Name: Gibson Meclisi ve Gen Tabancası kullanarak Tütün geçici Gen İfadesi (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-04-18T18:30:00.000+00:00
Duration: 12 min 2 s
Description: Öğrenin, tütün yaprak epidermis hücrelerinde geçici gen ifadesini gözlemlemek için Gibson meclisi ve gen tabancası kullanarak kloroplast ve peroksizomları hedefleyen yöntemi. Bu teknik, restriksiyon enzimleri gerektirmeden esnek genetik tasarım sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Yazarlar Nicotiana benthamiana fidan cömert bağış için Massachusetts Genel Hastanesi Jen Sheen teşekkür etmek istiyorum. Jen Bush bitkilerin büyüyen ve büyüme odası alanı kurma tavsiyesi bize büyük ölçüde yardımcı oldu. Wyss Enstitüsü&#39;nden Tom Ferrante konfokal mikroskobu ile çok önemli yardım teklif etti. Yazarlar, özellikle Boston Çocuk Hastanesi&#39;nden Don Ingber ve Gen Tabancası ve ilgili malzemeleri cömert bağış için Wyss Enstitüsü&#39;ne teşekkür etmek istiyorum. Bu proje için finansman PAS, JCW, ve MDM Enerji İleri Araştırma Projeleri Ajansı Başkanlığı (ARPA-E Ödül # DE-000079) ile bir işbirliği anlaşması ile sağlanan ve Chimerion Biyoteknoloji, Inc aracılığıyla MJV için yapıldı.

