Yaban Hayatından Helmint Toplama ve Tanımlama

Bu prosedürün genel amacı, vahşi yaşamdan kaskları toplamak, korumak ve tanımlamaktır. Bu, vahşi bir hayvan olan ilk nekropsi ile gerçekleştirilir. Daha sonra kasklar farklı organlardan toplanır, daha sonra tanımlamak için çeşitli teknikler kullanılarak kasklar korunur.

Son olarak, kasklar temizlenir, boyanır ve monte edilir ve türler tanımlanır. Sonuç olarak, türlerin tanımlanmasına büyük ölçüde yardımcı olabilecek temizleme ve/veya boyama teknikleri yoluyla belirli kask yapılarını gösteren sonuçlar elde edilebilir. Bu yöntem memelilerden, kuşlardan, sürüngenlerden ve amfibilerden kaskların tanımlanması için uygulanabilir.

Balıklar gibi diğer organizmalar için de uygulanabilir. Başlamak için hayvanı düz bir yüzeye yerleştirin ve kulaklar, ağız boşluğu ve gözler dahil olmak üzere tüm dış açıklıkları nematodlar, CSE'ler, ayak parmakları ve trematodların varlığı açısından incelemek için bir büyüteç kullanın. Keskin bir bıçak veya bıçak ve bir çift diseksiyon forseps kullanarak.

Herhangi bir organı yırtmamaya dikkat ederek karın boşluğu üzerinde bir kesi yapın. Daha sonra kemik kesiciler veya gerekirse küçük bir el testeresi ile göğüs boşluğunu açın. Her iki boşluğu da fal, yuvarlak kurt ve büyük trematodlar açısından inceleyin.

Daha sonra muayene için yemek borusunun başlangıcına yakın bir ip ve kalın bağırsağın sonuna bir tane daha bağlayın. Stereo mikroskop altında, kalbi ve ana kan damarlarını, trakeayı ve akciğerleri ayrı Petri kaplarına ayırın. Karaciğer, safra kesesi ve kanal pankreasını, dalak, böbrekleri ve idrar kesesini çıkarın ve stereo mikroskop altında inceleyin.

Ardından tüm sindirim sistemini çıkarın ve her bölümü bir cam tabağa koyun. Organlar çıkarıldıktan sonra, vücut boşluğunu yıkamak için %0,9 tuzlu su ile doldurulmuş bir hortum veya fışkırtma şişesi kullanın ve 106 mikrometre gözenekli bir elekten süzülmesine izin verin. Elek içeriğini bir Petri kabına geri yıkayın ve içindekileri stereo mikroskop altında inceleyin Fal solucanları veya kan trematodları için makas kullanarak, her bir sindirim sistemi bölümünü açın.

Mukozayı kazıyın ve büyük parazitlerin varlığı açısından dikkatlice inceleyin. Encanto cephas'ın psiki'leri genellikle bağırsak duvarına derinden gömülüdür. Bu nedenle, gerekirse, onları dokudan dikkatlice çıkarmak için forseps ve / veya küçük makas kullanın.

Her açık bölümü akan suyun altına yerleştirin ve içindekileri 106 mikrometrelik bir elek içinde yıkayın. Daha sonra kalbi ve ana kan damarlarını, soluk borusunu ve idrar ve safra kesesini açın ve içindekileri inceleyin Aynı şekilde, karaciğer, akciğerler, böbrek, dalak ve pankreas gibi katı organları dilimlemek ve ayırmak için keskin bir bıçak ve forseps kullanın ve içindekileri yıkayın ve inceleyin. Parazit türlerini kaydedin.

Her türün sayısını ve bulundukları organları buldu. Şişeleri veya kavanozları, daha sonraki genetik çalışmalar için kaskları korumak için kurşun kalemle etiketlenmiş düz bir indeks kartının küçük bir parçasının içine yerleştirerek etiketleyin. İlk önce onları doğrudan etanolün içine yerleştirin.

Numuneyi bir ila birkaç gün sabitledikten sonra, uzun süreli saklama için% 70 etanol ile doldurulmuş beş mililitrelik bir cam şişeye aktarın. Trematodları korumak için, canlı örnekleri bir cam mikroskoba yerleştirin, bir damla tuzlu su içine kaydırın, bir cam örtü fişi uygulayın ve salini kaynatmadan slaytı bir alevin üzerinden geçirin. Ardından slaytı alkol, formin, asetik asit veya FA içeren bir Petri kabına bırakın ve kapağın kaymasına izin verin.

