-1::1
Simple Hit Counter
Skip to content

Products

Solutions

×
×
Sign In

TR

EN - EnglishCN - 简体中文DE - DeutschES - EspañolKR - 한국어IT - ItalianoFR - FrançaisPT - Português do BrasilPL - PolskiHE - עִבְרִיתRU - РусскийJA - 日本語TR - TürkçeAR - العربية
Sign In Start Free Trial

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

Behavior
Biochemistry
Bioengineering
Biology
Cancer Research
Chemistry
Developmental Biology
View All
JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

Biological Techniques
Biology
Cancer Research
Immunology
Neuroscience
Microbiology
JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduate courses

Analytical Chemistry
Anatomy and Physiology
Biology
Calculus
Cell Biology
Chemistry
Civil Engineering
Electrical Engineering
View All
JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

Advanced Biology
Basic Biology
Chemistry
View All
JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

Biology
Chemistry

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

Accounting
Finance
Macroeconomics
Marketing
Microeconomics

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Authors

Teaching Faculty

Librarians

K12 Schools

Biopharma

Products

RESEARCH

JoVE Journal

Peer reviewed scientific video journal

JoVE Encyclopedia of Experiments

Video encyclopedia of advanced research methods

JoVE Visualize

Visualizing science through experiment videos

EDUCATION

JoVE Core

Video textbooks for undergraduates

JoVE Science Education

Visual demonstrations of key scientific experiments

JoVE Lab Manual

Videos of experiments for undergraduate lab courses

BUSINESS

JoVE Business

Video textbooks for business education

OTHERS

JoVE Quiz

Interactive video based quizzes for formative assessments

Solutions

Authors
Teaching Faculty
Librarians
K12 Schools
Biopharma

Language

tr_TR

EN

English

CN

简体中文

DE

Deutsch

ES

Español

KR

한국어

IT

Italiano

FR

Français

PT

Português do Brasil

PL

Polski

HE

עִבְרִית

RU

Русский

JA

日本語

TR

Türkçe

AR

العربية

    Menu

    JoVE Journal

    Behavior

    Biochemistry

    Bioengineering

    Biology

    Cancer Research

    Chemistry

    Developmental Biology

    Engineering

    Environment

    Genetics

    Immunology and Infection

    Medicine

    Neuroscience

    Menu

    JoVE Encyclopedia of Experiments

    Biological Techniques

    Biology

    Cancer Research

    Immunology

    Neuroscience

    Microbiology

    Menu

    JoVE Core

    Analytical Chemistry

    Anatomy and Physiology

    Biology

    Calculus

    Cell Biology

    Chemistry

    Civil Engineering

    Electrical Engineering

    Introduction to Psychology

    Mechanical Engineering

    Medical-Surgical Nursing

    View All

    Menu

    JoVE Science Education

    Advanced Biology

    Basic Biology

    Chemistry

    Clinical Skills

    Engineering

    Environmental Sciences

    Physics

    Psychology

    View All

    Menu

    JoVE Lab Manual

    Biology

    Chemistry

    Menu

    JoVE Business

    Accounting

    Finance

    Macroeconomics

    Marketing

    Microeconomics

Start Free Trial
Loading...
Home
JoVE Journal
Biology
Kalkınma Erken Dönemlerinde Diseksiyon ve Zebra Finch Embriyolar Mansabında Analizi
Kalkınma Erken Dönemlerinde Diseksiyon ve Zebra Finch Embriyolar Mansabında Analizi
JoVE Journal
Biology
This content is Free Access.
JoVE Journal Biology
Dissection and Downstream Analysis of Zebra Finch Embryos at Early Stages of Development

Kalkınma Erken Dönemlerinde Diseksiyon ve Zebra Finch Embriyolar Mansabında Analizi

Full Text
11,393 Views
09:23 min
June 21, 2014

DOI: 10.3791/51596-v

Jessica R. Murray1, Monika E. Stanciauskas1, Tejas S. Aralere1, Margaret S. Saha1

1Department of Biology,College of William and Mary

AI Banner

Please note that some of the translations on this page are AI generated. Click here for the English version.

Overview

This protocol outlines the dissection of early zebra finch embryos for developmental and molecular applications. The technique aims to minimize tissue damage, allowing for detailed morphological and gene expression studies.