Hedefleme Çoklu organel için alternatif olarak eklenmiş diziler-1. Design <ol><li> Nihai protein ifadesi için siteler belirler. Bu iş için, faiz kloroplast, peroksisom ve sitosola hedefleme olduğunu. </li><li> Ilgi organellere proteinleri hedef bilinen protein ve DNA dizilerini tanımlamak için literatür kullanın. Bu durumda, bir kloroplast Arabidopsis thaliana L-isoaspartate metiltransferaz 6,15 ikinci hedef sekansı ve Arabidopsis thaliana transtiretin gibi S-allantoin sentez 16,17 ikinci hedef sekansı, bir peroksizom belirlenmiştir. </li><li> Doğru organellere ilgi proteinleri hedef gereken bir alternatiftir-dilindiğinde rejimini belirlemek. Doğal Arabidopsis sistemde 6 gözlendiği gibi, bu iş için, siteleri splice. MRNA sekansı, doğal bırakarak yeniden birleştirme bölgelerini, ama diziler kodlayan bir kloroplast ya da peroksizomlarda yerleştirildialternatif dilinmemiş intronlarda içinde etiketler (Şekil 1) ome-hedefleme. </li></ol> DNA Parçaların 2.. Gibson Meclisi Şekil 2 &#39;de bakınız. Gibson montaj yöntemi: 1) için bir ön-karışım yapılmıştır çeşitli enzimlerin harekete bağlıdır, kısmen tek kollu DNA parçaları ve komşu 2) tavlama ücretsiz baz çifti olmak üzere iki iplikçikli DNA&#39;nın uçlarını sindirimi. Bu kısıtlama sitelerinin sınırlamalar olmadan DNA fragmanlarının klonlanması için izin verir. <ol><li> DNA plazmid yapısı içinde elemanları için bir düzeni seçin. A) bir plasmid bitkiler, bir kanamisin direnç işaretleyici çalışmak için bilinen bir GFP yapısını içeren bir vektör (gözenek, ve E. coli ve Agrobacterium tumefaciens ana), b) a için bir replikasyon kökeni: Bir örnek olarak TriTag-1 elemanları vardır promoter dizisi, (P ENTCUP2, bitkilerde yapıcı olduğu gösterilmiştir), C) sekansı (CTS) ve bir kloroplast hedefleyen, c) a peroxisome), daha önce tarif edildiği gibi, 6, ek yeri siteleri, bir dizi dizisi (PTS) ve d hedefleme. </li><li> Yapı tabanı-için-baz ile siliko tasarım yazılımı tasarlayın. APE, bu iş için kullanışlı bir açık kaynak kodlu ücretsiz paketidir. Not: TriTag-1, sırası var plazmid vektörü, promoter, ATG, bağlayıcı verici alan, kloroplast hedef sekans, bağlayıcı verici alan, nötr yer, bağlayıcı alıcı alan, peroksizom hedef sekans, bağlayıcı alıcı alan, GFP plazmid vektörü içinde ihtiva gibi . <ol><li> PCR için primerler sipariş ederken her bir birim arasında bir 50 bp üst üste binme olduğu şekilde, in silico DNA yapısı tasarımı. 25 bp her bir yönü: Bu primerler olarak 50 bp üst üste kullanmak mümkündür. <ol><li> Dizisi parçaların her birinin kökeni takip emin olun. Bu gibidir: yetiştirilen ve miniprep için bir plazmid; , bir PCR şablonu olarak kullanılabilen bir doğrusal dizi; ya da olması gereken bir diziTicari olarak sentezlenmiş? Bazı şirketler fragmanları &lt;500 bp için düşük maliyetli DNA sentezi hizmetleri sunuyoruz. Ticari olarak sipariş için avantajlı oldu bu nedenle bu durumda, TriTag kendisi 437 bp. </li><li> Tüm PCR büyütülmüş parçalar ve model DNA saflaştırılan ise en iyi sonuçlar gelecektir. Direnç marker daha kolay PCR büyütülmüş iki küçük şablonlar içine bu büyük DNA bölmek için iyi bir noktadır. </li><li> Kısıtlama Kısıtlama enzim DPNI metilatlı DNA&#39;yı keser. PCR şablonu E bir miniprep olsaydı coli, DPNI tedavi kirlenmesine şablon DNA kaldıracaktır. </li></ol></li></ol></li><li> Ayrı ayrı tüm DNA dizileri arındırın ve su ya da TE Tamponu EB elute. <ol><li> Gözenek vektör part 1, ~ 3.000 bp (yeşil oklar). PCR ile amplifiye edilmiş ve DpnI işlemden geçirildi. </li><li> Gözenek vektör part 2, ~ 3,000 bp (siyah oklar). PCR ile amplifiye edilmiş ve DpnI işlemden geçirildi. </li><li> TriTag insert, 437 bp (mavi oklar). Ticari emretti. Resuspend GKD 2 O. içinde </li><li> P ENTCUP organizatörü ~ 750 bp (turuncu oklar). PCR ile amplifiye edilmiş ve DpnI işlemden geçirildi. </li></ol></li><li> DNA parçalarının her biri konsantrasyonlarını ölçün. Vektör adet 150 ng / ul hedefliyoruz. </li><li> Dondurucu üzerinden Gibson montaj karışımı bir kısım alın ve buz üzerinde eritin. Bu laboratuarda 12-14 yapmak için ticari olarak mevcut, ama aynı zamanda basit. <ol><li> Viskoz 5x master miks ve 15 ul reaksiyon boyutu 1.33x tümbölenleri: Bu tarifi için iki adım vardır. 5x ana karışım içerir: 3 ml 1 M Tris-HCl pH 7.5, 300 ul 1 M MgCI2, her dNTP, 600 ul 10 mM, 300 ul 1 M DTT, 1,5 g PEG-8000, 20 mg NAD ve GKD 2 6 ml O. 320 ul hacimde (18) hazırlayın ve -20 ° C&#39;de biri ancak tüm dondurmak Çözelti, oldukça viskoz olacaktır. Bu &quot;5X izoterm tampon&quot; Label </li><li> (320 ul) kalan bir için, 1.2 ul T5 ekzonükleaz, 20 ul Phusion High-FID eklemekelity DNA Polimeraz, 160 ul Taq DNA Ligaz ve 700 ul GKD 2 O. 15 ul hacimde (~ 80) -20 ° C&#39;de PCR tüpleri ve mağaza buz üzerinde ° hazırlayın C. </li></ol></li><li> Parçalarının her biri için eşit molar miktarlarda hacimleri belirler. Gibthon.org dahil olmak üzere birkaç online hesap makineleri vardır. Bütün DNA parçalarının 5 ul toplam olmalıdır. Gibson alikonun mix 15 ul ekleyebilirsiniz. Bu pipet için çok küçük hacimli gerektiriyorsa, DNA fragmanları seyreltmek ve / veya birden fazla kısım kullanın. <ol><li> Yalnız vektör DNA&#39;nın bir denetim hazırlamak (antibiyotik direnç işaretleyici içeren, örneğin DNA parçası) ve su ile hacmini telafi etmek için unutmayın. </li></ol></li><li> 30-60 dakika, 50-55 ° C&#39;de bir termal döngüleyici içinde inkübe. Buz üzerinde değiştirin ve E. dönüşümü ısı-şok kimyasal yetkin hücreler yoluyla coli. Elektrokompenant hücreleri kullanmayın. Yüksek tuz konsantrasyonu, ve nispeten düşük DNA konsantrasyonuhücreler ark neden olabilir. <ol><li> 200 ul kalsiyum-klorür, ticari hazırlanması, yeterli E. için her 20 ul uygulayın coli. 42 ° C&#39;de 30 dakika buz ve ısı şok 60 saniye inkübe </li><li> , Buz 2 dakika geri dön 750 ul SOC veya LB ortamı uygulanır ve 37 ° C sıcaklıkta bir mikro santrifüj tüpü içinde 30 dakika geri çalkalama LB + Kan (veya uygun başka bir antibiyotik) ile ilgili en karışımı ve uygun dilüsyonları Plate. Bu geleneksel ligasyon esaslı klonlama daha yüksek bir arka plan (ve hedef olmayan rekombinasyon olayları daha yüksek bir sayı) neden olabilir ama yaklaşık 10 koloniler taranması için faydalıdır. </li></ol></li><li> Sırası ile klon olduktan sonra, -80 ° C&#39;de bir kısım depolamak </li></ol> Gen tabancası ile Tütün 3. Biolistik Transfeksiyonu Bu vallahi 18,19 kurulmuş olan bir tekniktir. Anahtar adımlar ve farklar aşağıda tarif edilmiştir. <ol><li> 50-100 ml E. büyütün coli ya da 200 ml Agrobacterium. Maxi-hazırlık kültürü. Yaklaşık 1500 ng / ul &#39;lik bir konsantrasyon devam etmek için gereklidir. </li><li> Daha önce tarif edildiği gibi, gen tabancası mermi hazırlayın. Gen Tabancası içine yükleyin. </li><li> Nicotiana benthamiana tütün yaprak epidermal doku transfeksiyonu için, 3 aylık bir bitkinin tabanına yakın büyük bir yaprak seçin. Özenle kesilmiş ve 15 cm Petri kabındaki ıslak kağıt havlu üzerine alt tarafı yukarıya yerleştirin. </li><li> 200-250 psi Gene Gun O basıncını ayarlar. </li><li> Dikkatle yaklaşık 3-5 cm yukarıda, bir yaprağın alt tarafındaki kaburgaların arasındaki Gen Tabancası hedefliyoruz. Güvenlik bırakın ve yaprak parçacıkları sağlar. Her mermi, yaprak üzerinde aynı yerde iki kez kullanılabilir. Yaprak patlar, atmak ve başlangıç, yeni bir yaprak-orada yaprak tokluk bazı farklılıklar nedeniyle böyle bir 12-cm yaprak için, yaklaşık 6 çekim sığdırmak için beklemek vs yaş, nem gibi büyüme koşullarına etmektir. </li><li> Bir üst kaplı yaprak, saklayınBankta düşük ışıkta 2-3 gün boyunca petri. </li><li> UV floresan ile donatılmış bir diseksiyon mikroskop yaprak inceleyin ve GFP&#39;yi tek tek hücreler için arayın. Yaprağın 5-10 mm bölümleri ayır. </li><li> ~ 200 ul% 0.1 Triton X-100 altında bir derin kuyu mikroskop slayt yaprak daldırın. Deterjan yüzeyinde oluşan hava kabarcıklarını önlemeye yardımcı olur ve derin kuyu mikroskop slayt daha büyük bir doku görüntüleme alanı sağlar. </li></ol> Geçiştirilmiş Doku 4. Konfokal Mikroskopi Bu talimatlar her enstrüman için değişir, bu yüzden düzgün eğitim almak esastır. <ol><li> Floresans saptama deneyleri için, 489 nm uyarım lazer ayarlamak ve GFP floresans ve klorofil oto-floresan için 630-700 nm için 500-569 nm photomultiplier dedektörleri ayarlayın. 40x su daldırma objektif kullanarak Görüntü hücreler. </li></ol>

