Name: Lipid Nanotüpler Kan Pıhtılaşma Faktör VIII Sarmal Organizasyonu (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-03T13:45:00.000+00:00
Duration: 12 min 24 s
Description: Keşfedin, kriyoelektron mikroskobisi kullanarak lipid nanotüpler üzerinde organize edilmiş faktör VIII'in membran bağlı yapısını nasıl tanımlayacağınızı. Bu hesaplamalı yöntem, pıhtılaşma biyolojisinde yüksek çözünürlüklü 3D rekonstrüksiyon sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

10SDG3500034 ve UTMB-NCB SSM&#39;ye fonları başlatmak: Bu çalışma, Amerikan Kalp Derneği Ulusal Bilim Geliştirme hibe ile desteklenmektedir. Yazarlar Sealy UTMB Structural Biyoloji Merkezi&#39;nin (en Cryo-EM ve Bilimsel Hesaplama tesisleri kabul <a href="http://www.scsb.utmb.edu">www.scsb.utmb.edu</a> ) yanı sıra, Dr. 2D ve 3D sarmal rekonstrüksiyon algoritmaları ile yardım Steve Lüdtke ve Ed Egelman.

1.. Numune Hazırlama <ol><li> Tampon değişimi, insan Faktör VIII-BDD 14 ve HBS-Ca tampon maddesine karşı domuz FVIII-BDD 15 (20 mM HEPES, 150 mM NaCl, 5 mM CaCl2, pH = 7.4) ve 1.2 mg / ml &#39;ye konsantre edilir. -80 ° C de, protein çözeltisi Ol </li><li> 01:04 w / kloroform w oranı en galactosylceramide (GC) ve fosfatidiliserin (PS) karıştırılması ile lipid nanotüpler (LNT) hazırlayın. , Argon altında, kloroform buharlaştırın ve 1 mg / ml &#39;ye HBS tampon maddesi içinde lipitleri çözünebilir. 4 ° C&#39;de LNT çözüm tutun </li></ol> FVIII-LnT 2. Cryo-elektron Mikroskopi <ol><li> Cryo-EM Numune Hazırlama <ol><li> 300 50 W da 10 saniye boyunca 2 ve O 2 H gaz karışımı içinde Quantifoil R2 / 2 bakır ızgaralar (C tarafı) ağ akıntı Glow </li><li> 01:01 su / çimento oranı ağırlık olarak HBS-Ca tamponu içinde FVIII ve LNT çözüm karıştırınız ve oda sıcaklığında 15 dakika boyunca inkübe edin. </li><li> 2.5 ul bir damlaVitrobot Mark IV nemlendirilmiş bir odada (% 100 nem) &#39;de hidrofil elektron mikroskobu, şebekeye FVIII-LNT numunenin. </li><li> Leke ve flaş sıvı C 2 H 6 ızgara (3,5 saniye için bir leke, leke kuvvet 1) donma, amorf buz elde etmek için sıvı N 2 ile soğutulur. </li><li> Sıvı N 2 (LN2) altında saklama kutuları saklayın ızgaraları. </li></ol></li><li> Cryo-EM Veri Toplama NOT: JEM2100-LaB6 (yıl 2010) elektron mikroskobu, vakum sistemi, aydınlatma sistemi, HT, lens akımları ve böylece-okuma pencereleri ile bir ekrana, ve iki bağlı bir bilgisayardan oluşan bir TEMCON işletim sistemi ile donatılmıştır paneller: SOL ve SAĞ, sütunun her iki tarafına yerleştirilir. Kiriş vardiya X, Y düğmeleri (SHIFT Y, ELEMEK Y) ve çok fonksiyonlu (DEF / Stig) topuzlar hem paneller vardır. SOL panelinde aydınlatma (Lümen Parlaklık) topuzu. SAĞ panelde bulunmaktadır: büyütme (MAG / CAM BOYU) ve odaklama (FOCUS) topuzlar ve üç IMAGing (MAG1, MAG2, LOWMAG) ve kırılma (FARK) modları düğmeleri. Biz alfa 2 de MAG1 bizim veri elde. Cryo-EM veri toplama için gerekli minimum doz aydınlatma koşulları (MDS) SAĞ panelde F6 düğmeleri, üst satır ile F1 ile ayarlanır. Bu protokolde genel ayarları kullanılır: F1 - yükseltmek / düşük ekran, F2 - ARAMA modu, F3 - FOCUS modu, F4 - FOTO modu, F5 - MDS ON / OFF ve F6 - LEVENT BOŞ, radyasyon örneği korumak için kullanılan ışın saptırma tarafından zarar. <ol><li> Cryo-istasyonuna Cryo-tutucu yerleştirin ve tutucu ve LN2 ile kriyo-istasyonunun Dewar doldurun. Sıcaklık -192 ° C, tutucu ucu açık deklanşöre ulaştığında, yeri önceden belirlenmiş yerine Cryo-EM ızgara dondurulmuş ve bir halka kelepçe ile sabitleyin. </li><li> Elektron mikroskobu içine cryo-tutucu yerleştirin. Cryo-tutucu ve LN2 ile, anti-contaminator odasının Dewar doldurun. Tutucu, 30-60 dakika boyunca stabilize etmek için bekleyin. Basın üzerinde F6 vefilamanı açın. ızgara görüntülemek için tutucuya filaman doymuş, F6 tuşuna basın kapalı ve açık deklanşör. </li><li> Basın Low Mag / alfa 1 (200X kadir ayarlanır) ve ızgara üzerinde ince buz alanları bulun. </li><li> Minimum doz (MDS) modu ayarlayabilir ve numune zarar vermeden, düşük elektron dozlarda Cryo-EM veri elde etmek MAG 1/alpha 2&#39;ye geçmek. <ol><li> F2 tuşuna basın arama modunu ayarlamak için. 40.000 x at büyütme ayarlayın. / Å 2 · s - minimal elektron doz brigtness topuzu ~ 0.04 e kirişi büyütün. Basın FARK kırılma moduna geçmek için. MAG / CAM BOYU topuzu ile 120 cm&#39;ye kadar kamera uzunluğunu ayarlayın. Karbon film delikleri lipid nanotüpler var LOWMAG olarak önceden seçilmiş alanlarda ızgara üzerinde alanları bulun. </li><li> F4 tuşuna basın 40,000 X büyütmede Fotoğraf modunu ayarlayın ve 16-25 e dozlarda PARLAKLIK topuzu ile aydınlatma ayarlamak için - / Å 2 · s. Z-yüksekliğini ayarlayarak odak koşullarını ayarlamak için basın Standart Odak butonunaZ YUKARI / AŞAĞI düğmeleri (SAĞ kontrol paneli) ile numune. -1.5 Ile -2.5 um arasında ayarlayın odaksızlık. </li><li> FOTO modunda yansıması için alana gelen ARAMA modunda dijital kamera monitörde LIVE VIEW penceresinde bir kare çizerek ARAMA ve FOTO modu hizalayın. </li><li> F3 tuşuna basın 100.000 X büyütmede Odak modunu ayarlamak için. FOTO modunda yansıması için bölgeyi ışın değil - (5 cm yarıçap ~ 4) ve eksen dışı CCD çipi kapsayacak şekilde aydınlatma odaklanın. FOCUS düğmesi ve DEF / STIG düğme ile görüntü astigmatizma için doğru olan ~ -1.5 ve -2.5 um bulanıklaştırma ayarlayın. </li></ol></li><li> Dijital kamera monitörde LIVE VIEW penceresinde canlı görüntü elde ARAMA modunda yansıması için FVIII-LNT seçin. LIVE VIEW penceresinde çizilen meydanında FVIII-LNT merkezle. </li><li> Fotoğraf moduna geçiş ve Acquir tıklayarak 52.000 X etkin büyütme ve 0.5 sn pozlama CCD kamera, bir dijital görüntü kayıtDijital mikrograf kamera monitörde E düğmesine basın. Görüntü elde etme koşulları gibi görüntü FOTO modunda satın yalnızca açık ışın boş (KEPENK) olarak ayarlanır. </li><li> Hızlı Fourier Dönüşümü (FFT) elde etmek için CTRL-F tuşlarına basarak elde edilen görüntünün kalitesini ve bulanıklaştırma edin. </li></ol></li></ol> 3.. 3D İmar NOT: 2D ve 3D analiz için kullanılan görüntü analiz yazılımı: EMAN2 ve IHRSR serbestçe kullanılabilir. EMAN2 http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN2/Install indirebilirsiniz. Egelman@virginia.edu: IHRSR Yazılım Profesör Egelman elde edilebilir. Nihai IHRSR iyileştirmeler Teksas üzerinde çalıştırılan merkezi cluster computing gelişmiş: http://www.tacc.utexas.edu/ Texas Üniversitesi, Austin. Şekil 1&#39;de gösterilen 3 boyutlu rekonstrüksiyon algoritması iki ana adımdan oluşur: Birinci 2D referans ücretsiz alignme ile sarmal kesimleri (partiküller) homojen bir dizi seçerkennt (RFA) algoritmaları ikinci IHRSR dahil sarmal parametreleri ve arka projeksiyon algoritmalara dayalı bir 3D yeniden elde, Eman 2. uygulanmaktadır. Http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN2: İlk adım Tek Parçacık SPA EMAN2 özel olarak geliştirilen ve dağıtılan edildiği için (algoritmalar) ile 3 boyutlu rekonstrüksiyon için homojen partikül kümelerinin seçilmesi için geliştirilen programlar kullanır. Bu adım, Cryo-EM verilerine adapte edilmiştir. İkinci adım, özellikle yeniden birleştirme Faktörü VIII formları ile elde edilen sarmal düzeneklerinin tipi için tasarlanmıştır IHRSR algoritması ile elde edilir. Bu algoritma, bilimsel literatürde kapsamlı olarak 12 ile belgelenmiştir. <ol><li> Homojen parçacık sarmal yeniden inşası için (sarmal segment) takımları seçmek için http://blake.bcm.edu/eman2/doxygen_html 16: EMAN2 bilimsel görüntü-işleme suite ile 2D görüntü analizi yapın. <ol><li> Straig ile Cryo-EM mikrograflannı seçinht ve dijital kamera yazılımı ve görselleştirme araçları ile helezonik tüpler iyi organize. </li><li> Invert, normalleştirmek ve e2workflow.py GUI X-ray piksel, tek parçacık rekonstrüksiyonu (SPR) seçeneği için filtre: http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN2/Programs/e2projectmanager </li><li> E2helixboxer.py GUI, ters normalize ve X-ışını piksel filtreli görüntüleri içe. Kullanılarak% 90 örtüşme ile 256 x 256 piksel (2.9 Å / pix) de FVIII-LNT sarmal tüpler ve segmentini seçin: http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN2/Programs/e2helixboxer </li><li> Orijinal mikrografiklerinden bulanıklaştırma değerlendirmek ve e2workflow.py dahil e2ctf.py seçeneği ile aynı mikrografiklerinden sarmal kesimleri kontrast transfer fonksiyonunu (CTF) düzeltme (sadece faz düzeltme) geçerlidir: http://blake.bcm. edu/emanwiki/EMAN2/Programs/e2ctf. </li><li> İlk parçacıklar (sarmal kesimleri) oluşturmak e2workflow.py GUI setleri - SPR seçeneği: http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN2/Programs/e2workflow. </li><li> Iter = 8 - &#39;e2refine2d.py: e2refine2d.py algoritması komut aşağıdaki, aynı çap LnT ve sarmal düzenin derecesi (Şekil 2) ile homojen veri setleri seçmek için referans ücretsiz k-ortalama sınıflandırma uygulayarak 2D sınıf ortalamaları hesaplamak - naliref = 5 - nbasisfp = 8 - yolu = r2d_001 - input = INPUT.hdf - ncls = 51 - simcmp = nokta - simalign = rotate_translate_flip - classaligncmp = nokta - classraligncmp = faz - classiter = 2 - classkeep = 0.8 - classnormproc = normalize.edgemean - classaverager = ortalama - normproj-classkeepsig &#39;, buna göre ncls değerinin değiştirilmesi. <ol><li> Sınıf ortalamasının daha az% 80 benzerliği ile parçacıkların belirli bir sınıfın dışındadır, yani &#39;classkeep = 0,8&#39; 8 yineleme üzerinde 150 sınıfların &#39;= 151 NCIS&#39; ayarlanan ilk verileri