Name: Katı Örneklerinin From İlköğretim Yumurtalık Kanseri Hücreleri alma için yöntem (Video) | JoVE Journal
Uploaded: 2014-02-04T15:00:00.000+00:00
Duration: 5 min 58 s
Description: Öğrenin katı klinik örneklerden primer epitelyal yumurtalık kanser hücrelerinin enzimatik sindirim ve filtrasyon ile izolasyonunu. Bu yöntem, haftalarca kültürlenerek kişiselleştirilmiş tedavi stratejileri için güvenilir hücre kaynağı sağlar.

ai_agent_IP

ai_agent

maintenance

instantTrialDurationMinutes

isBiopharma

enableNewMyJoveSectionDesign

educationFeatures

seoMetaApi

ai_copilot_institution_blacklist

ai_chat_institution_blacklist

freeAccessWindow

ssoRoleCapture

scheduledMaintenanceBanner

joveLabsFeatures

disable_autoplay_for_bots

extended_trial_duration

5 minutes

Biz hasta doku örnekleri koleksiyonu ile yardım için Minnesota Üniversitesi Doku Alımı Tesisi çalışanlarına teşekkür etmek istiyorum. Bu çalışma MB Minnesota Yumurtalık Kanseri Birliği tarafından ve MB Jinekolojik Onkoloji Bölüm fonunun, Randy Tıraş Kanser Araştırma ve MB Toplum Fonu tarafından, Savunma Bakanlığı Yumurtalık Kanseri Araştırma Programı (OCRP) MB OC093424 tarafından desteklenmiştir. Maliyeciler, çalışma tasarımı, veri toplama ve analizi, yayımlamak için karar ya da yazının hazırlanmasında herhangi bir rolü vardı.

Etik Bildirimi Yumurtalık kanseri Katı numuneler Kurumsal Değerlendirme Kurulu Komite sonra Minnesota Üniversitesi Doku Alımı Tesisi (TPF) elde edilmiştir: İnsan Konu Kurulu (KİK) onayı. 1.. Reaktif Kur <ol><li> % 10 FBS ve 100 birim penisilin-streptomisin ile takviye DMEM ile tam bir DMEM ortamıyla hazırlayın. 4 ° C &#39;de sıcak bir orta depolamak ve 37 ° C, kullanımdan önce. </li><li> Birden fazla donma önlemek için 5-10 ml ayrı cilt içine kısım dispase II nonfrost ücretsiz dondurucuda -20 ° C&#39;de çözülür ve mağaza. </li></ol> 2. Doku Toplama <ol><li> Makroskopik olarak bir patolog tarafından kanser gibi tanımlanan alanlarda cerrahi sırasında yumurtalık kanseri (boyut olarak ~ 5 g) katı madde örnekleri toplamak. Klinik örnekler-de tespit ve kurumsal protokollere göre kayıtlıdır. </li><li> Steril, sc örnekleri yerleştirinrew kapak, polipropilen, buzla soğutulmuş PBS nin 30 ml &#39;si ile doldurulmuş bir kap ve numune. Ve numune toplama 30 dakika (Şekil 1) içinde, buz üzerinde işlem için araştırma laboratuvarında için cerrahi patoloji laboratuvar numunelerini taşımak. </li></ol> 3. Doku İşleme <ol><li> Steril koşullar altında çalışarak, bir Petri kabı üzerine numune (60 mm x 60 mm), taze, buz soğukluğunda 10 ml PBS ihtiva eden ve bundan başka (2 mm veya daha az) mümkün olan en küçük parçalar halinde kesilmiş, bir steril bir jilet kullanılarak (aktarmak Şekiller 2A ve 2B). </li><li> DMEM dispase II (2.4 U / ml) (30 dakika boyunca 37 ° C) önceden ısıtılmış 10 ml içeren, 15 ml konik tüp içine kıyılmış dokuları aktarın ve 30 dakika boyunca% 5 CO2 ile 37 ° C&#39;de inkübe edin. Örneklerin optimal sindirim sağlamak için, el ile hücre karışımının her bir 5 dakika çalkalayın. </li><li> 30 dakika inkübasyon, transferi (kullandıktan sonra10 ml serolojik pipet) bir hücre süzgecinden (70 um mesh) üzerine hücre bulamacı, 50 ml konik tüp üstüne yerleştirilir ve bir şırınga pistonunun kullanılarak örgü karşı hafif bir basınç uygulamak. (Mesh üstünde kalan) herhangi bir çözülmemiş doku atın ve 50 ml konik bir tüp içinde, steril, elde edilen hücre süspansiyonu toplar. 4 ° C &#39;de, 7 dakika (Şekil 3) için 320 x g&#39;de santrifüjleyin. </li><li> Süpernatant atılır ve% 10 FBS içeren DMEM, 10 ml hücre pelletini. </li><li> Hücre% 5 CO2 ile bir Petri tabağına ve süspansiyon 37 ° C de (Şekil 4) inkübe edin. </li><li> Ilk kaplama 24 saat sonra, ortam, değiştirin. Bu, hücre kalıntılarının uzaklaştırılmasından ve kültür içinde mevcut olan eritrositlerin çoğunluğu için izin verir. </li><li> ORTA birincil EOC&#39;nin kültürleri aşağı uygulamalar için hazır sonra aşağıdaki iki hafta boyunca her üç günde bir değiştirin. </li></ol>