Key Study Components

Area of Science

  • Developmental Biology
  • Molecular Biology
  • Toxicology

Background

  • Zebra finches are important model organisms in developmental studies.
  • Early embryonic stages have not been extensively researched.
  • Understanding the effects of toxins on development is crucial.
  • This method provides insights into comparative developmental biology.

Purpose of Study

  • To dissect intact zebra finch embryos at early stages.
  • To facilitate downstream developmental and molecular applications.
  • To investigate the impact of methylmercury on gene expression and cell proliferation.

Methods Used

  • Cutting the eggshell and emptying contents onto WHE paper.
  • Identifying the zone of junction and isolating the embryo.
  • Washing and fixing the embryo for analysis.
  • Removing the vitelline membrane for clarity in observation.

Main Results

  • The technique minimizes damage to embryonic tissues.
  • Allows for detailed morphology and gene expression studies.
  • Facilitates research on the effects of toxins during early development.
  • Visual demonstration is critical for successful dissection.

Conclusions

  • This method is effective for studying early zebra finch development.
  • It provides a framework for investigating developmental biology questions.
  • Future research can build on this technique to explore various toxins.

Frequently Asked Questions

What is the main goal of this dissection protocol?
The main goal is to dissect intact zebra finch embryos for developmental and molecular applications.
Why is it important to minimize tissue damage during dissection?
Minimizing tissue damage allows for accurate studies of morphology and gene expression.
What are the key materials needed for the dissection?
Key materials include a scalpel, fine-tipped forceps, transfer pipettes, and PBS solution.
How does this method contribute to toxicology research?
It allows researchers to study the effects of toxins on early embryonic development.
What are the challenges faced during the dissection?
Challenges include locating the zone of junction and handling fragile embryonic structures.
What is the significance of the vitelline membrane removal?
Removing the vitelline membrane enhances the clarity of embryonic structures for analysis.

Zebra ispinozu (Taeniopygiaguttata) değerli bir model organizmadır; ancak, zebra ispinozu gelişiminin erken aşamaları kapsamlı bir şekilde çalışılmamıştır. Protokol, gelişimsel ve moleküler uygulamalar için erken embriyoların nasıl inceleneceğini açıklar.

Bu prosedürün genel amacı, aşağı akış gelişimsel ve moleküler uygulamalar için çok erken embriyonik aşamalarda sağlam zebra ispinoz embriyolarını incelemektir. Bu, önce yumurta kabuğunu uzunlamasına keserek ve yumurta içeriğini WHE kağıdına nazikçe boşaltarak gerçekleştirilir. Daha sonra, birleşme bölgesi bulunur ve çevreleyen yumurta sarısı kesilerek embriyo bozulmadan bırakılır.

Daha sonra embriyo bir Petri kabına aktarılır ve daha sonra analiz edilmek üzere sabitlenmeden veya hızlı dondurulmadan önce yıkanır. Son olarak, embriyonik yapıların daha fazla netliği için vitel zarı sabit embriyodan çıkarılır. Sonuç olarak, C'de, iki hibridizasyon ve EDU tedavisi, metil cıva tedavisine yanıt olarak zebra ispinozunun erken embriyonik aşamalarında sırasıyla gen ekspresyonunu ve çoğalan hücreleri gösterir.

Bu tekniğin temel avantajı embriyonik doku hasarını en aza indirgemesidir. Bu, gelişimin tüm aşamaları boyunca morfoloji ve gen ekspresyonunun araştırılmasına izin verir. Bu yöntem, çeşitli toksinlerin gelişimin en erken aşamaları üzerindeki etkileri gibi karşılaştırmalı gelişim biyolojisi ve toksikolojisindeki temel soruların yanıtlanmasına yardımcı olabilir.

Bu tekniğin görsel olarak gösterilmesi çok önemlidir, çünkü erken embriyonik yapılar kırılgan ve gözlemlenmesi zor olduğundan, diseksiyon sırasında zno bağlantısının bulunması ve vilin zarının çıkarılması zor olabilir. Zebra ispinozu yumurtalarını topladıktan ve metin protokolüne göre kuluçkaya yatırdıktan sonra, diseksiyon için aşağıdaki malzemeleri bir araya getirin. Temiz bir neşter ince uçlu forseps, iki ekstra ince uçlu forseps. Üç transfer pipeti, bir XPBS ve %4 para formaldehit.

