Name: Görüntüleme Hücre Membran Hasarı ve Onarımı ilgilendim hücrealtı Süreçleri (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-03-24T20:45:00.000+00:00
Duration: 16 min 44 s
Description: Öğrenin hücre membran hasar onarımı için canlı görüntüleme yöntemlerini kullanarak yaralı hücrelerdeki lizozom ekzositozu süreçlerini. Bu teknik, hücresel yanıt kinetiğini değerlendirmeye yardımcı olur.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Bu çalışma Fransız Müsküler Distrofi Derneği (AFM) ile AD Sağlık Hibeler AR055686 ve AR060836 ve doktora sonrası dostluk Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından desteklenmiştir. Bu çalışmada kullanılan hücresel görüntüleme tesis Sağlık Hibeler HD040677 Ulusal Sağlık Enstitüleri tarafından desteklenmektedir.

1.. Görüntüleme Hücre Zarı Onarımı Toplu Kullanımı (Cam Boncuk) Yaralama Bu protokol ayrıca yaralı hücreleri ve iyileşmek için başarısız olanlar işaretleme sağlar. Hücrelerin bu popülasyonlarını miktarının üç şarttan kullanımını gerektirir: 1.. Testi (C1) - Hücreler, Ca2 +, 2 varlığında, tamir izin verilir. Kontrol 1 (yaralanma yok ve C2) - Hücreler Ca2 + mevcudiyetinde inkübe ancak yaralı olmayan ve 3 vardır. Kontrol 2 (hiçbir onarım C3) - hücrelerin Ca 2 + yokluğunda onarmak için izin verilir. <ol><li> Üç steril lamelleri&gt;% 50 ortak akışa kadar hücrelerin büyümesine ve silikon O-halkaları üzerinde 37 ° C ve devir lamelleri PBS ile 37 ° C&#39;de ve C3 CIM ile iki kez C1 ve C2 yıkama. </li><li> C1 ve C2 veya PBS C3 üzerinde CIM prewarmed FITC dekstran solüsyonu 100 ul ekleyin. </li><li> Nazikçe elle geri eğerek lamelleri oda sıcaklığında lamel üzerinde 40 mg cam boncuk haddeleme tarafından C1 ve C3 plazma zarı zarar30 ° &#39;lik bir açıyla ileri 6-8 kez. Not: hafif sakatlığı için, böylece tekrar sakatlanmaları en aza indirmeyi, cam boncuklar eşit yayılır sağlamak. Örnekler arasında yaralanma tekrarlanabilirlik artırmak için, eş zamanlı olarak karşılaştırılabilir, farklı numunelerin cam boncuk yaralanma gerçekleştirmek. </li><li> Boncuklar bundan başka haddeleme kaçınmak çevre CO2 bir 37 ° C inkübatöre tüm lamelleri aktarmak ve onarım 5 dakika devam etmesine izin verir. </li><li> Boncuklar rulo izin olmadan, 37 ° C de CIM (C1 ve C2) veya PBS (C3) ile yıkanarak, cam boncuklar ve FITC dekstran kaldırma </li><li> Yeri O halka geri lamelleri ve C1 ve C2 veya PBS C3 üzerinde CIM prewarmed lisin fixable TRITC dekstran çözüm 100 ul ekleyin. </li><li> Ortam CO 2 ° C&#39;de 5 dakika boyunca 37 ° C&#39;de inkübe edilir. </li><li> Önceden ısıtılmış CIM ile iki kere yıkayın lamelleri ve oda sıcaklığında 10 dakika boyunca% 4 PFA ile tamir. </li><li> Iki kez PBS ile yıkayın ve Hoechst boya içinde, oda sıcaklığında 2 dakika inkübe edilir. </li><li> Yıkama SAMPLes PBS ile iki kez, bir Epifloresans mikroskop kullanılarak montaj medya ve görüntü hücreleri kullanarak bir slayt üzerine monte. </li><li> Arka plan, kırmızı ve yeşil boyama yoğunluğunu belirlemek ve tüm numunelerin (C1-C3) için eşik, kırmızı ve yeşil kanallar için bu değeri kullanmak C2 hücreleri kullanın. </li><li> A) Yeşil (yaralı ve tamir) ve b) kırmızı veya kırmızı ve yeşil (yaralananların, ama C1 ve C3 örneklerinde) onarmak için başarısız olan hücrelerin toplam sayısını skor. </li><li> Sayısı&gt; 100 yeşillik ve her bir durum için yaralı tüm hücreler (yeşil ve kırmızı) bir yüzdesi olarak onarım başarısız hücrelerin fraksiyonu ifade hücreleri. </li></ol> 2. Lazer Sakatlık sonrasında Hücre zarı tamiri Kinetiğinin Canlı Görüntüleme <ol><li> Prewarmed CIM hücreleri yıkayın ve ardından FM boya ile CIM lamel koydu. </li><li> 37 ° C de muhafaza üst evre inkübatör içinde bir tutucu içine lamel </li><li> Hücre zarının 1-2 mm 2 bölgenizi seçin ve aydınlatılır &lt;, Darbeli lazer ile 10 msn. Pik güç% 40-50 yazılım aracılığıyla lazer gücünü zayıflatabilir. Optimal güç tutarlı, ancak ölümcül olmayan yaralanma izin verir ve bu kullanılan her bir alet ve bir hücre hattı için deneme-yanılma ile tespit edilmelidir. </li><li> Yaralanmadan önceki başlıyor, epifluoresan ve aydınlık onarım, görüntü her 10 saniye izlemek ve yaralanmayı takiben 3-5 dakika boyunca devam edin. Not: Hiçbir onarım kontrolü için, tekrar PBS yaralanan hücrelerin FM boya içeren 2,1-2,4 adımları. </li><li> Tamir kinetiklerini ölçmek için, cep FM boya floresan ölçümü ve