<ol><li>Que, Q., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Trait+stacking+in+transgenic+crops%3A+challenges+and+opportunities%5BTitle%5D)+AND+%22GM+crops%22%5BJournal%5D)">Trait stacking in transgenic crops: challenges and opportunities.</a> GM crops. 1 (4), 220-229 (2010).</li>
<li>Reddy, A. S. N., Rogers, M. F., Richardson, D. N., Hamilton, M., Ben-Hur, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Deciphering+the+plant+splicing+code%3A+experimental+and+computational+approaches+for+predicting+alternative+splicing+and+splicing+regulatory+elements%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Deciphering the plant splicing code: experimental and computational approaches for predicting alternative splicing and splicing regulatory elements.</a> Frontiers in Plant Science. 3 (18), (2012).</li>
<li>Hickey, S. F., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgene+regulation+in+plants+by+alternative+splicing+of+a+suicide+exon%5BTitle%5D)+AND+%22Nucleic+Acids+Research%22%5BJournal%5D)">Transgene regulation in plants by alternative splicing of a suicide exon.</a> Nucleic Acids Research. 40 (10), 4701-4710 (2012).</li>
<li>Syed, N. H., Kalyna, M., Marquez, Y., Barta, A., Brown, J. W. S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Alternative+splicing+in+plants+-+coming+of+age%5BTitle%5D)+AND+%22Trends+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Alternative splicing in plants - coming of age.</a> Trends in Plant Science. 17 (10), 616-623 (2012).</li>
<li>Black, D. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Mechanisms+of+alternative+pre-messenger+RNA+splicing%5BTitle%5D)+AND+%22Annual+Review+of+Biochemistry%22%5BJournal%5D)">Mechanisms of alternative pre-messenger RNA splicing.</a> Annual Review of Biochemistry. 72, 291-336 (2003).</li>
<li>Dinkins, R. D., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Changing+transcriptional+initiation+sites+and+alternative+5%27-+and+3%27-splice+site+selection+of+the+first+intron+deploys+Arabidopsis+protein+isoaspartyl+methyltransferase2+variants+to+different+subcellular+compartments%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Journal%3A+for+Cell+and+Molecular+Biology%22%5BJournal%5D)">Changing transcriptional initiation sites and alternative 5'- and 3'-splice site selection of the first intron deploys Arabidopsis protein isoaspartyl methyltransferase2 variants to different subcellular compartments.</a> The Plant Journal: for Cell and Molecular Biology. 55 (1), 1-13 (2008).</li>
<li>Kebeish, R., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chloroplastic+photorespiratory+bypass+increases+photosynthesis+and+biomass+production+in+Arabidopsis+thaliana%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Biotechnology%22%5BJournal%5D)">Chloroplastic photorespiratory bypass increases photosynthesis and biomass production in Arabidopsis thaliana.</a> Nature Biotechnology. 25 (5), 593-599 (2007).</li>
<li>Maier, A., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenic+Introduction+of+a+Glycolate+Oxidative+Cycle+into+A.+thaliana+Chloroplasts+Leads+to+Growth+Improvement%5BTitle%5D)+AND+%22Frontiers+in+Plant+Science%22%5BJournal%5D)">Transgenic Introduction of a Glycolate Oxidative Cycle into A. thaliana Chloroplasts Leads to Growth Improvement.</a> Frontiers in Plant Science. 3 (38), 1-12 (2012).</li>
<li>Kumar, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Remodeling+the+isoprenoid+pathway+in+tobacco+by+expressing+the+cytoplasmic+mevalonate+pathway+in+chloroplasts%5BTitle%5D)+AND+%22Metabolic+Engineering%22%5BJournal%5D)">Remodeling the isoprenoid pathway in tobacco by expressing the cytoplasmic mevalonate pathway in chloroplasts.</a> Metabolic Engineering. 14 (1), (2012).</li>
<li>Sapir-Mir, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Peroxisomal+localization+of+Arabidopsis+isopentenyl+diphosphate+isomerases+suggests+that+part+of+the+plant+isoprenoid+mevalonic+acid+pathway+is+compartmentalized+to+peroxisomes%5BTitle%5D)+AND+%22Plant+Physiology%22%5BJournal%5D)">Peroxisomal localization of Arabidopsis isopentenyl diphosphate isomerases suggests that part of the plant isoprenoid mevalonic acid pathway is compartmentalized to peroxisomes.</a> Plant Physiology. 148 (3), 1219-1228 (2008).</li>
<li>Voges, M. J., Silver, P. A., Way, J. C., Mattozzi, M. D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Targeting+a+heterologous+protein+to+multiple+plant+organelles+via+rationally+designed+5%27+mRNA+tags%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Biological+Engineering%22%5BJournal%5D)">Targeting a heterologous protein to multiple plant organelles via rationally designed 5' mRNA tags.</a> Journal of Biological Engineering. 7 (20), (2013).</li>
<li>Gibson, D. G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+assembly+of+overlapping+DNA+fragments%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+Enzymology%22%5BJournal%5D)">Enzymatic assembly of overlapping DNA fragments.</a> Methods in Enzymology. 498, 349-361 (2011).</li>
<li>Gibson, D. G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Enzymatic+assembly+of+DNA+molecules+up+to+several+hundred+kilobases%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Enzymatic assembly of DNA molecules up to several hundred kilobases.</a> Nature Methods. 6 (5), 12-16 (2009).</li>
<li>Gibson, D. G., Smith, H. O., Hutchison, C. A., Venter, J. C., Merryman, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Chemical+synthesis+of+the+mouse+mitochondrial+genome%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Chemical synthesis of the mouse mitochondrial genome.</a> Nature Methods. 7 (11), 901-903 (2010).</li>
<li>Lowenson, J. D., Clarke, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Recognition+of+D-aspartyl+residues+in+polypeptides+by+the+erythrocyte+L-isoaspartyl%2FD-aspartyl+protein+methyltransferase.+Implications+for+the+repair+hypothesis%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+Biological+Chemistry%22%5BJournal%5D)">Recognition of D-aspartyl residues in polypeptides by the erythrocyte L-isoaspartyl/D-aspartyl protein methyltransferase. Implications for the repair hypothesis.</a> The Journal of Biological Chemistry. 267 (9), 5985-5995 (1992).</li>
<li>Lanyon-Hogg, T., Warriner, S. L., Baker, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Getting+a+camel+through+the+eye+of+a+needle%3A+the+import+of+folded+proteins+by+peroxisomes%5BTitle%5D)+AND+%22Biology+of+the+Cell+%2F+under+the+auspices+of+the+European+Cell+Biology+Organization%22%5BJournal%5D)">Getting a camel through the eye of a needle: the import of folded proteins by peroxisomes.</a> Biology of the Cell / under the auspices of the European Cell Biology Organization. 102 (4), 245-263 (2010).</li>
<li>Reumann, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Proteome+analysis+of+Arabidopsis+leaf+peroxisomes+reveals+novel+targeting+peptides%2C+metabolic+pathways%2C+and+defense+mechanisms%5BTitle%5D)+AND+%22The+Plant+Cell%22%5BJournal%5D)">Proteome analysis of Arabidopsis leaf peroxisomes reveals novel targeting peptides, metabolic pathways, and defense mechanisms.</a> The Plant Cell. 19 (10), 3170-3193 (2007).</li>
<li>Woods, G., Zito, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preparation+of+gene+gun+bullets+and+biolistic+transfection+of+neurons+in+slice+culture%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Vis.+Exp%22%5BJournal%5D)">Preparation of gene gun bullets and biolistic transfection of neurons in slice culture.</a> J. Vis. Exp. (12), (2008).</li>
<li>Hollender, C. A., Liu, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Bimolecular+Fluorescence+Complementation+%28BiFC%29+Assay+for+Protein-Protein+Interaction+in+Onion+Cells+Using+the+Helios+Gene%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Bimolecular Fluorescence Complementation (BiFC) Assay for Protein-Protein Interaction in Onion Cells Using the Helios Gene.</a> (40), (2010).</li>
<li>Li, M. Z., Elledge, S. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Harnessing+homologous+recombination+in+vitro+to+generate+recombinant+DNA+via+SLIC%5BTitle%5D)+AND+%22Nature+Methods%22%5BJournal%5D)">Harnessing homologous recombination in vitro to generate recombinant DNA via SLIC.</a> Nature Methods. 4 (3), 251-256 (2007).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Bu çalışmada, basit yöntemler bitkilerde çok sayıda hücresel bölümlerin, tek bir transgenik proteini lokalize için tarif edilmiştir. Amaç, Nicotiana benthamiana birden fazla organelde tek bir gen ifade edecek bir yapı tasarlamaktı. Rasyonel stratejiler GFP bazlı DNA konstruktlarının tasarımı, Gibson montaj, Gene Gun yaprak hücrelere plasmidlerin teslimat ve konfokal mikroskobu ile sonuçların gözlenmesi bulunur. Üç farklı kısa, N-terminal etiketler 11 hedef eşzamanlı kloro...

