Name: Cilt Tip I Kolajen hazırlanması için geliştirilmiş bir yöntem (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-01-21T22:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 17 s
Description: Keşfedin, deri örneklerinden tip I kolajen izolasyonu için hızlı bir yöntem. Bu teknik, geleneksel yöntemlere göre süreyi 10 günden 3 saate indirerek biyokimya ve doku mühendisliği araştırmalarında verimliliği artırır.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Ulusal Sağlık Enstitüleri (DBC için HL068915), (CAP) Thrasher Araştırma Fonundan Yeni Araştırmacı Ödülü bir araştırma bursuyla, bir Grant-in-Aid (DBC için 12GRNT11910008) Amerikan Kalp Derneği tarafından desteklenen , Çocuk Kalp Vakfı (DBC için), ve Boston Çocuk Hastanesi Kalp İletim Fonu, Ryan Aile Endowment ve David Pullman tarafından yapılan bağışlardan bir araştırma hibe.

Burada kuzu derisinden COL1 ve izolasyonu gösterecektir. Yazılmış olduğu gibi, bu protokol de başarıyla tavşan ve insan cilt Süt1 izole etmek için kullanılabilir. 1.. Dermal örnek hazırlayın <ol><li> Kullanımdan önce 4 ° C&#39;ye bütün reaktifler dengelenmesi. </li><li> Buz dH 2 O dermal örneği (25-50 g) durulayın ve tüy dökücü krem ile herhangi yün, kürk, ya da tüylerden. </li><li> Bağ dokusu ve yağ numune tozunu kazımak için bir tek kenar jilet kullanın. </li><li> Buz dH 2 O&#39;da örnek durulayın </li><li> Tek bir kenar jilet ile 1 cm x 1 cm parçalar halinde deri örneği dilimleyin. </li></ol> 2. Nonkollagenöz Çözündürülmüş Malzeme kaldır <ol><li> Numune, 50 ml konik tüp başına 5 g tartılır ve buz soğukluğundaki 0,5 M sodyum asetat, 30 ml. </li><li> Tezgah üstü homojenizatör içinde bir 50 ml tüp adaptörü ile 6 m / saniye ayarında 1 dakika boyunca tüpleri karıştırın. </li><li> Sup atın7 sodyum asetat yıkama döngüleri toplam ernatant ve tekrarlayın. </li><li> Buz soğukluğunda dH 2 O örnek yıkayın ve kalıntı sodyum asetat giderilmiş, bir kez karıştırın. </li><li> Fazla sıvının çıkması ve daha sonra yeni bir 50 mL konik tüp aktarmak için tüpün kenarına karşı örnek sıkıştırmak için bir spatula kullanın. </li></ol> 3. Kollajen Ekstraksiyon yazın <ol><li> Örnek sıkıştırma ve her bir yıkamadan sonra süpernatant atarak tezgah üstü homojenleştirici içinde 6 m / sn &#39;de 1 dakika boyunca ml / g 2 iki kez örnek yıkayın 0.075 M sodyum sitrat tampon maddesi. </li><li> Numuneye 0.075 M sodyum sitrat tamponu taze bir 2 ml / g bir kısım ekleyin. </li><li> Her çevrim arasındaki tampon çıkarmadan 6 sıralı 1 dk, ajitasyon 6 m / sn tezgah üstü homojenleştirici mix çevrimi gerçekleştirin. </li><li> Bir toplama tüpüne kalın, berrak süpernatant aktarın. </li><li> Numuneye bir ml / g 1 ek 0.075 M sodyum sitrat tamponu ilave edin ve bir final tezgah üstü homojenleştirici agita yerinetion çevrimi. </li><li> Bir toplama tüpüne bu son süpernatant ekleyin. </li><li> 4 ° C&#39;de 10 dakika boyunca 3,200 x g de santrifüj toplama tüpü </li><li> 100.000 molekül ağırlığına sahip üst bölmesine süpernatant aktarın santrifügal filtre cihazı kesti. </li><li> 4 ° C&#39;de 30 dakika boyunca 3200 x g&#39;de santrifüje </li><li> 4 ° C &#39;de bir temiz konik tüp ve saklamak için, üst bölmeden saflaştırılmış Süt1 aktarın </li></ol>