görüntüleme sırasında yoğunluk (ΔF/F0) &#39;de değişiklik arsa. Bu veriler, her durumda üzerinde 10 hücreleri için ortalama ve gerektiği gibi, ortalama veya bireysel hücrenin değeri olarak çizilmiştir edilmelidir. </li></ol> 3. Görüntüleme Toplu (Cam Boncuk) Yaralanma Indüklenen Lizozomal Ekzositoz Numuneler,&gt;% 50 büyüdü aşağıdaki hücreleri,izdiham: 1. Testi (C1) - Ca2 +, 2 varlığında, tamir edilmesine bırakılmıştır hücreler. Kontrol 1 (C2; Yaralanma) - Hücreler yaralı veya birincil antikor ile inkübe edildi ve 3 de. Kontrol 2 (C3; Hayır onarım) - Ca 2 + yokluğunda onarmak için izin Hücreler. <ol><li> Yıkama 37 ° C &#39;de PBS ile 37 ° C&#39;de ve C3 CIM ile iki kez C1 ve C2 lamelleri ve silikon O-halkaları üzerinde aktarın. </li><li> C3 üzerinde C1 ve C2 üzerinde CIM ve PBS prewarmed lisin fixable TRITC dekstran 100 ul ekleyin. </li><li> Adım 1.3 &#39;de olduğu gibi C1 ve C3 plazma membran hasar görebilir. </li><li> Boncuklar bundan başka haddeleme kaçınmak çevre CO2 bir 37 ° C inkübatöre tüm lamelleri aktarmak ve onarım 5 dakika devam etmesine izin verir. </li><li> Yine hücreler üzerindeki cam boncuklar no haddeleme sağlanması, soğuk büyüme ortamında lamelleri yıkanarak cam boncuklar ve TRITC dekstran çıkarın. </li><li> Soğuk büyüme ortamı ile iki kez lamelleri durulayın ve O-halkalara transfer. </li><li> C1 ve C3 için:, Soğuk tam büyüme ortamı içinde sıçan anti-fare antikoru LAMP1 100 ul ekleyin ve C2 için soğuk, tam büyüme ortamı ilave edin. </li><li> Antikor, 4 ° C&#39;de 30 dakika boyunca inkübe lamelleri bağlayıcı izin vermek için </li><li> Soğuk CIM ile lamelleri üç kez yıkayın ve oda sıcaklığında 10 dakika boyunca% 4 PFA Tüm lamelleri düzeltmek ve daha sonra CIM ile 3 kez yıkayın. </li><li> Oda sıcaklığında 15 dakika boyunca 100 ml bloke etme ul Tüm lamelleri inkübe </li><li> 4 ° C&#39;de Alexa Fluor 100 ul içinde 15 dakika boyunca 488 anti fare antikoru, tüm lamelleri inkübe </li><li> Iki kez PBS ile yıkayın ve Hoechst içinde, oda sıcaklığında 2 dakika inkübe edilir. </li><li> PBS ile iki kez hücreleri yıkayın, Epifloresans bir mikroskop kullanılarak montaj medya ve görüntü kullanılarak bir slayt üzerine monte. </li><li> C2 hücrelerinin görüntüleri kullanarak, spesifik olmayan arka plan kırmızı boyanma (TRITC dekstran) ve yeşil (Alexa Fluor 488 antikor) kanalları belirlemek ve tüm numunelerin (C1-C3) için kırmızı ve yeşil kanalları eşik bu plan boyama değerleri kullanın. &lt;/ Li&gt; <li> Yaralı hücrelerinde LAMP1 lekeleme (yeşil) yoğunluğunu ölçmek için C1 ve C3 ila&gt; 100 kırmızı etiketli hücreler kullanın. Başarılı bir deney için C3 hücrelerinde LAMP1 boyama C1 hücrelerine önemli ölçüde daha düşük olacaktır. </li></ol> 4. Hücre Zarı Yaralanma Canlı Görüntüleme hücrealtı Ticareti AteŃlemeli <ol><li> Fluoresanlı etiketlemek (lizozomlardan 8 örneğin CD63-GFP) veya floresan boyalar 9 kullanılarak uygun muhabiri transfecting tarafından ilgi bölmesi. </li><li> Floresan boya ile etiketleme, lizozomlar için, FITC-dekstran ihtiva eden büyüme ortamı içinde% 50 ortak akışa kadar büyütülmüş hücrelerini inkübe </li><li> CO2 inkübatöründe (ilgi hücre hattı ile dekstran ile yeterli endozomal etiketlenmesi için gerektiği kadar veya daha uzun) dekstran 2 saat boyunca endocytosed izin ver. </li><li> Izin vermek için önceden ısıtılmış büyüme ortamı ile yıkayın ve hücreler, bir CO2 inkübatör içinde 2 saat içinde inkübe tümlizozomlarda birikir dekstran endocytosed. </li><li> Görüntüleme önce, önceden ısıtılmış CIM lamel yıkayın ve 37 ° C&#39;de sahne üst inkübatör bir lamel tutucu monte </li><li> (Hücre boyunca hareketi için) Widefield veya TIRF (hücre yüzeyinde ve ekzositoz ile hareket) görüntüleme yürütmek - FITC dekstranı kalabalık var olmayan hücreleri etiketlenmiş lizozomlar bireysel lizozomların hareketini ve ekzositoz görüntüleme için idealdir. </li><li> Görüntüleme mikroskop için TIRF lazer hizalama: kullan 60x veya&gt; 1.45 NA ile 100X objektif. Üreticinin yaklaşımı kullanarak olay TIRF lazer ışınının açısını ayarlayın. </li><li> % 40-50 zayıflatma de darbeli bir lazer ile, &lt;100 ms için küçük (1-2 mm 2) bölgeyi ışınlayarak hücre zarı hasar görebilir. </li><li> Ilgi hücrelerde ekzositoz dinamiklerine bağlı olarak en az 2 dakika ya da daha uzun süre 4-6 kare / sn yaralanma, görüntü hücreleri hücre lizozoma yanıtını izlemek için. </li></ol>