Embriyoları sabitleyecekseniz, diseksiyon için temiz, emici olmayan bir yüzey sağlamak için diseksiyon kapsamının tabanına 10 x 10 santimetrelik bir dalga kağıdı yerleştirin. Yumurtayı, zebra ispinozu kılavuzu tarafından belirlenen istenen zaman noktasında kuluçka makinesinden çıkarın. Ardından, bir fiber optik aydınlatıcı lamba kullanarak, yumurtayı dikey ekseni boyunca tutarak mumlayın ve iç mekanı aydınlatmak için yumurtanın içinden ışık tutun.

Işığın ucunu yumurtanın arkasına yerleştirin ve yumurta sarısını ve gelişmekte olan embriyoyu bulun. Daha sonra neşteri yumurta sarısının karşısındaki tarafa yerleştirin ve hafif bir basınçla yumurtayı uçtan tabana doğru kesin. Yumurtanın uç uç tabanına dikkatlice baskı uygulamak için başparmağınızı ve işaret parmağınızı kullanarak veya yumurta kabuğunu kesim boyunca nazikçe ayırmak için forseps kullanarak yumurtanın içeriğini çıkarın.

Soluk beyaz bir halka olarak görünen beyaz birleşme bölgesi için yumurta sarısını inceleyin. Gelişmekte olan embriyoyu çevreleyin ve embriyoyu ekstra embriyonik dokudan ayırmak için embriyo merkezde yer alacak şekilde yumurta sarısını yönlendirmek için ince uçlu forseps kullanın. Basıncı azaltmak için yumurta sarısının kenarlarını delin ve embriyonik diskin yanında yumurta sarısı çapının uzunluğu boyunca tek kesimler yapın.

Yumurta sarısının embriyo ile olan bölümü başarıyla ayrılana kadar çapraz çizgiler oluşturmaya devam edin. Bir transfer pipeti kullanarak, yumurta sarısının kenarlarını çıkarın ve yırtılmasını önlemek için embriyoyu yol kağıdında yağlamak için küçük bir miktar bırakın. Embriyonik diski, bir XPBS ile bir transfer pipetinin ucunu, embriyonun altına bakacak şekilde 45 derecelik bir açıyla yerleştirerek ve tamponu az miktarda bir XPBS kullanarak dağıtarak yıkayın.

Embriyoyu küçük bir plastik Petri kabına aktarın. Tabağa daha fazla PBS ekleyerek ve embriyonun yanına PBS damlatarak embriyoyu yıkayın. Kalan sarıyı yıkamak ve çıkarmak için tabağı döndürün.

Ardından atık tamponunu aspire etmek için tabağı eğin. Embriyoyu C iki hibridizasyon için sabitliyorsanız, embriyoyu batırmak için hemen% 4 PFA ekleyin, ardından kıvrılmasını önlemek için PFA'yı düzleştirmek için doğrudan embriyonun üzerine damlatın. Embriyoyu bir metanol serisinde dehidre ettikten sonra dört santigrat derecede 12 saat inkübe edin.

Embriyo bir ila sekizinci aşamalar arasındaysa, birleşme bölgesinin ötesine uzanan zarın kenarlarını kavramak için ekstra ince forseps kullanarak embriyoya yapışan vitel zarını çıkarın. Kalan yumurta sarısı granüllerini yıkamak ve embriyonik diski vitel zarından gevşetmek için embriyoyu birkaç kez dikkatlice çevirin. Birleşme bölgesi ile vitel zarı arasında bir boşluk görünmüyorsa, zardan gevşetmek için bağlantı bölgesini nazikçe çizmek için ekstra ince uçlu forseps kullanın.

Daha sonra viel zarını ve embriyonik diskin periferik kenarını birleşme bölgesinde tutun ve viel zarını yavaşça embriyodan uzaklaştırın. Diseksiyonu takiben embriyo hızlı bir şekilde donarsa, Petri kabına iki ila üç mililitre bir XPBS ekleyin ve embriyoyu OK granüllerinden ayırmak için Petri kabını eğin. Sıvıyı çıkardıktan ve yıkamayı iki ila üç kez tekrarladıktan sonra, embriyoyu önceden etiketlenmiş bir mikro santrifüj tüpüne aktarmak için ince uçlu forseps kullanın ve eksi 80 santigrat derecede saklamadan önce sıvı nitrojen içinde hızlı dondurma yapın.