<ol><li>Kurman, R. J., Visvanathan, K., Roden, R., Wu, T. C., Ie M, S. hih <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+detection+and+treatment+of+ovarian+cancer%3A+shifting+from+early+stage+to+minimal+volume+of+disease+based+on+a+new+model+of+carcinogenesis%5BTitle%5D)+AND+%22Am.+J.+Obstet.+Gynecol%22%5BJournal%5D)">Early detection and treatment of ovarian cancer: shifting from early stage to minimal volume of disease based on a new model of carcinogenesis.</a> Am. J. Obstet. Gynecol. 198 (4), 351-356 (2008).</li>
<li>Kuhn, E., Kurman, R. J., Shih, I. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ovarian+Cancer+Is+an+Imported+Disease%3A+Fact+or+Fiction%5BTitle%5D)+AND+%22Curr.+Obstet.+Gynecol.+Rep%22%5BJournal%5D)">Ovarian Cancer Is an Imported Disease: Fact or Fiction.</a> Curr. Obstet. Gynecol. Rep. 1 (1), 1-9 (2012).</li>
<li>Sarojini, S., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Early+detection+biomarkers+for+ovarian%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Oncol%22%5BJournal%5D)">Early detection biomarkers for ovarian.</a> J. Oncol. , (2012).</li>
<li>Shepherd, T. G., Theriault, B. L., Campbell, E. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Nachtigal+M.W.+Primary+culture+of+ovarian+surface+epithelial+cells+and+ascites-derived+ovarian+cancer+cells+from+patients%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protoc%22%5BJournal%5D)">Nachtigal M.W. Primary culture of ovarian surface epithelial cells and ascites-derived ovarian cancer cells from patients.</a> Nat. Protoc. 1 (6), 2643-2649 (2006).</li>
<li>Tsao, S. W., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+human+ovarian+surface+epithelial+cells+immortalized+by+human+papilloma+viral+oncogenes+%28HPV-E6E7+ORFs%29%5BTitle%5D)+AND+%22Exp.+Cell.+Res%22%5BJournal%5D)">Characterization of human ovarian surface epithelial cells immortalized by human papilloma viral oncogenes (HPV-E6E7 ORFs).</a> Exp. Cell. Res. 218 (2), 499-507 (1995).</li>
<li>Auersperg, N., Maines-Bandiera, S. L., Dyck, H. G., Kruk, P. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Characterization+of+cultured+human+ovarian+surface+epithelial+cells%3A+phenotypic+plasticity+and+premalignant+changes%5BTitle%5D)+AND+%22Lab.+Invest%22%5BJournal%5D)">Characterization of cultured human ovarian surface epithelial cells: phenotypic plasticity and premalignant changes.</a> Lab. Invest. 71 (4), 510-518 (1994).</li>
<li>Brewer, M., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vitro+model+of+normal%2C+immortalized+ovarian+surface+epithelial+and+ovarian+cancer+cells+for+chemoprevention+of+ovarian+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Gynecol.+Oncol%22%5BJournal%5D)">In vitro model of normal, immortalized ovarian surface epithelial and ovarian cancer cells for chemoprevention of ovarian cancer.</a> Gynecol. Oncol. 98 (2), 182-192 (2005).</li>
<li>Sueblinvong, T., et al. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Establishment%2C+characterization+and+downstream+application+of+primary+ovarian+cancer+cells+derived+from+solid+tumors%5BTitle%5D)+AND+%22PLoS+One%22%5BJournal%5D)">Establishment, characterization and downstream application of primary ovarian cancer cells derived from solid tumors.</a> PLoS One. 7 (11), (2012).</li>
<li>Rockwell, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((In+vivo-in+vitro+tumour+cell+lines%3A+characteristics+and+limitations+as+models+for+human+cancer%5BTitle%5D)+AND+%22Br.+J.+Cancer+Suppl%22%5BJournal%5D)">In vivo-in vitro tumour cell lines: characteristics and limitations as models for human cancer.</a> Br. J. Cancer Suppl. 41 (4), 118-122 (1980).</li>
<li>Wong, C., Chen, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((The+development%2C+application+and+limitations+of+breast+cancer+cell+lines+to+study+tamoxifen+and+aromatase+inhibitor+resistance%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Steroid.+Biochem.+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">The development, application and limitations of breast cancer cell lines to study tamoxifen and aromatase inhibitor resistance.</a> J. Steroid. Biochem. Mol. Biol. 131 (3-5), 83-92 (2012).</li>
</ol>