sınıflandırmak. http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN2/Programs/e2refine2d </li><li> Sınıf ortalamaları partikülleri birleştirmeara veri kümesi oluşturmak için e2display.py içinde belirgin sarmal sapması ile. </li><li> Düzenin aynı çap ve derecesi ile sınıfları ayırt etmek için 50 sınıfların &#39;= 51 NCIS&#39;e&#39; ayarlanan ara veri sınıflandırır. </li><li> Http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN2/Programs/emselector: üç boyutlu rekonstrüksiyon için nihai veri seti oluşturmak için e2display.py düzenin aynı çap ve derecesi ile sınıflardan parçacıkları birleştirme. </li></ol></li></ol></li><li> Egelman 17, 18 anlatıldığı gibi, iteratif Helisel Gerçek Uzay Rekonstrüksiyon (IHRSR) algoritması ile sarmal yeniden gerçekleştirin. <ol><li> Yükselişi tahmin, birleştirilen Fourier FVIII-LNT sarmalın Δz (A), son veri setinde parçacıkların dönüşümü. </li><li> 5 ila ΔΦ artan, sabit Δz ile paralel IHRSR refinements çalıştırarak azimuthal açısını ΔΦ (º) tanımlayın76; 5 ° artışlarla 60 °. </li><li> Bir başlangıç ​​hacminin bir özelliği olmayan silindir ve 3.2.1 &#39;de tarif edildiği gibi başlangıç ​​parametreleri sarmal Δz ve ΔΦ seti, her son veri 100 ardışık IHRSR döngüleri çalıştırın. ve 3.2.2. </li><li> Sınıf nihai veri setinin 2D sınıflandırmadan ortalamalar ve nihai IHRSR yeniden gelen projeksiyonlar arasındaki sarmal parametreleri ve yazışma yakınsama için son hacimleri kontrol edin. </li><li> Nihai asimetrik 3B hacminde görülen asimetrik birim dağılımına karşılık gelen nihai 3B rekonstrüksiyon simetri empoze: insan FVIII-Int 4-kat ve domuz FVIII-Int boyunca 5 kat. Son bir simetriklestirilir 3D yeniden oluşturmak için başka bir 100 arıtma döngüleri çalıştırın. </li><li> &#39;E2proc2d.py &lt;infile&gt; &lt;outfil: ilk, hatta tek ve belirlenen ilgili veri ayırarak hem hacimleri için Fourier Shell korelasyon eğrisini hesaplamake&gt; - bölünmüş = 2 &#39;. 3.2.3 &#39;de tarif edildiği gibi O 100 IHRSR ardışık iyileştirmeler çalıştırın. Tek ve çift veri setlerinden oluşturulan 3D hacimlerinin FSC hesaplayın: &#39;e2proc3d.py evenvolume.mrc fsc.txt - calcfsc = oddmap.mrc&#39;. </li></ol></li><li> Ucsf kimerada FVIII-LNT hacimleri görselleştirmek ve Segment. </li><li><ol><li> Adım 3.2.5 den son hacimleri açın. UCSF Chimera ve ARAÇLAR&gt; SES DATA&gt; SES İZLEYİCİ seçeneğinde 0.005 kontur seviyesini ayarlayın. </li><li> ARAÇLAR&gt; SES DATA&gt; BÖLÜMLERE MAP, MAP BÖLÜMLERE sekmesinde seçin hacmi ve segmentinde ses segment tıklayın. </li><li> Grup kesimleri CTRL + SHIFT ve tıklayarak grup ile seçerek bir birim hücreye karşılık. </li><li> Birim hücre tarafından segmentleri renk ve yapısal özelliklerini vurgulamak için EYLEMLER&gt; RENK seçeneği ile helix. </li></ol></li></ol> 4. Elektron Tomografi <ol><li> Olumsuz Vitray FVIII-LNT Numune Hazırlama <ol> &lt;li&gt; Cryo-EM deneyler gibi FVIII-LNT örnekleri hazırlayın. </li><li> Kriyo-EM deneyleri için 50 ° W olarak, O, 2 ila 10 saniye boyunca 2 H gaz karışımı içinde, karbon kaplı 300 meşlik bakır ızgara (C tarafı üstte) tahliye Glow. </li><li> Şebekeye 6-nm koloidal altın nano partiküller ile 2.5 ul FVIII-LNT süspansiyonu bir damla, fazla sıvıyı leke ve negatif 2 dakika boyunca 5 ul% 1 uranil asetat çözeltisi uygulayarak leke. Izgara kuru aşırı sıvı ve havayı kurulayın. </li></ol></li><li> Elektron Tomografi Veri Toplama <ol><li> Tek eğim tutucu içine ızgara aktarın. </li><li> Elektron mikroskobunda tutucu aktarın. </li><li> 52.000 X etkili büyütmede bir CCD kamera ile +60 ° ve kayıt görüntüleri -60 ° &#39;lik bir açı aralığında 2 ° artışlarla SerialEM yazılımı 19 otomatik eğim serisi toplamak, -6 -10 mikron flulaştırmayla ve 150 elektron doz - 170 electrons / Å 2 · s tomografisinde başına. </li></ol></li><li> FVIII-LnT Elektron Tomografi İmar Not: 4.2 edinilen pFVIII-LNT ve hFVIII-LNT eğik serisini yeniden yapılandırma. http://bio3d.colorado.edu/imod/doc/etomoTutorial.html: öğretici aşağıdaki IMOD yazılımın ETomo seçeneği ile <ol><li> Bir terminal penceresini kullanarak, 3DMOD yılında tomogram açın. http://bio3d.colorado.edu/imod/doc/3dmodguide.html. </li><li> Bin IMOD BINVOL ile 4 ile tomogram tomografisinde boyutunu azaltmak için emrediyorum. </li><li> IMOD ROTATEVOL komutunu kullanarak binned tomografisinde Y-ekseni boyunca lipid nanotüp döndürmek için doğru açıyı seçin. </li><li> IMOD ROTATEVOL komutu ile tam tomogram döndürün. </li><li> IMOD CLIP RESIZE komutu ile Y-ekseni boyunca yönlendirilmiş seçilen lipid nanotüp kırpın. </li><li> 3DMOD ile kırpılmış alt tomogram açın. </li><li> Boyunca Faktör VIII moleküllerin düzenleme görselleştirmek için tomografisinde tıklayınZ-ekseninde ve alt tomogram hacminde Y ekseni boyunca dilimleri. </li></ol></li></ol>