Fiber optik aydınlatıcı lamba, mum ve yumurta kullanarak EDU hücre proliferasyon testini gerçekleştirmek için. Embriyoyu veya yumurta sarısını bulmak için, mikroenjeksiyon sırasında embriyonun zarar görmediğinden emin olmak için yumurtanın embriyo veya yumurta sarısının karşısındaki tarafını işaretleyin. Daha sonra, modelleme kili ile 60 milimetrelik plastik bir tabağı, yumurtayı istenen yönde tutmak için bir kase şeklinde kalıplayarak hizalayın.

Mikroenjeksiyon iğnesinin yerleştirilmesine izin vermek için işaretli noktanın yönünü ayarlayın. Biri yumurtaya delik açmak için olmak üzere iki cam kılcal iğneyi körelterek ve geri mineral yağ ile çektikten sonra, ikincisinin iğnesini yükleyin ve mikro enjektöre yerleştirin. Mikro enjektörde enjeksiyon başına çözelti hacmini 59.8 nanolitreye ayarlayın ve ardından 10 milimolar stok EDU çözeltisi ile mikroenjeksiyon iğnesini körelmiş cam kılcalını kullanarak yükleyin, işaretli noktada kabukta dikkatlice bir delik açın, kabuğu parçalamamaya veya parçalarını yumurta boşluğuna düşürmemeye dikkat edin.

Yumurtayı, yerleştirilecek mikroenjeksiyon iğnesi ile aynı hizada olacak şekilde delik 45 derecelik bir açıda olacak şekilde yönlendirin. Daha sonra mikro manipülatörü kullanarak, yüklü iğneyi boşluğa yaklaşık bir santimetre sokun ve istenen miktarda EDU solüsyonunu yumurta sarısına veya embriyoya enjekte edin. Yumurtayı ve kil tutucuyu sarmak için hemen birden fazla plastik tabakası kullanın ve kuluçkaya yatmayı önlemek için sargının kenarlarını tabağın dibine bantlayın.

Yumurtayı 37 santigrat derecede stabil bir yüzeyde inkübe edin, istenen aşamaya ulaşılana kadar plastik sargıyı çıkarmadan ve embriyoyu metin protokolüne göre incelemeden önce, bu şekil, orto özdeş homeo kutusunun ekspresyonunu tespit etmek için düşük dozlarda metil cıvaya maruz bırakılan disseke ve sabit embriyolar üzerinde bir NC iki hibridizasyonunu göstermektedir. Kafa yapılarının dorsal ve ventral görünümünde görüldüğü gibi, tedavi edilen embriyolar, tedavi edilmeyen embriyolara kıyasla evre 11'de zihinsel olarak gecikmeli olarak geliştirildi. Evre 12'de, solda gösterilen dört embriyo grubu aynı süre boyunca inkübe edildi.

Bununla birlikte, sol üstteki tedavi edilmemiş iki embriyo altıncı aşamaya ilerlerken, sol alttaki iki cıva ile tedavi edilen embriyo sadece beşinci aşamaya ilerledi. Bu embriyolar, burada gösterilen arka plan boyama eksikliğini göstermek için bir duyu probu ile muamele edildi, EDU ile enjekte edilen ve daha sonra gece boyunca inkübe edilen iki günlük embriyoda çoğalan hücreler. Tıklama kimyası, somitlerin ve kuyruk tomurcuğunun yan kenarlarında ve ayrıca sefalonda çoğalmayı gösterir.

Bu jel, tedavi edilmeden bırakılan veya milyonda 1.2 parça metil cıva ile tedavi edilen disseke evre 16 zebra ispinoz embriyolarından ekstrakte edilen RNA örneklerini içerir, bu da bu videoda gösterilen diseksiyon yönteminin bir kez ustalaştıktan sonra yüksek kaliteli RNA'nın ekstraksiyonuna izin verdiğini gösterir. Bu işlem sırasında uygun şekilde yapılırsa diseksiyon bir dakikadan kısa sürede yapılabilir. Bu prosedürü takiben erken embriyoları gözlemlemek zor olabileceğinden, embriyoyu bulmak için yumurta sarısını belirli bir açıyla incelemek önemlidir.