Yazarlar ifşa hiçbir şey yok.

Yumurtalık kanseri etiyolojisi ve gelişme daha iyi anlaşılması, bu yıkıcı hastalıktan etkilenen kadınların sonucunu iyileştirmek için çok önemlidir. Bu bağlamda, kullanılmasıdır kurulmuş ve &quot;ticari olarak temin edilebilen&quot; yumurtalık kanseri hücre çizgisi şüphesiz son derece yararlı olmuştur. Ancak, bugün biz kanseri hücre hatları onlar heterojenitenin 9,10 eksikliği gibi birçok açıdan kökenli insan tümör temsilcisi olmadığını biliyorum. Burada, doğrudan cerrahi numune i...

Nispeten düşük insidansı rağmen, yumurtalık kanseri jinekolojik hastalıklar ve kadınlarda 1,2 arasında kanser ölümlerinin beşinci önde gelen nedeni arasında en ölümcül olanıdır. Bu sadakatle hastalığın 3&#39;ün başlangıcı ve ilerlemesini özetlemek güvenilir araçlar ve model eksikliğinden kaynaklanmaktadır. Yumurtalık kanseri hakkındaki bilgi, bugün çoğu asitik sıvı 4-7 geri ölümsüzleştirilmiş over yüzey epitel hücreleri (kaybetmez), yumurtalık kanseri hücre hatları ve primer yumurtalık kanser hücrelerinin kullanımı ile mümkün olmuştur. Ne yazık ki, bunların kullanımı ölümsüzleşme işlemi ile ya da in vitro pasajlar ilişkili genetik ve fenotipik bir dizi değişiklik ve asitik sıvı preparattan elde nüfusun heterojenliği dahil olmak üzere çeşitli sınırlamalara sahiptir. Bu nedenle, yumurtalık kanseri tanımlanabilir ve belirli katı örneklerden türetilmiş primer yumurtalık kanseri hücrelerinin uniqu temsilyumurtalık kanserinin ilerlemesini eğitim için e araçtır. Bu habis hücrelerin elde edilmesi ile ilgili başlıca zorluklar canlılık kaybına ve EOC, bu hücrelerin kültürü içinde çoğalma kapasitesinin vaktinden önce eksikliği ile birlikte stromal hücreleri ya da fibroblastlarının bir büyüme kaynaklanmaktadır. Katı tümörlerden tek hücre süspansiyonları oluşturmak için çeşitli yöntemler halen mekanik yollarla ya da enzimatik ayrışma yoluyla, ancak bazı teknikler tercih edilen sonucun 8 daha büyük bir miktarda, verim vardır. Burada, gösteriyor ki uygun, fibroblast içermeyen EOC hücrelerinin etkili bir kurtarma dispase II sonuçları ile enzimatik sindirim. Bu şekilde elde edilen kültürler EOC genetik manipülasyonu için son derece hassastır ve aynı zamanda, ilaç tarama deneylerinde yararlıdır, bu EOC kültürler çok alt uygulamalar için uygun olduğuna işaret etmektedir.

