Name: Ayarlama-up bir In Vitro Model (BBB): BBB geçirimsizliği ve Reseptör aracılı Ulaştırması Bir Odak (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-06-28T14:00:00.000+00:00
Duration: 16 min 26 s
Description: Keşfedin, sıçan kan-beyin bariyeri için in vitro model kurulumunu. Endotelyal hücre ve astrosit ko-kültürü kullanılarak TEER ve geçirimsizlik değerlendirilir. Bu yöntem, ilaç taşıma mekanizmalarını incelemek için kullanılabilir.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Vect-Horus mali destek Fonds Benzersiz Interministériel (FUI / MEDUL projesi) ve Vect-Horus ve Agence Nationale de la Recherche (ANR, TIMPAD, VECtoBrain, VEC2Brain, anlık ve PREVENTAD işbirlikçi projeler) den UMR7259 laboratuvar kabul ediliyor . UMR7259 laboratuvar ayrıca CNRS gelen ve Aix-Marseille Üniversitesi&#39;nden İşletme mali destek kabul eder.

Sıçan Astrositler 1. Üretimi Her hazırlık iki cinsiyetten 10 yenidoğan Wistar sıçanları kullanın. <ol><li> Bir makas ile kesme kafası ve bir laminer akış kaputu altında kuru bir Petri kabındaki hemen onları aktarmak tarafından fareleri kurban. Beyincik olmayan kafatası beyin çıkarın ve soğuk diseksiyon tampon içeren bir Petri kutusu içine hemen transfer: HBSS% 1 Sığır Serum Albümini (BSA endotoksin düşük seviyesi), 100 ug / ml penisilin 100 birim / mL ve streptomisin ile takviye edilmiştir. </li><li> 2 hemisferdeki ayrı ve buz üzerinde diseksiyon tamponu ile temiz bir petri içine aktarmak için, onları yarısında beyinleri kesin. Optik sinir kesmek ve bir stereo mikroskop altında meninks çıkarın. </li><li> Soğuk diseksiyon tamponu, 50 ml yaygın kortikal parçaları yıkayın. </li><li> 15 ml Falcon tüp içine 3 beyinlerinden kortikal parçaları yerleştirin ve yukarı pipetleme ve bir darbe aşağı ayırmakEDTA, 5 dakika için% 0.02 &#39;den 37 ° C - le,% 0.05 tripsin 6 ml mavi bir ucu ile donatılmış 10 ml&#39;lik bir pipet ile birkaç kez </li><li> 24,% 10 FBS ile takviye edilmiş DMEM ilave edildi ve aşağıdaki antibiyotikler, penisilin 100 birim / mL ve streptomisin 100 ug / ml, glial hücre ortamı (GCM) adlı bir ortam, ve oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 300 x g&#39;de santrifüj ekleyin. FBS toplu astrosit cutures büyümesi ve hayatta kalma için seçilmiş ve doğrulanmıştır. </li><li> , 75 cm 2 T-şişeye (T75) içine 10 mi GCM ve plaka içindeki ayrışmış hücreleri içeren pelet yeniden süspanse edin. Hücre artıkları ve DNA kaldırmak için aşağıdaki gün orta değiştirin. Bir haftada iki kez kültür ortamı değiştirin. </li><li> Çoğalma 1 hafta sonra, yavaşça GCM 37 ° C&#39;de 24 saat boyunca 60 rpm&#39;de bir orbital çalkalayıcı ile glial hücreler sallayın. T75 37 ° C nemlendirilmiş atmosfer,% 5 CO 2/95% hava ile bir inkübatör içerisine yerleştirilir edilemiyorsa, 5 mM HEPES ile ortam takviyesi. R hücreler iki kez yıkayınyapışmayan mikroglial hücreleri birikimleri temizlenmelidir. </li><li> Üç hafta sonra tohumlama, kalsiyum ve magnezyum içermeyen DPBS hücreleri iki kez yıkayın. Sıcak,% 0.05 tripsin-EDTA% 0.02 3 ml ilave edilir, 37 ° C&#39;de inkübe edilir ve hücre tabakası (genellikle 5 dakika) dağılana kadar bekleyin. , GCM 10 ml eklenmesiyle tripsin aktivitesi inhibe 8 dakika boyunca 120 x g &#39;de 15 ml Falcon tüpü ve santrifüje hücre süspansiyonu aktarın. </li><li> % 90 FBS içinde astrosit pelletini -% 10 DMSO, sıvı nitrojen içinde (2 x 10 6 cryovial başına hücre) ve mağaza cryovials içine aktarın. </li></ol> Rat Beyin mikrodamarlar 2. İzolasyonu Bizim deneysel prosedürleri Marsilya Tıp Fakültesi Etik Komitesi tarafından onaylanmış ve Ulusal ve Avrupa yönetmeliklerine (AB direktifi No 86/609) uygun olan. Tüm hayvan çalışmaları acı en aza indirmek ve kullanılan hayvan sayısını azaltmak için yapılmıştır. <ol><li> Her hazırlanması için, ve bir Experimente içinr, 3, beş haftalık Wistar fareleri kullanır. </li><li> İlk hafta Pazartesi, her iki kültür steril su içinde 1 ug / cm 2 (T75 başına 10 mi), kollajen tip IV ve fibronektin ile kaplanarak 2 T75 şişeleri hazırlar. Mikrodamar tohumlama kadar 37 ° C&#39;de uygun izin verin. </li><li> Ilk hafta Çarşamba sabahı, uyuşukluk neden CO 2 artan akı altında fareleri euthanize, duruş ve nefes kesilmesi kaybı, daha sonra servikal dislokasyon ile izledi. % 70 etanol ile kafaları püskürtün. Bir makas ile başlarını kesip bir laminer akış kaputu altında kuru bir Petri kabı içine aktarabilirsiniz. </li><li> , Buz üzerinde soğutuldu ve soğuk diseksiyon tamponu ile dolu bir Petri kabı içine transfer sonra, beyincik ve optik sinirler olmadan kafatası beyin çıkarın (HBSS,% 1 BSA, penisilin 100 birim / mL ve streptomisin 100 ug / ml ile takviye edilmiş) . </li><li> Için gelen 2 hemisferdeki ve ayrı Ortabeyin ayırmak yarısında beyinleri Cutebrain. Diseksiyon tamponu ile buz üzerinde temiz bir Petri kabı içine forebrains aktarın. </li><li> Dikkatli N ° 5 kavisli forseps ile stereomicroscope altında forebrains gelen meninksler kaldırmak için soğuk diseksiyon tamponu ile yeni bir Petri kabındaki yarıkürelerinin bir çift almak. Sonra, miyelin yorgan kaldırmak ve korteksin bir kabuk elde etmek için beynin içini temizleyin. Bu adımlar doku korunması ve hücrenin hayatta kalabilmesi için en fazla 2 saat almamalıdır. </li><li> Farklı kleransların 2 havan elleri her 10 yukarı ve aşağı felç, 20 um ardından 71 mikron tarafından homojenleştiricisi dounce 7 ml soğuk diseksiyon tampon 6 ml içine 3 beyinlerinden korteks ayırmak. </li><li> Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 1000 x g&#39;de, 50 ml Falcon tüpü ve santrifüj 1 ml 1 korteks eşdeğerini elde etmek için süspansiyon bölün. Süpernatant atın. </li><li> Kolajenazlar / dispaz karışımı (60 ug / ml ihtiva eden bir enzimatik R çözeltinin 1 ml&#39;si ile 1 korteksinden süspansiyon Digest11; 0.3 U / ml), DNase tip I (35 ug / ml - 20 K birim / ml) ve 37 ° C&#39;de 30 dakika süre ile bir çalkalama içinde gentamisin (50 ug / ml) </li><li> 1 ml 10% 25 BSA / HBSS 1X üzerine ilave edildi ve oda sıcaklığında 15 dakika boyunca 3600 x g&#39;de santrifüj ile yoğunluk bağlı ayrı 1 korteksinden sindirimi karıştırın. Dikkatli bir şekilde temiz bir 50 ml Falcon tüpü içine, üst disk (miyelin ve beyin parenkimi) ve süpernatant aktarmak ve santrifüj tekrarlayın. 4 ° C &#39;de beyin mikrodamarlar içeren elde edilen pelet Ol </li><li> Dikkatle üst disk ve süpernatant atın. Soğuk HBSS 1X 1 ml beyin mikrodamarlar ihtiva eden hem de elde edilen pelet yeniden süspanse edin ve temiz bir 50 ml Falcon tüpü içine aktarın. </li><li> 5 dakika boyunca 1000 x g&#39;de 20 soğuk HBSS 1X ml ve santrifüj eklenmesiyle mikrodamarlar yıkayın. Süpernatant atın. </li><li> Bundan başka, bir sh, 37 ° C&#39;de, 1 saat boyunca aşama 2.9 &#39;da tarif edildiği gibi aynı enzimatik çözeltinin 1 ml&#39;si ile 1 korteksinden mikrodamarlar sindirimiaker. </li><li> Daha sonra, bir tüp içine 3 korteks her birinden sindirilmiş mikrodamarlar karıştırmak ve bundan başka, tüp başına bir buçuk (1.5) korteks eşdeğer ekstre mikrodamarlar elde etmek için iki adet 50 ml Falcon tüpleri içine ayrı. Oda sıcaklığında 5 dakika boyunca 1000 x g&#39;de soğuk diseksiyon tampon ve santrifüj 30 ml ilave edilir. </li><li> % 20 sığır trombosit bakımından yoksul plazma türevi serum, bazik fibroblast büyüme faktörü (bFGF, 2 ng / ml), heparin (100 ug / ml), gentamisin (50 ug / ml) ile desteklenmiş DMEM/F12, 10 ml mikro damar pelletini HEPES ve endotel hücre ortamı (ECM) olarak adlandırılan (2.5 mM), 4 ug / ml &#39;de puromisin ile takviye edilmiştir. </li><li> , Inkübatörden 2 kaplı T75 şişeleri al kaplamanın aşırı aspire ve bir T75 şişesi (T75 şişesi başına 1,5 korteksinden ekstre mikrodamar) her bir tüpten mikrodamarlar plaka. </li></ol> RBEC Primocultures 3. Saflaştırılması ve Çoğalma <ol><li> Arıtma: Çarşamba-Cuma, purom eklemekİcin kültür ortamı için 4 ug / ml &#39;de. Perşembe günü orta değiştirin. Cuma günü, Pazartesi gününe kadar 2 mcg / ml hücreleri yıkayın ve puromycin ekleyin. </li><li> Silahların Yayılmasını Önleme: ikinci haftanın Pazartesi günü, hücrelerin yıkayın ve kültürleri ikinci hafta Çarşamba günü% 90 izdiham ulaşana kadar kültür ortamına insülin, transferrin ve sodyum selenit ek ekleyin. </li></ol> . 4. Farklılaşma: In Vitro BBB Model Kurma <ol><li> Ikinci hafta, Pazartesi (üst bölmesine karışımı 500 ul iki steril kültür su içinde 0.5μg/cm 2 kolajen tip IV ve fibronektinin bir karışımı ile kaplanması ile filtreler (polietilen, 12 kuyu, gözenek boyutu 1.0 um) hazırlanması ve alt bölme içinde steril kültür su 1.5 ml). RBEC tohumlama kadar 37 ° C&#39;de uygun izin verin. </li><li> Ikinci haftanın Pazartesi, beş gün ko-kültür kuruluşundan önce, 37 ° C ve transfer cryovials gelen astrositleri çözülme10 mi GCM olan bir 15 ml Falcon. Oda sıcaklığında 8 dakika boyunca 120 x g&#39;de santrifüje süspansiyon. </li><li> 12-çukurlu levhalarda cm2 başına 30 x 10 3 hücre yoğunluğunda GCM ve plaka içindeki astrosit pelletini. </li><li> Ikinci haftanın Çarşamba, sadece tripsin ile Birleşik Devletler Topluluğu Bürosu ayrışmasından önce, DMEM/F12 ortamı ile iki kez önceden kaplanmış filtreyi yıkayın. Alt bölmeye 1.5 ml ile üst bölmesine 0.5 ml: ECM ile odaları ön doldurun. </li><li> Ikinci haftanın Çarşamba, kalsiyum ve magnezyum olmadan DPBS ile iki kez RBEC yıkayın. Tam olarak 30 saniye boyunca T75 şişesi başına 37 ° C &#39;de% 0,02 EDTA çözeltisi - sıcak tripsin 4 ml% 0.05 ekleyin. Sonra tripsin solüsyonu 3.5 ml çıkarın ve mikroskop altında görüyoruz. Hücre tabakası, matriks ayırmak tüm hücreler yüzen kadar yavaşça T75 şişenin kenarına dokunarak onlara yardım etmek başlar. </li><li> T75 şişesi başına ECM 9 ml ilave edilir ve bir 15 ml Falcon tüpü içine aktarın. Çok nazikçe hücreyi ayırmaksan bir ucu ile donatılmış bir 10 mL pipet ile aşağı yukarı 4 kez pipetleme ile süspansiyon (çözelti içinde kabarcıkların üretimi kaçının). Süspansiyon hücreleri (yaklaşık olarak 3 x 10 cells/T75 6) sayısı ve hemen bir yüksek yoğunluklu (160 x 10 3 hücre / filtre bu nedenle yaklaşık 18 filters/T75) (Şekil 8 ile önceden kaplanmış ve önceden doldurulmuş filtrelerinde plaka .) Ertesi gün (Perşembe), hücre tozu gidermek için, üst bölmenin iki orta değiştirin. </li><li> Ikinci haftanın Perşembe, ko-kültür kuruluşundan önce bir gün, bazal bölmesinden 1/3 klimalı ortam ile takviye edilebilir farklılaşma medya 1.5 ml (500 nM hidrokortizon ile ECM) tarafından astrocyte kültür ortamı değiştirin bir (endotelyal hücreler ve astrositler arasındaki temas 3 gün) ko-kültür önceki of. </li><li> Ikinci hafta Cuma farklılaşmasının gün 0 olarak tanımlanır; filtreleri conta gelen kültür ortamı değiştirinfarklılaşma medya ile Birleşik Devletler Topluluğu Bürosu adencilik. Astrositler içeren kuyu içine RBEC filtreleri aktarın. Bu koşullar altında, in vitro modeller ayırt etmek ve 3 gün içinde bağlantı ile ilgili proteinleri ifade eder. </li><li> Modeller üçüncü hafta Pazartesi ve Çarşamba arasında 3 gün daha, sırasında optimum farklılaşma tutmak. </li></ol>