Kalitatif analizler için inid hibridizasyonu, hücre proliferasyonu, tahliller ve RNA ekstraksiyonu gibi diğer yöntemler, gelişimsel ve toksikolojik çalışmalarda ek soruları yanıtlamak için gerçekleştirilebilir.

Explore More Videos

Gelişimsel Biyoloji Sayı 88 zebra ispinozu ( Canlıdır Taeniopygia

Related Videos

Zebra balığı Embriyonik Göz Dokular, Mikrodisseksiyon

09:01

Zebra balığı Embriyonik Göz Dokular, Mikrodisseksiyon

Related Videos

16.8K Views

Tüm Dağı In situ Moleküler Biyoloji ve organizma Biyoloji Link Hibridizasyon

12:50

Tüm Dağı In situ Moleküler Biyoloji ve organizma Biyoloji Link Hibridizasyon

Related Videos

22.2K Views

Diseksiyon ve Zebra balığı Embriyolar Yanal Montaj: Omurilik Kalkınma Analizi

05:36

Diseksiyon ve Zebra balığı Embriyolar Yanal Montaj: Omurilik Kalkınma Analizi

Related Videos

14.5K Views

Tüm Dağı ile Zebra balığı Embriyo örnekler Vitray gözlenmesi ve Analiz Daire Dağı Hazırlık In situ Melezleme

06:36

Tüm Dağı ile Zebra balığı Embriyo örnekler Vitray gözlenmesi ve Analiz Daire Dağı Hazırlık In situ Melezleme

Related Videos

25.3K Views

diseksiyon mikroskobu kullanılarak Time-lapse Görüntüleme ile Zebra balığı Böbrek Kalkınma Analizi Optik Kesit için donatılmış

10:05

diseksiyon mikroskobu kullanılarak Time-lapse Görüntüleme ile Zebra balığı Böbrek Kalkınma Analizi Optik Kesit için donatılmış

Related Videos

11.3K Views

Canlı Zebra balığı Embriyo Mitotik Bölümü ve Dinamikleri gözlemleme

10:10

Canlı Zebra balığı Embriyo Mitotik Bölümü ve Dinamikleri gözlemleme

Related Videos

12.7K Views

Larva Zebra balığı Gonadal Doku Diseksiyon

10:43

Larva Zebra balığı Gonadal Doku Diseksiyon

Related Videos

11.1K Views

Embriyonik Anjiyojenezin Görselleştirilmesi ve Nicel Analizi

06:05

Embriyonik Anjiyojenezin Görselleştirilmesi ve Nicel Analizi

Related Videos

8.9K Views

Zebra Balıklarında Omurgalı Segmentasyonunu İncelemek için 3-D Kuyruk Eksplant Kültürü

11:24

Zebra Balıklarında Omurgalı Segmentasyonunu İncelemek için 3-D Kuyruk Eksplant Kültürü

Related Videos

4.7K Views

Erken Zebra Balığı Embriyoları için Işık Levha Mikroskobu Görüntüleme ve Montaj Stratejileri

08:33

Erken Zebra Balığı Embriyoları için Işık Levha Mikroskobu Görüntüleme ve Montaj Stratejileri

Related Videos

1.5K Views

JoVE logo
Contact Us Recommend to Library
Research
  • JoVE Journal
  • JoVE Encyclopedia of Experiments
  • JoVE Visualize
Business
  • JoVE Business
Education
  • JoVE Core
  • JoVE Science Education
  • JoVE Lab Manual
  • JoVE Quizzes
Solutions
  • Authors
  • Teaching Faculty
  • Librarians
  • K12 Schools
  • Biopharma
About JoVE
  • Overview
  • Leadership
Others
  • JoVE Newsletters
  • JoVE Help Center
  • Blogs
  • JoVE Newsroom
  • Site Maps
Contact Us Recommend to Library
JoVE logo

Copyright © 2026 MyJoVE Corporation. All rights reserved

Privacy Terms of Use Policies
WeChat QR code