<ol><li>Nageotte, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Coagulation+fibrillaire+in+vitro+du+collag%C3%A8ne+dissous+dans+un+acide+dilu%C3%A9%5BTitle%5D)+AND+%22CR+hebd.+s%C3%A9ances+Acad.+Sei%22%5BJournal%5D)">Coagulation fibrillaire in vitro du collagène dissous dans un acide dilué.</a> CR hebd. séances Acad. Sei. 184, 115 (1927).</li>
<li>Schmitt, F. O., Hall, C. E., Jakus, M. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+microscope+investigation+of+the+structure+of+collagen%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Cell+Comp.+Physiol%22%5BJournal%5D)">Electron microscope investigation of the structure of collagen.</a> J. Cell Comp. Physiol. 20, 11-33 (1942).</li>
<li>Choi, Y. H., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cardiac+conduction+through+engineered+tissue%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Pathol%22%5BJournal%5D)">Cardiac conduction through engineered tissue.</a> Am. J. Pathol. 169, 72-85 (2006).</li>
<li>Pacak, C. A., Cowan, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Fabrication+of+myogenic+engineered+tissue+constructs%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Fabrication of myogenic engineered tissue constructs.</a> J. Vis. Exp. (27), (2009).</li>
<li>Cliche, S., Amiot, J., Avezard, C., Gariepy, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Extraction+and+characterization+of+collagen+with+or+without+telopeptides+from+chicken+skin%5BTitle%5D)+AND+%22Poultry+Sci%22%5BJournal%5D)">Extraction and characterization of collagen with or without telopeptides from chicken skin.</a> Poultry Sci. 82, 503-509 (2003).</li>
<li>Rajan, N., Habermehl, J., Cote, M. F., Doillon, C. J., Mantovani, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+ready-to-use%2C+storable+and+reconstituted+type+I+collagen+from+rat+tail+tendon+for+tissue+engineering+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Preparation of ready-to-use, storable and reconstituted type I collagen from rat tail tendon for tissue engineering applications.</a> Nat. Protoc. 1, 2753-2758 (2006).</li>
<li>Seifter, S., Gallop, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+and+properties+of+soluble+collagens%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Preparation and properties of soluble collagens.</a> Methods in Enzymology. Colowick, S., Kaplan, N. , Academic Press. NY. (1963).</li>
<li>Pacak, C. A., Powers, J. M., Cowan, D. B. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ultrarapid+purification+of+collagen+type+I+for+tissue+engineering+applications%5BTitle%5D)+AND+%22Tissue+Eng.+Part+C+Methods%22%5BJournal%5D)">Ultrarapid purification of collagen type I for tissue engineering applications.</a> Tissue Eng. Part C Methods. 17, 879-885 (2011).</li>
<li>Ohan, M. P., Dunn, M. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Glucose+stabilizes+collagen+sterilized+with+gamma+irradiation%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+A%22%5BJournal%5D)">Glucose stabilizes collagen sterilized with gamma irradiation.</a> J. Biomed. Mater. Res. A. 67, 1188-1195 (2003).</li>
<li>Tyan, Y. C., Liao, J. D., Lin, S. P., Chen, C. C. The study of the sterilization effect of gamma ray irradiation of immobilized collagen polypropylene nonwoven fabric surfaces. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aTyan%2C+YC+%22J.+Biomed.+Mater.+Res.+A%22">J. Biomed. Mater. Res. A</a>. 67, 1033-1043 (2003).</li>
<li>Ber, S., Torun Kose, G., Hasirci, V. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bone+tissue+engineering+on+patterned+collagen+films%3A+an+in+vitro+study%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">Bone tissue engineering on patterned collagen films: an in vitro study.</a> Biomaterials. 26, 1977-1986 (2005).</li>
<li>Liu, Y., Sun, S., Singha, S., Cho, M. R., Gordon, R. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3-D+femtosecond+laser+patterning+of+collagen+for+directed+cell+attachment%5BTitle%5D)+AND+%22Biomaterials%22%5BJournal%5D)">3-D femtosecond laser patterning of collagen for directed cell attachment.</a> Biomaterials. 26, 4597-4605 (2005).</li>
<li>Thakar, R. G., Ho, F., Huang, N. F., Liepmann, D., Li, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Regulation+of+vascular+smooth+muscle+cells+by+micropatterning%5BTitle%5D)+AND+%22Biochem.+Biophys.+Res.+Comm%22%5BJournal%5D)">Regulation of vascular smooth muscle cells by micropatterning.</a> Biochem. Biophys. Res. Comm. 307, 883-890 (2003).</li>
<li>Leighton, J., Justh, G., Esper, M., Kronenthal, R. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Collagen-coated+cellulose+sponge%3A+three+dimensional+matrix+for+tissue+culture+of+Walker+tumor+256%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Collagen-coated cellulose sponge: three dimensional matrix for tissue culture of Walker tumor 256.</a> Science. 155, 1259-1261 (1967).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa etmek hiçbir rakip mali çıkarları var.