Bu çalışma, bitki hücrelerinin çok organellerde bir raportör proteini ifade etmek için, ancak yalnızca tek bir DNA yapısı ile, burada bir metabolik mühendislik / sentetik biyoloji projedir. Birden fazla konuma proteinleri hedef için bir yaklaşım, çok sayıda klonlama genetik kopya, farklı bir lokalizasyon peptit içeren her içerir. Her kopya tek dönüşümleri 1 çaprazlanması ile, alternatif olarak ardışık yeniden dönüştürülmesinin tarafından tanıtılan, ya da olmalıdır. Bu ek klonlama içerir ve terminaline başına bir lokalizasyon etiketi ile sınırlıdır. Birden fazla yere lokalize protein için başka bir alternatif birleştirme 2-5 geçer. RNA, tek bir genden transkribe edilen, ancak transkriptinin farklı numaralar hücre başına birden fazla şekilde genellikle, farklı işlenir. Bu, tek bir genden transkribe hücreye birden fazla haberci RNA neden olabilir. Bu farklı Messenger RNA, aynı proteinin farklı izoformları için kodlayan, ya da bir çerçeve kayması, tamamen farklı bir protein halinde olabilir. Alternatif yapıştırma yıllardır literatürde tarif edilmiş olmasına rağmen, etki ve korunmuş verici ve alıcı ekleme sitelerinin mekanizmaları sadece daha yakın 6 açıklanacaktır edilmektedir. Bu siteleri daha iyi tarif ediliyor, onlar mühendislik için fırsatlar açmak. Birden organellerde bir proteini ifade ederken bitki metabolik mühendisleri bir meydan okuma ile karşı karşıyayız. Birden fazla organele lokalize olan bir protein için, mühendis ilgi organele yönlendirerek, ayrı bir sinyal sekansı ile aynı gen, her birden çok kez klonlanması gerekir. Üç organellerde tek bir gen için, bu sadece üç genlerdir. Ancak altı gen metabolik yolu için, bu 18 gen, önemli bir çaba klonlama için genişler. Tek alternatif dilinmemiş gen işareti içine birden yerelleştirme dizileri birleştirerekificantly bu çaba azaltır. Örneğin, yeniden mühendislik fotorespirasyon 7,8 ve izoprenoid sentez 9,10 kloroplast ve peroksizomları hem de içerir. Doğal Arabidopsis thaliana sisteminde görüldüğü gibi bizim durumumuzda biz daha önce 6 tarif ekleme sitelerin yararlandı. Bu rasyonel tek başına doğal ek yeri siteleri ayrılan mRNA sekansı yeniden, ancak alternatif olarak eklenmiş-intron (Şekil 1) içinde ya da kloroplast-hedefleme peroksizom etiketler kodlayan dizileri yerleştirilmiş olur. Ifade edilen protein ya da kodlanan pre-mRNA, bir intron (Şekil 1G ve 1 H) olarak eksize edildi bağlı olarak, bir etiket olabilir veya olmayabilir. Bu çalışmada sunulan yapıların tasarımı hakkında daha fazla bilgi için, arkadaşı makale 11 bakın lütfen. Bu hala önemli bir klonlama çaba, Gibson montaj, DNA yapıları klonlama için yeni bir yöntem olduğundan, uinşaat sed. Gibson yöntem ne olursa olsun, kısıtlama siteleri (Şekil 2), 12-14 arasında, herhangi bir sıra için kullanılabilmektedir. Enzimlerin spesifik karışımı, tek aşamalı, izotermal montaj sağlar. Bu yöntemde, çok sayıda çift kollu lineer DNA parçaları, 50 bp ~ örtüşen dizilerine sahip olacak şekilde tasarlanmıştır. Gibson düzeneği enzim karışımı kısmen homolog dizilerin tek kollu maruz bırakılması, lineer DNA parçaları sindirir. Bu kısmi tek sarmallı diziler, hızlı, tek aşamalı, dizi-bağımsız, ligasyon içermeyen alt klonlama reaksiyonu ile sonuçlanan reaksiyon karışımı içinde yeniden tavlanır. Bu çalışma bitki kloroplast, peroksisomlara ve sitosollerde ifade için 1) rasyonel tasarım, alternatif olarak eklenmiş yapıları açıklar, 2) kendi klonlama Gibson meclisin yeni ligasyonu-free yöntemi kullanılarak, 3) Gen Tabancası ile tütün yaprak hücrelerinin içine teslimat ve GFP ile gözlemlendiği üzere, organel hedefleme arası 4) Sonuçve konfokal mikroskopi.