<ol><li>Henderson, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Realizing+the+potential+of+electron+cryo-microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Quarterly+Reviews+of+Biophysics%22%5BJournal%5D)">Realizing the potential of electron cryo-microscopy.</a> Quarterly Reviews of Biophysics. 37, 3-13 (2004).</li>
<li>Fujiyoshi, Y., Unwin, N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Electron+crystallography+of+proteins+in+membranes%5BTitle%5D)+AND+%22Current+opinion+in+structural+biology%22%5BJournal%5D)">Electron crystallography of proteins in membranes.</a> Current opinion in structural biology. 18, 587-592 (2008).</li>
<li>Toole, J. J., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Molecular+cloning+of+a+cDNA+encoding+human+antihaemophilic+factor%5BTitle%5D)+AND+%22Nature%22%5BJournal%5D)">Molecular cloning of a cDNA encoding human antihaemophilic factor.</a> Nature. 312, 342-347 (1984).</li>
<li>Fay, P. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Factor+VIII+structure+and+function%5BTitle%5D)+AND+%22International+journal+of+hematology%22%5BJournal%5D)">Factor VIII structure and function.</a> International journal of hematology. 83, 103-108 (2006).</li>
<li>Stoilova-McPhie, S., Lynch, G. C., Ludtke, S. J., Pettitt, B. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Domain+organization+of+membrane-bound+factor+VIII%5BTitle%5D)+AND+%22Biopolymers%22%5BJournal%5D)">Domain organization of membrane-bound factor VIII.</a> Biopolymers. , (2013).</li>
<li>Pipe, S. W. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Hemophilia%3A+new+protein+therapeutics%5BTitle%5D)+AND+%22Hematology+%2F+the+Education+Program+of+the+American+Society+of+Hematology.+American+Society+of+Hematology.+Education+Program%22%5BJournal%5D)">Hemophilia: new protein therapeutics.</a> Hematology / the Education Program of the American Society of Hematology. American Society of Hematology. Education Program. 2010, 203-209 (2010).</li>
<li>Gatti, L., Mannucci, P. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Use+of+porcine+factor+VIII+in+the+management+of+seventeen+patients+with+factor+VIII+antibodies%5BTitle%5D)+AND+%22Thrombosis+and+haemostasis%22%5BJournal%5D)">Use of porcine factor VIII in the management of seventeen patients with factor VIII antibodies.</a> Thrombosis and haemostasis. 51, 379-384 (1984).</li>
<li>Parmenter, C. D., Cane, M. C., Zhang, R., Stoilova-McPhie, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Cryo-electron+microscopy+of+coagulation+Factor+VIII+bound+to+lipid+nanotubes%5BTitle%5D)+AND+%22Biochemical+and+biophysical+research+communications%22%5BJournal%5D)">Cryo-electron microscopy of coagulation Factor VIII bound to lipid nanotubes.</a> Biochemical and biophysical research communications. 366, 288-293 (2008).</li>
<li>Parmenter, C. D., Stoilova-McPhie, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Binding+of+recombinant+human+coagulation+factor+VIII+to+lipid+nanotubes%5BTitle%5D)+AND+%22FEBS+letters%22%5BJournal%5D)">Binding of recombinant human coagulation factor VIII to lipid nanotubes.</a> FEBS letters. 582, 1657-1660 (2008).</li>
<li>Wassermann, G. E., Olivera-Severo, D., Uberti, A. F., Carlini, C. R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Helicobacter+pylori+urease+activates+blood+platelets+through+a+lipoxygenase-mediated+pathway%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+cellular+and+molecular+medicine%22%5BJournal%5D)">Helicobacter pylori urease activates blood platelets through a lipoxygenase-mediated pathway.</a> Journal of cellular and molecular medicine. 14, 2025-2034 (2010).</li>
<li>Wilson-Kubalek, E. M., Chappie, J. S., Arthur, C. P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Helical+crystallization+of+soluble+and+membrane+binding+proteins%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+enzymology%22%5BJournal%5D)">Helical crystallization of soluble and membrane binding proteins.</a> Methods in enzymology. 481, 45-62 (2010).</li>
<li>Egelman, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Reconstruction+of+helical+filaments+and+tubes%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+in+enzymology%22%5BJournal%5D)">Reconstruction of helical filaments and tubes.</a> Methods in enzymology. 482, 167-183 (2010).</li>
<li>Lusher, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Development+and+introduction+of+recombinant+factor+VIII--a+clinician%27s+experience%5BTitle%5D)+AND+%22Haemophilia+%3A+the+official+journal+of+the+World+Federation+of+Hemophilia%22%5BJournal%5D)">Development and introduction of recombinant factor VIII--a clinician's experience.</a> Haemophilia : the official journal of the World Federation of Hemophilia. 18, 483-486 (2012).</li>
<li>Thim, L., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Purification+and+characterization+of+a+new+recombinant+factor+VIII+%28N8%29%5BTitle%5D)+AND+%22Haemophilia+%3A+the+official+journal+of+the+World+Federation+of+Hemophilia%22%5BJournal%5D)">Purification and characterization of a new recombinant factor VIII (N8).</a> Haemophilia : the official journal of the World Federation of Hemophilia. 16, 349-359 (2010).</li>
<li>Doering, C. B., Healey, J. F., Parker, E. T., Barrow, R. T., Lollar, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((High+level+expression+of+recombinant+porcine+coagulation+factor+VIII%5BTitle%5D)+AND+%22The+Journal+of+biological+chemistry%22%5BJournal%5D)">High level expression of recombinant porcine coagulation factor VIII.</a> The Journal of biological chemistry. 277, 38345-38349 (2002).</li>
<li>Tang, G., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((EMAN2%3A+an+extensible+image+processing+suite+for+electron+microscopy%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+structural+biology%22%5BJournal%5D)">EMAN2: an extensible image processing suite for electron microscopy.</a> Journal of structural biology. 157, 38-46 (2007).</li>
<li>Egelman, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+robust+algorithm+for+the+reconstruction+of+helical+filaments+using+single-particle+methods%5BTitle%5D)+AND+%22Ultramicroscopy%22%5BJournal%5D)">A robust algorithm for the reconstruction of helical filaments using single-particle methods.</a> Ultramicroscopy. 85, 225-234 (2000).</li>
<li>Egelman, E. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+iterative+helical+real+space+reconstruction+method%3A+surmounting+the+problems+posed+by+real+polymers%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+structural+biology%22%5BJournal%5D)">The iterative helical real space reconstruction method: surmounting the problems posed by real polymers.</a> Journal of structural biology. 157, 83-94 (2007).</li>
<li>Mastronarde, D. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Automated+electron+microscope+tomography+using+robust+prediction+of+specimen+movements%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+structural+biology%22%5BJournal%5D)">Automated electron microscope tomography using robust prediction of specimen movements.</a> Journal of structural biology. 152, 36-51 (2005).</li>
<li>Stoilova-McPhie, S., Villoutreix, B. O., Mertens, K., Kemball-Cook, G., Holzenburg, A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((3-Dimensional+structure+of+membrane-bound+coagulation+factor+VIII%3A+modeling+of+the+factor+VIII+heterodimer+within+a+3-dimensional+density+map+derived+by+electron+crystallography%5BTitle%5D)+AND+%22Blood%22%5BJournal%5D)">3-Dimensional structure of membrane-bound coagulation factor VIII: modeling of the factor VIII heterodimer within a 3-dimensional density map derived by electron crystallography.</a> Blood. 99, 1215-1223 (2002).</li>
<li>Goddard, T. D., Huang, C. C., Ferrin, T. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Visualizing+density+maps+with+UCSF+Chimera%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+structural+biology%22%5BJournal%5D)">Visualizing density maps with UCSF Chimera.</a> Journal of structural biology. 157, 281-287 (2007).</li>
</ol>