Michel Khrestchatisky, UMR7259 laboratuvarının direktörü, VECT-HORUS biyoteknoloji şirketinin kurucu ortağı ve bilimsel danışmanıdır.

Biz, Birleşik Devletler Topluluğu Bürosu saflaştırılması ve kültür, aşağıdaki ve başka karakteristik özellikleri olan BBB bir in vitro BBB modeli oluşturmak için primer fare astrositler ile birlikte-kültürler kurma, beyin, mikrokapların izolasyonu ve kaplama için bir haftalık tekrarlanabilir protokol uygulanmasını tarif eder. Başarıyla BBB vitro kültürlerinde standart kurma işleminin birden fazla sıralı aşamada bu şekilde uygun koşullar gerektirir. Modeli (a) in vitro BBB modellerin &quot;Holy Grail&quot; kalır, ve (b) efflux ve DDK mekanizmaları valide düşük paraselüler geçirgenliğini, elde etmek için optimize edilmiştir. Üretim, Arıtma ve Birleşik Devletler Topluluğu Bürosu Yayılmasının RBEC yetiştirilmesi büyük sorun, farklı kültürler arasında yeniden elde etmektir. Protokol Standardizasyon dis için yüksek kaliteli araçlar gerektirirbölüm, yüksek kalite reaktif ve reaktif son kullanma tarihleri ​​saygı. Deneyci korteks yüzeyinden menenjlerin ve büyük damarların hızlı kaldırılması için stereomicroscope altında mikro diseksiyon yetenekli gerekmektedir. Beyin izole ve mekanik ayrışmış bir kez, önemli sorunlardan biri taze izole beyin mikrodamarlar optimum enzimatik sindirim olduğunu. Kullanılan enzim türü ve kalitesi çok önemlidir. Partileri arasında düşük değişkenlik yüksek konsantrasyonda kollagenazlar tip I ve II ve dispase bir karışımı kullanıldı. Ayrıca önemli enzimatik sindirme süresi ve sindirim enzim konsantrasyonu / doku ağırlık / hacim arasındaki oran vardır. Beyin mikrodamar üretiminin en iyi verimi 30 dakika ve 1 saat sırasıyla her iki sindirimler boyunca 60 ug / ml &#39;de karıştırmak dispase / kolajenlerinin 1 ml 1 beyin korteksinde eşdeğeri ile elde edilmiştir. Ayrıca, kritik hücre kirletici ortadan kaldırılmasıdırs (astrositler ve temel perisitler). Bu hücreler, endotelyal hücreler daha yüksek bir hızda çoğalır ve bu nedenle iyi bir sıkılık paraselüler sahip tek tabaka, homojen bir hücre kurulmasını engelleyen, ikincisi ile sıkı bir bağlantı yerlerine kurmak yoktur. Olmayan endotel hücreleri elimine edilir ise beyin endotelyal hücreler, mikrokapların bulunan diğer hücre tipleri ile karşılaştırıldığında akış pompaları çok daha yüksek seviyelerde, özellikle P-gp, ifade göz önüne alındığında, bunlar, daha P-gp ligand ilaçların başka şekilde toksik konsantrasyonları tolere edebilir. Ilk iki gün için 4 ug / ml &#39;de göz mertebesinde tedavisi iyi endotel hücre saflık elde etmek için 2 ug / ml&#39; de iki gün daha izledi. Bu seçim de venüllerin, ön kılcal arteryollerin veya daha büyük kılcal gelenler karşı kılcal endotel hücreleri tercih ve sıkı tek katmanlar yol açabilir. Buna ek olarak, zayıf plazma-türevi sığır serumu kullanılmasıdır endotel hücrelerinin 47,48 saf kültürleri elde etmek için zorunludur. Plazma-derived serum düz kas hücreleri ve bu nedenle perisitlerin için, fibroblastlar için mitojeniktir trombosit türevli büyüme faktörü (PDGF), yoksundur. Sıçan kuyruk geleneksel olarak tavsiye edilen kolajen tip I ile karşılaştırıldığında proliferasyon verimle bir 2-kat bir artış ile, fare ve insan fibronektin önemli bir avantaj elde edilir kollajen tip IV ün bir karışımı ile plastik ve filtrelerin tedavisinin görülmektedir. Hücre çoğalması için önemli ipuçları bu integrini ve büyüme faktörü (bFGF) aktivasyonu 49 gibi hücre dışı matriks tarafından sağlanmaktadır. Tampon konsantrasyonu ve kültür ortamının pH paraselüler sıkışma 50 üzerinde pozitif bir etkisi tarif edilmiş ve 5 mM HEPES tamponu ilavesi ile kültürler arasında daha iyi bir tekrarlanabilirlik görülmektedir. Ekle Filtreler Co-kültür Kuruluş: Birleşik Devletler Topluluğu Bürosu Farklılaşma Beyin endotel hücreleri, b kezeen arıtıldı ve 6 gün için sürmektedir, bu filtreler üzerindeki kaplama olabilir. Yüksek yoğunlukta Cell kaplama mükemmel bir tek tabaka elde edilmesi için çok önemlidir. 12 oyuklu bir plaka filtre başına 160x10 3 hücrelerinin bir tohum yoğunluğu Tohumlamadan sonra konfluent tek tabaka 24 saat elde etmek için gerekli ve yeterli oldu. Ancak, çevreden primer beyin kılcal endotel hücrelerinin izolasyonu birincil hücreler ve özellikle beyin kapilar endotelial hücreler, güçlü bir şekilde ortam ile düzenlenir ve indüktif faktörler tarafından üretildiği bilindiği gibi bir BBB in vitro modelinin oluşturulması bir paradoks Farklı çevreleyen hücre türleri. Beyin kapiller endotel hücreleri tek başına hızla de-farklılaşmamaktadır kültüre ve bazı spesifik beyin endotel belirteçleri gevşek. Bu nedenle, primer endotel hücreleri, düşük geçiş (P1) kullanılmalıdır ve yeniden bağlanmış, en azından kısmen, astrositler 47,51 şartlandırılmış astrosit veya ortam ile birlikte-kültür ile çevreleriyle. Bu tutarbeyin endotel hücreleri ve astrositler olarak astrosit farklılaşması için de iki yönlü indüksiyon katılmaktadırlar. Astrositler ile RBEC kültürlenmesi interendothelial TJ 52,23 güçlü indüklenmesine yol açtı. Re-indüksiyon moleküler mekanizmalar büyük ölçüde bilinmemektedir, ve araştırma optimum endotel hücre farklılaşmasını 53,54 teşvik olabilir astrositlerde tarafından salgılanan belirli modüle faktörleri belirlemek için çeşitli laboratuvarlarda devam etmektedir. Lösemi inhibe edici faktör (LİF) de dahil olmak üzere beyin endotel hücreleri tarafından salgılanan faktörler astrositik 55,56 farklılaşmasını teşvik ettiği gösterilmiştir. Ko-kültür kurulması önce, astrositler, glukokortikoid reseptör agonisti hidrokortizon içeren farklılaşma ortama maruz kalan ve ko-kültür ortamı kıvamlandırılmıştır. Hidrokortizon beyin endotelyal hücrelerin sızdırmazlığını artırmak için bilinen ve özellikle 57 sıçan ve fare 58,59 endotel hücreleri BBB modelleri kullanılır. Koşullandırılmış medium 3 gün sonra endotel hücre / astrosit ko-kültür sisteminin alt bölme toplandı ve daha sonraki kullanım için dondurulur. Ko-kültür şartlandırılmış ortamın kullanılması, 2 gün daha uygun paraselüler geçirgenliği ve kültürler arasında da geliştirilmiş yeniden üretilebilirlik ile 3 gün için endotel hücre farklılaşmasının süresi azalır. Genel olarak, tarif protokol, 0.26 ± 0.11 x 10 cm -3 en birincil hücre bazlı BBB modelleri 22 &#39;e benzer / dakika, 300 ohm üzerinde yeniden üretilebilir bir Teer · cm 2 ve ortalama bir paraselüler geçirgenlik katsayısı Pe (LY) verir 12. Biz mikrodamar enzimatik sindirme önerilen modülasyonu ile, bu metin içinde tarif protokol sıçan omurilik 60 ve farenin beyninden endotel hücrelerine uzatılabilir. Moleküler ve Fonksiyonel Karakterizasyonu Buna ek olarakTJ indüksiyon, astrositlerin, aynı zamanda, endotelyal hücreler, beyin 61&#39;deki P-gp olarak akış nakil ekspresyonuna katkıda bulunur. Gerçekten biz BBB modelinde akış taşıyıcı P-gp ifadesini göstermektedir ve biyokimyasal yaklaşımlar kullanılarak, P-gp akış pompa lokalizasyonu polaritesini göstermek ve P-gp etkinliğinin işlevsel tahlili kullanılarak. GLT-1 ifadesi, mikrokapların bazal zar fraksiyonu içinde tespit edilmiştir, ancak kültürlenmiş Birleşik Devletler Topluluğu Bürosu bulgulanmamıştır. Biz GLT-1 aşağı in vivo koşulları ve western blot analizi ile tespit edilemeyen dolayısıyla ile mukayeseli olarak RBEC kültürde düzenlenmiştir varsayımında. Fazla glutamat nörotoksik olduğu ve in vivo, GLT-1 apikal bölmeye (kan dolaşımı) bazal bölme (parankima) glutamat akışı için sorumludur. Astrosit kültürlerde, GLT-1 ifadesi çok düşüktür ve ortam 62,63 glutamat ilavesi ile indüklenir. Ayrıca confIRM gibi LRP1, LDLR ve TfR olarak apikal membran akını taşıyıcıları ifadesidir. TfR ve LDLR işlevselliği, daha önce in vitro modelinde BBB 64 içine büyük baş hayvan ile gösterildiği gibi, tek tabaka abluminal tarafına luminal den Tf-Cy3 ve DiLDL arasında bağlanma deneyleri ve nakil ile gösterilmiştir. İlginç bir şekilde, bu lipid astrositlerden şartı 65,66 bundan başka, in vitro olarak da dahil olmak üzere, astrositler ve beyin endotel hücreleri arasındaki çapraz-karışma teyit fizyolojik beyin kılcal endotel hücreleri üzerinde LDLR ekspresyonunu arttırır gösterilmiştir. Floresan boyalar ile taşıma örneklemek için seçmiş bu Cy3 ve DII spektroflorimetrik analiz laboratuvarlarında en mevcuttur, ve in vitro BBB modelleri doğrulamak için yararlı olduğunu düşünüyor gibi. Bununla birlikte, floresans, radyoaktivite ölçümü daha az duyarlıdır ve önemli verileri elde etmek için deneyler sayısında bir artış gerektirir.