Bu yöntemin önemli bir öğesi, fazla sıvının çıkması için dermal numunenin tekrar etkili sıkıştırma. Bu örnek sıkıştırılmasıyla aşamasında 2,5 mümkün olduğu kadar, sodyum asetatın ayrılması için çok önemlidir. Bu tüpün yanına karşı cildi sıkıştırmak için bir ıspatula ile birlikte, bir tülbent de kullanılabilir, bu tüpten numune çıkarılmasını gerektirir ve bu adımları gerçekleştirmek için gereken süreyi uzatır olsa da. Benzer şekilde, sodyum sitrat hacmi daha sonraki ekstre etme adımda doğru olduğunu, aşama 3.1 &#39;de ör...

On yıllardır, araştırmacılar ve ticari satıcılar kullanılabilir düzenlenmiş col1 fibrillerin bir matrisin yeniden süspansiyon haline getirilmesi ile sonuçlanan nötralizasyonu ardından basit bir asit ekstraksiyon protokolü, bir varyasyonunu kullanılarak deri ve tendon dokusu da dahil olmak üzere bir çeşit kaynaklardan gelen çözündürülmüş Süt1 izole var biyomedikal uygulamalarda 1-4 çok sayıda için. COL1 için klinik uygulamalar birçok örnek olsa da, bu proteinin hazırlık 5-7 gerçekleştirmek için gün veya hafta alarak uzun ekstraksiyonlanm gerektirdiğinden, bu birkaç otolog kaynaklı col1 kullanır. Sonuç olarak, araştırmacılar, araştırma ve hekimler, genellikle, örneğin, sıçan, sığır, domuz veya insan olmayan altderinin gibi dokuları kullanılarak veya kadavra derisi kullanılarak kaldırılır veya sünnet izleyerek hazırlanır COL1 pahalı, ticari preparatları kullanın. Rejeneratif uygulamalar için, yetenekleri ile ilgili olarak bu ürünler, sergi değişkenlik çok katı oluşturulması içinmatrisler veya hücre eki ve büyümeyi destekleme yeteneğine doku yapıları. Sonuç olarak, hızlı erişilebilir ve bol otolog doku kaynaklarından Süt1 ayıklamak için tasarlanmış yeni bir standart yöntem için ayrı bir ihtiyaç vardır. Bu tür bir yöntem col1 ilgi hayvan modeli çıkarılır ve kollajen bazlı iskeleler üzerine monte tasarlanmış dokuların klinik öncesi test edilmesi için kullanılabilecek bir araştırma ortamında zaman ve paradan tasarruf sağlayacaktır. Aynı zamanda, klinikte bir hızla izole, otolog kaynaklı Süt1 kullanma seçeneğine sahip aksi allojenik veya ksenogeneik hazırlıkları alacak hastalar için genel güvenliği artıracak. Bir autogeneic hazırlık alan hastalar için, bu akıcı yöntem büyük ölçüde biyopsi toplama ve kolajen uygulama arasındaki süreyi azaltacaktır. Bu nedenlerden dolayı, yüksek hızlı ag kullanarak köklü bir col1 izolasyon ve saflaştırma yöntemi geliştirmek için arananrehabilitasyonu amaçlayan ve boyut dışlama santrifüj. Bu yöntem birçok laboratuvarlarda bulunan standart tamponlar ve ekipman kullanarak gerçekleştirmek için basit. Yüksek hızda çalkalama kullanılarak, protokolümüz az 3 saat 8 için yaklaşık 10 gün arasında çözülebilir, dermal Süt1 izole etmek için gerekli olan zamanı azaltır. Önemli olarak, bu metod prosedürleri tek bir kümesi esnasında hastalar için otolog türetilmiş Süt1 hazırlamak için klinik ortamda gerçekleştirilebilir.