Yazarlar, hiçbir rakip mali ilgi var ve onlar bu yazının yayınlanmış işlemlerin herhangi ilgili olarak doğrudan temasa geçilebilir beyan.

Bu çalışmada, bir yöntem son derece homolog proteinlerin iki zara bağlı kuruluşlar arasında ayırt etmek için sunulmuştur: İnsan ve domuz FVIII kendini monte insan vücudunda karşılaşılan koşullarda lipid nanotupler on. Açıklanan prosedür, insan ve domuz FVIII başarıyla en kritik adımdır, lipid nanotüpler helozonik düzenlenmektedir. Sonraki kritik adım yakınındaki sıvı N 2 sıcaklıkta flaş donma sonucu ince amorf buz örnek korumaktır. Amorf ve buz LN2 sıca...

Kan pıhtılaşması, Faktör VIII (FVIII) altı alanda düzenlenmiş 2332 amino asitlerin büyük bir glikoproteindir: A1-A2-B-A3-C1-C2-3. Trombin aktivasyon FVIII zara bağlı Tenase kompleksi içinde faktör IXa kofaktörünün olarak hareket üzerine. Bir zar-bağlı şekilde aktive FIXa FVIII (FVIIIa) bağlanması, FIXa proteolitik verimliliği etkili kan pıhtılaşmasının 4 için çok önemlidir 10&#39;dan fazla 5 kez, geliştirir. FVIII koagülasyon ve Tenase kompleks oluşumunda oynadığı önemli rolüne rağmen, fonksiyonel membran-bağlı FVIII yapı çözülecek henüz. Bu adres için, yüksek afiniteli 8, 9, FVIII bağlayıcı ve aktif trombosit yüzeyi benzeyen edebilen fosfatidilserin (PS) zengin bir lipid iki katmanlı nanotüpler (LNT), 10 geliştirilmiştir. LnT bağlı FVIII&#39;ünün Ardıl sarmal örgütü effecti olduğu kanıtlanmıştırCryo-EM 5 ile FVIII membran bağlı devlet yapısının belirlenmesi için ettik. Fonksiyonel LNT Cryo-EM, 11, 12 yolu ile protein-protein ve helisel şekilde düzenlenmiş zara bağlı proteinler, protein-membran etkileşimi incelemek için ideal bir sistem bulunmaktadır. Numune fizyolojik bir ortamda (tampon, membran, pH) en yakın olarak korunur gibi Cryo-EM katkı maddeleri ve izotoplar olmadan, örneğin X-ışını kristalografisi ve NMR yapı gibi geleneksel yöntemlere göre bir avantaja sahiptir. LNT boyut, şekil ve bileşimin Tenase kompleksler in vivo monte aktif trombositlerin pseudopodia yakından benzer olarak FVIII durumunda, bu teknik ile zara-bağlı yapısını inceleyerek daha da daha fazla fizyolojik olarak önemlidir. Kusur ve FVIII neden Hemofili A, insan nüfusu 4, 6 1 5,000 erkekleri etkileyen ciddi bir kanama bozukluğu eksikliği. Çoğu eHemofili A için etkili oldukları tedavi rekombinant insan FVIII&#39;ünün (hFVIII) yaşam boyu uygulanmasıdır. Rekombinant FVIII Hemofili A tedavisinin önemli bir komplikasyon Hemofili A hastalarının 13 yaklaşık% 30 etkileyen insan formuna engelleyici antikorların gelişmedir. Bu durumda, domuz FVIII (pFVIII) konsantre FVIII insan ve insan FIXa 7 ile form fonksiyonel kompleksleri karşı inhibitör antikorlar ile domuz FVIII görüntüler, düşük çapraz reaktiflik olarak kullanılır. Domuz ve insan FVIII formları hem de zara bağlı örgüt kurma FVIII kofaktör fonksiyon ve kan hemostaz için etkileri yapısal temelini anlamak önemlidir. Bu çalışmada, lipid nanoteknoloji, Cryo-EM, ve iki son derece homolog FVIII formlarının zara bağlı organizasyon çözmek için tasarlanmış bir yapı analizi bir arada tarif eder. Helezonik organize porci için sunulan Cryo-EM veri ve 3D yapılarınegatif yüklü Int üzerinde ne ve insan FVIII FVIII yapı tayini ve zara bağlı pıhtılaşma faktörleri ve fizyolojik bir ortamda zar kompleksleri için temel olarak kullanmak için önerilen nanoteknoloji potansiyelini göstermektedir.

<table><tbody><tr><td>LaB6</td><td>JEOL Ltd. ile JEM2100.</td><td>JEM-2100</td>, TEMCON yazılımı JEOL Ltd. ile <td>200 kV'da çalıştırıldı</td></tr><tr><td></td><td>.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Gatan626 Kriyo tutucu</td><td>Gatan, Inc.</td><td>626.DH</td><td>-175 dereceye kadar soğutuldu; </td></tr><tr><td>Sıcaklık kontrol ünitesi Gatan</td><td>, Inc.</td> ile C<td></td><td></td></tr><tr><td>Gatan 4K x 4K CCD kamera</td><td>Gatan, Inc.</td><td>US4000</td><td>4,096 x 4,096 piksel, 15 &mu'da; m/piksel fiziksel çözünürlük</td></tr><tr><td>Solarus Model 950 plazma temizleyici</td><td>Gatan, Inc.</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Vitrobot Mark IV</td><td>FEI</td><td></td><td></td></tr><tr><td>Karbon kaplı 300 gözenekli 3 mm bakır ızgara</td><td>Ted Pella</td><td>01821</td><td>plazma yüksek güçlü</td></tr><tr><td>Quantifoil R2/2 300 gözlü</td><td>Elektron Mikroskobu Bilimleri</td><td>Q225-CR2</td><td>Karbon kaplı 300 gözlü Cu ızgaralar, 2 mm çapında delikler&nbsp;</td></tr><tr><td>Uranil asetat dihidrat</td><td>Ted Pella</td><td>19481</td><td>% 1 çözelti, filtrelenmiş</td></tr><tr><td>Galaktosil seramid</td><td>Avanti Polar Lipids Inc.</td><td></td><td></td>860546</tr><tr><td>Dioleoil- sn-glisero-fosfo-L-serin</td><td>Avanti Polar Lipids Inc.</td><td></td><td></td>840035</tr><tr><td>EM yazılımı Digital Micrograph</td><td>Gatan, Inc.</td><td></td><td><a href="http://www.gatan.com/DM/">http://www.gatan.com/DM/</a></td></tr><tr><td>EM yazılımı EMAN</td><td>ücretsiz indirme</td><td></td><td><a href="http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN/">http://blake.bcm.edu/emanwiki/EMAN/&nbsp; </a</td></tr><tr><td>>EM yazılımı Örümcek</td><td>ücretsiz indirme</td><td></td><td><a href="http://spider.wadsworth.org/spider_doc/spider/docs/spider.html">http://spider.wadsworth.org/spider_doc/spider/docs/spider.html</a></td></tr><tr><td>EM yazılımı IHRSR</td><td>ücretsiz indirme</td><td></td><td>Edward H. Egelman'dan edinilebilecek programlar http://people.virginia.edu/~ehe2n/</td></tr> <tr><td>EM yazılımı (IMOD)</td><td>ücretsiz indirme</td><td></td><td><a href="http://bio3d.colorado.edu/imod/">http://bio3d.colorado.edu/imod/&nbsp; </a</td></tr><tr><td>>EM yazılımı (SerialEM)</td><td>ücretsiz indirme</td><td></td><td><a href="ftp://bio3d.colorado.edu/pub/SerialEM/">ftp://bio3d.colorado.edu/pub/SerialEM/</a></td></tr><tr><td>UCSF-Chimera</td><td>ücretsiz indirme</td><td></td><td><a href="http://www.cgl.ucsf.edu/chimera/download.html">http://www.cgl.ucsf.edu/chimera/download.html</a></td></tr></tbody></table>