İdeal olarak, Tf ve LDL bu tür bir bağlanma / alım ve nakil deneyleri için (genellikle iyot 125), radyo etiketlenmiş bulunmaktadır. Ayrıca önerilen protokol ile elde edilen farklılaşmış endotelyal hücre tek-tabakalı CCL2 serbest bırakılması ve BBB açılmasıyla ortaya koyduğu gibi, TNF-α neden olduğu inflamasyon yanıt olduğunu göstermektedir. CCL2 (MCP-1) ve onun reseptörü CCR2 multipl skleroz, deneysel otoimmün ensefalomiyelit (EAE) 67, CNS travma 68 ve nöroenflamatuar koşullar altında 69,70, CNS içine lökosit göçü mediatörleri olarak bilinmektedir CNS patolojilerde rol oynar. BBB açılış CCL2 konsantrasyonu üst (apikal) ve alt (bazal) bölmeleri hem arasında dengelenmesini sağlar, çünkü test protokolü ile, CCL2 bir polarize salgılanması üzerinde sonucuna varamayız. Sonuç olarak, açık bir şekilde, 24 saat (Şekil 5A) de apikal bölmeye Birleşik Devletler Topluluğu Bürosu tarafından üretilen CCL2 miktarını hafife. Genel Bakış ve in vitro Modeller BBB Sınırlamalar: Ben n Vivo karşı İn Vitro ve Kemirgen İnsan Karşılaştırmalar karşı In vitro BBB pasajda etkili olduğu pek çok umut verici bir merkezi sinir sistemi ilaçları, genellikle insan dışındaki türlerden izole edilmiş hücrelere göre BBB vitro modellerde ikinci nedeniyle tahmin eksikliği klinik çalışmalarda başarısız oldu. Protein ağları, sinyal iletimi, taşıyıcı ve reseptörlerin mekanik yönlerini okuyan geldiğinde bizim bilgimiz için, in vitro BBB modeller muhtemelen daha akıllı olan. In vitro olarak incelenecek her bir mekanizma, yol ya da hedef aynı hayvan türleri tamamlayıcı çevresel etkilere (diğer hücre tipleri, kimyasal maddeler, proteinler) tarafından düzenlenmesi için karakterize edilmiş ve in situ çalışmalar için kombine edilmelidirVe kısıtlamalar ve dikkatli insanlar izole mikrodamarlar ve endotel hücreleri ile, olası aşağıda uyarılmış zaman. In vitro BBB modeller vücut yönetmelik izole otonom sistemleri olarak görülebilir, ancak hala önemli in vivo özellikleri ve çevresel uyaranlara tarafından düzenlenmesi için bir potansiyele sahip. Endotel hücre mono tabakaları nöro-vasküler glia birimi (NGVU) önemli bileşenleri bir dizi eksikliği ve kan ve vücut düzenleme izole edilir çünkü hiç &quot;ideal&quot; in vitro modelle BBB henüz 71,72,73 önerilmiştir. Perisitlerin 74,16 veya 17,18 nöron ya da plastik kaplama veya endotelyal göre en yaygın ve &quot;kolay hale&quot; in vitro BBB modellerde hücre büyümesi için kullanılan kültür ortamı ve serum için kullanılan hücre dışı matrisin farklı bileşenlerin eksikliği astrositler ile farklılaşmış hücreler protein sentezleme i modüle edebilirn in vivo durumda 75 ile karşılaştırılması. Bu modeller in vivo görüntülenen birçok taşıyıcıları ifade, ama hepsi olabilir. Bazı durumlarda, ilk izole edilmiş taşıma parametreleri kılcal (in vivo duruma yakın) olarak teyit edildi ve sonra da hücre kültür sistemleri 76,61 incelenmiştir. Moleküler biyoloji araştırmaları izin verdi, aynı türlerden izole edilmiş kılcal ve düşük geçiş endotel hücre kültürlerinde, gen ekspresyonu ve protein karakterizasyonu ve farklı türler arasında, çoğu zaman, kemirgenler (fareler ve sıçanlar) ya da inek ve domuz küçük hayvanlardan İnsanlarda 77,78,75,15 için karşılaştırılması. In vivo ve in vitro beyin mikrovasküler endotel hücreleri arasında Transkriptomik karşılaştırma farklı şekilde eksprese edilen ve en sık önemli in vitro olarak azaldı çok sayıda gen transkript gösterdi. Böyle TfR ve pr olarak akını taşıyıcıları kodlayan transkriptvezikül ticareti karıştığı oteins esas hücrelerde endositoz ve veziküler taşımacılığında genel bir azalmayı işaret kültürlenmiş beyin endotelyal hücrelerinde aşağı regüle edilir. Saflık (puromycin tedavisi) ve hidrokortizon ile tedavi açısından Kültür manipülasyon bir daha &quot;in vivo gibi&quot; gen ekspresyon profil 77 geri yardımcı olabilir. Transkriptomik çalışmaları da., Insan endotel hücreleri ve astrositlerde ko-kültür içeren In vitro BBB modelleri 15 tarif edilmiştir ayrıca in vitro BBB modellerinde 75 kemirgeninizde dayalı insanlarda ilaç alımı hakkında tahminler karmaşık türler arasında önemli farklar saptandı. Ilgili olsa da post-mortem insan dokusuna düzenlenmiş erişim gerektiren ve heterojenite yaş, hastalık, ve muhtemelen tıbbi bağlı olarak, insan beyin endotel hücreleri kalite / özelliklerinde olduğu gibi bu modeller, düzenli olarak uygulanması daha zordur treatmendonörlerin t. Çabalar iyi fizyolojik, anatomik ve in vivo BBB fonksiyonel özelliklerini yeniden yeni in vitro modeller geliştirmek için yapılması gerekir. Üç hücre tiplerini içeren Co-kültürler derece kısıtlayıcı ve rutin uygulamak zor görünür. Bugüne kadar, en karmaşık in vitro BBB modeller, astrositler ile damar benzeri organizasyon içerir ve kan akışını taklit eden 75,79,80,81,82 ortamının akışı dahil dinamik modelleri, in vitro (DIV-BBB) olan 83,84,85. Beyin endotel hücreleri bir akışına maruz kaldıkları zaman, üretilen kesme gerilmesi örneğin hücre bölünmesi, farklılaşması, migrasyonu ve apoptoz 80 gibi endotel hücre fizyolojisinde alan farklı genlerin ekspresyonunu modüle eden hücre yüzeyinde mechanotransducers aktive eder. In vivo, kesme stresi kan akışı ile üretilen bir kurulmasına izin veren hücre temas okuyun, mitotik tutuklama sorumludurkan damarlarının 80 endotel hücre tek-tabakalı. Normal insan beyin mikrovasküler endotelyal hücrelerin genomik ve proteomik analiz BBB endotel fizyolojisi 84 kesme geriliminin etkisini gösterdi. Kesme gerilmesi CYP450 tarafından aracılık edilen 75,86, 75 oksidasyon enzimleri ve hücre canlılığı, endotel hücre yapışmasının daha yüksek bir derecede, dışarı verme pompası indüksiyon ve taşıyıcıları 75, glikoz metabolizmasının düzenlenmesi ve daha iyi bir polarizasyon sorumludur ifadesini arttırarak paraselüler geçirgenliğin düzenlenmesinde occludin ve ZO-1 87,75,80 ve buna bağlı olarak yüksek TEER gibi arası bağlantı elemanları kodlayan genlerin yaklaşık 1,500 - 2,000 cm ohm · 2, in vivo olarak bilinen en yakın 79,80 parametreler Biyoteknoloji ve ilaç sektöründe, ilaç ya da yüksek verimli tarama (HTS) ve hayvan deneylerini azaltma çabalarının rutin tarama, ledset-kadar rutin daha zor olmaya devam beyin endotel hücreleri birincil kültür yerine kullanılmak üzere, farklı hücre çizgilerinin geliştirilmesi için. Çoğu durumda, beyin endotel hücrelerinin primer kültürleri, retroviral vektörler 88,89,75 kullanılarak plazmid DNA ile transfeksiyonu veya enfeksiyon yoluyla, ölümsüz bir gen (ya da SV40 polyoma virüsü, büyük T-antijeni veya adenovirüs E1A) ile transduse edilmiştir. Serebral kökenli çeşitli endotel hücre çizgileri gibi RBE4, GP8/3.9, GPNT, RBEC1, TR-BBBS veya rBCEC4 fare hücre çizgileri 88,75, b.End3 fare hücre hattı 90,75, PBMEC/C1 olarak geliştirilmiştir - 2 domuz hücre çizgisi 87,75 ve hCMEC/D3 insan hücre hattı 89,75. Diğer modeller, Madin-Darby köpek böbrek (MDCK) veya CaCo2 hücresi çizgileri 12,75 olmayan serebral kaynaklı hücreler dayanmaktadır. Farklı insan beyin endotel hücre çizgileri arasında, yaygın olarak alıntı hCMEC/D3 edilmiştird ve 2005 91,92 yılında kuruluşundan bu yana BBB bir model olarak geliştirilmiş. Birincil kültürler, hücre çizgileri bu avantaj ve sınırlama gibi. Bu, primer kültürlerinde daha işlemek için daha kolay olan uzun bir ömrü vardır, iyi karakterize edilmiştir ve büyük ölçekli deneyler arasında yeniden izin verir. Ancak, hücre hatları, dokuya özgü işlevler vermek çevre düzenleme kaybeder ve in vivo 75, 89 hücrelerden oldukça farklı bir molekül bir fenotip elde edebilirsiniz. Özellikle, hücre hatları mevcut azaltılmış sızdırmazlık, düşük TEER ve gösteri taşıyıcı profil varyasyon 75,89 üretilen tekkatmanları. Böylece primer hücrelerde hayvan deneyleri ya da çalışmalar genellikle katma karmaşıklığına rağmen tercih edilir.