<table><tbody><tr><td>Oligonükleotid primerleri</td><td>IDT</td> <td>(özel)</td> <td>GeneBlocks</td></tr><tr><td></td><td>IDT</td> <td>(özel)</td> <td>500 bp oligonükleotid</td></tr><tr><td>ApE yazılımı</td><td>U Utah</td> <td>(indir)</td> <td>http://biologylabs.utah.edu/jorgensen/wayned/ape/</td></tr> <tr><td>MinElute kiti</td><td>Qiagen</td><td>28004</td><td>PCR ürünlerini saflaştırmak için kullanılır</td></tr><tr><td>QIAprep spin mini hazırlık kiti</td><td>Qiagen</td><td>27104</td><td>Klonlamaya uygun miktarlarda plazmit hazırlamak için kullanılır</td></tr><tr><td>Phusion Master Mix, GC Tamponu</td><td>ile NEB</td><td>M0532S</td><td>İlgilenilen geni PCR ile amplifiye etmek için kullanılır</td></tr><tr><td>Gibson montaj reaksiyon karışımı</td><td>NEB</td><td>E2611L</td><td>Aşağıdaki 9 bileşenin ana karışımı</td></tr><tr><td>1 M Tris-HCl pH7.5</td><td>Teknova</td><td>T1075</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>1 M MgCl2</td><td>G Biosience</td><td>82023-086</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>dNTP karışımı</td><td>Fermentas</td><td>R0192</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>1 M DTT</td><td>Fermentas</td><td>R0861</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>PEG-8000</td><td>Affymetrix</td><td>19966</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>NAD</td><td>Uygulaması</td><td>A1124,0005</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>T5 eksonükleaz</td><td>Epicentre</td><td>T5E4111K</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>Phusion polimeraz</td><td>NEB</td><td>F530S</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>Taq DNA ligaz</td><td>NEB</td><td>M0208L</td><td>Gibson montaj karışımı</td></tr><tr><td>Gibthon.org</td><td></td><td></td><td>Hesaplamaları basitleştirmek için web sitesi</td></tr><tr><td>Plazmid PLUS Maxi kiti</td><td>Qiagen</td><td>12963</td><td>Gen tabancası mermileri için DNA hazırlamak için kullanılır</td></tr><tr><td>Gen Tabancası sistemi</td><td>BioRad</td><td>165-2451</td><td>Gerekli tüm parçaları içerir</td></tr><tr><td>Nicotania benthamiana</td><td>(n/a)</td><td>(n/a)</td><td>Jen Sheen'in hediyesi, MGH</td></tr><tr><td>Konfokal mikroskop</td><td>Leica</td><td>SP5 X MP</td><td>Elde edilen hücrelerin görüntülenmesi</td></tr><tr><td>Derin kuyu slaytları</td><td>Elektron Mikroskobu Bilimleri</td><td>71561-01</td><td>Konfokal görüntüleme için kullanılır</td></tr><tr><td>Bir Plazmid Editörü (ApE) </td><td>Utah </td><td></td> Üniversitesi <td>http://biologylabs.utah.edu/jorgensen/wayned/ape</td></tr><tr><td>Gibthon:Ligasyon hesaplayıcı</td><td></td><td></td><td>http://django.gibthon.org/tools/ligcalc/</td></tr></tbody></table>

gibson meclisi ve gen tabancası kullanarak tütün geçici gen İfadesi

Transient Gene Expression in Tobacco using Gibson Assembly and the Gene Gun

Birden fazla alt-hücresel organellere tek bir hedef protein için, bitkiler tipik olarak, ilgili genleri çoğaltmak ve diferansiyel promoterler ve / veya sinyal sekansları da dahil olmak üzere karmaşık bir düzenleyici stratejiler kullanılarak ayrı ayrı her bir geni ifade eder. Metabolik mühendisleri ve belirli bir organele hedef enzimlerin ilgilenen sentetik biyologlar bir meydan okuma ile karşı karşıyayız: Birden fazla organele lokalize olan bir protein için, mühendis aynı gen birden çok kez klonlamak gerekir. Bu çalışma bu strateji için bir çözüm sunar: mRNA alternatif kırpılmayı sokmak. Bu teknoloji kurulmuş ve peroksizom kloroplast hedefleme dizilerinin yararlanır ve alternatif olarak eklenmiş bir tek mRNA halinde birleştirir. Bazı ek yeri varyantları sitoplazmada peroksisom bazı ve bazı, kloroplast gönderilir. Burada sistem çoklu-organel alternatif eklenmeye hedefleme için tasarlanmıştır. Bu çalışmada, GFP ifade olması bekleniyordurasyonel şekilde tasarlanan 5 &#39;mRNA etiketleri bir dizi kloroplast, sitosol ve peroksisom olarak işlenene. Bu etiketler, heterolog genler, birden çok alt-hücresel organellerde ifade edilmesi gerektiğinde gerekli klonlama miktarını azaltma potansiyeline sahiptir. Bu yapılar önceki çalışmada 11 olarak tasarlanmıştır ve Gibson montaj, kısıtlama enzimleri gerektirmeyen bir ligasyon bağımsız klonlama yöntemiyle klonlanmıştır. Elde edilen plazmidler, bir modifiye protokol ile Gen Tabancası Nicotiana benthamiana yaprak epidermal hücrelere dahil edilmiştir. Son olarak, transforme edilmiş yapraklar konfokal mikroskopi ile gözlemlenmiştir.