<ol><li>Bi, G. Q., Alderton, J. M., Steinhardt, R. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Calcium-regulated+exocytosis+is+required+for+cell+membrane+resealing%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Calcium-regulated exocytosis is required for cell membrane resealing.</a> Cell Biol. 131, 1747-1758 (1995).</li>
<li>Togo, T. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Disruption+of+the+plasma+membrane+stimulates+rearrangement+of+microtubules+and+lipid+traffic+toward+the+wound+site%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Sci%22%5BJournal%5D)">Disruption of the plasma membrane stimulates rearrangement of microtubules and lipid traffic toward the wound site.</a> Cell Sci. 119, 2780-2786 (2006).</li>
<li>Miyake, K., McNeil, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Vesicle+accumulation+and+exocytosis+at+sites+of+plasma+membrane+disruption%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Vesicle accumulation and exocytosis at sites of plasma membrane disruption.</a> Cell Biol. 131, 1737-1745 (1995).</li>
<li>Reddy, A., Caler, E. V., Andrews, N. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Plasma+membrane+repair+is+mediated+by+Ca2%2B-regulated+exocytosis+of+lysosomes%5BTitle%5D)+AND+%22Cell%22%5BJournal%5D)">Plasma membrane repair is mediated by Ca2+-regulated exocytosis of lysosomes.</a> Cell. 106, 157-169 (2001).</li>
<li>Babiychuk, E. B., Monastyrskaya, K., Potez, S., Draeger, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Blebbing+confers+resistance+against+cell+lysis%5BTitle%5D)+AND+%22Death+Differ%22%5BJournal%5D)">Blebbing confers resistance against cell lysis.</a> Death Differ. 18, 80-89 Forthcoming.</li>
<li>Bansal, D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Defective+membrane+repair+in+dysferlin-deficient+muscular+dystrophy%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Defective membrane repair in dysferlin-deficient muscular dystrophy.</a> Nature. 423, 168-172 (2003).</li>
<li>Abreu-Blanco, M. T., Verboon, J. M., Parkhurst, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+wound+repair+in+Drosophila+occurs+through+three+distinct+phases+of+membrane+and+cytoskeletal+remodeling%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell wound repair in Drosophila occurs through three distinct phases of membrane and cytoskeletal remodeling.</a> Cell Biol. 193, 455-464 (2011).</li>
<li>Jaiswal, J. K., Chakrabarti, S., Andrews, N. W., Simon, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Synaptotagmin+VII+restricts+fusion+pore+expansion+during+lysosomal+exocytosis%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+Biol%22%5BJournal%5D)">Synaptotagmin VII restricts fusion pore expansion during lysosomal exocytosis.</a> PLoS Biol. 2, 1224-1232 (2004).</li>
<li>McNeil, P. L., Clarke, M. F., Miyake, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cell+wound+assays%5BTitle%5D)+AND+%22Protoc.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Cell wound assays.</a> Protoc. Cell Biol. Chapter 12, (2001).</li>
<li>McNeil, P. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Direct+introduction+of+molecules+into+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Protoc.+Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Direct introduction of molecules into cells.</a> Protoc. Cell Biol. Chapter 20, (2001).</li>
<li>Knight, M. M., Roberts, S. R., Lee, D. A., Bader, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Live+cell+imaging+using+confocal+microscopy+induces+intracellular+calcium+transients+and+cell+death%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Physiol.+Cell+Physiol%22%5BJournal%5D)">Live cell imaging using confocal microscopy induces intracellular calcium transients and cell death.</a> J. Physiol. Cell Physiol. 284, C1083-C1089 (2003).</li>
<li>McNeil, P. L., Miyake, K., Vogel, S. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+endomembrane+requirement+for+cell+surface+repair%5BTitle%5D)+AND+%22Proc.+Natl.+Acad.+Sci.+U.S.A%22%5BJournal%5D)">The endomembrane requirement for cell surface repair.</a> Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 100, 4592-4597 (2003).</li>
<li>Benink, H. A., Bement, W. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Concentric+zones+of+active+RhoA+and+Cdc42+around+single+cell+wounds%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Concentric zones of active RhoA and Cdc42 around single cell wounds.</a> Cell Biol. 168, 429-439 (2005).</li>
<li>Schmoranzer, J., Goulian, M., Axelrod, D., Simon, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+constitutive+exocytosis+with+total+internal+reflection+fluorescence+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Imaging constitutive exocytosis with total internal reflection fluorescence microscopy.</a> Cell Biol. 149, 23-32 (2000).</li>
<li>Steyer, J. A., Horstmann, H., Transport Almers, W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((docking+and+exocytosis+of+single+secretory+granules+in+live+chromaffin+cells%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">docking and exocytosis of single secretory granules in live chromaffin cells.</a> 388, 474-478 (1997).</li>
<li>Jaiswal, J. K., Andrews, N. W., Simon, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Membrane+proximal+lysosomes+are+the+major+vesicles+responsible+for+calcium-dependent+exocytosis+in+nonsecretory+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Cell+Biol%22%5BJournal%5D)">Membrane proximal lysosomes are the major vesicles responsible for calcium-dependent exocytosis in nonsecretory cells.</a> Cell Biol. 159, 625-635 (2002).</li>
<li>Jaiswal, J. K., Simon, S. M. Ch. 4.12. <a target="_blank" href="http://scholar.google.com/scholar?hl=en&safe=off&q=author%3aJaiswal%2C+JK+%22Current+Protocols+in+Cell+Biology%22">Current Protocols in Cell Biology</a>. , Wiley and Sons Inc. 4.12.1-4.12.15 (2003).</li>
<li>Johnson, D. S., Jaiswal, J. K., Simon, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Total+internal+reflection+fluorescence+%28TIRF%29+microscopy+illuminator+for+improved+imaging+of+cell+surface+events%5BTitle%5D)+AND+%22Protoc.+Cytom%22%5BJournal%5D)">Total internal reflection fluorescence (TIRF) microscopy illuminator for improved imaging of cell surface events.</a> Protoc. Cytom. Chapter 12, (2012).</li>
<li>Jaiswal, J. K., Simon, S. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Imaging+single+events+at+the+cell+membrane%5BTitle%5D)+AND+%22Chem.+Biol%22%5BJournal%5D)">Imaging single events at the cell membrane.</a> Chem. Biol. 3, 92-98 (2007).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

In vivo hücre zarı hasarı, fizyolojik stres çeşitli ve çok sayıda deneysel yaklaşım, bu taklit etmek için geliştirilmiştir oluşur. Bunlar çanak onları kazıyarak ya da dar bir delik şırınga 9,10 ile pasajlanarak yapışık hücrelerin hücre zarı yaralanmasına içerir. Gibi yaralanmalar sonrasında hücreler süspansiyonda iyileşmesi ve normal dokuda olduğu gibi hücre dışı matrisin yapışık değildir. Bu gözenek oluşturucu toksin kullanımı Yine bazıları, kimyasal olarak kolesterol gibi ekstre lipidler tarafından...