<table><tbody><tr><td>FastPrep-24 Sistemi</td><td>MP Biyomedikal</td><td>116004500</td><td></td></tr><tr><td>Santrifüj</td><td>Beckman</td><td>J6-MI</td><td>3.200 x g'da 50 ml konik tüpleri yerleştirmek için salıncak kova rotoru.</td></tr></tbody></table>

cilt tip i kolajen hazırlanması için geliştirilmiş bir yöntem

An Improved Method for the Preparation of Type I Collagen From Skin

Çözülebilir kolajen tip 1 (col1) hücre kültürleri için bir yapışkan tabaka olarak ve rejeneratif uygulamalar için hücresel bir yapı iskelesi olarak yaygın bir biçimde kullanılmaktadır. Klinik olarak, bu proteinin yaygın kozmetik cerrahi, dermal enjeksiyonlar, kemik grefti ve rekonstrüktif cerrahi için kullanılır. Bu işlemler için COL1 ve kaynakları inflamasyon ve ret potansiyeli yanı sıra ksenobiyotiksiz hastalık bulaşmasını arttırır, genellikle insan kaynaklı değildir. Bu görüş, verimli ve hızlı bir otolog-türevi dokuların sınırlı miktarlarda ikinci Süt1 saflaştırılması için bir yöntem olup, bu sorunların çoğu aşmak olur, ancak, standart ayırma protokoller uzun ve genellikle kollajen dokularının büyük miktarlarda gerektirir. Burada, en az 3 saat ila yaklaşık 10 gün arasında bu proteinin izole edilmesi ve saflaştırılması için gerekli olan zamanı azaltır etkili bir col1 çıkarma yöntemi göstermektedir. Biz birçok cerrahi işlemler sırasında, çünkü onun durumu bizim doku kaynağı olarak dermis seçti. Tonun yöntemi altderinin, az miktarda yüksek ölçüde saf, çözünebilir Süt1 elde etmek için güçlü çalkalama ve santrifüj filtre ile birlikte geleneksel ekstre etme tamponları kullanır. Kısaca, dermal biyopsiler yağ, bağ dokusu ve saç çıkardıktan sonra buz gibi soğuk dH 2 O iyice yıkanır. Deri örnekleri, 0.5 M sodyum asetat ve yüksek hızlı bir tezgah üstü homojenizörü kullanılarak nonkollagenöz protein ve polisakaritlerin kaldırılır. Artık katı maddelerden kollajen, daha sonra homojenleştirici kullanılarak bir 0.075 M sodyum sitrat tampon maddesi ile ekstre edilir. Bu ekstreler karşılaştırılabilir ya da üstün ticari ürünler için kalite ya da geleneksel prosedürler kullanılarak elde edilmiş olan col1 preparatları elde 100,000 MW kesme santrifüj filtresi kullanılarak saflaştırılır. Bu yöntem, araştırma ve klinik uygulamalarda çok sayıda için otolog kaynaklı COL1 kullanımını kolaylaştıracak tahmin.