<table><tbody><tr><td>1x PBS, steril ve nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>14190-144</td><td></td></tr><tr><td>Vidalı kapak, polipropilen numune kabı, steril</td><td>Thermo Scientific</td><td>02 1090</td><td></td></tr><tr><td>DMEM orta, steril ve nbsp;</td><td>Invitrogen</td><td>11995-065</td><td></td></tr><tr><td>Fetal sığır serumu, steril</td><td>Thermo Scientific Hyclone</td><td>SH30396.03</td><td></td></tr><tr><td>100x Penisilin-streptomisin, sıvı</td><td>Invitrogen</td><td>15140-122</td><td></td></tr><tr><td>Dispase II, steril</td><td>Roche</td><td>04942 078 001</td><td></td></tr><tr><td>Küçük ince uçlu forseps ve neşter bıçağı, steril</td><td>Fisher Scientific</td><td>forseps: 08-953E, bıçaklar: 08-927-5D</td><td></td></tr><tr><td>Küçük diseksiyon makası, steril</td><td>Fisher Scientific</td><td>08-945</td><td></td></tr><tr><td>15 ml Konik kapaklı tüpler, steril</td><td>BD Falcon</td><td>352097</td><td></td></tr><tr><td>50 ml Konik kapaklı tüpler, steril</td><td>BD Falcon</td><td>352027</td><td></td></tr><tr><td>10 ml Serolojik pipet, steril&nbsp;</td><td>Corning</td><td>13-678-11E</td><td></td></tr><tr><td>6 ml Şırınga pistonu, steril&nbsp;</td><td>Tyco Healthcare</td><td>8881516911</td><td></td></tr><tr><td>Naylon filtre (70 &mu; m) hücre süzgeci, steril</td><td>BD Falcon</td><td>352350</td><td></td></tr><tr><td>5 cm Petri kabı, steril ve nbsp;</td><td>Corning</td><td>430166</td><td></td></tr><tr><td>10 cm Petri kabı, steril&nbsp;</td><td>Corning 430167</td><td></td><td></td></tr></tbody></table>

katı Örneklerinin from İlköğretim yumurtalık kanseri hücreleri alma için yöntem

Method for Obtaining Primary Ovarian Cancer Cells From Solid Specimens

Yumurtalık kanseri başlamasını ve ilerlemesini soruşturma için güvenilir araçlar acilen ihtiyaç vardır. Yumurtalık kanseri hücresi hatlarının kullanımı yumurtalık kanseri anlamak için değerli bir araç devam ederken, bunların kullanımı, birçok sınırlamalar vardır. Bu heterojenlik eksikliği ve genişletilmiş in vitro pasaj ile ilişkili genetik değişikliklerin bolluk vardır. Burada birincil yumurtalık kanseri hücrelerinin hızlı kurulması için bir yöntem sağlar: bir ameliyat sırasında toplanan katı klinik örnekler meydana açıklar. Yöntem, 30 dakika boyunca enzimatik sindirme klinik örnekleri tabi oluşur. İzole edilmiş hücre süspansiyonu büyümeye bırakılır ve ilaç taraması gibi alt uygulama için kullanılabilir. Kurulan yumurtalık kanseri hücre hatları üzerinden birincil yumurtalık kanseri hücre çizgilerinin avantajı, türetildikleri ve farklı sitelerde olup türetilebilir orijinal spesifik klinik numuneler için temsili olmasıdır primary veya metastatik over kanseri.