Hücre membran hücre ve hücre-dışı ortam arasında bir bariyer sağlayarak hücre bütünlüğünü korur. Normal fizyolojik eşik gibi, istila eden patojenlere varlığını aşan bir kimyasal elektriksel veya mekanik uyarıcı hücre zarına zarar her bir sonuç, bu hasarı onarmak için bir sonraki hücresel tepkiye sebep olabilir. Hücre zarı, bu yaralanmalar hayatta kalmak için, hücreleri tamir için etkili bir mekanizmaya sahip. Bu mekanizma, kalsiyum bağımlıdır ve diğerlerinin yanı sıra bu ve MG53 anneksinler gibi proteinlerin hücre içi hem de örneğin yaralı hücre zarı 1-7 endozomlarda, lizozomlarda, Golgi türetilmiş veziküller ve mitokondri gibi hücre altı bölme içerir. Bununla birlikte, hasarlı hücre zarı ve tamiri ile ilgili moleküler ve hücre içi olaylar dizisinin ayrıntıları henüz tam olarak anlaşılamamıştır. Hücrenin onarım tepkisi kulağına ayrılmış olabilirly ve geç yanıtlar. Dakikalık bir zaman ölçeği saniyeler içinde meydana gelen erken tepkiler, başarılı onarım hücresi ya da hücre ölümüne yol açan geç yanıtların doğasını belirlenmesinde son derece önemlidir. Toplu biyokimyasal ve hücresel analizine dayalı uç nokta tahliller tamir moleküler ve hücresel süreçlerin tutulumu kurulmasına yardımcı olmuştur. Ama nedeniyle hücresel onarım tepki heterojenliği ve süratine, uç nokta deneyleri onarmak yol açan olaylar dizisinin kinetik ve mekansal ayrıntıları sağlamak için başarısız. Hücre zarı kontrollü yaralanma etkinleştirmek ve hücre zarı onarımı ve yüksek uzaysal ve zamansal çözünürlükte ilişkili subselüler yanıtları izlemek izin Yaklaşımlar ideal gibi çalışmalar için uygundur. İşte, bu tür yaklaşımlar sunulmuştur. Protokollerin iki lazer inj aşağıdaki hücre membran onarım gerçek zamanlı kinetik ve canlı hücrelerdeki onarım süreci ile ilgili hücre içi tepkileri izlemek için yaklaşımlar açıklarUry. Bu canlı hücre görüntüleme bazlı deneyler için bir tamamlayıcı olarak, uç nokta deneyler ayrıca tek tek hücrelerin ve ilgili hücre içi tepkileri izleme onarımı için bir nüfus tabanlı bir ölçüsünü sağlar tarif edilmiştir. Bu yaklaşımlar hücre zarı hasarına yanıt ticaretini ve lizozomların eksositosizini izlemek için kullanılmış olan kendi programını göstermek için.

<table><tbody><tr><td>HBSS</td><td>Sigma</td><td>H1387</td><td>CIM hazırlamak için kullanılır (HBSS/10 mM Hepes/2 mM Ca2+ pH 7.4)</td></tr><tr><td>HEPES</td><td>Fisher</td><td>BP410</td><td>CIM hazırlamak için kullanılır (HBSS/10 mM Hepes/2 mM Ca2+ pH 7.4)</td></tr><tr><td>FITC dekstran (Lizin sabitlenebilir)</td><td>Invitrogen</td><td>D1820</td><td>CIM veya PBS Cam boncuklarda 2 mg / ml</td></tr><tr><td>Sigma</td><td></td><td>G8772</td><td></td></tr><tr><td>TRITC dekstran (Lizin ile sabitlenebilir)</td> <td>İnvitrojen</td><td>D1818</td><td>CIM veya PBS PFA'da 2 mg / ml</td></tr><tr><td>%16</td> <td>EMS</td><td>15710</td><td>PBS</td></tr><tr><td>Hoechst</td><td>Invitrogen</td><td>H3570'te</td><td>%4 1/10 000 PBS</td></tr><tr><td>FM boyasında</td><td>Invitrogen</td><td>T3163</td><td>1 & mikro; g/&mikro; l CIM veya PBS</td></tr><tr><td>FITC dextran</td><td>Sigma</td><td>FD40S'de</td><td>2 mg / ml büyüme ortamında</td></tr><tr><td>LAMP1&nbsp;</td><td>Santa Cruz</td><td>sc-19992</td><td>1/300 büyüme ortamında</td></tr><tr><td>Alexa Fluor 488 tavuk sıçan önleyici IgG</td><td>Invitrogen</td><td>A21470</td><td>1/500 blokaj çözeltisinde</td></tr><tr><td>Montaj ortamı</td><td>Dako</td><td>S3023</td><td></td></tr><tr><td>Lamel</td><td>Fisher</td><td>12-545-86</td><td></td></tr><tr><td>Cam alt petridiş</td><td>MatTek şirketi</td><td>P35G-1.0-14-C</td><td></td></tr><tr><td>Silikon O halkası</td><td>Bellco</td><td>1943-33315</td><td></td></tr><tr><td>Lamel tutucu</td><td>Bellco</td><td>1943-11111</td><td></td></tr><tr><td>Invitrogen</td><td>A-7816</td><td></td><td></td></tr><tr><td>DMEM</td><td>VWR</td><td>12001-566</td><td></td></tr><tr><td>FBS</td><td>VWR</td><td>MP1400-500H</td><td>Büyüme ortamı için kullanılır:% 10 FBS,% 1 P / S DEM'de</td></tr><tr><td>Penisilin / Sreptomisin</td><td>VWR</td><td>12001-350</td><td>Büyüme ortamı için kullanılır:% 10 FBS,% 1 P / S DMEM'de</td></tr><tr><td>Tavuk serumu</td><td>Sigma</td><td>C5405</td><td>CIM'de% 5 tavuk serumu, immün boyama sırasında çözeltiyi bloke etmek için kullanılır</td></tr><tr><td>PBS (Ca2 + ve Mg2 + içermez)</td> <td>VWR</td><td>12001-664</td><td></td></tr><tr><td>Epifloresan mikroskobu</td><td>Olympus America, PA</td><td>IX81</td><td></td></tr><tr><td>TIRF aydınlatıcı&nbsp;</td><td>Olympus America, PA</td><td>Cell^TIRF (IEC60825-1:2007)</td><td></td></tr><tr><td>Epifloresan aydınlatıcı</td><td>Sutter Instruments, Novato CA</td><td>Lambda DG-4 (DG-4 30)</td><td></td></tr><tr><td>CCD Kamera</td><td>Fotometrisi, Tucson, AZ</td><td>Evolve 512 EMCCD&nbsp;</td><td></td></tr><tr><td>Görüntü edinme ve analiz yazılımı</td><td>Intelligent Imaging Innovations, Inc. Denver, CO</td><td>Slidebook 5</td><td></td></tr><tr><td>Darbeli lazer</td><td>Akıllı Görüntüleme Yenilikleri, Inc. Denver, CO</td><td>Ablate (3iL13)</td><td></td></tr><tr><td>Sahne üstü kuluçka makinesi</td><td>Tokaihit, Japonya</td><td>INUBG2ASFP-ZILCS</td><td></td></tr></tbody></table>