Santral Sinir Sistemi (MSS) tedavisi için geliştirilen birçok ilaç bozuklukları tedavi ilgili konsantrasyonlarda beyin parankimi ulaşmak mümkün değildir. BBB patojenik ajanlar, plazma bileşimin dalgalanmadan beyin sinir dokuları korur, ve beyin 1 ve dışarı iyonları, peptidler, proteinler ve hatta hücre spesifik olmayan akı kısıtlayarak, beyin parankimasının homeostazı tutar. BBB özellikleri nöronlar gibi özel bir sınıf mikrovasküler beyin endotel hücreleri ve nöro-glia-damar biriminin komşu elemanlar (NGVU) arasında iyi bir yakınlık ve çapraz konuşma ile indüklenen ve korunur, glial hücreleri (daha kesin astrosit sonuna m), perisitler ve kolajen tip IV, fibronektin, laminin ve proteoglikanlardan oluşan 2,3 esas bazal membran içinde ensheathed. Kılcal düzeyde endotel% 32 ve önemli bir oynar - perisitler yaklaşık 22 kapakendotel çoğalma, anjiyojenez ve enflamatuar süreçlerin düzenlenmesinde rol oynamaktadır. Endotel hücreler, kılcal damarların iç yüzeyini kaplayan sürekli bir tabaka oluşturur. Bunlar, apikal bölgede bir kayış benzeri bir yapı oluşturmak ve bu kutuplaşma hücre katkı TJs, birbirine bağlanır. Astrositler BBB özelliklerini düzenlemek ve bu tür TGF-β, GDNF, bFGF ve IL-6 gibi önemli bir düzenleyici faktör kaynaklarıdır. Eksik işlevselliği ile GFAP&#39;ye defıcient Astrositler BBB özelliklerini 4 düzenlemek mümkün değildir. Nöronlar doğrudan BBB oluşumuna yapısal olarak dahil değil, aynı zamanda protein ekspresyonu ve BBB fonksiyonları 5 yönlerini düzenleyen önemli değildir. Ayrıca BBB yapısı, fizyolojisi ve patolojisi incelemek amacıyla, BBB in vitro modelleri araştırma aracı olarak da geliştirilmiştir. Beyin endotel hücreleri göre BBB vitro modellerde uygulamak için çeşitli türlerden ekstre edilmiştirsığır, 6,7 ikinci düşük geçiş primer kültürleri, 8,9 domuz, sıçan 10,11,12, 13 fare ve insan 14,15 on. Bu model in vivo BBB, taklit bilinmektedir özellikle sıçan veya fare ve / veya perisitlerin 16,12 ikinci glial hücreler ve / veya nöral projenitör hücre türetilmiş astrosit 17 ve / veya 18 nöronlar ile birlikte kültürlenmiştir. Bu in vitro / in vivo deneyler ve karşılaştırma ve / veya transgenik model 19 üretilen beyin endotel hücrelerinin çalışmaya izin verir, çünkü &quot;laboratuar&quot; modelleri genellikle kemirgenler üretilmektedir. Yeni vitro BBB modellerde geliştirilen de önce in vivo test 15,20,21,3,6,22,11,23 potansiyel MSS ilaç adaylarının beyin alımını tahmin yardımcı olmak için tasarlanmıştır. In vitro BBB modeller genellikle karşılaştırmak için kullanılır CNS&#39;ye i) bilinen ya da nüfuz l ile: ile ilaçların nakilBBB ve merkezi etkileri karşısında ow geçirgenliği, ve ii) aynı türün hayvan modellerinde ölçülen aynı ilaçların belirgin Pe. Kolayca BBB geçmek ilaçlar çoğunlukla lipofiliktir ve lipid-aracılı serbest difüzyon (kafein, karbamazepin, vb) tarafından beyin endotel hücre zarlarını. Böyle digoksin, verapamil veya siklosporin A gibi olumsuz taşınan ilaçlar aktif P-gp olarak beyin endotel efflux taşımacıları tarafından uzatılır. Bununla birlikte, yeni geliştirilmiş terapötik moleküllerin gibi pek çok bir araya getiren proteinler, siRNA&#39;lar ya da monoklonal antikorlar gibi Biopharmaceuticals vardır. Belirli bir nakil i) yokluğunda ve paraselüler geçit geçiren, yüksek molekül ağırlıklı moleküllerin önlemek endotel hücreleri, ii) sıkıca paketlenmiş tabakasının: Çoğu nedeniyle BBB çapraz yoktur. Bu sınırlar ile, &quot;Truva atı&quot; stratejiler i, BBB bilinen reseptörlerine karşı vektörleri (antikorlar, peptidler) içeriyordu kullanılarak hayata geçirilmiştirn reseptörünün transferin (Tf) reseptörü (TfR), insülin reseptör (IR), veya LDL reseptör (LDLR) bağlantılı reseptör ailesi (LDLR, LRP1) üyeleri olarak ya da taşıma transsitoz (RMT), aracılık etmektedir. Bu reseptörler vivo 24,25 izole beyin kılcal ve BBB bulunmuştur. Bu reseptörler için transkripsiyonel profilleri, özellikle LDLR ailesinin olanlar, analiz ve co-kültürlenmiştir doğrudan beynin 26 kendi çekimi sonrası astrositler ile veya beyin kılcal beyin endotel hücreleri ve endotel hücrelerinin beyin arasında karşılaştırıldı. Pardridge 24 insülin alıcısının ve insülin büyüme faktörü reseptörü 27,28 karşı antikor, ardından transferrin reseptörü (TfR) karşı OX-26 antikoru ile alan açıldı. Bu antikor bazlı vektörlerle, ArmaGen Teknolojileri BBB 29 karşısında, proteinler de dahil olmak üzere, uyuşturucu sunmak için bir BBB moleküler Truva atı platformu teknolojisi geliştirdi.Literatür LRP1 beyin endotel hücreleri içinde ekspresyonu ve bir güçlü endositik / çöpçü reseptör olarak rolünü gösteren verileri açısından zengindir. Western blot analizi LRP1 beyin kılcal zenginleştirilmiş fraksiyon ve fare beyin kılcal endotel hücreleri 30 olarak ifade edilir olduğunu ileri sürdü. Böyle BBB 31 karşısında etkili ilaç akını teşvik aprotinine türetilmiş peptid vektörleri ile Angiochem hedef LRP1 gibi şirketler. Ancak, LRP1 ayrıca aktif Aβ taşınması ve beyin parankiminde kan 32 onun effluks / boşluk yer almaktadır. Bu veriler ligandlarına bağlı olarak BBB arasında çift yönlü bir taşıma LRP1 içerir. biOasis Vect-HORUS LDLR 34 hedef peptid vektörleri geliştirir iken böyle BBB 33 genelinde lizozomal enzimler ve antikorlar gibi biyolojik maddelerin taşınması için bir protein melanotransferrin kullanarak Transcend teknolojisini geliştirir. Veriler LRP ve LDLR diff taşımak için kullanılabileceğini düşündüren varBu tür BBB 37 arasında lizozomal enzimlerin 35,36 veya nanopartikül kompleksleri gibi erent moleküller. Ilgi alanımız vektörü moleküllerini ve merkezi sinir sistemi hastalıklarının tedavisi için vectorized ilaç adayları kullanılarak merkezi sinir sistemine ilaç teslim edilir. Özellikle, BBB boyunca ilaç verme nöroenflamasyonun, kendi ölçüde değişebilir bir süreç bağlamında dikkate alınması gereken, ancak bu ensefalit, multipl skleroz, Alzheimer hastalığı vs dahil olmak üzere, nöroenflamasyon, muhtemelen tüm merkezi sinir sistemi hastalıkları ve lezyonlar yaygındır paraselüler ve hücre üzerinden taşıma patolojik koşullarda 38,39,40,41,42,43 amplifiye edilebilir dikkate BBB fizyoloji ve geçirgenliği değişikliklerle BBB enflamasyon ile ve potansiyel olarak ilişkilidir. Örneğin, TNF-α, TWEAK ve diğer sitokinler inflamasyon modüle eden ve in vitro modellerle BBB deneyler bu th paraselüler özelliklerini değiştirmek göstermiştire endotelyal hücre tek tabaka 38,39,40 ve TNF-α de LDL 41 transsellüler taşınmasında bir artışa yol açar, 42 ve 43 laktoferrin holotransferrin. Amacımız geliştirmek ve karakterize etmek için optimize edilmiş olan bir ve yüksek oranda çoğaltılabilir sinjeneik fare modeli BBB primer beyin endotel hücreleri ve astrositler ko-kültürler kullanılmıştır. Biz ise beyin endotelyal hücre üretimi ve astrocyte üretim için 5 haftalık ve yenidoğan Wistar sıçanlar kullanıldı. Bir meydan okuma &quot;haftalık tekrarlanabilir&quot; BBB modellerinin üretimini sağlayan bir protokol kurmak oldu. Bu amaca ulaşmak için, üretim protokolün her adım ilk hafta Çarşamba günü beyin mikrovasküler üretimden başlayarak, haftanın belirli günlerindeki yapıldı. Diseksiyonlar son 3 yıl boyunca neredeyse her hafta yapıldı. Ayrıca kültürlerin tekrarlanabilirliğinin geliştirmek için, bir kalite güvence sistemi kuruldu. Tüm Reagents ve kimyasal bir veritabanı (giriş tarihi, stok, son terim, vb) başvurulan edildi. Bu model, bu gibi endotelyal hücre organizasyonu ve saflık gibi bir dizi kriter, aşağıdaki karakterize edildi, TEER, LY geçirgenlik, pro-enflamatuar maddeler, TJ proteinlerin nitel ve nicel ifade, P-gp olarak akış taşıyıcıları işlevselliği ve reseptörlerine müdahale gibi TfR veya LDLR gibi endotel hücre tekli katmanı üzerinde transsitoz katılan.

