25 Şubat 2014
Nöronal ağların yapısını anlamak için, bireysel nöronların fonksiyonel ve morfolojik karakterizasyon bir zorunluluktur. Burada, juxtasomal biocytin dışı yapılandırmada elektrofizyolojik kayıtları etiketleme izin verir, ama hücre içi dendritik ve aksonal mimari post hoc yeniden için nöron etiket yeteneğini muhafaza göstermektedir.
Bu prosedürün genel amacı, bilgi işleme sırasında duyusal korteksteki hücre tipine özgü aksiyon potansiyeli ateşlemelerini, kaydedilen nöronların morfolojik kimliği ile ilişkilendirmektir. Bu işlem, öncelikle sıçanın juktasomal kayıtlar için cerrahi olarak hazırlanmasıyla gerçekleştirilir. Hazırlık tamamlandıktan sonra, bir elektrot ile spontan ve duyusal olarak uyarılan ateşleme aktivitesi kaydedilir ve kaydedilen nöron, akım ve enjeksiyonlar kullanılarak biocidin ile doldurulur.
Ardından, beyin biyotin boyaması için işlenir. Son olarak, biyotinle doldurulmuş nöron, hücre tipi sınıflandırması için ardışık kesitlerden dijital olarak yeniden yapılandırılır. Nihayetinde, tekil nöronlardan alınan juxtasomal kayıtlar, kortikal ağ içindeki duyusal işlemenin ve yapısal bilgilerin incelenmesine olanak tanır.
Bu yöntem, duyusal işleme sırasında bireysel hücre tiplerinin ve katmanların rolü nedir gibi nörobilimdeki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir. Genellikle, bu yönteme ihtiyaç duyan kişiler, doldurma prosedürü sırasında nöronları öldürmek çok kolay olduğu için zorluk yaşarlar. Başarılı bir biyosidin doldurma şansı, optimal kalitede pipetler hazırlanarak artırılır ve ek olarak, dar bant akım enjeksiyonlarını kontrol etmek için eğitimli bir göz gereklidir.
Bu nedenle, iyi doldurulmuş nöronların geri kazanım başarı oranını artırmak deneyim gerektirir. Başlamak için, anestezi uygulanmış bir wistar sıçanını ısıtma pedi ile donatılmış bir stereotaksik çerçeveye yerleştirin. Sedasyon derinliğini, ayak parmağı sıkıştırma refleksini test ederek doğrulayın.
Ardından, uygun vücut sıcaklığını korumak için rektal bir prob yerleştirin. Hayvanın başını sabitleyin ve cerrahi bölgedeki tüyleri temizleyin. Kurumayı önlemek için gözlere merhem uygulayın.
Operasyon bölgesine lidokain enjekte ettikten sonra üç ila beş dakika bekleyin ve kafatasının yüzeyini örten deriyi kaldırın. Ardından, kalan tüm dokuları temizleyin ve kafatasını %0.9 sodyum klorür çözeltisi ile kapsamlı bir şekilde temizleyin. Sol hemisferdeki primer somatosensoriyel korteksin koordinatlarını belirleyin ve konumu cerrahi cilt markör kalemi ile kafatası üzerinde işaretleyin.
İlgilenilen bölgedeki kemiği sıyırmak için dişle ilgili bir matkap kullanın. Kemik şeffaflaşana ve kan damarları net bir şekilde görünür hale gelene kadar sıyırma işlemine devam edin. Ardından, bir bistüri ile ince kafatası üzerinde küçük bir pencere açın.
Dura mater ve kan damarlarına zarar vermemeye dikkat edin. Kraniyotomi kenarlarını cerrahi bir cilt markörü kalem kullanarak işaretleyin. Görünürlüğü artırmak için kuru kafatası üzerine ince bir kat süper yapıştırıcı uygulayın ve ardından bir havuz oluşturmak için dental siman sürün.