Yumurtalık kanseri Taze klinik örnekleri (Şekil 1), ameliyat sonrası toplandı ve hücre karışımın küçük parçalar oluşturan (Şekil 2A ve 2B) kesilir. Bu, enzimatik tedaviye numunelerin uygun poz sağlar. Hücre bulamacı enzimatik sindirme maruz bırakılmış ve 30 dakika boyunca 37 ° C&#39;de inkübe edilir. Inkübasyon süresi boyunca bulamaç (özellikle her ajitasyon sonra) giderek daha bulanık hale gelir ve bu doku ayrıştırma bir işaretidir. İnkübasyon süresi sonunda, harç madd...

Bu çalışma, bir katı klinik örneklerden birincil yumurtalık kanser hücrelerinin izolasyonu ve karakterizasyonu için ayrıntılı bir yöntemi tarif etmektedir. Yumurtalık kanseri klinik örnekler alt uygulamalar için son derece uygun olan uygun bir, fibroblast içermeyen epitelyal yumurtalık kanseri (EOC) hücreleri elde etmek için enzimatik sindirme tabi tutulur.

Katı Örneklerinin From İlköğretim Yumurtalık Kanseri Hücreleri alma için yöntem

Reliable tools for investigating ovarian cancer initiation and progression are urgently needed. While the use of ovarian cancer cell lines remains a ...

Bu prosedürün genel amacı, solid klinik örneklerden primer over kanseri hücrelerini izole etmek ve karakterize etmektir. Bu işlem, öncelikle over tümör örneğinin toplanması ve bir Petri kabına yerleştirilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adımda, örnek parçalara ayrılır ve inkübasyon için sindirim reaktifleri içeren konik bir tüpe aktarılır.Ardından, hücre süspansiyonu, yalnızca hücrelerin toplandığı bir filtreden geçirilir. Santrifüjleme için son adım, süpernatantın atılması ve hücrelerin gece boyunca inkübasyon için medyumda yeniden süspanse edilmesidir. Nihayetinde, epitelyal over kanseri hücreleri kültürde haftalarca büyüyecek ve bu durum aşağı akış uygulamalarına olanak sağlayacaktır. Bu yöntem, her bir hasta için en iyi tedavi seçeneğinin ne olduğu gibi over kanseri alanındaki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.Bu tekniğin etkileri, genetik manipülasyona oldukça duyarlı olan ve ilaç tarama testleri için daha yararlı olan daha gerçekçi hücre kültürlerini kullanmamıza olanak tanıdığı için yumurtalık kanseri tedavisine kadar uzanmaktadır. Başlamak için, 500 mililitre DMEM (Dulbecco's Modified Eagle Medium) ortamını %10 fetal bovine serum (FBS) ve %1 penisilin, strept

method-for-obtaining-primary-ovarian-cancer-cells-from-solid-specimens

Research

JoVE Journal

Medicine

Tıp

Üç boyutlu heterotipik<em&gt; In Vitro</emYumurtalık Kanseri Başlatma ve İlerleme sırasında Stromal-Epitel Etkileşimleri&gt; Modelleme

Bu protokol, yumurtalık eksplantlarını fallop tüpü kanseri hücreleriyle birlikte kültürleyerek numune hazırlama tekniğini açıklar. Bu örnekler, tümör gelişimine yol açan hücreler ve dokular arasındaki küçük molekül değişimini tespit etmek için görüntüleme kütle spektroskopisi veya IMS kullanılarak görselleştirilir.

Görüntüleme Kütle Spektrometresi Analizi için Over Kanseri İletişiminin Modellenmesi: Metastatik Over Tümörü Gelişiminde Küçük Moleküllü Kimyasal İletişimcileri Tanımlamak İçin Bir Yöntem

Bu videoda, katı yumurtalık tümör dokusu örneklerinden primer yumurtalık kanseri hücrelerini izole etmek ve karakterize etmek için bir yöntem açıklıyoruz. Bu protokol kullanılarak elde edilen epitel kanseri hücreleri, yumurtalık kanserinin başlamasına ve gelişmesine yol açabilecek süreçleri anlamak için uygundur.

Katı Örneklerden Primer Over Kanseri Hücrelerinin Elde Edilmesi: Over Tümörü Örneklerinden Epitelyal Over Kanseri Hücrelerinin Kültürlenmesinde Bir Yöntem

Periton mezotel zarının içine yumurtalık kanseri hücre işgali zamanla dinamik bir süreçtir. Gerçek zamanlı analiz kullanarak, bir küremsi-mezotel hücresi eş-kültür modelinde, yumurtalık kanseri hücrelerinin invaziv kapasitesi metastatik işlemini düzenleyen faktörleri bakış açıları sağlayan, uzun süreler boyunca ölçülebilir.