<table><tbody><tr><td>BSA fraksiyonu V düşük endotoksin</td><td>PAA</td><td>K45-011-500g</td><td>4 &deg; C&nbsp;</td></tr><tr><td>Penisilin-streptomisin</td><td>İnvitrojen</td><td>15140-122-20</td> <td>&deg; C</td></tr><tr><td>% 0.05 Tripsin-EDTA (1X)</td> <td>İnvitrojen</td><td>25300-054-20</td> <td>&deg; C</td></tr><tr><td>DMEM yüksek glikoz</td><td>İnvitrojen</td><td>61965-026</td><td>4 & derece; C&nbsp;</td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu</td><td>Invitrogen</td><td>10270-098-20</td> <td>&deg; C / 1 yıl</td></tr><tr><td>T75 şişeleri</td><td>Becton Dickinson Falcon</td><td>353135</td><td></td></tr><tr><td>HEPES tamponu (1 M)</td><td>Invitrogen</td><td>15630-056</td><td>4 &deg; C / 1 yıl</td></tr><tr><td>Kollajen tip IV fare (10 x 1 mg)</td><td>Becton Dickinson</td><td></td> <td>356233-20 derece; C / 1 ay</td></tr><tr><td>Fibronektin humain plazma (5 mg)</td><td>Becton Dickinson</td><td></td> <td>356008-20 derece; C / 1 ay</td></tr><tr><td>Vannas yaylı makas, düz (9 cm)</td><td>Güzel Bilim Aletleri</td><td>91500-09</td><td></td></tr><tr><td>Makas, düz (9 cm)</td><td>Güzel Bilim Aletleri</td><td>14568-09</td><td></td></tr><tr><td>Forseps Dumont #5/45 (11 cm)</td><td>Güzel Bilim Aletleri</td><td>11251-35</td><td></td></tr><tr><td>Graefe Forseps, uç genişliği 0,8 mm</td><td>Güzel Bilim Aletleri</td><td>11050-10</td><td></td></tr><tr><td>Graefe Forseps, eğri uç genişliği 0,8 mm</td><td>Güzel Bilim Araçları</td><td>11051-10</td><td></td></tr><tr><td>Kollajenazlar / dispas karışımı (2 x 5 mg)</td><td>Roche Diagnostics</td><td>05 401 054 001-20</td> <td>&deg; C / 3 ay</td></tr><tr><td>DNaz I (100 mg / 569 KU / mg)</td> <td>Sigma Aldrich</td><td>DN25-100</td> <td>mg-20 ve derece; C / 1 yıl</td></tr><tr><td>Gentamisin (10 mg / ml)</td> <td>İnvitrojen</td><td>15710-049</td><td>4 & derece; C / 1 yıl</td></tr><tr><td>DMEM / F12</td><td>Invitrogen</td><td>31331-028</td><td>4 & derece; C&nbsp;</td></tr><tr><td>Trombositten fakir plazmadan sığır serumu (500 ml)</td><td>Clinisciences</td><td>BT-214-100-20</td> <td>&deg; C / 1 yıl</td></tr><tr><td>bFGF (10 & mikro; g)</td> <td>Canlandırıcı</td><td>13256-029-20</td> <td>& derece; C / 6 ay</td></tr><tr><td>Domuz mukozasından Heparin Na tuzu Grade I</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H3149-100KU</td><td>4 & derece; C / 1 yıl</td></tr><tr><td>Puromycin</td><td>Sigma Aldrich</td><td>P8833-10</td> <td>mg-20 &derece; C / 6 ay</td></tr><tr><td>ITSX</td><td>Invitrogen</td><td>51500-056</td><td>4 & derece; C / 1 yıl</td></tr><tr><td>12 oyuklu plakalar için polietilen asılı hücre eki</td><td>Kırlangıç PIRP15R48</td><td></td><td>Gözeneklilik: 1 & mikro; m Yüzey: 1,1 cm2</td></tr><tr><td>Hidrokortizon</td><td>Sigma Aldrich</td><td>H0888-1</td> <td>g-20 derece; C / 1 yıl</td></tr><tr><td>Fare anti-CD31 / PECAM&nbsp;</td><td>Chemicon</td><td>MAB1393, klon TLD-3A12 (1 mg / mL)</td> <td>1/200 - fiksasyon PFA% 4</td></tr> <tr><td>Tavşan anti-Von Willebrand</td><td>Chemicon</td><td>AB7356</td><td>1/200 - fiksasyon PFA% 4</td></tr> <tr><td>Fare anti-Desmine</td><td>Chemicon</td><td>MAB3430</td><td>1/200 - fiksasyon PFA% 4</td></tr> <tr><td>Fare anti-Vimentine</td><td>Invitrogen, Zymed</td><td>08-0052 klon V9, (58 ve mikro; g/ml)&nbsp;</td><td>1/50 - fiksasyon PFA% 4</td></tr><tr><td>Fare anti-Claudin-5</td><td>Invitrogen, Zymed</td><td>35-2500, (500 & mikro; g / ml)</td> <td>1/200 - fiksasyon PFA% 4</td></tr> <tr><td>Tavşan anti-ZO-1</td><td>Invitrogen, Zymed</td><td>61-7300 (250 ve mikro; g / ml)</td> <td>1/200 - fiksasyon PFA% 4</td></tr> <tr><td>Tavşan anti-Oklüdin&nbsp;</td><td>Invitrogen, Zymed</td><td>71-1500 (250 & mikro; g / ml)</td> <td>1/200 - fiksasyon PFA% 4</td></tr> <tr><td>Alexa Fluor 488, 594 konjuge ikincil antikorlar</td><td>Invitrogen</td><td></td><td>1/800</td></tr><tr><td>Lucifer Sarı CH, dilityum tuzu</td><td>Sigma Aldrich</td><td>L0259-20</td> <td>& deg; C</td></tr><tr><td>TNF-alfa insan</td><td>PeproTech</td><td>300-01A-20</td> <td>& derece; C</td></tr><tr><td>Sıçan MCP-1 ELISA Kiti</td><td>PeproTech</td><td>900-K59</td><td>4 & derece; C / -20 & derece; C</td></tr><tr><td>Fare anti-P-glikoprotein</td><td>Covance, Eurogentec</td><td>SIG-38710-1000, klon C219 (1mg / mL)</td> <td>1/400 - fiksasyon PFA% 4 1/200 (batı lekesi)</td></tr> <tr><td>Tavşan anti-GLT-1</td><td>Abcam</td><td>ab41621</td><td>1 / 1.000 (batı lekesi)</td></tr> <tr><td>Rhodamine 123</td><td>Sigma Aldrich</td><td>83702</td><td>4 & derece; C</td></tr><tr><td>Verapamil hidroklorür</td><td>Sigma Aldrich</td><td>V4629</td><td>4 & derece; C</td></tr><tr><td>Siklosporin A</td><td>Sigma Aldrich</td><td>30024</td><td>4 & derece; C</td></tr><tr><td>Monoklonal anti-a2 Makroglobulin Reseptörü (CD91, LRP1) bir EGF tekrarı içinde amino asit 4291-4344'ün b-zincirine karşı</td><td>American Diagnostica</td><td>3501 (100 & mikro; g/ml)</td><td>1/5 - fiksasyon PFA% 4</td></tr> <tr><td>Fare anti-LDLR</td><td>R& D sistemleri</td><td>AF2255 (200 & mikro; g/ml)</td><td>1/50 - fiksasyon PFA %4</td></tr> <tr><td>Sıçan transferrin-Cy3</td><td>Gentaur</td><td>JOR160050</td><td>4 & derece; C</td></tr><tr><td>DiILDL</td><td>Invitrogen</td><td>L-3482</td><td>4 & derece; Ç</td></tr></tbody></table>