Kraniyotomi kapatılırken, görünürlüklerini artırmak için karşı taraftaki bıyıkları tam olarak beş milimetre olacak şekilde kısaltın. Kayıtlara başlamadan önce kısaltılmış bıyıkları siyah maskara ile belirginleştirin ve borosilikat camdan patch pipetler hazırlayın. İdeal pipet morfolojisi; kademeli ince bir daralma, düşük bir koni açısı ve yaklaşık bir mikronluk bir iç uç çapıdır.
Patch pipetini %2 biotin ile desteklenmiş normal rad ringer ile doldurun ve patch pipetini bir kafa katına sabitlenmiş ve bir mikro manipülatöre bağlanmış bir pipet tutucuya monte edin. Sıçan S1'in D2 kolonunu spesifik olarak hedeflemek için, elektrot tutucunun açısını sagital düzleme göre 34 dereceye ayarlayın. Ardından, patch pipetini kraniyotominin yakınına konumlandırın.
Banyoyu %0,9 sodyum klorür ile doldurun. Amplifikatör köprü modundayken, elektrot direncini belirlemek için pozitif akım enjeksiyonu ile kare dalga darbeleri uygulayın. Optimal elektrot direnci üç ile beş megaohm arasındadır.
100 ila 150 millibar arasında bir aşırı basınç oluşturun ve kare darbeler şeklinde pozitif akım uygularken patch pipeti bir mikronluk adımlarla ilerletin. Dura mater ile temas kurulduğunda meydana gelen belirgin direnç değişimini izleyin. Bu noktada, doğru derinlik ölçümleri yapabilmek için mikromanipülatörün koordinatlarını sıfıra ayarlayın.
Elektrot direncindeki ani düşüşle belirtilen dura mater'e patch pipeti nüfuz edene kadar bir mikronluk adımlar halinde ilerleyin. Pipetin tutma basıncını kaldırın. Ardından, bir mikronluk adımlarla ilerlerken tekil üniteleri arayın.
200 milisaniyelik açık-kapalı darbeler uygulayarak elektrot direncini sürekli olarak izleyin; elektrot direncindeki artış genellikle tek bir nörona yaklaşıldığını gösterir. Yaklaşık iki milivoltluk pozitif yönlü aksiyon potansiyeli dalga formları kaydedilene kadar elektrodu ilerletin. Jüktasomal dolum için optimal koşulları elde etmek amacıyla, piezoelektrik bir cihaz kullanarak tekil bıyıkları kontrollü bir şekilde saptırıp spontan spike aktivitesini ve bıyık uyarımıyla tetiklenen spike aktivitesini isteğe bağlı olarak kaydedin.
Juktasomal dolumu başlatmak için direnç 25 ila 35 Mega ohm olana ve spike genlikleri üç ila sekiz milivolt değerine ulaşana kadar elektrodu ilerletin. Bir nano amp ile başlayarak pozitif kare akım darbeleri uygulayın.
AP dalga formunu ve frekansını izlerken akımı 0.1 nano amp cinsinden basamaklarla yavaşça ve kademeli olarak artırın. Membran açılmasını, blok pulsunun açık fazı sırasında AP frekansındaki belirgin bir artış olarak izleyin; dolum sırasındaki spike dalga formu artmış bir genişlik ve azalmış bir after hiperpolarizasyon gösterir. Stabil biyotin infüzyonunu sürdürmek için dolum sırasında akımı artırın veya azaltın; AP frekansının ani artışı durumunda akım pulslarını azaltın veya durdurun. Sodyum iyonları gibi hücre dışı iyonların aşırı girişinden kaynaklanabilecek toksisiteyi önlemek içindir.
Her nöronun doldurma prosedürüne farklı yanıt vereceğini not etmek önemlidir. Bu nedenle, juktasomal etiketleme parametreleri kayıt koşuluna göre ayarlanmalıdır. Akım enjeksiyonunu durdurduktan sonra sinyali yakından izleyin.