görüntüleme hücre membran hasarı ve onarımı ilgilendim hücrealtı süreçleri

Imaging Cell Membrane Injury and Subcellular Processes Involved in Repair

Iyileşmek için yaralı hücrelerinin yeteneği temel bir hücresel süreçtir, ama şifa yaralı hücrelerde yer alan hücresel ve moleküler mekanizmalar tam olarak anlaşılamamıştır. Burada deneyler lokalize yaralanma sonrası kültürlenmiş hücrelerin iyileşmesi yeteneği ve kinetik izlemek için tarif edilmiştir. İlk protokol hücre aynı anda yüzlerce hücre zarı tamir yeteneği değerlendirmek için bir uç nokta bazlı yaklaşım anlatılmaktadır. İkinci protokol, bir darbeli lazerle lokalize yaralanmasından sonra, tek tek hücrelerin hücre membran onarım kinetiğini izlemek için bir gerçek zamanlı görüntüleme yaklaşımı tarif eder. Şifa yaralı hücreleri yaralanma siteye spesifik proteinler ve subselüler bölmeleri kaçakçılığı içerdiğinden, üçüncü protokolü aynı anda yaralı hücrelerin yüzlerce böyle bir kaçakçılık olayı (lizozomal ekzositoz) değerlendirmek için yukarıdaki uç nokta bazlı yaklaşımın kullanımı ve son protokolünü açıklar TIRF MICROS birlikte darbeli lazer yaralanma kullanımını tarifyüksek uzaysal ve zamansal çözünürlükte yaralı hücrelerin içindeki bireysel subselüler bölmelerinin dinamiklerini izlemek için kopyalama. Burada protokoller, hücre zarı ve tamir kültürlenmiş kas hücrelerinde lızozomal Ekzositoz arasındaki bağlantıyı incelemek için bu yaklaşımların kullanımını tarif olsa da, herhangi bir diğer yapışık kültürlenmiş hücre ve hücre altı bölme seçim için gibi uygulanabilir.

Tek hücre görüntüleme için burada anlatılan Protokoller yeteneği ve kinetik hücre zarı tamiri (Protokoller 1 ve 2) ve onarım sırasında subsellüler kaçakçılığı ve lizozomların füzyon izlemek için vardır (Protokoller 3 ve 4). Protokol 1 yaralı tüm hücreleri işaretleme ve onarmak için başarısız olanlar yaralı hücrelerin belirlenmesi sağlayan bir yığın tahlil gösterir. Yaralanmamış hücreleri (Şekil 1A) etiketsiz kalırken, FITC dekstran varlığında cam boncuk tarafından yaralı hüc...

Iyileşme yaralı hücrelerinin hücre zarı gibi bir işlem yaralanma siteye özgü protein ve hücre içi bölmeler kaçakçılığı içerir. Bu protokol, bu süreçleri izlemek için deneyleri açıklar.