ayarlama-up bir<em&gt; in vitro</emsıçan kan-beyin bariyerinin&gt; model (bbb): bbb geçirimsizliği ve reseptör aracılı ulaştırması bir odak

Setting-up an In Vitro Model of Rat Blood-brain Barrier (BBB): A Focus on BBB Impermeability and Receptor-mediated Transport

Kan-beyin bariyeri (BBB), özellikle kan ve sinir dokusu arasında moleküler ve hücresel akışı düzenler. Amacımız, endotelyal hücre tek tabaka arasında transsitoz dahil reseptörleri incelemek için primer fare beyin endotel hücreleri (RBEC) eş-kültür ve astrositler üzerindeki BBB in vitro modelinin yüksek ölçüde tekrarlanabilir singeneik fare geliştirmek ve karakterize etmek olmuştur. Astrositler tripsin sindirim aşağıdaki mekanik disseksiyon yolu ile izole edildi ve daha sonra eş-kültür için dondurulmuştur. RBEC 5 haftalık sıçan korteks izole edilmiştir. Beyin Meninks ve beyaz maddeden temizlenmiş ve mekanik enzimatik sindirimi aşağıdaki ayrışmış edildi. Bundan sonra, doku homojenatı sinir dokusu damar parçalarını ayırmak için bovin serum albümin içinde santrifüjlenmiştir. Kap parçaları kendi hücre dışı matris olmadan endotel hücreleri için ikinci bir enzimatik sindirim uygulandı. Böyle perisitlerden gibi kalan kirlenmesine neden olan hücreleri f edildiurther puromisin içeren ortam içinde mikro damar kaplama parçalarını elimine edilir. Daha sonra kuyular altındaki yetiştirilen astrositler ile ko-kültür için filtreler üzerine geçirilmiştir. RBEC sıkı birleşme yüksek seviyelerini ifade okludin gibi (TJ) proteinleri, hücre sınırları tipik bir lokalizasyonu ile Claudin-5 ve ZO-1. TJs sıkılığını gösteren beyin endotelyal monotabakaların transendotelyal elektriksel direnci (TEER), 300 Ohm · ortalama cm 2 ulaştı. (LY) Lucifer sarı için endotel geçiş katsayıları (Pe) / dk 0.26 ± 0.11 x 10 cm -3 bir ortalama ile yüksek oranda tekrar oldu. Mono tabakaları düzenlenen beyin endotel hücreleri, akış taşıyıcı P-glikoprotein (P-gp) olarak ifade edilmiştir rodamin 123, P-gp için bir ligandın bir polarize taşıma gösterdi ve endotelyal hücre tek tabaka arasında transferrin-Cy3 ve DiILDL özel taşıma gösterdi. Sonuç olarak, bir in vitro kurmak için bir protokol sağlarNedeniyle kalite güvence yöntemleri son derece tekrarlanabilir olduğunu ve BBB nakliyecilere ve reseptörler üzerinde araştırma için uygun olan BBB modeli.

Bu çalışmanın amacı, singeneik fare endotelial hücreler ve astrositlerin ortak-kültür içeren bir in vitro modelinin BBB tekrarlanabilirliğini doğrulamak için oldu. Endotel hücre tek yüksek Teer ve düşük LY geçirgenliği sundu. Belirli TJ proteinlerin ekspresyonu, enflamasyon ve taşıyıcı ve reseptörlerin işlevselliğine fonksiyonel tepkileri değerlendirildi.

Ayarlama-up bir<em&gt; In Vitro</emSıçan Kan-beyin bariyerinin&gt; Model (BBB): BBB geçirimsizliği ve Reseptör aracılı Ulaştırması Bir Odak

The blood brain barrier (BBB) specifically regulates molecular and cellular flux between the blood and the nervous tissue. Our aim was to develop and ...