Ölü trematodları, uzun süreli saklama için% 70 etanol ile doldurulmuş bir kavanoza aktarmadan önce 48 saat boyunca bir FA veya% 10 tamponlu formin içinde sabitleyin. Estoları sabitlemek için, canlı hayvanları bir Petri kabında üzerlerine kaynar suya yakın dökerek rahatlatın ve ardından uzun süreli saklama için %70 etanol ile doldurulmuş bir kavanoza aktarın. Canlı encanto cephas'ı, hortum tamamen önlenene kadar bir ila birkaç saat buzdolabında musluk suyu dolu bir Petri kabına koyarak rahatlatın.

Uzun süreli saklama için bunları %70 etanol veya FA ile doldurulmuş bir kavanoza aktarın. Küçük veya kırılgan nematodları ve sıcak% 70 etanolü öldürün ve% 70 etanol ile% 5 gliserin ile doldurulmuş bir kavanozda saklayın. Orta ila büyük nematodlar.

Bunları soğuk buzlu asetik aside koyun ve 15 dakika sonra %70 etanol ve %5 gliserin ile doldurulmuş bir kavanoza aktarın. Hematin ve alkolü çözerek ve amonyum alüminyum sülfatı suda aşırı ısınmada çözerek Harris Hematin'i hazırlayın. Her iki çözeltiyi de karıştırın ve kaynatın.

Sonra sodyum iyodat ekleyin ve iki ila üç dakika kaynatın. Çözelti soğutulduğunda, çözeltiyi filtrelemek için 5 41 filtre kağıdı kullanın, Trematodes estos'u açık bir şekilde lekeleyin ve numuneleri alıkoymak için gece boyunca Harris Hematin veya semicon Carmine'de Cephas Place'i boşaltın. Organlar görünene kadar% 70 asit etanol içine koyun.

Lekelenmeyi durdurmak için, numuneleri en az 30 dakika boyunca% 70 bazik etanole aktarın. Numuneleri bir etanol serisinde kurutun ve numuneleri bir mikroskop lamına monte etmek için temizlemek için ksilen veya metil salisilat kullanın, bir damla Canada Bossum ve bir kapak fişi ekleyin. Büyük nematodlar ve encanto Cephas için 15 ila 30 dakika boyunca bir kapak kayması, mikroskop lamı üzerindeki lakt fenol yuvalarına yerleştirerek ve bir kapak kayma ile kaplayarak küçük ila orta boy nematodları ve encanto cephas'ı gece boyunca kurumaya bırakın.

60 dakikaya kadar% 80 fenol içine koyun. Culex atos'u incelemek için daha küçük yapıların temizlenmesini doğrulamak için ışık mikroskobu altında inceleyin. Kesin ve üzerine lakto fenol miktarı koyun.

Mikroskop lamı üzerinde. Gül yıldız kancalarını ölçmeyi ve saymayı sağlamak için culex'i ezmek için bir kapak fişi kullanın. Ön ucunu kesin ve bir mikroskopta Foss'a monte edin.

Kalıcı montaj için birkaç damla lakt fenol altında veya bir gliserin jölesi içinde kaydırın. Ağız kısımlarını ışık mikroskobu altında gözlemleyin. Büyük nematodların kuyruklarını kestikten ve lakto fenole monte ettikten sonra, bu videoda açıklanan yöntemleri kullanarak erkeklerin ventral paoli ve spic morfolojisini ışık mikroskobu altında gözlemleyin.

Montana, Missoula County'de maske shrew Sox senaryolarının kaskları hakkında bir anket yapıldı. 2007 ve 2011 yılları arasında. Tuzak tuzaklarından toplam 56 sivri faresi toplandı ve ölümden sonraki iki saat içinde incelendi.

Genel enfeksiyon prevalansı %96 idi; Sadece iki farede parazit yoktu. Dokuz estos türü ve altı nematod türü dahil olmak üzere 15 tür kask tanımlandı. Esto cinsi staphylo yetkililerinin bir türü daha önce tanımlanmamıştı.

Enfekte olduğu tespit edilen organlar arasında ince bağırsak, mide, akciğerler ve idrar kesesi vardı. Toplam enfeksiyon yoğunluğu, enfekte konakçı başına yedi ila 234 solucan arasında değişmektedir, tür zenginliği veya enfekte konakçı başına kask türü sayısı bir ila sekiz arasında değişmektedir ve ortalama 4.1 Bir kez ustalaşıldıktan sonra. Bu teknik, sincap gibi küçük bir memeli üzerinde bir ila iki R ve rakun gibi daha büyük bir memeli üzerinde dört ila beş Rs içinde yapılabilir.

Bu videoyu izledikten sonra, vahşi yaşamdan kaskların nasıl toplanacağı, korunacağı ve tanımlanacağı konusunda çok iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.