Bu col1 izolasyon protokol tamamlanması için yaklaşık 2 saat 15 dakika gerektirir. Şekil 1, bu prosedürdeki önemli adımlar şematik bir diyagramını göstermektedir. Örnek hazırlama ve yüksek hızlı ajitasyon 7 döngülerini gerçekleştirmek ve sodyum asetat ile durulama ürünleri, yaklaşık 35 dakika (Şekil 1A-C) alır. Bir ajitasyon Sahne ve dH 2 O ile durulama yaklaşık 5 dk (Şekil 1D ve 1E) alır. Sodyum sitrat eklemek ve bir çalkalama için örnek tabi tutulması ve aj...

Çözünebilen bir tip 1 kollajen (col1) izolasyonu için geleneksel işlemleri de, uzun inkubasyon tampon ve fibrillerin zahmetli resuspensions of baştan sona yaklaşık 10 gün gerektirmektedir. Burada, biz az 3 saat küçük dermal biyopsilerden Süt1 arındırmak için bir araç açıklar.

Cilt Tip I Kolajen hazırlanması için geliştirilmiş bir yöntem

Soluble type 1 collagen (COL1) is used extensively as an adhesive substrate for cell cultures and as a cellular scaffold for regenerative applications. ...

Bu prosedürün genel amacı, bir dermal örnekten tip bir kolajeni hızla izole etmektir. Bu işlem, öncelikle dermal örneğin küçük parçalara ayrılmasıyla gerçekleştirilir. İkinci adımda, dermal örneğin sodyum asetat içerisinde hızlıca çalkalanmasıyla kolajen dışı çözünmüş proteinler ve polisakkaritler uzaklaştırılır.Ardından, sodyum asetatın tüm kalıntılarını uzaklaştırmak için örnek su ile durulanır. Son aşamada, dermal örnekten tip 1 kolajen, sitrat tamponu kullanılarak ekstrakte edilir; örnekte kalan katı maddeleri uzaklaştırmak için santrifüj uygulanır ve ardından nihai ürünü konsantre etmek için tek kullanımlık bir santrifüj cihazı ile filtreleme yapılır. Sonuç olarak, bu konsantreden tip 1 kolajen daha ileri düzeyde polimerize edilebilir.Bu tekniğin mevcut yöntemlere göre temel avantajı, dermal örneklerden tip 1 kolajen izolasyon süresini bir haftadan üç saatin altına indirmesidir. İşleme, 25 ila 50 gramlık dermal örneği buz gibi soğuk distile su ile durulayarak başlayın ve ardından yün, kürk veya kılları temizlemek için depilatuar krem kullanın.Ardından, örneği bağ dokusu ve yağdan arındırmak için tek kenarlı bir jilet kullanın ve örneği buz gibi soğuk distile su ile durulayın.

an-improved-method-for-the-preparation-of-type-i-collagen-from-skin

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bir yöntem olup kollajen tip I ve primer insan fibroblast oluşan bir 3-boyutlu matrisi hazırlanması için tarif edilmektedir. Bu doku stroma temel özelliklerini taklit eder ve mikroskopi birçok formları için müsait olduğundan bu organotipik jel invaziv hücre göçü değerlendirmek için yararlı bir substrat olarak hizmet vermektedir.

Organotipik Kollajen Ben Assay: 3-Boyutlu Bağlamında Hücre Davranışı değerlendirin A Dövülebilir Platformu

Bu protokolün amacı, doğal cilde benzeyen üç boyutlu tam kalınlıkta bir cilt eşdeğeri oluşturmaktır. Özel olarak yapılmış bir otomatik yaralama cihazı ile, sterilitenin korunması altında hassas ve tekrarlanabilir yaralar oluşturulabilir.

Üç-boyutlu Tam Kalınlığı Deri Üretimi Eşdeğer ve Otomatik Yaralama

Mikroakışkan cihazlar içinde fonksiyonel mikro dokuların oluşturulması, geleneksel hücre kültürü tekniklerinin mikrocihazlardaki sınırlı mekansal boyutlara uyarlanarak hücre fenotiplerinin stabilizasyonunu gerektirir. Kollajenin modifikasyonu, hepatositler gibi birincil hücreleri mikroakışkan doku modelleri olarak stabilize edebilen ultra ince kollajen düzeneklerinin katman katman birikmesine izin verir.