Bu prosedürün genel amacı, sıçan kan-beyin bariyerinin yüksek düzeyde tekrarlanabilir bir in vitro modelini kurmaktır. Bu işlem, bir stereo mikroskop altında optik sinirlerin, serebellumun ve meningeslerin çıkarılması, ardından iki serebral hemisferin birbirinden ayrılması ve temiz bir korteks parçası elde etmek için bunların disseke edilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, enzimatik işlem ve yoğunluk bağımlı santrifüjasyon yoluyla korteksteki mikrovasküler yapıların izole edilmesidir.Ardından, endotel hücrelerini parazitler gibi kontamine hücrelerden arındırmak için mikrodamarlar ekilir ve purmiisin ile inkübe edilir. Saf sırt beyni endotel hücresi kültürleri, hücreler %90 konfluansa ulaşana kadar prolifere olur. Son adım, insert filtrelerin üst bölmesindeki hücreler aracılığıyla ve önceden hazırlanıp ekilmiş olan sırt astrositleri ile ko-kültür yaparak sırt beyni endotel hücrelerinin farklılaşmasını indüklemektir.Nihayetinde, farklılaşmış beyin endotel hücresi monotabakası, spesifik sıkı bağlantı proteinlerinin ekspresyonu ve bir referans bileşiğin üst kompartıman üzerinden endotel hücre monotabakası boyunca geçirgenlik indeksi ile karakterize edilebilir. Burada sunulan model gibi in vitro KKB modelleri, temel moleküllerin hücresel dağılımını araştırmak ve KKB fonksiyonunun temel hücresel ve moleküler mekanizmalarını aydınlatmak için kullanışlıdır. Özellikle bu tür modeller, KKB reseptörlerinin ve bunların endositoz taşınımı ile transitozisteki rollerinin araştırılmasına olanak tanır.İn vitro KKB modelleri, temel olarak geliştirdiğimiz peptit vektörlerin spesifik reseptörleri hedeflemesini araştırmak için kullanılır. İlaçların KKB üzerinden MSS'ye iletimini kolaylaştırmak için, Truva atı yaklaşımı olarak da bilinen reseptör aracılı transositoz adı verilen bir süreç kullanıyoruz. Görsel açıklama, bireyler için kritik öneme sahiptir. Bu yönteme yeni başlayanların, hücre üretim süreci sırasında doku canlılığını korumak adına yeterince hızlı ve doğru çalışabilmek için diseksiyon becerisine ve mikroskoba ihtiyacı olacaktır.Bir diğer kritik nokta, deneyler sırasında bariyer açılmasını önlemek amacıyla fragile ve tele salmon alanının erkenden sonlandırılmasıdır. Son olarak, bu fikir, prosedürün tarafımca ve meslektaşım tarafından gerçekleştirileceğini gösteren kırmızı ve görselleştirilmiş protokoller arasındaki farkı ortaya koyacak olan protokol boyunca ayrıntıları gösterecektir. Bu prosedüre, iki T 75 flask'ı steril kültür suyu içinde santimetrekare başına bir mikrogram kolajen tip dört ve fibronektin ile kaplayarak başlayın ve mikro damar ekimine kadar 37 °C'deki inkübatörde yapışmalarına izin verin.İki gün sonra, beş haftalık üç Vista sıçanın beynini kafatasından çıkarın ve beyinleri buz üzerinde tutulan soğuk diseksiyon tamponuyla dolu bir Petri kabına aktarın. Beyinleri, serebellum ve optik sinirler hariç olacak şekilde disseke edin. Ardından, iki serebral hemisferi ayırmak için her bir beyni stereo mikroskop altında ortadan ikiye kesin.Orta beyni çıkarmak için başka bir kesi yapın ve dört beynin tamamını buz üzerinde, diseksiyon tamponu içeren temiz bir Petri kabına aktarın. Ardından, ön beyinlerden birini soğuk diseksiyon tamponuyla doldurulmuş yeni bir Petri kabına aktarın. Bir klemple tutarak meningesleri ön beynin kenarlarından dikkatlice ayırın.Ardından, ön beyni ters çevirin ve meningesleri yırtmadan dikkatlice sıyırın. Ön beyinde hiç meninges kalmadığından emin olun ve optik sinirlerin kalan kısmını kesin. Bu adımın amacı, bir korteks kabuğu elde etmek için beyaz madde tabakasını temizlemektir.Önce ön beyni kenardan kenetleyerek başlayın ve ardından korteks yüzeyini yırtmamaya dikkat ederek penseti yüzey boyunca dikkatlice sürükleyin. Daha sonra, kalıntı meninks veya büyük yüzey damarlarının bulunmadığından emin olmak için beyni yuvarlayarak meninkslerden tamamen arındırıldığını kontrol edin. Ardından, üç beynin kafatasından çıkarılmasıyla başlayan diseksiyon işleminin tamamı, doku korunumu ve hücre sağkalımı için iki saatten fazla sürmemelidir.Üç beyin korteksini, yedi mililitrelik bir homogenizatör içerisindeki altı mililitre soğuk diseksiyon tamponuna aktarın; ardından korteksleri, önce daha geniş boşluklu birinci havanla 10 kez yukarı-aşağı hareketlerle, ardından daha dar boşluklu ikinci havanla 10 kez yukarı-aşağı hareketlerle ayrıştırın. Sonrasında, süspansiyonun altı mililitresini yeni bir 50 mililitrelik Falcon tüpüne aktarın ve homogenizatörü 24 mililitre soğuk diseksiyon tamponu ile yıkayın; tüp başına bir korteks eşdeğeri elde etmek için süspansiyonu üç Falcon tüpüne bölün. Ardından, oda sıcaklığında beş dakika boyunca 1000 Gs hızında santrifüjleyin.Peletin gözlemlenmesi, kortekslerin mikrovasküler kısmını temsil eden pembe bir renk gradyanı olduğunu gösterir. Süpernatantı uzaklaştırın ve tek bir korteksten elde edilen peleti; kollajenazlar, DNAaz tip 1 ve Gentamisin içeren bir mililitre enzimatik çözelti ile homojenize edin. Tüpleri 37 °C'de 30 dakika boyunca çalkalayıcıya yerleştirin.Ardından, bir mililitre digesti 10 mililitre 25%B-S-A-H-B-S-S bir X ile karıştırın, tüpleri hafifçe vorteksleyin ve ardından oda sıcaklığında 15 dakika boyunca 3.600 Gs ile yoğunluk bağımlı santrifüjle ayırın. Yoğunluk bağımlı santrifüj sonrası, pelet mikrodamarları, üst disk ise miyelin beyin parankimini ve kalıntı mikrodamarları içerir. Üst diski ve süpernatanı dikkatlice temiz 50 mililitrelik falcon tüplerine aktarın.Mikrodamarlar peletini aspire etmemeye dikkat edin, tüpü hafifçe vorteksleyin ve yoğunluğa bağlı santrifüj işlemini ikinci santrifüj sırasında tekrarlayın. Mikrodamarları içeren elde edilen peleti dört derece santigrat sıcaklıkta muhafaza edin. İkinci yoğunluğa bağlı santrifüjden sonra üstteki diski ve snat karışımını dikkatlice atın ve her iki santrifüjden elde edilen mikrodamarlar içeren peletleri bir mililitre soğuk 1x HBSS ile yeniden süspanse edin.Ardından, mikrodamarları 20 mL soğuk 1x HBSS ile yıkayın ve 1000 ×g'de beş dakika santrifüj edin. Daha sonra, mikrodamarları kaybetmemeye dikkat ederek süpernatantı uzaklaştırın. Bir korteksten elde edilen mikrodamarlar peletini, tüpleri hafifçe vorteksledikten sonra 1 mL aynı enzimatik çözelti ile homojenize edin.Mikrodamarları bir çalkalayıcıda 37 °C'de bir saat daha sindirin. Ardından, üç korteksten elde edilen sindirilmiş mikrodamarları tek bir tüpte birleştirin. Karışımı yeniden iki adet 50 mL falcon tüpüne ayırarak, tüp başına bir buçuk kortekse eşdeğer miktarda ekstrakte edilmiş mikrodamar elde edin.Ardından 1000 Gs'de beş dakika boyunca santrifüjleyin. Mikrodamarları ekim yapmadan hemen önce oda sıcaklığında, inkübatörden kaplanmış iki adet T 75 flask alın ve fazla kaplama solüsyonunu aspire edin. Süpernatantı atın ve mikrodamar peletini bir mililitre ECM içinde yeniden süspanse edin, her tüpü mililitre başına dört mikrogram eklenmiş ECM ile 10 mililitreye tamamlayın.Saflaştırma işlemini başlatmak için purmycin ekleyin ve mikrodamarları flasklara plat edin. Ardından, saflaştırma işleminin devamında mikrodamarların kollajen fibronektin matriksine yapışmasını sağlamak için flaskları 37 °C ve %5 CO2 içeren inkübatöre yerleştirin. Mikrodamarlar plat edildikten 24 saat sonra, hücre döküntülerini taze ECM ile yıkayın ve kültür medyasını, inkübatörde 37 °C ve %5 CO2 altında beşinci güne kadar 4 µg/mL purmycin ile desteklenmiş ECM ile değiştirin. Mikrodamarlar plat edildikten 24 saat sonra endotel hücreler göç etmeye ve kollajen fibronektin matriksi üzerinde yayılmaya başlar; saflaştırma işlemini tamamlamak için beşinci günde hücre döküntülerini taze ECM ile yıkayın ve kültür medyasını 2 µg/mL ile desteklenmiş ECM ile değiştirin.Proliferasyon için üç gün daha Puramycin uygulayın. Sekizinci günde hücreleri yıkayın ve insülin, transferrin ile sodyum selenit ekleyin. Kültürler 10. günde %90 konfluense ulaşana kadar kültür besiyerini takviye edin.Sekizinci günde, üç adet 12 kuyucuklu plakanın filtrelerini, steril kültür suyu içerisinde her biri 0.5 µg/cm² konsantrasyonundaki kollajen tip IV ve fibronektin karışımı ile kaplayarak hazırlayın. Alt bölmeye 1.5 mL steril kültür suyu ekleyerek başlayın.Ardından üst kompartımana 0,5 milliliters karışım ekleyin. Matrisin, ko-kültür kurulumundan beş gün önce, aynı gün yapılacak endotel hücre ekimine kadar 37 degrees Celsius'de tutunmasını sağlayın. Astrositleri kriyoviyallerden 37 degrees Celsius'de çözün ve hücreleri 10 milliliters GCM içeren 15 milliliters falcon tüpüne aktarıp santrifüjleyin.Süspansiyonu oda sıcaklığında sekiz dakika boyunca 120 Gs'de santrifüjleyin. Ardından astrosit peletini GCM içerisinde yeniden süspande edin ve santimetrekareye 30.000 hücre yoğunluğunda ekim yapın. 12 kuyucuklu plakaları, 10. günde RBEC'lerin tripsin ile disosiyasyonundan hemen önce 37 °C ve %5 CO2 içeren inkübatöre yerleştirin.Önceden kodlanmış filtreyi DMM F 12 ortamı ile yıkayın, odacıkları ECM ile önceden doldurun ve aynı gün yapılacak RBEC ekimine kadar inkübatöre geri yerleştirin. RBEC'leri kalsiyum ve magnezyum içermeyen DPBS ile iki kez yıkayın. T 75 flask başına 37 °C'de tam olarak 30 saniye boyunca dört mililitre ılık tripsin EDTA çözeltisi ekleyin ve 3,5 mililitre tripsin EDTA çözeltisini geri alın.Endotel hücrelerinin her zaman bir trypsin EDTA tabakasıyla kaplı olduğundan emin olun. Ardından hücrelerin ayrılmasını mikroskop altında gözlemleyerek takip edin. Hücre tabakası matristen ayrılmaya başladığında, tüm hücreler yüzene çıkana kadar T 75 flaskının kenarına hafifçe vurun.Her bir T 75 flaskına üç mililitre ECM ekleyin ve 50 mililitrelik falcon tüpüne aktarın. Tüm hücreleri geri kazanmak için medyumu yıkayarak bu adımı iki kez tekrarlayın.Sarı uçlu 10 milliliter pipet ile dört kez yukarı-aşağı pipetleme yaparak hücre süspansiyonunu çok nazikçe ayrıştırın. Süspansiyondaki hücreleri sayın ve ertesi gün önceden kodlanmış ve doldurulmuş filtrelere yüksek yoğunlukta hemen ekin. Besiyeri değişimi sırasında hücre monokatmanının bozulmasını önlemek amacıyla, hücre kalıntılarını uzaklaştırmak için üst bölmenin besiyerini iki kez değiştirin.Plakayı hafifçe eğin ve aspirasyon pipetiyle hücre monotabakası üzerinde her zaman bir miktar besiyeri bırakarak yaklaşmayın; benzer şekilde, besiyeri değişimi sırasında hücre monotabakasının kurumasını önleyin. Her seferinde yalnızca altı insert yıkayın. Ekimden 24 saat sonra hücre monotabakası konfluense ulaşmış olmalıdır.Ardından aynı gün, ko-kültür kurulumundan bir gün önce, diferansiyasyonun birinci günü olarak tanımlanan 12. günde, astrosit kültür medyumunu 1,5 mililitre takviyeli diferansiyasyon medyumu ile değiştirin. RBEC içeren filtrelerdeki kültür medyumunu diferansiyasyon medyumu ile değiştirin. Daha sonra RBEC filtrelerini, bu koşullar altında astrositlerin bulunduğu kuyucuklara transfer edin.In vitro modeller üç gün içinde farklılaşır ve bağlantı ile ilgili proteinleri eksprese eder; optimal farklılaşma ise üç gün daha sürer. Burada, hücre monokatmanı, örtüşmeyen morfolojiye sahip konfluen bir beyin endotel hücresi monokatmanını ve endotel morfolojisine sahip tipik iğ şeklinde hücreleri ortaya çıkarmak için immünboyama ile boyanmış; ayrıca tight junction proteinleri olan ZO-1 ve occludin ekspresyonu ile monokatman sıkılığı belirlenmiştir. 12 kuyucuklu BBB modelindeki monokatman sıkılığı, Lucifer yellow transportunun ölçülmesiyle değerlendirilmiştir.Sonuçlar, dakika başına 10 üzeri eksi üç santimetre cinsinden geçirgenlik veya PE olarak ifade edilmiştir ve LY'nin PE değeri 0,6 × 10⁻³ cm/dakikanın üzerinde olduğunda bariyer geçirgen veya açık kabul edilir. Son on yıllarda, birçok yayın ve derleme farklı türlerden statik ve dinamik in vitro BBB modelleri hakkında bilgiler sunmuştur. Ancak, bu tür modellerin yönetimi zor olmaya devam etmekte ve bariyer kalitesinin tekrarlanabilirliği temel bir hedef olmayı sürdürmektedir.Bu videoyu izledikten sonra bilim insanları, PBB'nin in vitro bir modelinin nasıl üretileceği ve karakterize edileceği konusunda iyi bir anlayışa sahip olmalıdır.