Görüntüleme Hücre Membran Hasarı ve Onarımı ilgilendim hücrealtı Süreçleri

The ability of injured cells to heal is a fundamental cellular process, but cellular and molecular mechanisms involved in healing injured cells are poorly ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, istenen uygulamaların hasarlı hücrelerin onarımı üzerindeki etkisini gözlemlemek ve hasarlı hücrelerin onarılmasına yardımcı olan hücresel alt süreçleri incelemektir. Bu işlem, sağlam hücre membranlarını geçemeyen floresan boyaların varlığında hücrelere zarar verilerek, hasarlı hücrelerin bu boyaların girişini engelleme yeteneği ve kinetiği değerlendirilerek gerçekleştirilir. İkinci bir adım olarak, ilgilenilen bir hücresel bölmenin hasarlı hücre membranına kaynaşarak onarıma katılma yeteneğini belirlemek için, hasarlı hücre membranında hücre içi proteinlerin ortaya çıkışını izleriz.Ardından, hasarın kinetiğini izlemek amacıyla, ilgili hücresel kompartmanların hasarlı hücre membranı ile füzyonunu gözlemleriz. Bu kompartmanın tetiklenmiş füzyon sonuçları; hasarlı hücre yüzeyinde lizozom ilişkili membran proteini birinin artan görünürlüğü ve hasarlı hücreler tarafından lizozomal içeriğin salgılanmasının canlı görüntülemesine dayanarak, hücre membranı hasarının onarımının lizozomal ekzositoz ile ilişkili olduğunu göstermektedir. Bu yöntemler, hücre hasarı ve onarımıyla ilgili önemli soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.Örneğin, bunlar hücre membranındaki fokal yaralanmalara hangi proteinlerin ve hücresel kompartmanların yanıt verdiğini belirlemek ve ardından bu yanıtın kinetiğini değerlendirmek için kullanılabilir. Prosedürü, laboratuvarımdaki doktora sonrası araştırmacılardan Aurelia D dört ve hamma stra iki uygulamalı olarak gösterecektir. Bu işlem, iyileşen yaralı hücreleri ve iyileşemeyenleri ayrı ayrı işaretlemek için yapılacaktır.Hücreleri üç deneysel koşul için steril lameller üzerine ekleyin. Hücreleri %50 konfluens oranının üzerine ulaşana kadar kültüre edin, ardından C1 ve C2'yi 37 °C'de CIM ile iki kez yıkayın. C3'ü 37 °C'de PBS ile yıkayın.Ardından lamelleri silikon O-ringlerin üzerine transfer edin. Uygun tampon içindeki önceden ısıtılmış fitzy dekstran çözeltisinden 100 µL ekleyin. Oda sıcaklığında lamelin üzerine 40 mg cam boncuk ekleyip lameli manuel olarak eğerek C1 ve C3'teki plazma membranına zarar verin.Hafif yaralanma için 30 derecelik bir açıyla altı ila sekiz kez ileri geri kaydırılır. Örnekler arasındaki yaralanma tekrarlanabilirliğini artırmak için, cam boncukların düzgün bir şekilde dağıldığından emin olunarak aynı bölgelerin tekrar yaralanması minimize edilir. Boncukların daha fazla yuvarlanmasını önleyerek, karşılaştırılacak farklı örneklerin cam boncuk yaralanma işlemleri eş zamanlı olarak gerçekleştirilir.Tüm lamelleri, ortam CO2 düzeyindeki 37 degrees Celsius sıcaklığındaki bir inkübatöre aktarın ve boncukların yuvarlanmasına izin vermeden onarım işleminin beş dakika boyunca sürmesini sağlayın. Cam boncukları ve fitzy dekstranı, tampon çözelti veya PBS ile yıkayarak uzaklaştırın. Şimdi lamelleri tekrar O-ring üzerine yerleştirin ve 100 µL önceden ısıtılmış lizin ekleyin.Sabitleyici trissy dekstran çözeltisini, ortam CO2 düzeyinde 37 °C'de beş dakika boyunca inkübe edin. Lamelini önceden ısıtılmış CIM ile iki kez yıkayın ve iki PBS yıkamasının ardından oda sıcaklığında %4 PFA ile 10 dakika boyunca sabitleyin. Hersch boyasında iki dakika inkübe edin ve iki PBS yıkamasından sonra örneği montaj medyası kullanarak bir lam üzerine monte edin.Ardından, C iki örneğindeki hücreleri bir epi floresan mikroskop kullanarak görüntüleyin. Arka plan kırmızı ve yeşil boyama yoğunluğunu belirleyin. Daha sonra, tüm örnekler için kırmızı ve yeşil kanalları eşiklemek için bu değeri kullanın.Yeşil olan toplam hücre sayısını belirleyin. Ayrıca C1 ve C3 örneklerinde kırmızı olan veya hem kırmızı hem yeşil olan hücreleri belirleyin. Şimdi, her bir durum için 100'den fazla yeşil hasarlı hücreyi sayın ve onarımı başaramayan hücrelerin oranını, hasarlı tüm hücrelerin bir yüzdesi olarak ifade edin.%50 konfluensin üzerine çıkmış hücreleri önceden ısıtılmış CIM ile yıkayın ve lamelini FM boyalı CIM içerisinde monte edin. 37 °C'de tutulan sahne üstü inkübatördeki bir tutucuya yerleştirin. Tutarlı ancak ölümcül olmayan bir hasar sağlayan optimal gücü kullanarak hücre membranının bir bölgesini seçin.Bunu başarmak için örneği darbeli lazerle 10 milisaniyeden daha kısa bir süreyle ışınlayın. Hasar öncesinde başlayıp hasardan sonra üç ila beş dakika boyunca devam edecek şekilde; epi, floresan ve parlak alan modlarında her iki ila 10 saniyede bir izleme yapmak, onarımı gözlemlemek ve görüntüler elde etmek için lazer gücünü yazılım üzerinden tepe gücün %40 ila %50'sine düşürün. Onarım kinetiğini nicelleştirmek için hücresel FM boya floresanını ölçün.Görüntüleme süresince yoğunluktaki değişimi hesaplayın. Her koşul için 10'dan fazla hücrenin verilerinin ortalamasını alın ve bunları ortalama değerler veya bireysel hücre değerleri olarak grafikleyin. C bir ve C iki lamelini yıkayın.Kültür hazırlıkları 37 °C'de CIM ile gerçekleştirilir ve C3, 37 °C'de PBS ile yıkanır. Ardından numuneler silikon O-ringlere aktarılır. Önceden ısıtılmış 100 µL lizinle fikslenebilir trissy dekstran eklenir.Daha önce gösterildiği gibi C1 ve C3 üzerindeki plazma membranına zarar verin. Ardından, boncukların daha fazla yuvarlanmasını önleyerek tüm lamelleri ortam CO2 konsantrasyonundaki 37 °C'lik bir inkübatöre aktarın ve onarımın beş dakika boyunca gerçekleşmesine izin verin.