Bir doldurma oturumundan sonraki spike dalga formu genellikle genişlemiştir ve güçlü bir şekilde azalmış bir ardıl hiperpolarizasyon sergiler; hücreye yönelik mekanik stresi azaltmak için spike dalga formu orijinal özelliklerine dönene kadar nöronun toparlanması beklenir. Spike genliği azalana kadar patch pipetini bir mikronluk adımlarla geri çekin; hayvanın vücut sıcaklığını ve solunumunu yakından izlerken biyotinin hücre içine yayılması için en az bir saat bekleyin. Son olarak, juktasomal etiketlemenin kalitesini ortaya çıkarmak için beyin örnekleri alınır ve işlenir.
Bu görüntüler, primer somatosensoriyel korteksteki juktasomal olarak doldurulmuş nöronların görüntülerini göstermektedir. Bir parametal nöronun bu tanjansiyel görünümü, dendritler ve aksonlar arasındaki boyut farkını ortaya koymaktadır. Bir juktasomal olarak işaretlenmiş nöronun bu dijital rekonstrüksiyonunda, nöron projeksiyon görüntüsü yüksek çözünürlükte ancak düşük büyütmede gösterilmiş olup, üzerine otomatik dijital rekonstrüksiyon ile sırasıyla akson mavi, dendrit ise kırmızı renkle bindirilmiştir.
Burada, akson boyunca akson butonlarını göstermek için kutu bölgesi genişletilmiştir. Bu son animasyonda, sıçan primer somatosensör korteksteki bir tabaka beş kalın tüftelı parametal nöron için yeniden yapılandırma hattını örneklendiriyoruz. Yeniden yapılandırma hattı, dendritik ve aksonal morfolojinin 100 kat büyütme ile ve fıçı konturlarının dört kat büyütme ile yeniden yapılandırılmasını içerir.
Sonuç, morfolojik özelliklerin kantitatif analizini gerçekleştirmek amacıyla daha sonra standart bir referans çerçevesine kaydedilen tam bir 3D rekonstrüksiyondur. Böylece, in vivo juxtasomal etiketleme, tam 3D morfolojinin güvenilir rekonstrüksiyonu için olağanüstü bir etiketleme kalitesi sağlar. Burada, yöntemi üretan ile anestezi uygulanmış hayvanlarda gösterdik.
Bununla birlikte, Jux Somal kayıtları, ortamın aktif keşfi sırasında bireysel hücre tiplerinin ve katmanların rolünü incelemek için uyanık, başı sabitlenmiş hayvanlarda da kullanılabilir. Bu videoyu izledikten sonra, sonrası tanımlama ve morfolojik yeniden yapılandırma amacıyla bireysel nöronlarda Biocidin işaretlemesinin nasıl yapılacağı konusunda daha iyi bir anlayışa sahip olmalısınız.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu çalışma, duyusal korteksteki aksiyon potansiyeli spike'larını nöronların morfolojik kimlikleriyle ilişkilendirmeye odaklanmaktadır. Juxtasomal biyositin işaretlemesi kullanarak araştırmacılar, nöronal aktiviteyi kaydederken aynı zamanda nöronları detaylı yapısal analiz için işaretleyebilirler.
Nöronal aktivitenin yapısal kimlikle ilişkilendirilmesi, duyusal işleme devrelerindeki hücre tipine özgü rollerin netleştirilmesi yoluyla hedef doğrulamada mekanistik risklerin azaltılmasını sağlar. Bu yaklaşım, hipotez testleri için kantitatif morfolojik ve fonksiyonel veriler sağlayarak preklinik modellerdeki öngörü güvenilirliğini destekler. Bu yöntem, keşif aşamasındaki temel bir zorluğu ele alır: bireysel nöronal alt tiplerin, hastalıkla ilgili sistemlerde ağ düzeyindeki bilgi işlemeye nasıl katkıda bulunduğunun çözümlenmesi.
Bu yöntem, duyusal işleme yollarındaki nöronal hedeflerin mekanistik risklerinin azaltılmasını sağlayarak, erken hedef hipotez testlerinden öncü bileşik tanımlamaya kadar olan keşif sürecine entegre olur.