Tasarım çaba önemli bir planlama sonucudur. Bu proje için yeni diferansiyel olarak ifade edilen proteinlerin çevrilmiş bir ön-mRNA&#39;nın alternatif uç uca eklenmesi oluşturmak için kullanılmasıdır. Bu proteinler, bu durumda, farklı organeller olarak ifade edilmiştir kloroplast, peroksizom ve / veya Sitosol. Bu alternatif olarak 6 eklenmiş doğal Arabidopsis geni uyarlanmış ve (TriTag-1 ve TriTag-2) alternatif olarak ekson dizileri hedef kloroplast 6 ve peroksizom 17 bilinen yer...

Bu çalışma, seçici olarak BioRad Gene Gun kullanılarak tahlil, bitkilerde hücre-altı organel hedefleyen için yeni bir yöntem tarif eder.

Gibson Meclisi ve Gen Tabancası kullanarak Tütün geçici Gen İfadesi

In order to target a single protein to multiple subcellular organelles, plants typically duplicate the relevant genes, and express each gene separately ...

Aşağıdaki deneyin genel amacı, tütün yaprağı epidermal hücrelerinde GFP etiketli bir raporcu proteinin geçici gen ekspresyonunu gözlemlemektir. Bu, öncelikle kloroplast ve peroksizomlarda eksprese edilecek bir DNA konstrüktü tasarlayarak gerçekleştirilir. Konstrükt daha sonra PCR amplifikasyonu ve Gibson montajı kullanılarak oluşturulur.Ardından, konstrüktü tütün yaprağı epidermal hücrelerine aktarmak için bir gen tabancası kullanılır. Nihayetinde, tütün yaprağının konfokal mikroskopi ile görüntülenmesi, kloroplast ve peroksizomda GFP ekspresyonunu ortaya çıkarır. Bu tekniğin klasik klonlama gibi mevcut yöntemlere göre temel avantajı, restriksiyon enzimlerine ihtiyaç duymamasıdır ve bu sayede PCR ile amplifiye edilebilen her dizi klonlanabilir.Genetik tasarımın esnekliği sayesinde, bu tekniklerin uygulamaları daha geniş bir ölçeğe yayılmaktadır. Tarımsal bitkilerin genetik mühendisliği için bu protokole, bitki hücresi içinde nihai protein ekspresyonunun gerçekleşeceği bölgeleri belirleyerek başlayın. Bu çalışmada amaç, ekspresyonu kloroplast, peroksizom ve sitozole yönlendirmektir.Ardından, ekspresyon konstrüktünü tasarlayın. Konstrükt; tek bir plazmit içerisinde bir promotör, saptanabilir bir gen ve bir terminatör içermelidir. Bu durumda, konstitütif promotör P end cup two, GFP'nin ekspresyonunu yönlendirir ve bunu Nolene Synthe terminatörü veya nos t takip eder.Bu deneyde, kloroplast ve peroksizomlarda ekspresyon için GFP'nin uç terminaline eklenen bir, iki ve üçlü trit etiket serisini test edeceğimizi unutmayın. Gibson montaj yöntemi, çift sarmallı DNA'nın uçlarını kısmen sindirmek ve komşu DNA dizilerinin tamamlayıcı baz çiftlerinin tavlanmasını kolaylaştırmak için önceden hazırlanmış bir karışımdaki birkaç enzimin etkisine dayanır. Nihai yapı, Gibson montajı öncesinde dört PCR reaksiyonunda amplifiye edilmesi gereken üç parçadan oluşur.Birinci ve ikinci reaksiyonlar; GFP NOS T ve bir kanamisin direnç belirteci içeren 8.000 baz çiftlik PORE plazmit vektörünü çoğaltır. Direnç belirteci, bu büyük DNA'yı PCR ile daha kolay çoğaltılabilen iki daha küçük şablona bölmek için uygun bir noktadır. Üçüncü reaksiyon promoter P end cup two'yu, dördüncü reaksiyon ise ape design gibi in silico tasarım yazılımları kullanılarak, her parça arasında 50 baz çiftlik bir örtüşme olacak şekilde baz baz tasarlanan triag one'ı çoğaltır.PCR için primerler sipariş edilirken, 50 baz çiftlik örtüşme bölgesinin her iki yöne 25'er baz çift olacak şekilde primer olarak kullanılması mümkündür. Her bir bileşeni çoğaltmak için PCR uygulandıktan sonra, PCR ürünlerini ayrı ayrı saflaştırın ve distile deiyonize su ile seyreltin. Eğer PCR kalıbı e coli'den elde edilmiş bir mini prep ise, DPN restriksiyon enzimi ile işlem yapmak kontamine kalıp DNA'yı uzaklaştıracaktır. Ardından, her bir DNA parçasının konsantrasyonunu ölçün.Kontrol dahil olmak üzere, birleştirilecek her bir konstrükt için vektör konsantrasyonunu yaklaşık olarak 150 nanogram per mikrolitre seviyesine ayarlayın, dondurucudan 15 mikrolitre Gibson Assembly karışımı alikotu çıkarın ve buz üzerinde çözdürün. online açık kaynaklı araç @gibbon. org kullanarak, fragmanların her birinin ekimolar miktarları için gerekli hacimleri belirleyin.Her bir fragmanın hesaplanan hacmini 15 µL Gibson karışımına ekleyin. Ayrıca, yalnızca vektör DNA'sından oluşan bir kontrol grubu hazırlayın. Her bir reaksiyonun toplam hacmi 20 µL olmalıdır.Gerekirse hacmi ayarlamak için su kullanın. Tüpleri 50 ila 55 °C'de 30 ila 60 dakika inkübe edin. İnkübasyon sonrası tüpleri tekrar buz üzerine yerleştirin.