lipid nanotüpler kan pıhtılaşma faktör viii sarmal organizasyonu

Helical Organization of Blood Coagulation Factor VIII on Lipid Nanotubes

<html> Kriyo-elektron mikroskobu (Cryo-EM) 1 bir hidratlı eyalet ve zar ortamı 2 protein ve komplekslerinin fonksiyonel yapısını araştırmak için güçlü bir yaklaşımdır. Pıhtılaşma Faktör VIII (FVIII) 3 bir çok etki alanı, kan plazma glikoproteinidir. Ciddi bir kanama hastalığıdır - kusur veya FVIII eksikliği Hemofili A tipi için nedenidir. Proteolitik aktivasyonu üzerine, Faktör VIII, normal kan pıhtılaşması 4 için kritik olan, negatif yüklü trombosit membran ilgili serin proteaz Faktör IXa bağlanır. FVIII koagülasyon oynadığı önemli rolüne rağmen, zar bağlı devlet için yapısal bilgiler eksik 5&#39;tir. Yeniden birleştirici FVIII konsantre Hemofili A tipi karşı en etkili bir ilaçtır ve ticari olarak temin edilebilen FVIII insan ya da domuz, insan Faktör IXa 6,7 ile her oluşturan işlevsel kompleksleri olarak ifade edilebilir. &quot;&gt; Bu çalışmada, Cryo-elektron mikroskopisi (Cryo-EM) oluşan bir kombinasyon mevcut, lipid nanoteknoloji ve yapı analizleri, iki yüksek ölçüde homolog FVIII formlarının zara-bağlı yapısını çözmek başvuran. İnsan ve domuz laboratuarımızda gelişmiş metodoloji Sarmal olarak negatif yüklü lipid nanotüpler (LNT) üzerindeki iki fonksiyonel yeniden birleştirici FVIII formları düzenlemek için tarif edilmektedir. temsil eden sonuçlar yaklaşım sırası de yüksek ölçüde homolog iki (% 86 sekans özdeşliği arasındaki sarmal kuruluşta farklılıkları tanımlamak için yeteri kadar hassas olduğunu göstermektedir ) proteinleri. helezoni örgüt, Cryo-EM ve elektron tomografi (ET) veri toplama için ayrıntılı protokolleri., iki boyutlu (2B verilir) ve üç boyutlu (3D) yapı analizleri, insan ve domuz 3D rekonstrüksiyonlar elde etmek için uygulanır FVIII-LNT tartışılmaktadır. sunulan insan ve domuz FVIII-LNT yapılar önerilen yöntemin potansiyel calculat göstermekYüksek çözünürlükte kan pıhtılaşma faktörü VIII e fonksiyonel, zara bağlı organizasyonu.

Rekombinant insan ve domuz FVIII başarılı bir şekilde negatif olarak aktive edilmiş trombosit yüzeyi benzeyen, bir iki-tabaka LNT şarj helezon şeklinde düzenlenmiştir., Insan ve domuz-FVIII Int sarmal düzenleme (Şekil 2), toplanan dijital mikrograflar ile tutarlıdır. Kontrol LNT ve insan ve domuz-FVIII LNT sarmal borular seçilir ve e2helixboxer.py GUI ve e2workflow.py GUI, tek parçacık seçeneği (Tablo 1) ile oluşturulan ilk veri setleri ile sınıflandırılmıştır. <p c...

İnsan ve domuz: İki yüksek ölçüde homolog FVIII formlarının zara-bağlı yapısını çözmek için uygulanan Cryo-elektron mikroskobu, lipid nanoteknoloji, ve yapı analizleri bir arada mevcut. Helezonik negatif yüklü lipid nanotüpler (LNT) üzerine iki fonksiyonel rekombinant FVIII formları düzenlemek için laboratuvarda geliştirilen metodoloji açıklanmıştır.

Lipid Nanotüpler Kan Pıhtılaşma Faktör VIII Sarmal Organizasyonu

Cryo-electron microscopy (Cryo-EM)1 is a powerful approach to investigate the functional structure of proteins and complexes in a hydrated state and ...