Microtissue Sabitleme için mikroakışkan Cihazlar Katman-katman Kolajen Biriktirme

Bu makromoleküler Crowders (MMC) kullanarak, hücre dışı matris protein açısından zengin hücre-türevi matrisleri elde etmek için bir protokol mevcut. Buna ek olarak, yapının vadesinin korurken kültür süresini azaltır 3D Organotipik bir deri ko-kültür üretimi bölgesi MMC içeren bir protokol mevcut.

Geliştirilmesi 2D ve 3D Cilt<em&gt; İn Vitro</emMakromoleküler Dışlamasını Kullanma&gt; Modeller

Burada birincil insan Lenfositi yetişkin cilt dokularının üzerinden verimli bir şekilde ayırmak için bir protokol mevcut. Bu yöntem geleneksel yordamı ROCK inhibitörü Y-27632 aşılama ortamda kendiliğinden dermal hücrelerden epidermal hücrelerin ayırarak basitleştirir.

Birincil insan Lenfositi yetişkin cilt dokusundan izole etmek için basit ve etkili bir yöntem

Burada, iki farklı türde kültür yüzeylerde hazırlanması için bir iletişim kuralı mevcut kullanan tip ı kollajen. Bağlı olarak kollajen nasıl işlendiğini, kolajen molekülleri iki boyutlu, fibröz olmayan bir form korumak ya da üç boyutlu, Fibriller formuna yeniden birleştirmek. Hücre çoğalması olarak tip ı kollajen fibril oluşumu ile büyük ölçüde etkilenir.

Keratinosit yayılması üzerine iki ve üç boyutlu değerlendirilmesi tip ı kollajen yüzeylerde

Bu protokolün amacı, uzun vadeli kültür için erişilebilir ve basit teknikler kullanarak damarlı insan derisi eşdeğerlerinin neslini ve hacimsel analizini tanımlamaktır. Mümkün olduğu ölçüde, adımların gerekçesi, araştırmacılara araştırma ihtiyaçlarına göre özelleştirme olanağı sağlamak için açıklanmıştır.

Kendi Kendine Monte Edilmiş Vaskülerleştirilmiş İnsan Derisi Eşdeğerlerinin Üretimi

Burada, bir hücre kültürü laboratuvarında rutin araştırmalar için çeşitli 3D cilt modellerini tanıtmak için ucuz ve basit prosedürler sunuyoruz. Araştırmacılar, ticari olarak mevcut modellere güvenmeden ihtiyaçlarına göre uyarlanmış modeller oluşturabilirler.

Çok Sayıda Uygulama için Cilt Modelleri Oluşturma - İki Boyutlu (2D) Monokültürden Üç Boyutlu (3D) Çoklu Kültüre

Aşağıdaki protokol, çok çeşitli doku mühendisliği uygulamalarına uygulanabilen nano ölçekli desenli fibrillere sahip kollajen hidrojellerin üretimi için kesme tabanlı bir ekstrüzyon yöntemi sunar.

Doku Mühendisliği İçin Nanofibriler Desenli Kollajen Üretimi

Mevcut kök hücre tedavilerinde büyük bir engel konak dokularına bu hücrelerin sunmak için en etkili yöntem belirlemektir. Adipoz kaynaklı kök hücreler kendi multipotency korumasını sağlarken Burada, verimli ve yaklaşım, basit bir kitosan tabanlı dağıtım yöntemi açıklar.

Kök Hücre yüklü Chitosan Mikrokürelerin teslimi için bir Kollajen Hidrojel oluşturma

Keşfedin, deri örneklerinden tip I kolajen izolasyonu için hızlı bir yöntem. Bu teknik, geleneksel yöntemlere göre süreyi 10 günden 3 saate indirerek biyokimya ve doku mühendisliği araştırmalarında verimliliği artırır.

Cilt Tip I Kolajen hazırlanması için geliştirilmiş bir yöntem

Daha fazla video keşfet