-80 °C dondurucudan, 200 µL ticari kalsiyum klorür kompetan e coli içeren bir mikro santrifüj tüpünü çıkarın ve elinizle hafifçe ısıtın. Ardından, reaksiyonun tamamını (20 µL) e coli'ye ekleyin. Kültürleri 30 dakika boyunca buz üzerinde inkübe edin, ardından 42 °C'lik bir su banyosuna aktararak 60 saniye boyunca ısı şoku uygulayın.Elektro-kompetan hücreler kullanmayın. Nispeten yüksek tuz konsantrasyonu ve düşük DNA konsantrasyonu, transformasyon sonrası hücrelerin ark yapmasına neden olabilir. Kültürleri iki dakika boyunca BUZA geri koyun, ardından 750 µL SOC veya LB besiyeri ekleyin ve 37 °C'de 30 dakika boyunca toparlanmalarına izin verin.Sıradaki plakada, karışımı kan veya diğer uygun antibiyotikli LB plakalarına ekip 37 °C'de gece boyunca inkübe edin ve sekanslama yoluyla 10 koloniyi tarayın. Bu yöntemin, geleneksel ligasyon tabanlı klonlamaya göre daha yüksek bir arka plan ve daha fazla hedef dışı rekombinasyon olayıyla sonuçlanabileceğini unutmayın. Tütünün gen tabancası ile biyotik transfeksiyonu daha önce JoVE'de tanımlanmıştır.Burada, önceki protokollerle karşılaştırıldığında temel adımlar ve farklar gözden geçirilmektedir. Konstrüktlar amplifiye edilip izole edildikten sonra, Woods ve Zeto'nun JoVE makalesinde açıklandığı şekilde gen tabancası mermilerini hazırlayın ve bunları Nicotiana benthamiana tütün yaprağı epidermal dokusunun transfeksiyonu için gen tabancasına yükleyin. Üç ila beş aylık bir bitkinin tabanına yakın, geniş bir yaprak seçin.Uygun göz ve kulak koruyucu ekipman giyerek, parçayı 15 santimetrelik bir Petri kabındaki ıslak kağıt havlular üzerine alt tarafı yukarı gelecek şekilde dikkatlice yerleştirin. Gen tabancasının helyum basıncını 200 ile 250 PSI arasına ayarlayın. Gen tabancasını, yaprağın alt tarafındaki damarların arasına, yaklaşık üç ila beş santimetre yukarısına dikkatlice yönlendirin. Emniyeti açın ve partikülleri yaprağa iletin.Her bir mermiyi yaprağın aynı konumunda iki kez kullanın. Yaprak patlarsa başka bir konuma geçip işlemi tekrarlayın; patlayan yaprağı atın ve yeni bir yaprakla başlayın. Yaş, nem vb. büyüme koşulları nedeniyle yaprak sertliğinde bazı farklılıklar görülebilir.Tüm atışlar tamamlandıktan sonra, yaprağı örtün ve tezgah üzerinde, düşük ışık altında iki ila üç gün boyunca saklayın. Yaprağı, UV floresan ile donatılmış bir diseksiyon mikroskobu altında inceleyin ve GFP eksprese eden tekil hücreleri arayın. GFP eksprese eden hücreler bulunduğunda, diseksiyon makası kullanarak yapraktan dikkatlice beş ila 10 milimetrelik bölümler çıkarın.Her bir yaprak fragmanını, içinde yaklaşık 200 µL %0,1 Triton X 100 bulunan derin kuyucuklu bir mikroskop lamının kuyucuğuna hemen daldırın. Deterjan, yüzeyde hava kabarcıkları oluşmasını önlemeye yardımcı olur ve derin kuyucuklu mikroskop lamı, uygun filtreler ve 40 x su daldırma objektifi ile donatılmış bir konfokal mikroskop kullanılarak hücrelerin daha geniş bir doku görüntüleme alanında görüntülenmesine olanak tanır. Bu çalışmada, üç farklı GFP organel hedefleme yapısı, etiketsiz GFP ve rubis.Coag ile karşılaştırılmıştır.Etiketlenmemiş GFP'nin eksprese edildiği kontrol deneylerinde, geçici olarak transforme edilmiş tek hücrelerdeki GFP floresansı saptanması için GFP konfokal mikroskobu kullanılmıştır. Floresans yalnızca çekirdekte vele sitozolde gözlemlenmekte; ancak yalnızca kloroplaste Rubis Oag transfekte edilmiş bu hücre örneğinde görüldüğü üzere, klorofilin kırmızı otofloresansı ile belirlenen kloroplastta gözlenmemektedir. GFP konstrüktü GFP, büyük organellerde eksprese edilmiştir.Hücre beyazla çerçevelenmiştir. Sarı renk, konstrüktün klorofille kolokalizasyon gösterdiği alanları belirtmekte ve bu görüntüde gösterilen triag bir transfekte hücresinde olduğu gibi konstrüktün kloroplasta hedeflendiğini göstermektedir; GFP ekspresyonu kloroplastta, periferde, sitozolde ve peroksizom olduğu düşünülen küçük noktasal organellerde görülmektedir. Benzer şekilde, triag iki transfekte hücreleri de kloroplast, sitozol ve peroksizomlarda GFP eksprese etmektedir; kloroplast dizisinin düşük kompleksiteli bir bölgesine yerleştirilmiş bir peroksizom sinyalinden oluşan triag üç ise yalnızca kloroplast ve peroksizomda lokalize olmuştur.Bu hücrenin farklı bir yaprak tabakasında olduğuna dikkat edin. Bu şekil, tipik bir tütün yaprağı epidermal hücresinin kompartmanlarında gözlemlenen ekspresyonu özetlemektedir. Hücre içindeki göreceli boyutlar ve konumlar ile gen tabancası transfeksiyonu ve konfokal mikroskopi yoluyla gözlemlenen göreceli ekspresyon seviyeleri gösterilmiştir.Etiketsiz GFP'nin sitozol ve çekirdekte yerleştiğine, PIMT iki GFP kontrolünün kloroplastta yerleştiğine ve triag bir GFP, triag iki GFP ile Triag 3G FP'nin tahmin edildiği gibi kloroplast ve peroksizomda yerleştiğine dikkat edin. Bu videoyu izledikten sonra, Gibson assembly ile bir plazmitin nasıl oluşturulacağı, bunun tütün yapraklarına balistik yöntemle nasıl aktarılacağı ve üç gün içinde GFP ekspresyonunun nasıl gözlemleneceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalısınız. Bu prosedürü uygularken, Gibson assembly için mikrolitre başına 150 nanogram vektör DNA ve gen tabancası mermilerini hazırlamak için nihai DNA konstrüktunuzdan mikrolitre başına 1500 nanogram kullanmayı hatırlamanız önemlidir. Bu prosedürün ardından, geçici ekspresyon yerine stabil gen ekspresyonu elde etmek için agrobacterium transfeksiyonu gibi diğer yöntemler uygulanabilir.

transient-gene-expression-tobacco-using-gibson-assembly-gene

Research

JoVE Journal

Environment

Çevre

Knock-down gen ekspresyonu için bir virüs kaynaklı gen susturulması (VIGS) yöntemi...