Bu prosedürün genel amacı, kriyo-elektron mikroskobu ile lipid nanotüpler üzerinde düzenlenen faktör VIII helikopterinin yapısının nasıl tanımlanacağını göstermektir. Bu, ilk olarak lipid nanotüpler üzerinde sarmal saflaştırılmış faktör VIII'in düzenlenmesi ve sıvı nitrojen sıcaklığında ve düşük elektron dozlarında kriyo-elektron mikroskobu verilerinin toplanmasıyla gerçekleştirilir. Daha sonra, faktör VIII membran bağlı yapı, tek parçacıklar ve sarmal 3D rekonstrüksiyon algoritmalarının birleştirilmesiyle hesaplanır.Daha sonra elektron tomografisi verileri toplanır ve 3D rekonstrüksiyon oluşturulur. Sonuç olarak, hesaplanan faktör VIII lipid nano tüp yapıları, 3D hacimlerin bölümlere ayrılması ve bunların tomografi rekonstrüksiyonları ile karşılaştırılmasıyla doğrulanır. Gösterilen yöntem, faktör VIII'in zara bağlı organizasyonunun ne olduğu ve pıhtılaşmadaki işlevi ile nasıl ilişkili olduğu gibi yapısal biyoloji ve kan pıhtılaşması alanındaki kilit soruyu yanıtlamaya yardımcı olabilir.GM 2100 laboratuvar altı, elektron mikroskobuna bağlı bir bilgisayardan oluşan bir TE con işletim sistemi ile donatılmıştır. Vakum sistemini, aydınlatma sistemini, HT lens akımlarını okuyan pencereleri olan bir ekran ve kolonun her iki yanına yerleştirilmiş sağda ve solda iki panel, ışın kaydırma, XY düğmeleri ve çok işlevli veya sağır çubuk düğmeleri her iki panelde de bulunmaktadır. Sol panelde aydınlatma veya parlaklık düğmesi bulunur.Sağ panel, büyütme ve odak düğmelerini ve görüntüleme mag bir, mag iki ve düşük mag için üç düğmeyi ve kırınım modu için bir düğmeyi barındırır. Bu protokol için, genel ayarları kullanarak alfa ikide mag one'da veri alın. Sağ panelin üst sırasında bulunan F1 ila F altı düğmesiyle kriyo EM veri toplama için gereken minimum doz aydınlatma koşullarını veya MDS'yi ayarlayın.Ekranı yükseltmek veya alçaltmak için F1 tuşunu, arama modu için F iki ve odaklanmak için F üç tuşunu kullanın. Fotoğraf modu için F dört, MDS'yi kapatmak ve açmak için F beşi ve ışını saptırarak numuneyi radyasyon hasarından korumak için kullanılan ışın boşluğu için F altıyı seçin. Kriyo EM numunelerini hazırladıktan sonra, metin protokolüne göre, kriyo tutucuyu kriyo istasyonuna yerleştirin ve sıvı nitrojen ile tutucunun dozerini ve kriyo istasyonunu doldurun.Sıcaklık eksi 192 santigrat dereceye ulaştığında, tutucu ucundaki deklanşörü açın, önceden donmuş kriyo EM ızgarasını belirlenen yere yerleştirin ve sabitlemek için bir halka cl kullanın.amp. Ardından, kriyo tutucuyu elektron mikroskobuna yerleştirin ve kriyo tutucunun ve anti atör odasının doerini yeniden doldurmak için sıvı nitrojen kullanın. Tutucu 30 ila 60 dakika stabilize olduktan sonra filamenti açın.Filament doyduğunda, F altıya basın ve tutucudaki deklanşörü açın. Izgarayı görüntülemek için düşük mag alpha one'a basın ve ızgara üzerinde ince buzlu alanları bulun. Ardından, minimum dozu veya MDS modunu ayarlamak için mag bir, alfa ikiye geçin ve numuneye zarar vermemek için düşük elektron dozlarında kriyo EM verilerini elde edin.Arama modunu ayarlamak ve büyütmeyi 40.000 x olarak ayarlamak için F iki'yi seçin. Işını, angstrom çarpı saniye başına yaklaşık 0.04 elektronluk minimum elektron dozuna büyütmek için parlaklık düğmesini kullanın. Ardından, mag kam uzunluk düğmesi ile kırınım moduna geçmek için diferansiyele basın.Kamera uzunluğunu 120 santimetre olarak ayarlayın. Ardından, önceden seçilmiş alanlar içindeki karbon filmin deliklerinde lipid nanotüpleri bulunan ızgara üzerindeki alanları bulun. Ardından, fotoğraf modunu 40.000 x büyütmede ayarlamak için F dörde basın ve aydınlatmayı angstrom kare çarpı saniye başına 16 ila 25 elektron dozlarında ayarlamak için parlaklık düğmesini kullanın.Ardından, odak koşullarını ayarlamak için standart odak düğmesine basın, Z yukarı aşağı düğmeleriyle numunenin Z yüksekliğini ayarlayın Odak bozmayı negatif 1,5 ile negatif 2,5 mikrometre arasında ayarlayın. Fotoğraf modunda görüntülenecek alana karşılık gelen dijital kamera monitöründeki canlı görüntü penceresinde arama modunda bir kare çizerek arama ve fotoğraf modunu hizalayın, odak modunu 100.000 x büyütmeye ayarlamak için F üç düğmesine basın. Ardından, görüntülenecek alanı ışınlamamak için aydınlatmayı CCD çipini kaplayacak ve eksen dışına odaklayın.Fotoğraf modunda, gerekirse görüntünün astigmatizmasını düzeltmek için negatif 1,5 ve negatif 2,5 mikrometre arasındaki odak bozulmasını ayarlayın. Arama modunda, dijital kamera monitörünün ortasındaki canlı görüntü penceresinde canlı görüntü alarak görüntülenecek F sekiz L ve T'yi, canlı görüntü penceresinde çizilen karede F sekiz L ve T'yi seçin. Fotoğraf moduna geçin ve dijital mikrograf kamera monitöründeki satın al düğmesine tıklayın.CCD kamerada dijital bir görüntü kaydetmek için, elde edilen görüntünün kalitesini ve odak bozukluğunu kontrol etmek üzere hızlı bir Fourier dönüşümü elde etmek için CTRL F tuşuna basın. Metin protokolüne göre 2D görüntü analizi ve sarmal rekonstrüksiyon gerçekleştirmek için ücretsiz bilimsel görüntüleme işleme yazılımları Eman two ve I-H-R-S-R'ı kullandıktan sonra. F sekiz, L ve T birimlerini görselleştirmek ve bölümlere ayırmak için UCSF cera select araçları, hacim verileri segment haritasında son 3B rekonstrüksiyonları açın ve segment haritası sekmesinde, hacim verilerini segmentlere ayırmak için hacmi seçin ve segmenti tıklayın.Ardından kontrol vardiyasına basın ve bir birim hücreye karşılık gelen segmentleri gruplandırmak için gruba tıklayın. Yapısal özellikleri vurgulamak için, segmentleri birim hücre ve sarmala göre renklendirmek için eylemler rengini seçin. Elektron tomografisi verilerini toplamak için, negatif lekeli elektron mikroskobu ızgarası, tutucuyu elektron mikroskobu eğimine aktarmadan önce tek bir eğim tutucusuna aktarılır.Lipid nanotüpler üzerinde müttefik olarak organize edilmiş domuz faktörü VIII serisi, seri EM yazılımı ile toplandı. Metin protokolüne göre, Tom IM'de yeniden yapılandırıldı ve imad bin Val'i kullanmak için boyutunu dört azaltmak için 3D modda görselleştirildi, ardından lipit nano tüpü Y ekseni boyunca döndürmek için uygun açıyı seçmek için IM mod döndürme vol komutunu kullanın ve IM mod klip yeniden boyutlandırma komutu kırpma ile tam tommo'yu döndürün, Y ekseni boyunca seçilen lipid nano tüp, kırpılmış alt tommo'yu açmak için 3D modunu kullanır. Son olarak, faktör VII moleküllerinin Z eksenindeki dilimler boyunca ve alt tomo hacmindeki Y ekseni boyunca düzenini görselleştirmek için Tommo Graham'a tıklayın.Burada gösterildiği gibi, rekombinant insan ve domuz F sekizleri, aktive edilmiş trombosit yüzeyine benzeyen negatif yüklü tek çift katmanlı ltler üzerinde başarılı bir şekilde organize edildi. Bu şekil, zara bağlı insan ve domuz F sekizlerinin sarmal sırasının ve en iyi kontrol LNT ve F sekiz LNT 2D sınıf ortalamalarındaki lipit çift tabakasının iyi tanımlanmış olduğunu ve iki protein arasındaki sarmal organizasyondaki varyasyonları ortaya çıkardığını göstermektedir. Bu paneller, son insan ve domuz F sekiz L ve T veri setlerinden 1000 temsili parçacıkla gerçekleştirilen insan ve domuz F sekiz L ve T için ilk 3D rekonstrüksiyonları temsil eder, burada insan ve domuz F sekiz LNT için foer kabuğu korelasyon grafikleri, bu şekilde 0,5'e eşit bir Fourier kabuğu korelasyonunda 20,5 angstrom çözünürlüğünü gösterir.Son ciltler, sarmal eksen etrafında organize edilmiş sekiz insan F sekiz ve 10 domuz F sekiz zara bağlı molekülü göstermektedir. Her insan F sekiz molekülü 41.2 angstrom çevrilir ve bir öncekinden 42.0 derece döndürülür ve her domuz F sekiz molekülü 35.9 angstrom çevrilir ve son 3D rekonstrüksiyonların sarmal parametrelerine karşılık gelen önceki molekülden 35.2 derece döndürülür. Bu videoyu izledikten sonra, lipid nanotüpler üzerinde organize edilmiş membran kahverengi proteinin kriyo-elektron mikroskobu verilerinin nasıl elde edileceğini ve fizyolojik duruma yakın bir 3D yapının nasıl hesaplanacağını iyi anlamış olmalısınız.Bu video, bir lipid ortamında işlev gören diğer proteinlere uygulanabilen, pıhtılaşma proteininin yüksek çözünürlüklü zara bağlı yapısına doğru atılan ilk adımdır.

helical-organization-blood-coagulation-factor-viii-on-lipid

Research

JoVE Journal

Bioengineering

Biyomühendislik

Bu çalışma daha önce bildirilmemiştir insan plazma fibrin pıhtı oluşumu sırasında FV koagülasyon aktivitesini ölçer bir roman mikroplate assay açıklanır. Yöntem sürekli olarak insan plazması içinde fibrin pıhtısı oluşumu sırasında 405nm de absorbans değişikliği ölçmek için bir kinetik mikroplaka okuyucu kullanır.

