analiz için önceki adımlarda olduğu gibi bezmeyi ve yakalamayı başlatın.FRAP ve FLIP görüntülerini Image J yazılımına aktarın. İlk olarak, FRAP deneyleri için beyazlatılmış ROI'nin zaman içindeki floresans geri kazanımını değerlendirin ve ardından hücrelerin dışında bir alan seçerek arka plan floresansını belirleyip zamanla ortalama yoğunluğunu ölçün. Daha sonra, arka plan sinyalini ROI'lerin floresan yoğunluklarından çıkarın.Verileri, zaman içinde sabit kalması gereken beyazlatılmış hücrenin toplam floresansı ile normalize edin. Ardından, F post foto-beyazlatma sonrası floresan sinyali, F rec beyazlatma sonrası ulaşılan maksimum floresans geri kazanım değeri, T kayıt alınan son zaman ve tau kayıt alınan orta zaman olmak üzere burada gösterilen mono-eksponansiyel denklemi uygulayın.Flip deneylerinin analizi için, ağartılmış OSER'in dışına, tüm hücreyi kapsayacak şekilde bir ROI çizin ve floresans yoğunluğunu zamanla ölçün. Frack deneylerinde olduğu gibi, hücrelerin dışındaki bir alanı kullanarak arka planı çıkarın. Görüntüleme işleminin kendisinin neden olduğu herhangi bir floresans azalmasını düzeltmek için verileri, ağartılmamış bir hücre üzerine çizilen bir ROI'nin floresans seviyelerine göre normalize edin.Son olarak, sonuçları GraphPad Prism veya benzeri bir yazılım kullanarak grafikleştirin. Elektron mikroskopisi için numunelerin hazırlanmasında kullanılan reaktiflerin çoğu toksiktir. Bu nedenle, aşağıdaki adımlar laboratuvar önlüğü ve eldiven giyilerek, çeker ocak altında çalışılarak gerçekleştirilmelidir.Optik mikroskopi için Petri kabındaki lamet kaldırıldıktan sonra, kabın tabanında monokatman olarak büyümüş olan kalan hücreleri oda sıcaklığında 10 dakika boyunca fikse edin. Ardından, bir Teflon kazıyıcı kullanarak hücreleri ayırın ve 1,5 mililitrelik mikro santrifüj tüplerine aktarın; hücreleri 9.000 ×g'de 10 dakika santrifüj ederek çöktürün. Süpernatantı uzaklaştırın, taze fiksatör ekleyin ve dört °C'de gece boyunca bekletin.Past pipetle fiksatörü nazikçe aspire ederek ve Cate tamponu ekleyerek pelletleri yıkayın. Pelletin bozulmasını önlemek için, tamponu eklerken tüpün yan duvarından süzülmesini sağlayın. Yıkama solüsyonunu aspire edin ve hücreleri, oda sıcaklığında bir saat boyunca Cate Tamponu içindeki %1 Osmiyum tetroksit çözeltisine ekleyerek son fiksasyonu gerçekleştirin.Ardından, Milli Q suyu ile durulayın ve mikro santrifüj tüpüne doğrudan distile su içinde %1 urinal asetat ekleyin. Boyayı açmak için 20 dakika ile bir saat arası bekletin, örnekleri %70, %80, %90, %100 ve tekrar %100'lük artan etanol serisinde her biri 10 dakika olacak şekilde dehidre edin. Daha sonra pelletleri her seferinde 15 dakika boyunca iki kez propilen oksit ile yıkayın.Propilen oksit ile propilen oksit ve eponun bir bir oranındaki karışımını yer değiştirerek örnekleri infiltre edin; en az iki saat ve gerekirse gece boyunca inkübe edin. Ardından, örnekleri gömmek için hücre peleti fragmanlarını önceden epon epoksi reçine ile doldurulmuş gömme kalıplarına yerleştirin ve 60 °C'de en az 24 saat boyunca kürleyin. Ertesi gün, reçine bloğunu 45 derecelik elmas bıçakla donatılmış bir ultra mikrotoma monte edin.Bir düzeltme bıçağı kullanarak, gömülü örneğin bulunmadığı kısımları uzaklaştırmak için reçine bloklarını manuel olarak kesin. Ardından ultra mikrotom kullanarak 60 ila 70 nanometre kalınlığında kesitler elde edin. Kesitleri boyamak için 300 mesh bakır gridler üzerine toplayın.Izgaraları, uranil asetatın doygun çözeltisinden oluşan 30 µL'lik damlaların üzerine yerleştirin ve 20 