setting-up-an-vitro-model-rat-blood-brain-barrier-bbb-focus-on-bbb

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Bu videoda, sodyum floresein molekülleri kullanılarak in vitro kan-beyin bariyerinin geçirgenliğini değerlendirmek için bir geçirgenlik testi açıklanmaktadır.

Kan-Beyin Bariyeri Mimik Geçirgenlik Deneyi: BBB Mimikinin İzleyici Moleküllere Geçirgenliğini Değerlendirmek İçin İn Vitro Test

Bu videoda, serbest FITC ve FITC yüklü ferritin ile bir zar eki üzerinde astrositler ve endotel hücreleri kullanılarak in vitro kan-beyin bariyeri (BBB) modeli aracılığıyla nüfuzu incelemek için bir yöntem gösterilmektedir. FITC-ferritin, endotel hücreleri üzerindeki reseptörlere bağlandı ve membran bariyerini alt odaya geçerken, serbest FITC sınırlı geçirgenlik gösterdi ve üst odacıkta kaldı.

FITC ve FITC-Ferritin'in Geçirgenliğinin İn Vitro Kan-Beyin Bariyeri Modeli ile İncelenmesi

Sıçan beyni, mikrovasküler endotel hücreleri ve astrositlerin bir ko-kültürüne dayalı olarak in vitro bir kan-beyin bariyeri modeli oluşturmak için bir yöntem tanımlanmış ve doğrulanmıştır. Bu sistem, nanoformülasyonun floresan moleküllerin trans-bariyer geçirgenliği üzerindeki etkisini incelemek için geçerli bir araç olduğunu kanıtladı.

Bir Sıçan Kan beyin bariyeri karşısında FITC yüklü ferritinin İn Vitro Geçirgenlik: Bir Model Nanoformulated Moleküllerin Teslim Eğitim için

Burada, aktive edilmiş T hücreleri ile etkileşim üzerine endotel hücre bütünlüğü ve geçirgenliği üzerindeki sonuçlara odaklanarak, empedans hücre spektroskopisini kullanan kan-beyin bariyerinin in vitro bir murin modelini açıklıyoruz.

bir<em&gt; İn Vitro</em&gt; Empedans Spektroskopisi kullanarak kan-beyin bariyerinin Model: T Hücre-endotelyal hücre Etkileşim Üzerine Bir Odak

Kan-beyin bariyerinin korunması, merkezi sinir sisteminin homeostazı için kilit unsurdur. Bu protokol, kan-beyin bariyerinin kapsamını düzenleyen temel ve patolojik süreçleri tanımlamak için in vitro teknikleri tanımlamaktadır.

Kan-beyin Bariyeri Mesh Benzeri Gemi Oluşumu ve Kesintisini Değerlendiren İn Vitro Tahliller

Protokol amacı birincil domuz beyin endotel hücreleri (pBECs) temel alan bir vitro kan - beyin bariyerini (BBB) modeli kurulması için en iyi duruma getirilmiş bir yordam sunmaktır. Modeli gösterir yüksek tekrarlanabilirlik, yüksek gerginlik ve taşıma ve hücre içi ilaç bulma gelen kaçakçılığı için uygundur.

Yöntem bir Vitro kan - beyin bariyerini modeli domuz beyin endotel hücreleri temel alan kurulması için geliştirilmiş

Burada bir fare beyin damar geçirgenliği tahlil mayi enjeksiyon kan - beyin bariyerini disfonksiyon hayvan modelleri için geçerlidir perfüzyon ardından floresan tarayıcıları kullanarak mevcut. Bir hemi-beyin geçirgenliği kantitatif değerlendirilmesi ve diğer izleme görselleştirme/immunostaining için kullanılır. Yordamı 5-6 h 10 fareler için alır.

Vivo kan - beyin bariyerini geçirgenliği tahlil Fluorescently kullanarak farelerde izleyiciler etiketli

Burada, sıçan beyin yüzdeki yalıtım ve membran örnekleri hazırlanması için bir yöntemi açıklanmıştır. Bu iletişim kuralı örnekleri kabul edilebilir protein ile bireysel hayvanlardan verim zenginleştirilmiş microvessel üreten açık avantajı vardır. Örnekleri daha sonra beyin mikrovasküler endotel, sağlam protein analizleri için kullanılabilir.

Membran örnekleri taze izole sıçan beyin yüzdeki hazırlamak için basit ve tekrarlanabilir bir yöntem

Bu protokol, in vitro model bir insan kan-beyin bariyeri (BBB) oluşturmak için bir yöntem açıklar. Endotel hücreleri ve perisitler bir kesici uç filtrenin (kan bölmesi) her iki tarafına ekilir ve astrositler alt kuyucuğa (beyin bölmesi) ekilir. Karakterize edilen model, nanopartikül taşıma deneyleri için kullanılmıştır.

İnsan Kan-Beyin Bariyerini Modelleyen Üçlü Kültür Hücre Sistemi

Kan-beyin bariyeri (BBB), istikrarlı ve sağlıklı bir beyin ortamının sürdürülmesinde çok önemli bir role sahiptir. BBB disfonksiyonu birçok nörolojik hastalıkla ilişkilidir. Serebrovasküler patolojiyi, BBB bütünlüğünü ve BBB'nin genetik ve hastalık tarafından nasıl değiştirildiğini araştırmak için BBB'nin 3 boyutlu, kök hücre türevli bir modelini geliştirdik.

Nörolojik Hastalığı Modellemek ve Terapötik Olarak Hedeflemek için İn Vitro Kan-Beyin Bariyerinin Yeniden Yapılandırılması

Bu protokol, beyin kan bariyerinin güvenilir ve verimli bir in vitro modelini tanımlar. Yöntem, fare serebral vasküler endotel hücreleri bEnd.3'ü kullanır ve transmembran elektrik direncini ölçer.

bEnd.3 Transendotelyal Elektriksel Direnç Tespiti Yoluyla Vasküler Endotel Hücrelerinde Bariyer Fonksiyonel Bütünlük Kaydı

Keşfedin, sıçan kan-beyin bariyeri için in vitro model kurulumunu. Endotelyal hücre ve astrosit ko-kültürü kullanılarak TEER ve geçirimsizlik değerlendirilir. Bu yöntem, ilaç taşıma mekanizmalarını incelemek için kullanılabilir.

Ayarlama-up bir

Daha fazla video keşfet