Virüs indüklenen gen susturma (VIGS) Nicotiana benthamiana Ve Domates

Bitkiler Geçerli ifade paradigmalar göre daha daha fazla, ölçeklenebilir bir maliyet-etkin ve emniyetli olan, bir ticari bir ölçekte ilgili sayısız farmasötik bir proteinlerin bölgesinin üretimi için bir Roman sistem mü tavsiye edeceksiniz. Bu çalışmada, biz içeren hedef-gen tanıtmak için bir basit ve kullanışlı, henüz ölçeklenebilir bir yaklaşım...

Rekombinant Proteinlerin Yüksek-düzey Geçici İfade için Bitkiler Verimli Agroinfiltration

Virüsün neden olduğu gen susturma, bitkilerin konakçı olmayan direncinde yer alan genleri tanımlamak için yararlı bir araçtır. Konakçı olmayan patojenlere duyarlı gen susturuculu bitkilerin tanımlanmasında GFPuv eksprese eden bakteriyel patojenlerin kullanımını gösteriyoruz. Bu yaklaşım kolay, hızlıdır ve büyük ölçekli taramayı kolaylaştırır ve diğer çeşitli bitki-mikrop etkileşimlerini incelemek için benzer bir protokol uygulanabilir.

Genler belirlenmesi için VIGS-aracılığı ile İleri Genetik Tarama konakçı olmayan Direnç ilgilendim

Agrobacteria (Tütün mozaik virüsü-esaslı) aşı antijenleri ve terapötik proteinleri üretmek için hızlı ve ekonomik bir yaklaşımdır başlatmak vektörleri taşıma ile vakum infiltrasyonu göre Nicotiana bitkilerinde geçici protein üretimi. Biz prosedürü basitleştirilmiş ve bakteri yetiştirme koşulları optimize konak türlerin seçimi, ve RNA susturulması bastırıcılara ko-tanıtarak hedef birikimini geliştirdi.

Optimizasyon ve Kullanımı<em&gt; Agrobacterium</emIn&gt; aracılı Geçici Protein Üretimi<em&gt; Nicotiana</em

Bu bitkilerde monoklonal antikorlar ve raportör proteinlerin geçici transgen ifadesi üzerindeki düzenleyici elemanlar, bitki büyüme ve gelişme parametreleri ve inkübasyon koşullarının etkisini belirlemek ve modellemek için kullanılabilecek deneyler yaklaşımın bir tasarımını tarif eder.

Bir Vaka Çalışması Olarak Tütün Geçici Protein Expression: Deneyler Yaklaşımı Tasarım Kullanma Karmaşık Sistemler Karakterizasyonu

Tütün bitkileri, bir geçici ekspresyon sistemi ile, bir fungal selülaz, TrCel5A üretmek için kullanıldı. Ekspresyon, bir floresan füzyon proteini kullanılarak takip edilebilir, ve protein aktivitesi post-ekspresyon karakterize edilmiştir.

Rekombinant Cellulase Cel5A İfade itibaren<em&gt; Trichoderma reesei</em&gt; Tütün Bitkilerinde

Özel plazmitlerin sentezi emek ve zaman alıcıdır. Bu protokol, özel DNA klonlama prosedürünün işini ve süresini azaltmak için Gibson montaj klonlamasının kullanımını açıklar. Açıklanan protokol ayrıca, geleneksel kes ve yapıştır DNA klonlamasına benzer maliyetle memeli ekspresyonu için güvenilir etiketli protein yapıları üretir.

Plazmid vektörler oluşturulması Gibson tertibatı kullanılarak insan uzama faktör-1α bir promotörün regülasyonu altında FLAG-etiketli Proteinlerinin İfade

Bu çalışmada, hedef insan rekombinant proteininin farklı üretim platformlarındaki ekspresyonu karşılaştırıldı. Geleneksel fermentör bazlı kültürlere ve bitkilere odaklandık, her bir sistemin kurulumunu açıkladık ve rapor edilen sonuçlara dayanarak her platform için doğal sınırları ve avantajları vurguladık.

Bakteriler, Böcek Hücreleri ve Bitki Sistemleri: Rekombinant Protein Farklı Biofactories İfade Karşılaştırmalı Analizi

Hücre altı düzeyde, sinyal olayları gelişimsel ve çevresel ipuçları tarafından dinamik olarak modüle edilir. Burada, dinamik protein-protein etkileşimini izlemek ve bitki hücrelerinde sinyal iletiminin uzamsal organizasyonunu açıklamak için tütün geçici ekspresyon sistemini kullanan bir protokolü açıklıyoruz.

Tütün Geçici İfade Sisteminin Kullanılması bir MAPK sinyal yolu Mekansal Reorganizasyon Görüntüleme

PBIBAC-GW ikili vektör oluşturma transgenik bitkiler sağlam tek kopya eklemeler, kolay bir süreç ile kolaylaştırır. Burada, bir dizi protokol okuyucu transgenik Arabidopsis bitkiler üretme ve bitkiler intactness için sınama işlemi boyunca rehberlik ve ekleme sayısı kopyalamak sunulur.

Transgenik bitkiler BIBAC-GW ikili vektör kullanarak tek kopya ekleme ile oluşturma

Geçici Contegra ifade Nicotiana benthamiana yaprakları biyosentetik enzimlerin 2,3-oxidosqualene yeni yüksek değerli triterpen ürünleri doğru endojen malzemeleri yönlendirebilirsiniz. Burada olduğunu hızlı (5 gün) hazırlık-ölçekli üretim triterpeneler ve bu güçlü bitki tabanlı platformu kullanan analogları için detaylı bir protokol açıklanan.

Partiye Hazırlık bir ölçekte triterpen üretim için geçici Nicotiana Benthamiana ifadede bırakır

Öğrenin, tütün yaprak epidermis hücrelerinde geçici gen ifadesini gözlemlemek için Gibson meclisi ve gen tabancası kullanarak kloroplast ve peroksizomları hedefleyen yöntemi. Bu teknik, restriksiyon enzimleri gerektirmeden esnek genetik tasarım sağlar.

Gibson Meclisi ve Gen Tabancası kullanarak Tütün geçici Gen İfadesi

Daha fazla video keşfet