Real Time Mezotelyal Hücrelerinin Yumurtalık Kanseri Sferoid Ek ve Invasion Değerlendirilmesi

Tümör başlatıcı hücreler (TIC'ler), oldukça tekrarlayan ve ölümcül bir hastalık olan yumurtalık kanserinin tedavisi için uygun bir terapötik hedef olabilir. Bu yüksek derecede tümörjenik hücre popülasyonu için zenginleştiren kültür koşulları için bir protokol sunuyoruz.

Yumurtalık Kanseri Tümör başlatan Hücrelerinin in vitro Zenginleşmeden içinde

Burada, yumurtalık kanseri hücresi adezyonunu, invazyonunu ve proliferasyonunu araştırmak için bir araç olarak, birincil insan mezotelyal hücreleri ve hücre dışı matris ile katmanlanmış fibroblastlardan oluşan periton boşluğunun astarının üç boyutlu bir in vitro modelini oluşturmak için bir protokol sunuyoruz.

İnsan periton boşluğuna bir Organotipik Kültür Yumurtalık Kanseri Yaygınlaştırılması Erken Adımlar Modelleme

over kanseri periton yayılması çok adımlı süreci açıklamak için, mevcut çalışma bu tümör hücreleri ile ortotopik aşılamadan yoluyla orijinal tümör gelişimi ve periton metastazı bir fare deneysel modeli sunar.

Orijinal Tümör Geliştirme Murin Deneysel Modeli ve Periton Metastaz<em&gt; yoluyla</emYumurtalık Kanseri Hücreleri ile&gt; Ortotopik aşılama

Hasta kaynaklı organoidler (PDO), tümör ortamını in vitro olarak taklit edebilen üç boyutlu (3D) bir kültürdür. Yüksek dereceli seröz over kanserinde, PDO'lar yeni biyobelirteçleri ve terapötikleri incelemek için bir model oluşturur.

Yüksek Dereceli Seröz Yumurtalık Kanseri Hasta Kaynaklı Organoidlerin Üretimi ve Kültürlenmesi

Hasta kaynaklı yumurtalık kanseri organoidleri ile terapötik ilaç testi yapmak için kullanılabilecek bir protokol sunuyoruz.

Klinik Öncesi İlaç Testi için Yumurtalık Kanseri Hasta Kaynaklı Organoid Modeller

Bu protokol, kanser hücresi-omentum etkileşiminin üç boyutlu (3D) ex vivo modelinin kurulmasını açıklar. Model, yağ nişi içindeki pro-tümör mekanizmalarını aydınlatmak ve yeni tedavileri test etmek için bir platform sağlar.

İnsan Omentumu Kullanılarak Over Kanseri Periton Metastazının Ex Vivo Modeli

Bu protokol, farklı hastalık evrelerinden yumurtalık kanseri organoidlerinin oluşturulması için sistematik bir çerçeve sunar ve verimi artırmak ve sonraki uygulamalar için sağlam uzun vadeli genişleme sağlamak için hastaya özgü değişkenliğin zorluklarını ele alır. Doku işleme, tohumlama, ortam gereksinimlerini ayarlama ve immünofloresan boyama için ayrıntılı adımlar içerir.

Yumurtalık Kanseri Organoidlerinin Biyobankacılığı Stratejisi: Histolojik Alt Tipler ve Hastalık Evrelerinde Hastalar Arası Heterojenliğin Ele Alınması

Öğrenin katı klinik örneklerden primer epitelyal yumurtalık kanser hücrelerinin enzimatik sindirim ve filtrasyon ile izolasyonunu. Bu yöntem, haftalarca kültürlenerek kişiselleştirilmiş tedavi stratejileri için güvenilir hücre kaynağı sağlar.

Katı Örneklerinin From İlköğretim Yumurtalık Kanseri Hücreleri alma için yöntem

Daha fazla video keşfet