dakika inkübe edin. Ardından üç kez milli Q su ile durulayın ve ızgaraları tekrar küçük kurşun sitrat damlaları üzerinde yedi dakika inkübe edin. İnkübasyonun ardından, ızgaraları milli Q suyuna daldırarak iyice yıkayın ve oda sıcaklığında kurumaya bırakın.Boyanmış ızgaraları bir transmisyon elektron mikroskobu kullanarak gözlemleyin ve düzenli, düz endoplazmik retikulumdaki D-E-G-F-P ER'nin lateral difüzyonunu incelemek için 6.000 ile 39.000 x arasında değişen son büyütmede, alt kısma monte edilmiş bir CCD kamera ile görüntüler yakalayın. Geçici olarak transfekte edilmiş, üç lamelden alınan yedi hücre, bu videoda açıklandığı şekilde FRAP ile analiz edildi; bu zaman atlamalı dizide gösterildiği gibi, iki OSER yapısı ağartıldı ve floresan geri kazanımı zaman içinde kaydedildi. Geri kazanma yarı ömrünü belirlemek ve D-E-G-F-P-E-R'nin mobil fraksiyonunu nicelleştirmek için, ağartmadan bir dakika sonra belirgin bir floresan geri kazanımı ve dört dakika sonra sinyalde daha fazla artış tespit edildi.Yakalanan görüntüler, burada görülebileceği üzere bu videoda açıklandığı şekilde analiz edildi. Ağartılan bölgenin floresan yoğunluğu zamanla artarak, floresan proteinin agregatlar içinde yüksek hareketliliğe sahip olduğunu göstermiştir. Endoplazmik retikulumun farklı alt alanları arasındaki sürekliliği incelemek için, bu zaman atlamalı dizide gösterildiği gibi flip deneyleri gerçekleştirilmiştir.Sarı okla belirtilen bir OSER'in sürekli ağartılması, ER'nin geri kalanında ve aynı hücre içindeki diğer OSER yapılarında floresan sinyalinin kademeli olarak azalmasına neden olur. Kırmızı ok, floresan sinyalinin zaman içinde sabit kaldığı ağartılmamış bir hücrenin bir kısmını göstermektedir. Bu verilerin kantitatif analizi, retiküler ER'nin kademeli ve hızlı bir şekilde boşaldığını ortaya koymuş ve agregatların ER'nin geri kalanıyla fiziksel olarak bağlantılı olduğunu kanıtlamıştır. Bu agregatların ince mimarisini incelemek için, yüksek seviyelerde D-E-G-F-P ER eksprese eden hücreler bir transmisyon elektron mikroskobu kullanılarak gözlemlenmiştir.Bu mikrograf, membran agregatı içeren hücre sitoplazmasının düşük büyütmeli bir görünümünü göstermektedir. Agregat, yığınlanmış cyi ve dalgalı sinüzoidal membranlardan oluşmaktadır. Burada görüldüğü üzere.Mitokondrilerin OSER yapıları etrafında kümelendiği görülebilirken, ok başlarıyla belirtilen ribozomlar yalnızca en dıştaki cyi membranlarını süslemektedir. Membranlar arasındaki 11 nanometre kalınlığındaki elektron yoğun boşluğun sitoplazma ile sürekli olduğunu unutmayın. Bir OS ER; ince kesitlerde görünümleri sürekli veya parçalı olabilen, yassılaşmış ER cyi yığınları olan lameller ER, veziküller ve burada gösterildiği gibi yığının en dıştaki cisterninden tomurcuklanan yapılar tarafından oluşturulabilir.Birlikte değerlendirildiğinde bu veriler, D-E-G-F-P ER ile transfekte edilmiş kültür hücrelerinde gözlemlenen floresan agregatların, kendilerini belirgin 3D geometriler şeklinde mekansal olarak organize eden düz ve yassılaşmış ER bölgeleri temsil ettiğini göstermektedir. Bu prosedür uygulanırken, floresan geri kazanımını ve dolayısıyla protein mobilite analizini değiştirebilecek olan doymuş pikseller olmadan tüm görüntülerin alınması gerektiğini hatırlamak önemlidir. Görüntü alımı sırasında ağarma nedeniyle oluşan floresan yoğunluk varyasyonlarını veya odak düzlemindeki küçük değişiklikleri göz önünde bulundurmak için, ağartılan ilgi bölgesindeki floresan sinyalini her zaman aynı hücrenin toplam floresanına göre normalize ettiğinizden emin olun.