Bir Mikroplaka Pıhtılaşma Analiz Kullanarak İnsan Plazma Faktör V Aktivitenin Ölçümü

Çekirdeklerinde kendi kendine birleşmiş nanoyapılar içeren lipid parçacıklarının kinetik stabilizasyonu için karbon nanotüplerin akıllı bir uygulamasını rapor ediyoruz. Lipid parçacıklarının hazırlanması, ilaç dağıtımı gibi biyomedikal uygulamalarda kullanımlarına izin veren oldukça düşük konsantrasyonlarda karbon nanotüpler gerektirir.

Karbon Nanotüpler tarafından Stabilize İçeriden Kendinden monte Lipid Parçacıklar uyduruk hazırlanması

Bu protokol serebral emboli görselleştirmek için kombine yakın kızılötesi floresan (NIRF) görüntüleme ve mikro-bilgisayarlı tomografi (mikroBT) uygulanmasını açıklar. Bu teknik trombüs yükü ve evrim ölçümü sağlar. MikroBT'lerin tekniği altın nanopartiküller kullanarak canlı hayvan içinde trombüs görüntüler ise NIRF görüntüleme tekniği floresan, eksize beyinde trombüs etiketli görselleştirir.

Doğrudan Serebral emboli görselleştirme için Kombine Yakın kızılötesi Floresan Görüntüleme ve Mikro bilgisayarlı Tomografi

Bu makale aynı zamanda trombosit fonksiyonu ve pıhtılaşmayı ölçen hemostaz deneysel model tanımlamaktadır. Trombosit ve fibrin floresans gerçek zamanlı olarak ölçülür ve platelet yapışma oranı, bir pıhtılaşma hızının, pıhtılaşma başlangıcı belirlenir. Model transfüzyonu için konsantreleri akışı altında trombosit prokoagülan özelliklerini belirlemek için kullanılır.

Trombosit Transfüzyon ve Hemostaz için bir mikroakışkan Akış Odası Modeli Gerçek zamanlı Trombosit Birikimi ve Fibrin oluşumu Tedbirleri

Bu yazıda, endotel von Willebrand değerlendirmek için bir yöntem tarif faktör yayın ve sonraki trombosit yakalama inflamatuar bizi canlı tutan bir vitro akış odası sistemi kullanarak sıvı kesme oluşuyor.

Soruşturma von Willebrand faktör patofizyolojisi kullanarak bir akışı odası Model von Willebrand faktör-trombosit dize oluşumu

Katı destekli, protein içermeyen, Çift fosfolipid bilayer membranlar (DLBM) karmaşık ve dinamik lipid nanotüp ağlara dönüştürülebilir ve endoplazmik retikulum 2D aşağıdan yukarıya modelleri olarak hizmet verebilir.

Kendiliğinden oluşumu ve endoplazmik retikulum için aşağıdan yukarıya Model olarak yapay Lipid nanotüp ağların düzenlenmesi

Bu protokol, dev unilamellar lipid vezikülleri ile birlikte kayan kinesin motilitesini kullanarak lipid nanotüp ağlarının üretilmesi için bir süreci açıklamaktadır.

Kayan Kinesin Motilite Testi Kullanılarak Çok Bileşenli Lipid Nanotüp Ağlarının Üretilmesi

Hasta kaynaklı endotel ile tam kan etkileşimini araştırmak için in vitro vasküler hastalık modeli salıyoruz. Bu sistem çeşitli koşullar altında primer endotel hücrelerinin trombojenik özelliklerinin incelenmesini sağlar. Bu yöntem özellikle pıhtılaşmanın farklı aşamalarında situ trombojenite ve antikoagülasyon tedavisinin değerlendirilmesi için uygundur.

In Vitro Mikroakışkan Hastalık Modeli Gerçek Zamanlı Olarak Tam Kan-Endotel Etkileşimleri ve Kan Pıhtısı Dinamikleri Çalışma

Bu çalışma, pıhtı eritme, hücre boyama ve rutin kan muayenesi yoluyla serebral kan pıhtılarının hücre bileşen analizi için hızlı ve etkili bir yöntemi tanımlamaktadır.

Serebral Kan Pıhtılarının Hücre Bileşenlerini Analiz Etmek İçin Kapsamlı Bir Yaklaşım

İn vitro tromboliz deneyleri, ister model trombüsün sindirildiği ortamda ister trombolizin meydana geldiği ortamda olsun, in vivo koşulları tekrarlamak için sıklıkla mücadele etmiştir. Burada, Chandler döngüsü ve Gerçek Zamanlı Florometrik Akan Fibrinoliz Testinin (RT-FluFF) birleştirilmesinin yüksek kaliteli, ex-vivo, pıhtı lizisi izleme için nasıl kullanıldığını keşfediyoruz.

Bir İn Vitro Tromboliz Modelinde Kesme Akışı Altında Chandler Döngü Şeklinde Tam Kan Pıhtılarının Fibrinolizinin İzlenmesi

Bu çalışma, kanda trombus oluşumunu tetiklemek için kesme stresi kullanan ve trombü birden fazla boyutlu okuma ile karakterize eden bir mikrofluidik testi tanımlar. Bu test, kan örneklerinin protrombotik eğilimini ölçebilir ve bu nedenle hastalık teşhisi, ilaç keşfi ve trombozla ilgili temel mekanik çalışmalarda faydalıdır.

Trombus Profilleme Testi: Biyomekanik Trombogenezin Kapsamlı Karakterizasyonu İçin Mikrofluidik Tabanlı Bir Platform

Keşfedin, kriyoelektron mikroskobisi kullanarak lipid nanotüpler üzerinde organize edilmiş faktör VIII'in membran bağlı yapısını nasıl tanımlayacağınızı. Bu hesaplamalı yöntem, pıhtılaşma biyolojisinde yüksek çözünürlüklü 3D rekonstrüksiyon sağlar.

Lipid Nanotüpler Kan Pıhtılaşma Faktör VIII Sarmal Organizasyonu

Daha fazla video keşfet