4 Şubat 2014
Bu çalışma, bir katı klinik örneklerden birincil yumurtalık kanser hücrelerinin izolasyonu ve karakterizasyonu için ayrıntılı bir yöntemi tarif etmektedir. Yumurtalık kanseri klinik örnekler alt uygulamalar için son derece uygun olan uygun bir, fibroblast içermeyen epitelyal yumurtalık kanseri (EOC) hücreleri elde etmek için enzimatik sindirme tabi tutulur.
Bu prosedürün genel amacı, primer yumurtalık kanseri hücrelerini katı klinik örneklerden izole etmek ve karakterize etmektir. Bu, önce yumurtalık tümörü örneğinin toplanması ve bir Petri kabına yerleştirilmesiyle gerçekleştirilir. İkinci adım, numuneyi parçalara ayırmak ve parçaları, inkübasyon için sindirim reaktifleri içeren konik bir tüpe aktarmaktır.
Daha sonra, hücre bulamacı sadece hücrelerin toplandığı bir filtreden geçirilir Santrifüjleme için son adım, süpernatantın atılması ve hücrelerin gece boyunca inkübasyon için ortamda yeniden süspanse edilmesidir. Sonuç olarak, epitelyal yumurtalık kanseri hücreleri haftalarca kültürde büyüyecek ve bu da aşağı akış uygulamalarına izin verecektir. Bu yöntem, her bir hasta için en iyi tedavi seçeneğinin ne olduğu gibi yumurtalık kanseri alanındaki temel soruları yanıtlamaya yardımcı olabilir.
Bu tekniğin etkileri, yumurtalık kanserinin tedavisine doğru uzanır, çünkü genetik manipülasyona oldukça duyarlı olan ve ilaç tarama testleri için daha yararlı olan daha gerçekçi hücre kültürlerini kullanmamıza izin verir. Başlamak için, 500 mililitre delcos, modifiye eagles, medium veya DMEM'i %10 fetal sığır serumu veya FBS ve %1 penisilin, streptomisin veya ps ile takviye edin. Ortamı dört santigrat derecede saklayın.
Numuneyi ameliyathaneden alın ve buz üzerinde, hala taşınan kabın içinde bulunan laboratuvara taşıyın. Numuneyi biyolojik bir güvenlik başlığına yerleştirin. Numuneyi 50 mililitrelik konik bir tüpten 10 mililitre taze buz gibi soğuk PBS içeren 60 milimetreye 60 milimetrelik bir Petri kabına aktarın.
Daha sonra, steril bir tıraş bıçağı kullanarak numuneyi iki milimetre veya daha küçük parçalar halinde kesin. Daha sonra DMEM'i 15 litrelik konik bir tüpte disk macun tüpü ile tedavi edin. Kıyılmış dokuları DMEM dispa iki karışım tüpüne aktarın.
Daha sonra numuneyi 30 dakika boyunca %5 karbondioksit ve 37 santigrat derecede inkübe edin. Optimum sindirimi sağlamak için hücre bulamacını her beş dakikada bir manuel olarak çalkalayın. İnkübasyondan sonra, hücre bulamacını 50 mililitrelik bir konik tüpün üzerine yerleştirilmiş 70 mikrometre gözenekli bir hücre süzgecinden geçirin.
Bir şırınga pistonu kullanarak ağa karşı nazikçe basınç uygulayın, ağın üstünde kalan ilişkisiz dokuları atın ve elde edilen hücre süspansiyonunu 50 mililitrelik steril konik tüpte toplayın. Sonra, santrifüj. Konik tüp, dört santigrat derecede yedi dakika boyunca 320 kez G'de.
Süpernatanı atın ve hücre peletini %10 FBS ve %1 ps içeren 10 mililitre DMEM'de yeniden süspanse edin. Daha sonra hücre süspansiyonunu bir Petri kabına aktarın ve süspansiyonu %5 karbondioksit ve 37 santigrat derecede inkübe edin. Hücresel kalıntıları ve kültürde bulunan eritrositlerin çoğunu çıkarmak için ilk kaplamadan 24 saat sonra ortamı değiştirin.
Son olarak, takip eden iki hafta boyunca ortamı her üç günde bir değiştirin, ardından birincil EOC hücrelerinin kültürleri aşağı akış uygulamaları için hazır olur. Kaplamadan hemen sonra. Epitelyal yumurtalık kanseri hücreleri veya EOC hücreleri, tek hücreli süspansiyonlar halinde ve eritrositler ve hücre kalıntıları ile bol miktarda kümeler halinde görülür.
Kaplamadan üç gün sonra EOC hücre kültürü, yarı yapışık EOC hücre kümeleri ve daha az eritrosit kontaminasyonu gösterir. İlk kaplamadan bir hafta sonra, EOC hücre kültürü, doku kültürü plastiği üzerine yayılan girdap benzeri bir hücre kümesi haline gelir. Tipik epitelyal parke taşı morfolojisi, kültürde 14 gün sonra EOC hücrelerinin birleşik bir tek tabakasında görülebilir.
Bu videoyu izledikten sonra, primer yumurtalık kanseri hücrelerinin katı klinik örneklerden nasıl izole edileceğini ve karakterize edileceğini iyi anlamış olmalısınız.
Tam transkripti görüntüleyin ve binlerce bilimsel videoya erişin
Bu çalışma, solid klinik örneklerden primer over kanseri hücrelerinin izolasyonu ve karakterizasyonu için ayrıntılı bir yöntemi tanımlamaktadır. Prosedür, epitelyal over kanseri hücrelerinin kültürde büyütülmesine olanak tanıyarak sonraki uygulamaları kolaylaştırır.
Solid klinik örneklerden primer over kanseri hücrelerinin oluşturulması, birikmiş genetik artefaktlar içeren pasajlanmış hücre hatlarına olan bağımlılığı azaltan ve hastaya özgü modeller kurulmasına olanak tanıyan bir yöntemdir. Bu yaklaşım, primer veya metastatik lezyonların tümör heterojenliğini ve bölgeye özgü biyolojisini koruyarak, hedef doğrulamadaki mekanistik risklerin azaltılmasını destekler. Elde edilen kültürler, sonraki tarama işlemleri için yenilenebilir bir kaynak sağlayarak preklinik karar verme süreçlerindeki öngörü güvenilirliğini artırır.
Yöntem, erken biyolojiden öncü bileşik tanımlamaya kadar uzanan keşif sürekliliğine uyum sağlayarak, sonraki tarama ve doğrulama çalışmalarının ilgisini artıran primer hücreler sunmaktadır.