Şimdi cam boncukları ve Trixie dekstranı uzaklaştırmak için lamelleri, cam boncukların hücreler üzerinde yuvarlanmadığından emin olarak soğuk büyüme ortamında yıkayın. Lamelleri soğuk büyüme ortamıyla iki kez durulayın ve C1 ve C3 O-ringlerine transfer edin. Soğuk komple büyüme ortamı içerisinde 100 µL rat anti-US lamp one antikoru ekleyin ve antikor bağlanmasını sağlamak için C2'ye soğuk komple büyüme ortamı ekleyin. Soğuk CIM ile üç yıkama yaptıktan sonra lamelleyi 4 °C'de 30 dakika inkübe edin.Tüm lamelleri oda sıcaklığında 10 dakika boyunca %4 PFA ile sabitleyin. Ardından CIM ile üç kez durulayın. Sonrasında, tüm lamelleleri 15 dakika boyunca 100 µL bloklama çözeltisinde, ardından 15 dakika boyunca 100 µL 4 88 anti rat antikorunda inkübe edin.PBS ile iki kez yıkayın ve iki PBS yıkamasının ardından oda sıcaklığında iki dakika boyunca her lekesinde inkübe edin. Numuneleri bir lam üzerine monte edin, ardından C iki hücrelerinin görüntülerini kullanarak epi floresan mikroskobu ile numuneleri görüntüleyin. Kırmızı ve yeşil kanallardaki spesifik olmayan arka plan boyanmasını belirleyin.Tüm örnekler için kırmızı ve yeşil kanalları eşiklemek amacıyla bu arka plan boyama değerlerini kullanın. Yaralı hücrelerdeki lamp 1 boyamasının yoğunluğunu ölçmek için C1 ve C3'ten elde edilen 100'den fazla kırmızı etiketli hücreyi kullanın. Başarılı bir deneyde, C3'ten gelen lamp 1 boyamalı hücreler, C1'den gelen hücrelere göre anlamlı derecede daha düşük olacaktır. Lizozomları floresan boya ile etiketlemek için, %50 konfluense ulaşmış ve fitzi dextran içeren büyüme ortamında büyütülmüş hücreleri inkübe edin.Dekstranın hücre kültürü inkübatöründe iki saat boyunca endositoze olmasına izin verin. Hücreleri önceden ısıtılmış büyüme besiyeri ile yıkayın ve görüntüleme öncesinde tüm endositoze olmuş dekstranın lizozomda birikmesini sağlamak için CO2 inkübatöründe iki saat boyunca bekletin. Lamelini önceden ısıtılmış CIM ile durulayın ve 37 derece Celsius'taki sahne üstü inkübatörde bulunan bir lamel tutucuya CIM ile monte edin.Görüntüleme için, fitzy dekstran ile işaretlenmiş lizozomları aşırı yoğun olmayan hücreleri seçin. Tekil lizozomların hareketi ve eksositozu. Hücre genelindeki lizozom hareketlerini izlemek için geniş alan görüntüler alın.Alternatif olarak, hücre yüzeyindeki hareketleri izlemek ve ekzositozlarını takip etmek için turf görüntüleri alın. Lizozomun hücre yaralanmasına verdiği yanıtı izlemek için, daha önce gösterildiği gibi radyasyon ile hücre membranını yaralayın; ilgilenilen hücrelerdeki ekzositoz dinamiğine bağlı olarak, hücreleri saniyede dört ila altı kare hızla en az iki dakika veya daha uzun süre görüntüleyin. Bu toplu analizde, yaralanan tüm hücreler işaretlenir ve onarımı başarısız olanlar belirlenirken, yaralanmamış hücreler etiketsiz kalır.Fitzy dekstran varlığında cam boncuklarla hasar verilen hücreler, kalsiyum varlığında onarılmalarına izin verildiğinde yeşil ile işaretlenir. Hücrelerin onarılmasına izin verildiğinde, hasarlı hücrelerin çoğu onarılmayı başarır ve trissy dekstran ile işaretlenmez. Kalsiyum yokluğunda ise hasarlı hücrelerin çoğu trissy dekstran tarafından kırmızı ile işaretlenir.Bu deney, FM boyasının hücreye girişini izleyerek hücre membran onarımının kinetiğini değerlendirmektedir. FM boyası ile inkübe edildiğinde, sağlam hücreler çok az hücre içi boyama gösterir veya hiç göstermez. Hücre membranının bölgesel lazer yaralanmasının ardından, FM boyası hücreye girmeye ve endomembranlara bağlanmaya başlar; hücre membranının lazer yaralanması sonrası onarım kapasitesi kalsiyuma bağlı olduğundan, bu durum FM boyası floresanında ani bir artışa neden olur.Kalsiyum varlığında hasar gören bir hücre onarım yapabilir, bu da hasardan bir dakika sonra FM boyasının girişinin durmasını sağlar. Buna karşın, kalsiyum yokluğunda onarıma bırakılan bir hücre onarılamaz; bu durum boyanın sürekli girişine ve dolayısıyla hasardan dört dakika sonra bile FM d floresansının sürekli artışına neden olur. Böylece, hücre membranı onarımı, FM boyası boyamasının bir platoya ulaşmasını sağlar.Hücre zarı onarımının eksikliği, platoya ulaşamayan sürekli bir boya girişine neden olur. Toplu cam boncuk yaralama yaklaşımı, yaralanmaya yanıt olarak veziküllerin ve proteinlerin hücre yüzeyine translokasyonunu izlemek için kullanılabilir. Burada hücreler, trissy dekstran varlığında yaralanır.Böylece, hasarsız hücreler kırmızı ile işaretlenmezken, hasar görmüş tüm hücreler kırmızı ile işaretlenir. Birincil antikorla işleme tabi tutulmamış hasarsız hücrelerin, hücre yüzeyindeki lamp 1 için arka plan seviyesinde bir işaretleme gösterdiğine dikkat edin. Ancak, hücreler hasar gördüğünde ve kalsiyum varlığında iyileşmelerine izin verildiğinde, lizozomlar ekzositoz geçirir ve böylece hasarlı hücrelerin yüzeyinde lamp 1 boyama seviyesi artar.Hücre yüzeyindeki LAMP1 işaretlemesindeki bu artış, kalsiyum yokluğunda iyileşmesine izin verilen hücrelerde çok daha düşüktür. Bu nedenle, hem yüksek hücre yüzeyi LAMP1 boyamasına sahip hücre sayısının belirlenmesi hem de tekil yaralı hücrelerdeki hücre yüzeyi LAMP1 boyama düzeyinin ölçülmesi, hücrenin yaralanma tetiklemeli lizozomal ekzositoza girme yeteneği için ölçütler sağlar.Bu deney, tekil lizozom füzyonunun kinetiğini, doğasını ve konumunu doğrudan izlemektedir. Hücre zarı hasarına yanıt olarak hücreler darbeli lazer ile hasarlanır ve hücre yüzeyindeki lizozomlar, tekil hücrelerde hasarla tetiklenen lizozom ekzositozının izlenmesine olanak tanıyan turf görüntüleme yöntemiyle görüntülenir. Bu şekilde, sol panelde faz kontrast görüntüleme ile ve orta panelde turf mikroskopi ile görselleştirilmiş bir hücre gösterilmektedir.Sağ panel, aynı hücrenin hasardan 105 saniye sonraki turf görüntüsünü göstermektedir. Burada, hasarın bir lizozomu hücre membranına çağırdığı ve ardından ekzositozun gerçekleştiği görülmektedir. Bu lizozom, hasar öncesindeki turf görüntüsünde görünür değildir; ancak hasarı takiben lizozom hücre membranına ulaşır ve saptanabilir hale gelir.Vezikül hücre membranına yaklaştıkça, TIRF aydınlatması tarafından daha iyi uyarılır ve bu durum lizozomal fitzy DExT zinciri floresanının maksimum değere ulaşmasını sağlar. Füzyon gözenekleri açıldığında, bu durum lizozomal pH'ın nötralizasyonuna ve dolayısıyla fitzy DExT zinciri floresanının söndürülmesinin ortadan kalkmasına (de-quenching) neden olur. Ardından, DExT zinciri vezikülden hücre dışına boşaltılır; bu da ZI floresanının lateral olarak yayılmasına ve vezikül floresanının kademeli olarak azalmasına yol açar, böylece lizozomların çeşitli hasar tetiklemeli yanıtları ölçülebilir.Bu videoyu izledikten sonra, hücrelerin geniş fokal yaralanmalardan onarılma yeteneklerinin nasıl izleneceği ile onarım sürecine yanıt veren ve bu sürece yardımcı olan hücre altı bölmelerin ve proteinlerin nasıl takip edileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. IND hücrelerinin yaralanmaya verdiği yanıtı ve onarımdaki rolünü izlemek için farklı etiket canlı boyamaları, bölmeler veya proteinler kullanılarak daha fazla deney gerçekleştirilebilir.