visualization-of-endoplasmic-reticulum-subdomains-in-cultured-cells

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Burada memeli doku kültürü hücrelerinde endoplazmik retikulum ilişkili mRNA'ların görselleştirmek için bir yöntem açıklanmaktadır. Bu teknik, floresan, ardından sitoplazmik boşaltılmaya digitonin ile birlikte plazma zarının geçirgenliği seçici...

Memeli hücrelerinde endoplazmik retikulum lokalize mRNA&#39;ların görselleştirilmesi

Klatrin aracılı endositoz, hızlı ve oldukça dinamik bir süreç, sinyal reseptörleri de dahil olmak üzere birçok proteini içselleştirir. Burada açıklanan protokol, bireysel endositik olayların kinetiğini doğrudan görselleştirir. Bu, endositik makinenin çekirdek üyelerinin birbirleriyle nasıl koordine olduğunu ve protein yükünün bu süreci nasıl etkilediğini anlamak için gereklidir.

TIRF Mikroskopi ile Tek olay ebatları da G protein-bağlanmış alıcılar üzerinden Klatrin dolayımlı endositoz görselleştirme

Burada, sabit hücrelerde endoplazmik retikulum ve mitokondri arasındaki endojen etkileşimleri görselleştirmek ve yüksek hassasiyet ile ölçmek için bir prosedür açıklanmaktadır. Protokol, bir mitokondri ilişkili zar arayüzünde inositol 1,4,5-trifosfat reseptörü / glukoz-regüle proteini 75 / voltaj bağımlı anyon kanalı / siklofilin D kompleksi hedefleyen in situ yakınlık ligasyonu deneyinde optimize özellikleri.

Endoplazmik retikulum ve mitokondri Etkileşimleri Çalışma ile<em&gt; In Situ</em&gt; Proximity ligasyon Testi Sabit Hücrelerde

pH'ya duyarlı bir florofor ile bir membran proteinin hücre dışı alanını Etiketleme, superecliptic pHluorin (SEP), hücre içi lokalizasyonu, sentezleme ve trafik saptanmasına olanak sağlamaktadır. Görüntüleme toplam iç yansıma floresan mikroskobu (TIRFM) proteinleri Eylül-etiketli periferal ER ve plazma membranı protein seviyelerinin ölçümü sağlar.

pHluorin etiketli Reseptör kullanarak Subselüler Yerelleşme ve Ticareti Monitör

Genetik modifikasyondan sonra tüm hücrelerde mitokondri ve endoplazmik retiplinin dağılımını incelemek için bir protokol sunuyoruz, askorbat peroksidaz 2 ve horserpu peroksidaz boyama da dahil olmak üzere bağıntılı ışık ve hacim Elektron Mikroskopisi kullanılarak aynı bölümde hedef geni olan ve olmayan hücrelerin seri bölümlemesi ve elektron mikroskobu ile seri görüntüleme.

Göreli ışık ve hacim elektron mikroskobu ile mitokondri ve endoplazmik reticulum görüntüleme

Bu protokol, apex2 etiketli membran proteininin en iyi korunmuş hücre ultrayapısı içinde iletim elektron mikroskobu ile lokalize edilebildiği kriyoAPEX yöntemini açıklar.

Ultrayapısal Olarak Korunmuş Hücrelerde Membran Protein Lokalizasyonunun Elektron Mikroskobu Analizi için CryoAPEX Yöntemi

Karaciğerden hepatositlerdeki organeller veya diğer dokulardaki hücreler arasındaki membran temas bölgelerinin üç boyutlu ayrıntılarını elde etmek için basit ve kapsamlı bir protokoldür.

Hepatositlerde Organeller Arası Temas Bölgelerinin Seri Kesitli Elektron Mikroskobu Kullanılarak Üç Boyutlu Karakterizasyonu

Membran temas bölgelerini (MCS'ler) incelemek için yeni yaklaşımlara duyulan ihtiyaç, bu hücresel yapıları ve bileşenlerini incelemeye olan ilginin artması nedeniyle artmıştır. Burada, MCS'lerde bulunan organel içi ve organeller arası protein komplekslerini tanımlamak ve ölçmek için önceden mevcut olan mikroskopi teknolojilerini entegre eden bir protokol sunuyoruz.

ER-Mitokondri Temas Bölgelerinde Endojen Organel İçi Protein Etkileşimlerinin Yakınlık Ligasyon Testleri ile Görselleştirilmesi ve Miktarının Belirlenmesi

Kriyo-STEM tomografisi, bozulmamış hücrelerin organellerini gömme, kesitleme veya diğer invaziv preparatlar olmadan görselleştirmek için bir araç sağlar. Elde edilen 3D çözünürlük şu anda birkaç nanometre aralığında, birkaç mikrometrelik bir görüş alanı ve 1 μm mertebesinde erişilebilir bir kalınlık ile.

Kriyo-STEM Tomografi ile Organellerin In Situ Görüntülenmesi

Kültür hücre sayısını belirleyen kültür koşullarının standardizasyonu ve doğru kantitatif deneyler önemlidir. Bu video, hücreleri bir hemasitometre kullanarak nasıl sayılır göstermektedir.

Doku ve Hücre Sayım ve Canlılık Belirlenmesi

Öğrenin, kültür hücrelerinde endoplazmik retikulumun alt alanlarını canlı hücre konfokal görüntüleme ve elektron mikroskobisi kullanarak nasıl görselleştireceğinizi. Bu yöntem protein hareketliliği ve hücresel mimari üzerine temel araştırmalar için değerlidir.

Kültür Hücrelerinin retikulum Subdomain'ler Görselleştirme

Daha fazla video keşfet