imaging-cell-membrane-injury-subcellular-processes-involved

Research

JoVE Journal

Biology

Biyoloji

Ayrıntılı bir protokol görüntüleme için DNA onarım komplekslerin gerçek zamanlı oluşumu...

Görüntüleme Uyuşmazlığı DNA Hasar Onarım ve Hücresel Yanıtları Bacillus subtilis</em

Bütün hayvanlar MG53-aracılı hücre zarı tamir ve hücresel seviyede dinamik bir süreç görselleştirmek için kullanılan protokoller burada nitelendirdi. Bu yöntemler, plazma zarı mühürlenirken ve rejeneratif tıp ve hücre biyolojisi araştırmak için uygulanabilir.

MG53-aracılı Hücre Zarı Tamiri Görselleştirme In vivo Ve In vitro Sistemleri

Lipofilik boya FM1-43 maruz kalan hücrelerin canlı görüntüleme gözenek oluşturucu toksinler plazma membran kaldırılır hangi kinetiği tam belirlenmesini sağlar. Bu Ca 2 + gereksinimleri, sfingomiyelinaz ve plazma membranı onarım diğer faktörler değerlendirmek için kullanılabilecek bir hassas bir deneydir.

Ca Rolleri değerlendirilmesi için Görüntüleme Testi Canlı<sup&gt; 2 +</supGözenek oluşturucu Toksin yaraların tamiri&gt; ve sfingomiyelinaz

Burada, genotoksik strese maruz kalan süspansiyon hücre kültürlerinde ATM ve p53 arasındaki doğrudan protein-protein etkileşimlerini tespit etmek ve görselleştirmek için in situ Proximity Ligation Assay (PLA) 'nın nasıl kullanılabileceği gösterilmiştir.

Proximity Ligation Testi ile Süspansiyon Hücre Kültürlerinde DNA Hasarına Bağlı Protein Komplekslerinin Saptanması ve Görselleştirilmesi

Bu protokol lazer microirradiation DNA hasar, nispeten basit kırılmalara ve DNA hasar sinyal ve onarım faktör montaj hasar sitelerde içinde vivo çalışmaya karmaşık hasarı gibi farklı türde ikna etmek için nasıl kullanılacağını açıklamak için hedeftir .

Vivo hücresel yanıt-e doğru basit ve karmaşık DNA hasarı incelemek için lazer Microirradiation

DNA hasar inducing ve DNA onarım proteinler seçili alt nükleer alanlarda yanıt izlemek confocal floresan mikroskopi ve lazer mikro-ışınlama teklif araçları. Bu teknik, hasar tespiti, sinyal ve işe alım ile ilgili bilgilerimizi önemli ölçüde ilerlemiştir. Bu el yazması tek ve Çift Kişilik strand sonu onarım incelemek için bu teknolojilerin gösterir.

Lazer mikro-ile kullanma için tek incelenmesi ve çift Strand Break onarım memeli hücrelerinde

Hücre zarının iki fotonlu lazer ile yaralama membran yeniden mühürlemeden yeteneği değerlendirmek için yaygın olarak kullanılan bir yöntemdir ve birden çok hücre türü için uygulanabilir. Burada, vitro canlı İki fotonlu lazer ablasyon takip dysferlinopathy hasta hücrelerde membran yeniden mühürleme, görüntüleme için bir protokol açıklayın.

İki fotonlu lazer mikroskop kullanarak hücre zarı tamir tahlil

Çift iplikli kırılmalara DNA tamiri lezyon ele sonra sadece onarım kompleksleri, tatili, aynı zamanda onların çözünürlük oluşumu gerektiren dinamik bir süreçtir. Burada, ayirt mikroskobu geçici ve uzun ömürlü çift iplikçikli tatili için bir araç olarak bu genom bakım mekanizma incelemek için kullanırız.

DNA onarım işlemleri, Darbe Gerilimlerinden ve uzun süreli iki iplikçikli DNA sonları ayirt mikroskobu ile karakterize

Burada biz verimliliği Fluorometrik ve görüntüleme analizleri canlı hücreler aracılığıyla yeniden mühürlemeden plazma zarı ölçer yüksek üretilen iş floresans tabanlı bir tahlil tanımlamak. Bu tahlil uyuşturucu ya da plazma zarı memeli hücrelerinde yeniden mühürlemeden düzenleyen hedef genlerin eleme için kullanılabilir.

Plazma zarı verimliliği memeli hücrelerinde yeniden mühürlemeden yüksek üretilen iş ölçümü

Bu makalede immünostaining ve kromatin immünödeksiasyonunun temel adımları tanıtılmaktadır. Bu protokoller genellikle DNA hasarına bağlı hücresel süreçleri incelemek ve DNA onarımına karışan proteinlerin alımını görselleştirmek ve ölçmek için kullanılır.

Endononülaz Bazlı Meydana Özgü DNA Hasarlarını Görselleştirme ve Ölçme

Termoplazmonik delme yöntemi, hücrelerde ve dev unilameller veziküllerde plazma membran onarımı sırasında protein tepkilerini incelemek için konfokal mikroskopi, optik cımbız ve altın nanopartikülleri entegre eder. Teknik, hızlı ve lokalize membran delinmesini mümkün kılarak, anahtar proteinlerin ve bunların karmaşık plazma membran onarım mekanizmasındaki fonksiyonel rollerinin tanımlanmasına izin verir.

Canlı Hücrelerde ve Model Membranlarda Plazma Membran Onarımını Araştırmak İçin Termoplazmonik Bir Yaklaşım

Öğrenin hücre membran hasar onarımı için canlı görüntüleme yöntemlerini kullanarak yaralı hücrelerdeki lizozom ekzositozu süreçlerini. Bu teknik, hücresel yanıt kinetiğini değerlendirmeye yardımcı olur.

Görüntüleme Hücre Membran Hasarı ve Onarımı ilgilendim hücrealtı Süreçleri

Daha fazla video keşfet